1. Estudo sobre as técnicas de produção de sementes do molusco Nodipecten nodosus no laboratório da empresa MBR no Rio de Janeiro. Uma nova metodologia foi aplicada para estimular a desova dos animais e melhorar a taxa de fertilização, resultando em uma taxa de sobrevivência 10% maior do que o esperado. 2. Descreve as etapas do cultivo, incluindo a desova induzida, fecundação, desenvolvimento embrionário e larval com alimentação de cinco espécies de microalgas

1. TÉCNICA DE PRODUÇÃO DE COQUILLE, Nodipecten nodosus,
(LINNAEUS, 1758) NO LABORATÓRIO DO TERMINAL DE MINÉRIO DA
EMPRESA MBR - MANGARATIBA – RJ
Charles Ribeiro de Queiroz
ABSTRACT
Truly effective as an alternative to supply the deficit of marine organisms capiture in
the world the sea farm project has generated direct and indirect jobs and presented it as an
activity that requires low investment and provides good financial return in a short space of
time. In this work are described new techniques used in the culture of the bivalve mollusk,
Nodipecten nodosus, in 2005 at the MBR company Iron Ore Terminal laboratory located in
the Guaíba Island in Mangaratiba showing its viability and effectiveness. Based on the usual
procedures for the cultivating of this species in studing in known laboratories a new
methodology was applied to stimulate the mollusk spawning so as to protect the integrity of
the animal and also seeked to improve the ratio between spermatozoa and ovum during the
fertization by preventing the phenomenon of the polisperm. Three more microseaweed species
were introduced to the larval development period totalizing 5 species for a more adjusted
feeding for the larval phases proving this way its necessity since survival rate increased in
10% above the expectation.
RESUMO
Comprovadamente eficaz como alternativa para suprir a deficiência da captura de
organismos marinhos no mundo, a maricultura tem gerado empregos diretos e indiretos e se
apresentado como uma atividade que requer baixo investimento e bom retorno financeiro em
curto espaço de tempo. Neste trabalho são descritas as novas técnicas empregadas no cultivo
do molusco bivalve Nodipecten nodosus, no ano de 2005, no laboratório do Terminal de
Minério da empresa MBR localizado na Ilha Guaíba, em Mangaratiba, demonstrando sua
viabilidade e eficácia. Tendo como base os procedimentos usuais de cultivo da espécie objeto
de estudo em laboratórios conhecidos, aplicou-se nova metodologia no estímulo à desova
resguardando a integridade do animal, e também se buscou melhorar a proporção entre
1

2. espermatozóides e ovócitos durante a fecundação, evitando-se com isso o fenômeno da
polispermia. Durante o desenvolvimento larval, introduziu-se mais três espécies de
microalgas, totalizando cinco espécies para uma alimentação mais adequada nas fases larvais,
comprovando assim sua necessidade, já que a sobrevida teve um índice de 10% acima do
esperado.
1- Produção de Coquille
2- Sementes de coquille
3- Cultivo de Nodipecten nodosus
4- Monografia
1. INTRODUÇÃO
1.1. Histórico
Desde os primórdios da história da humanidade, o oceano tem sido uma das mais
importantes fontes de alimentos em virtude de diversificadas atividades pesqueiras, porém,
devido à exploração intensiva e desordenada dos recursos marinhos, houve uma diminuição
desses produtos, as atividades pesqueiras estão em declínio e a economia do setor,
consequentemente, está em crise (FAO, 2000).
O cultivo de organismos aquáticos (aqüicultura) é uma das soluções encontradas para
minimizar a falta de produtos pesqueiros e garantir a demanda crescente destes artigos
aquáticos de alto valor comercial e nutricional (FAO, 2000).
Segundo FAO (1992), a produção mundial de pescado através da captura tem se
mantido constante nos últimos anos, enquanto que através do cultivo tem mostrado um
crescimento bastante expressivo.
Os moluscos bivalves da família dos pectinideos têm-se destacado dentre os
organismos mundialmente cultivados.
A pectinicultura iniciou-se no Japão em 1935 e o sucesso da atividade naquele país
despertou o interesse de outras nações que, a partir da década de 70/80, passaram a empregar
as técnicas básicas desenvolvidas no Japão para estudar a viabilidade de cultivo de outras
espécies. Hoje, aproximadamente 15 países cultivam os pectinídeos (coquille) em diferentes
graus de desenvolvimento, sendo destaque a China, o maior produtor mundial.
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3. Na América do Sul, o Chile apresenta-se como um país pioneiro em relação aos
trabalhos de cultivo de pectinídeos. No Brasil, os coquilles têm se apresentado com um grande
potencial para o cultivo, devido principalmente a sua excelente receptividade no mercado
interno e externo. As espécies nativas cultivadas são Nodipcten nodosus e Euvola ziczac,
sendo que as tecnologias de larvicultura e engorda estão sendo desenvolvidas principalmente
nos estados do Rio de Janeiro e de Santa Catarina (RUPP, 1994).
1.2. Espécie em Estudo
Neste trabalho foi estudada a espécie Nodipecten nodosus (LINNAEUS: 1758), nativa
no Brasil, que ocorre no Oceano Atlântico, desde o Sul da Península de Yucatan no México,
leste da América Central, Ilhas do Caribe, Colômbia, Venezuela e, descontinuadamente, ao
longo do litoral brasileiro, até o estado de Santa Catarina. Desse modo, N. nodosus apresenta
uma distribuição geográfica tipicamente tropical, sendo que seu limite sul se da em águas
subtropicais catarinenses (RUPP et al, 2001).
Segundo Rios (1994), N. nodosus é o maior dos pectinideos registrados para o litoral
brasileiro. A espécie pertence ao Filo Mollusca e apresenta a seguinte classificação
taxonômica:
Classe: Bivalvia (Linnaeus, 1758);
Ordem: Pteroida (Newwell, 1965);
Família: Pectinidae (Rafinesque, 1815);
Gênero: Nodipecten (Dall, 1898);
Espécie: Nodipecten nodosus (Linnaeus, 1758).
Esta espécie possui conchas grandes e pesadas, ornamentadas com costelas radiais e
nódulos. A coloração das valvas pode variar de marrom-alaranjado a alaranjado.
Normalmente, habitam parcéis, fundos rochosos com pedras soltas e fundos cascalhentos; em
geral em profundidades acima de 10 metros e águas com temperaturas frias (< 22° C). É uma
espécie hermafrodita e geralmente desova primeiro como macho e depois como fêmea, sendo
considerada por isso hermafrodita seqüencial.
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4. FIGURA 1: VISUALIZAÇÃO DAS GÔNADAS, MOSTRANDO O APARELHO
REPRODUTOR MASCULINO E FEMININO.
1.3. Objetivos
1.3.1. Objetivo Geral
Descrever as etapas do cultivo de Nodipecten nodosus no laboratório do
Terminal de Minério da empresa MBR (TIG).
1.3.2. Objetivo Específico
Apresentar nova técnica empregada no processo de produção de sementes de
coquille e comparar com as técnicas empregadas em outros laboratórios.
2. MATERIAL E MÉTODOS
2.1. Local do Cultivo
O presente trabalho foi desenvolvido no laboratório do Terminal de Minério da Ilha
Guaíba de propriedade da empresa MBR, que vem realizando programas de cunho social e
ambiental na região da Costa Verde. Um dos projetos da organizaçõa é o repovoamento da
Baía de Sepetiba com organismos marinhos nativos da região, onde vem se destacando o
cultivo do Nodipecten nodosus, espécie objeto deste trabalho.
4

5. A área escolhida para instalação das estruturas de cultivo no TIG atende a requisitos
que são fundamentais para a eficácia da produção de sementes de coquille. Localizam-se fora
das rotas de navegação marítima, evitando assim danos causados por embarcações, aumento
da turbidez da água e prejuízo à nutrição dos organismos pela poluição provocada por despejo
de óleo combustível no mar. Essas estruturas de cultivo ficam próximas ao laboratório, o que
facilita a reposição de material, reduz o tempo de transporte e facilita a manutenção da
espécie. O local é abrigado da ação de agentes naturais como vento, corrente e maré; está
distante da saída de rios, não ocorrendo, portanto, variações de salinidade que provocariam
plasmólise e morte celular; tem profundidade entre 5 e 15 metros e temperatura baixa entre
18° e 22° C. A área possui disponibilidade de nutrientes e luminosidade, o que favorece ao
rápido crescimento de microalgas que constituem a base da cadeia alimentar.
FIGURA 2: VISTA AÉREA DA ÁREA DE CULTIVO
2.2. Etapas do Cultivo
2.2.1. Desova
O processo da desova se inicia com o manejo das matrizes que são retiradas do
ambiente marinho e mantidas em laboratório durante 15 dias, em condições controladas de
temperatura (18º a 22º C), salinidade (35 upf), alimentação (100.000 cel/ml) e pouca
luminosidade, até que estejam em condições de maturação gonadal adequadas para a
eliminação de gametas (CABEZAS, 2002).
5

6. Animais sexualmente maduros são identificados através da observação visual de suas
gônadas, às quais devem se apresentar túrgidas, com coloração forte e evidência de pequenas
estrias. Quanto à coloração observada, diferencia-se na gônada a região produtora de
espermatozóides e a de ovócitos. A porção masculina é identificada por uma coloração
branco-leitosa. Já a porção feminina apresenta a tonalidade laranja-avermelhado. As gônadas
em estágio de pouca maturação se encontram flácidas e incolores.
As matrizes adultas e sexualmente maduras de N. nodosus são induzidas à desova
através de mecanismos de stress. No TIG, este processo é feito preferencialmente através de
choque térmico ou escovação intensa das conchas. Outros mecanismos também podem ser
usados, como: superalimentação, utilização de água do mar irradiada por raios ultravioletas
ou, em casos extremos, sacrifica-se um exemplar a fim de se macerar as gônadas e adicionar o
extrato ao tanque contendo as matrizes. Acredita-se que os hormônios liberados neste
procedimento funcionem como um estímulo à desova das matrizes. Durante todo o processo
de indução à desova, é realizado um monitoramento constante das matrizes quanto à liberação
de ovócitos e espermatozóides no tanque. Iniciada a liberação de gametas masculinos ou
femininos, as respectivas matrizes são imediatamente recolhidas individualmente em
recipientes com água marinha tratada, de tal maneira que matrizes liberando espermatozóides
não se misturam com matrizes liberando ovócitos, com o propósito de evitar o fenômeno da
autofecundação.
FIGURA 3: DESOVA
2.2.2. Fecundação
A partir da obtenção da desova, os gametas são filtrados através de malhas de
diferentes diâmetros para remoção de detritos. Os espermatozóides de vários indivíduos são
concentrados em um recipiente e 15ml desta solução são utilizados para fecundar os ovócitos
6

7. de outros indivíduos mantidos em baldes contendo 20 litros de água marinha tratada. Essas
quantidades são necessárias para se atingir a proporção final desete espermatozóides em torno
de um ovócito (7:1). Todo o processo de fertilização é monitorado em microscópio óptico a
fim de se evitar o fenômeno da polispermia, que provoca a morte da larva em
aproximadamente 10 dias. A cada 15 minutos a solução de fecundação deve ser
homogeneizada e após 30 minutos uma amostra de cada balde deve ser observada em
microscópio para determinar a porcentagem de fertilização. Uma vez que cerca de 90% dos
ovócitos são fertilizados, as soluções são vertidas em tanques de 2000 litros.
2.2.3. Desenvolvimento Embrionário e Larval
Os óvulos fecundados passam por sucessivos processos de divisão celular, evoluindo
para diferentes estágios de desenvolvimento embrionário e larval. No período aproximado de
30 minutos temos a formação do zigoto, o qual evolui para blástula em 12 horas. Esta já
apresenta capacidade natatória através do desenvolvimento de cílios. Após 18 horas, há o
surgimento da larva trocófora e 24 horas depois da a fecundação, temos a formação de uma
larva transparente em forma de “D”, também portadora de cílios, a qual é denominada larva
“D” ou veliger. Com o passar do tempo, esta forma desaparece, a larva se torna arredondada e
há o surgimento de um “pé”. Este fenômeno ocorre em torno do décimo segundo dia. A larva
é então denominada pediveliger, sendo considerada uma forma pós-larval, pois deixa de
apresentar um comportamento natatório e passa a ser bentônica, abandonando a coluna d`água
e dirigindo-se ao fundo para rastrear substratos, se fixar e completar a metamorfose.
7

8. B
A
C
D
E
FIGURA 4: DESENVOLVIMENTO EMBRIONÁRIO E LARVAL: A- ÓVULO
FECUNDADO, B- DIVISÃO CELULAR, C- LARVA D, D- LARVA UMBONADA, ELARVA FIXADORA.
2.2.4. Alimentação das Larvas
Nodipecten nodosus é um bivalve filtrador. Como tal, alimenta-se do fitoplancton
(microalgas vivas) através do processo de filtração da água marinha. Entretanto, durante as
primeiras 24 horas de vida as larvas não se alimentam, utilizando suas reservas energéticas
para iniciarem seu desenvolvimento.
Em sistemas de produção, a alimentação das larvas se realiza através da adição diária
de microalgas produzidas artificialmente no laboratório. No TIG, são utilizadas cinco espécies
de microalgas e as quantidades variam de acordo com a densidade e período larval. As
microalgas utilizadas são: Nannocloropsis oculata, Bellerochea polymorpha, Isochrysis sp,
Chaetoceros sp e Tetraselmis sp.
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9. 2.2.5. Fixação das Larvas
Durante o desenvolvimento as larvas passam por drásticas transformações
morfológicas, fisiológicas e comportamentais, caracterizando a metamorfose larval. Este é
considerado um dos momentos mais delicados do sistema de cultivo, quando as pós-larvas
necessitam fixar-se a um substrato adequado. Em sistemas de produção, tal substrato é
denominado coletor. O material do coletor varia de acordo com a espécie trabalhada, mas
todos devem apresentar características comuns, tais como serem sólidos e límpidos, com
microrrugosidades que auxiliem a uma boa fixação, de baixo custo, leves, porém
submergíveis, que permitam um bom fluxo de água, que apresente o máximo de superfície de
fixação e facilidade para soltar as sementes fixadas.
A captação de larvas em ambiente controlado apresenta a vantagem de reunir uma
grande concentração de larvas em um espaço reduzido, como os tanques. Entretanto, apresenta
a desvantagem de ser propensa a contaminações justamente devido às condições de
confinamento. Logo, tanto as temperaturas quanto as concentrações de alimento em ambientes
controlados são muito diferentes daquelas encontradas na natureza.
No laboratório do TIG, garrafas de refrigerantes são utilizadas como coletores. O
manejo dos tanques coletores é realizado diariamente e inclui a troca de água e alimentação.
Para troca de água, os coletores são colocados em tanques com água marinha tratada e limpa.
A água dos tanques anteriores é então drenada através de peneiras depositadas em bandejas
com água. As pós-larvas que ainda não se fixaram são, desta forma, retidas nas malhas.
Realiza-se a retirada das pós-larvas mortas e doentes. As demais são também depositadas nos
tanques com água marinha tratada e limpa já contendo os coletores para completarem sua
fixação.
2.2.6. Envio de Coletores ao Mar
Após atingirem o tamanho de 350 a 400 micras, as sementes são transferidas para seu
ambiente natural a fim de completarem seu desenvolvimento. Para tanto, as sementes fixadas
são ensacadas em bolsas coletoras, cuja malha possui 1,5 mm de diâmetro. Estas bolsas são
amarradas a cordas, individualmente ou emparelhadas, e transportadas para o mar sob
proteção de chuva, sol e vento, com o objetivo de diminuir o índice de mortalidade deste
manejo.
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10. 2.2.7. Acompanhamento das Fazendas Marinhas
Depois de um período de trinta dias sendo monitoradas semanalmente, as bolsas
coletoras são removidas do mar para o laboratório. Neste momento, as sementes já devem
alcançar um tamanho de 5mm. Este transporte também deve ser realizado sob proteção de
chuva, sol e vento.
Uma vez no laboratório, as sementes são liberadas dos coletores. Todo tipo de fauna
marinha que se constitua em predador é eliminado. Realiza-se, então, a contagem de sementes
e grupos de cerca de 1000 indivíduos. Determinados através de amostragem volumétrica, são
depositados em cada andar de lanternas com malha de 1,5mm de diâmetro, denominadas
lanternas baby. Novamente as sementes são enviadas ao ambiente natural por um período de
20 dias.
FIGURA 5: LANTERNA BABY PARA CRESCIMENTO DE SEMENTES EM FAZENDAS
MARINHAS
3. RESULTADOS
Apesar da baixa fixação obtida na fase experimental (3%) e do curto período
disponibilizado para realização do experimento (duas desovas em 6 meses), foram obtidos
resultados relevantes e animadores na larvicultura e desova dos pectinideos cultivados.
Pela primeira vez foram utilizadas matrizes cultivadas para a realização das desovas, já
que não se tem referência de laboratórios produzindo a partir deste tipo de matriz. Segundo a
bibliografia estudada, todos os laboratórios que fazem este cultivo iniciam o processo com
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11. matrizes selvagens. Constatou-se a eficácia desta nova técnica, já que 100% das matrizes
estimuladas com choque térmico ou escovação das conchas, desovaram com facilidade.
Manteve-se a integridade da biodiversidade, pois o laboratório do TIG faz intercâmbio
de reprodutores (matrizes cultivadas) com os maricultores da região, além de promover uma
melhoria na espécie (as matrizes escolhidas para desova são geneticamente privilegiadas), por
serem maiores e terem crescimento mais acelerado.
Ótimos resultados alcançados no processo de fecundação (até 95%) com o emprego da
proporção de sete espermatozóides para um ovócito, evitando-se com isso a polispermia.
Dentre os resultados, destacam-se:
•
aumento de 10% na sobrevivência das larvas “D” (tamanho 50 micras) ao utilizar em sua
alimentação as espécies de microalgas Nannocloropsis oculata e Bellerochea polymorpha,
que são duas vezes menores que as espécies Isochrysis sp e Chaetoceros sp, facilitando
sua alimentação;
•
diminuição da mortalidade larval e das matrizes com a não utilização de estímulos
químicos na desova, pois estes provocam a desova sem adequada maturação gonadal;
•
manutenção da taxa de sobrevivência larval mesmo sem aplicação de antibióticos no
Cultivo;
•
utilização de reprodutores apenas uma vez por ano para se evitar esgotamento do animal
por stress.
4. DISCUSSÃO
A discussão proposta neste artigo é sobre a produção de coquille a partir de matrizes
cultivadas diferentemente do laboratório do Instituto de Ecodesenvolvimento da Baía de Ilha
Grande (IED-BIG), onde são utilizadas matrizes selvagens.
Segundo Cabezas em Procedimentos Técnicos do Laboratório (Angra dos Reis, 2002),
o número ideal de espermatozóides por ovócito deve ser de 10:1. No laboratório do TIG, os
melhores resultados foram com a proporção de 7:1.
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12. De acordo com a tabela de fertilização do IED-BIG, as espécies de microalgas
utilizadas nos diferentes estágios larvais são: Isochrysis sp. e Chaetoceros sp. Diferentemente
da experiência acima, no laboratório do TIG utilizamos cinco espécies de microalgas, que são:
Nannocloropsis oculata, Bellerochea polymorpha, Isochrysis sp, Chaetoceros sp e Tetraselmis
sp.
Devido à comprovada diminuição da taxa de sobrevivência larval, quando se utilizam
estímulos químicos para a desova, não utilizamos tal prática no Terminal de Minério da MBR,
largamente utilizada em outros laboratórios.
O risco da utilização de antibióticos em organismos destinados à alimentação humana é
amplamente conhecido. Entretanto, alguns laboratórios do mundo insistem em lançar mão
deste artifício, que facilita o desenvolvimento da larvicultura. O laboratório do Terminal de
Minério da empresa MBR optou por não empregar antibióticos no cultivo por questões de
saúde pública, sem ter havido prejuízo na taxa de sobrevivência larval.
Em outros laboratórios, os reprodutores são utilizados várias vezes por ano para
desova. No laboratório do Terminal de Minério da MBR, apenas uma vez ao ano.
5. CONCLUSÃO
Com base nos resultados obtidos na fase experimental do laboratório do Terminal de
Minério da MBR para a reprodução em cativeiro da espécie Nodipecten nodosus (LINNAUS:
1758), é possível concluir que as modificações realizadas na técnica já existente permitirão o
incremento da produção de larvas e sementes da espécie objeto de estudo.
A variedade de microalgas utilizadas na larvicultura, que mudou de dois para cinco
espécies, ajuda a aumentar a sobrevivência das larvas, pois cada tamanho de larva requer um
tipo específico de microalga.
Comprovou-se que a proporção de sete espermatozóides para cada ovócito durante
fecundação evita o fenômeno da polispermia.
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