UNIVERSIDAD CATOLICA DE CUENCA 
COMUNIDAD EDUCATIVA AL SERVICIO DEL PUEBLO 
TEMA 
Monitoreo Microbiológico de la Clínica O...
Monitoreo Microbiológico de la Clínica Odontológica de la 
Universidad Católica de Cuenca 
1. Resumen 
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Toma de muestras 
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5. Resultados 
 A nivel ambiental 
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 A nivel de las escupideras 
Escupidera Germen Asilado 
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Cultivo de botellones de agua (sillones #7, #13, #24) 
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6. Discusión 
Numerosos investigadores han estudiado el impacto de las infecciones nosocomiales en el 
ámbito medio-hospit...
7. Conclusiones 
 En el análisis de las escupideras se demostró un grado muy inferior de 
contaminación por lo tanto los ...
9. Anexos 
ESQUEMA DEL PROCEDIMIENTO-AMBIENTE
CAJA PETRI CON MOHOS Y LEVADURAS 
CAJA PETRI CON CULTIVOS PARA SEMBRAR LOS MICROORGANISMOS
CAJA PETRI CON ESTREPTOCOCOS Y KLEBSIELLA 
CAJA PETRI EMB
10. Bibliografía 
 González JA. Calidad bacteriológica del agua utilizada en clínicas Odontológicas. 
 Milleri CH. Los m...
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Analisis microbiologico clinica odontologica universidad catolica cuenca

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Analisis microbiologico clinica odontologica universidad catolica cuenca

  1. 1. UNIVERSIDAD CATOLICA DE CUENCA COMUNIDAD EDUCATIVA AL SERVICIO DEL PUEBLO TEMA Monitoreo Microbiológico de la Clínica Odontológica de la Universidad Católica de Cuenca. DIRECTOR DE PROYECTO: DR. RAUL CHUMI T ALUMNO: JUAN PABLO BERREZUETA CURSO: QUINTO “A”
  2. 2. Monitoreo Microbiológico de la Clínica Odontológica de la Universidad Católica de Cuenca 1. Resumen El control de infección es considerado uno de los principales intereses de la comunidad dental ya que numerosos agentes infecciosos pueden transmitirse entre pacientes y el personal de la salud oral. Una de las potenciales vías de infección es el bioaerosol generado durante la práctica odontológica por los instrumentos de alta velocidad. Los aerosoles pueden ser inhalados, causando enfermedades infecciosas como gripe, tuberculosis y otras. La desinfección y esterilización son indispensables y necesarias en todas las áreas que trabajen con la salud, son de suma importancia debido a que se debe trabajar en un ambiente estéril, libre de agentes contaminantes, para no ocasionar consecuencias en el paciente. Podemos decir que la asepsia y la antisepsia deben ser obligatorias en todo lugar donde se trabaje con la salud de un paciente. El objetivo de este trabajo fue determinar el grado de la contaminación que existe en el ambiente, escupideras y agua de las Clínicas Odontológicas de la Universidad Católica de Cuenca. Se realizó un análisis crítico de las normas referentes a al calidad que debe exigirse en estas instalaciones. Efectuando un examen bacteriológico a muestras obtenidas por hisopado de las escupideras (#2, #19, #24) y muestras recolectadas del ambiente con una placa de agar nutritivo, mac conkey y agar sabouraud. Se cuantificó y evaluó la carga bacteriana, las bacterias recuperadas fueron identificadas por técnicas microbiológicas convencionales. Encontrando cargas bacterianas satisfactorias a nivel de las escupideras (53000UFC), En el cultivo de agua no hubo germinación de colonias bacterianas a diferencia del ambiente que presenta concentraciones elevadas de mohos y levaduras (1.7x102UFC). Abstract The infection control is considered one of the main interests of the dental community because there are lots of infectious agents that can be transmitted among patients and the personnel of oral health. One of the potential infection roads is the bioaerosol generated in the dentistry practice by the use of high-speed instruments. The infectious aerosols ca be inhaled, causing infectious illnesses as flu, tuberculosis and others. The desinfection and sterilization are indispensable and necessary in all the areas that work with the health, perform supreme importance due to the fact that it is necessary to be
  3. 3. employed at a sterile, free environment of pollutant agents, not to cause consequences in the patient. We can say that the asepsis and the antisepsis must be obligatory in any place where one works with the health of a patient. In this project there is realized a critical analysis of the procedure relating to the quality that it must be required in these facilities. The aim of this work was to determine how the contamination generated by aerosols in the clinical rooms of the Odontology of the University Catholic of Cuenca. We performed a bacteriological analysis on samples obtained with hyssop of the spittoon (#2, #19, #24), and one sample obtained from the environment with an agar nutritive, mac conkey, and an agar sabouraud. There were satisfactory bacterial loads concerning the spittoon (53000UFC), in the water crop there was germination of bacterial no colonies to difference the atmosphere that presents elevated concentrations of mohos and leavenings (1.7x102UFC) 2. Introducción Una de las principales metas a alcanzar por la comunidad dental es el control de infección, ya que numerosos agentes infecciosos pueden transmitirse entre pacientes y el personal de la salud oral. El riesgo de contraer infecciones se debe principalmente a que la boca es una zona de alto riesgo para la transmisión de enfermedades el profesional trabaja en contacto con saliva y sangre además los aerosoles generados, principalmente por el uso de instrumental rotatorio, son potencialmente infecciosos, pudiendo aumentar 30 veces el número de bacterias en suspensión en el aire del consultorio. El tipo de investigación es descriptiva de campo, y tuvo como objetivo evaluar las superficies susceptibles con mayor contaminación microbiana en unidades dentales de uso continuo en las clínicas Odontológicas de la Universidad Católica de Cuenca. Un estudio más reciente sobre el agua en las unidades dentales de los Estados Unidos reveló que se contenían altos niveles de bacterias con promedios de 49.700 UFC, en relación a las muestras tomadas en las clínicas odontológicas se pudo determinar que las medidas de cloración y filtración brindan efectividad, ya que en el transcurso de 24 a 48 horas no germinaron colonias bacterianas. Es importante recalcar que microorganismos como: Klebsiella, Streptococcus, Staphylococcus y entre otros se pueden encontrar en los diferentes tipos de equipamientos dentales. Se tomó muestras mediante hisopados de las escupideras de diferentes sillones colocando en un tubo que contiene tioglicolato e incubándolo por un periodo de 48 horas.
  4. 4. Para el análisis de agua se tomó muestras en tubos de ensayo estériles, y se procedió al cultivo, luego de dos días de incubación el resultado final fue negativo. En el ambiente el procedimiento se realizó utilizando tres cajas Petri que contenían: Agar Nutritivor, Mac Conkey, Agar Sabouraud, se abrió las cajas y se las dejó por 15 a 20 minutos en el ambiente de la clínicas y luego se procedió a la incubación durante 48 horas, examinando colonias de mohos, levaduras, bacterias coliformes, pertenecientes a la familia de enterobacterias y se definen como bacilos gram negativos, aerobios y anaerobios facultativos, móviles e inmóviles, no esporulados capaces de crecer en medios que contienen sales biliares y de fermentar la lactosa con producción de gas cuando se incuban 48 horas a 35 0C incluye los géneros de Escherichia, enterobacter, klebsiella y especies lactosa positivas de otros géneros. En la práctica los organismos coliformes son siempre miembros del grupo de las bacterias entericas por lo tanto el recuento estándar en placa de mohos y levaduras determinó concentraciones elevadas de 1.7x102 UFC debida a la humedad del ambiente, en comparación con los valores referenciales de la norma INEN quien nos manifiesta que el control microbiológico del aire debería ser de 15 UFC. 3. Objetivo general Determinar los diferentes microorganismos existentes en las instalaciones dentales de las clínicas Odontológicas de la Universidad Católica de Cuenca. Objetivos específicos  Establecer un Protocolo de limpieza y ventilación en las Clínicas de la Facultad  Determinar la efectividad de las técnicas de asepsia aplicadas  Implementar programas de monitoreo ambiental  Revisar las medidas necesarias que debemos seguir para la prevención y control de enfermedades infecto-contagiosas haciendo énfasis en la adecuada esterilización y desinfección tanto del instrumental como del ambiente de trabajo. 4. Materiales y Métodos El tipo de investigación es descriptiva de campo y fue realizada en las clínicas odontológicas de la Universidad Católica de Cuenca. En cada sala se seleccionaron diferentes zonas para la obtención de muestras, teniendo en cuenta la mayor y mejor circulación de personas y el batido producido por las puertas.
  5. 5. Toma de muestras Las muestras ambientales fueron tomadas durante tres períodos diferentes de actividad de alumnos y profesionales de la clinica de operatoria dental.  En el monitoreo de la contaminación del ambiente se realizó un recuento estándar de la placa para mohos y levaduras, recuento estándar de placa de coliformes totales y fecales, recuento de coliformes en placa petrifilm, se utilizó:  1 caja Petri con 20ml de: AGAR NUTRITIVOR  1 caja Petri con 20ml de: MAC CONKEY  1 caja Petri con 20ml de: AGAR SABOURAUD  Las siembras espontaneas fueron realizadas utilizando tres cajas Petri que contienen: Agar Nutritivor, Mac Conkey, Agar Sabouraud, se abre las cajas y se las deja por 15 a 20 minutos en el ambiente de las clínicas y luego se procede a la incubación. Para la recolección de muestras de las escupideras y del agua, se usó el método de cultivo directo, utilizando materiales como:  Medios de cultivo preparados en las cajas  Medio de transporte preparado (tioglicolato)  Cajas de estériles  Tubos estériles recolectores de muestras  Isopos para obtener la muestra  Estufa a 370  Recolectamos las muestras de las escupideras de los sillones #2, #19, #24, colocando en un tubo que contiene tioglicolato, después de dos horas de incubación se siembran en Agar sangre y ENB, en el Agar sangre crecieron los gran positivos y en el ENB crecieron los gran negativos, los resultados los obtendremos en 24 horas si el crecimiento de las bacterias es normal y en 48 horas si el crecimiento es lento.  Tomamos muestras de los botellones de agua colocando en tubos estériles, esto se lleva al laboratorio para que realicen el cultivo en Agar sangre y ENB en un tiempo de 24 a 48 horas no crecieron los microorganismos.
  6. 6. 5. Resultados  A nivel ambiental Tabla 1 Recuento negativo de bacterias aerobias mesofilas y de coliformes totales, concentraciones elevadas de 1.7x102UFC de mohos y levaduras, comparado con los valores referenciales del control de la calidad microbiológica del aire.
  7. 7.  A nivel de las escupideras Escupidera Germen Asilado #2 - Estreptococo Alfa Hemolítico 18000 UFC #19 - Klebsiella sp 8000 UFC #24 - Estreptococo Alfa Hemolítico 12000 UFC - Estafilococo Epidermis 15000 UFC Tabla 2
  8. 8. Total de contaminación de las escupideras Tabla 3 100000 90000 80000 70000 60000 50000 40000 30000 20000 10000 0 limite de contaminacion superficies total de contaminacion en superficies Entre los resultados encontramos un total de 53000 UFC, en relación a los 100000 UFC que son los necesarios para causar un proceso de infección.
  9. 9. Cultivo de botellones de agua (sillones #7, #13, #24) Tabla 4 Serie 1 50000 45000 40000 35000 30000 25000 20000 15000 10000 5000 0 Serie 1 VALOR VALOR No han germinado colonias bacterianas en 24 ni en 48 horas de incubación, esto en relación a 49.700 UFC encontrado en clínicas a nivel internacional, podemos decir en relación a esto que los niveles de cloración y filtración son efectivos.
  10. 10. 6. Discusión Numerosos investigadores han estudiado el impacto de las infecciones nosocomiales en el ámbito medio-hospitalario, sim embargo es un área casi desconocida para el odontólogo en nuestro país. Esto sugiere, la necesidad de implementar programas de monitoreo ambiental para conocer la situacion de los espacios clínicos odontológicos y evaluar las técnicas generalmente empleadas para su desinfección, ya que las áreas odontológicas usadas, tanto para tratamiento preventivo, como restaurador o quirúrgico, son consideradas áreas de alto riesgo por la contaminación ambiental que presentan. Un estudio más reciente sobre el agua en las unidades dentales de los Estados Unidos reveló que se contenían altos niveles de bacterias con promedios de 49.700 UFC, en relación a las muestras tomadas en las clínicas odontológicas de la Universidad Católica de Cuenca, en donde se pudo determinar que las medidas de cloración y filtración brindan efectividad ya que en el transcurso de 24 a 48 horas no germinaron colonias bacterianas. Un factor a tener en cuenta es que, aun cuando se garanticen bajos niveles de bacterias a la entrada de estos sistemas, estos microorganismos pueden sufrir dramáticos aumentos, tanto por fenómenos de contaminación en las líneas de distribución, como por la colonización subsiguiente de estos conductos, como es el caso de la formación de la biopelicula. A nivel de escupidera las muestras resultaron inferiores (53000ufc) y se necesita 100000ufc para dar inicio a un proceso infeccioso, luego de un cultivo de 48 horas determinamos que las normas de asepsia en las clínicas son aceptables. En cuanto al ambiente la norma INEN establece que el control de la calidad microbiológica del aire será de 15ufc, en concordancia con los resultados obtenidos en la clinica odontológica de la Universidad Católica de Cuenca que son 1.7x102, indicando altos niveles de contaminación ambiental.
  11. 11. 7. Conclusiones  En el análisis de las escupideras se demostró un grado muy inferior de contaminación por lo tanto los niveles de cloración y filtración son efectivos  Se determinó con éxito el monitoreo y control microbiológico de las escupideras y agua principales puntos críticos considerados como fuentes y acogida de microorganismos de la Facultad de ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CATÓLICA DE CUENCA.  Se establecieron recuentos negativos de bacterias aerobias mesofilas viales y coliformes totales  Se detectaron concentraciones elevadas de 1.7x102 UFC de mohos y levaduras cuyo desarrollo se debe principalmente a la humedad del ambiente. 8. Recomendaciones  Al inicio y al final de cada tratamiento odontológico se procederá a la desinfección de las probables superficies contaminadas.  Utilizar desinfectantes como glutaraldehido a solas o combinado con alcoholes, ya que son los más eficaces y no perjudican metales ni plásticos o caucho, debido a su toxicidad, se deben utilizar guantes y mascarillas.  Evitar la formación de salpicaduras contaminantes, para esto debemos tratar de reducir la cantidad de microorganismos en la boca del paciente. Por eso, al inicio de cada sesión clinica, pedir al paciente que se enjuague con antiséptico bucal.  Interponer una barrera como la que ofrece la correcta paramentacion; debe cubrir nuestra piel, mucosas, la ropa de calle, y permanecer intacta durante los procedimientos clínicos.  No abandonar el área clinica quirúrgica con la vestimenta contaminada.  Usar la vestimenta adecuada, gorro, guantes, y cubrebocas deben ajustarse al contorno facial.  Todo el personal deberá utilizar el uniforme clínico en forma exclusiva dentro de las salas odontológicas, evitando salir de las clínicas con el mismo.  Emplear un sistema efectivo de ventilación colocado dentro de las instalaciones de las clínicas odontológicas de la Universidad Cuenca.  Al finalizar la atención odontológica se deberá utilizar desinfectantes ambientales en aerosol.
  12. 12. 9. Anexos ESQUEMA DEL PROCEDIMIENTO-AMBIENTE
  13. 13. CAJA PETRI CON MOHOS Y LEVADURAS CAJA PETRI CON CULTIVOS PARA SEMBRAR LOS MICROORGANISMOS
  14. 14. CAJA PETRI CON ESTREPTOCOCOS Y KLEBSIELLA CAJA PETRI EMB
  15. 15. 10. Bibliografía  González JA. Calidad bacteriológica del agua utilizada en clínicas Odontológicas.  Milleri CH. Los microorganismos en el agua de las Unidades Dentales. Rev Cubana Estomatol. 1996;33:20-9  Jakush J. Infection control in the dental office: a realistic approach. J Am Dent Assoc 1986.112:458-468  McColl E; Bagg J; Winning S. The detection of blood on dental surgery surfaces and equipment following dental hygiene treatment. Br Dent J 1994 Jan 22;176(2):65  Miller R L. Characteristics of blood-containing aerosols generated by common powered dental equipment. Am Ind Hygiene Ass J 1995; 56: 670-676  Bennett AM; Fulford MR; Walker JT; Bradshaw DJ; Martin MV; Marsh PD. Microbial aerosols in general dental practice. Br Dent J 2000.Dec 23;189(12): 664-7

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