1. Universidad de Chile
Facultad de Medicina
Instituto de Ciencias Biomédicas
Programa Disciplinario de Inmunología
Estudio de células NKT en
cáncer gástrico humano
Gustavo González Valenzuela
Sebastián Merino Núñez
Unidad de Investigación, 2º año Tecnología Médica
Tutora: Dra. Carolina Hager Ribeiro
Laboratorio de Inmunovigilancia y Evasión Inmune
Programa Disciplinario de Inmunología
Facultad de Medicina
Universidad de Chile
2. Cáncer Gástrico
• Segunda causa de muerte por cáncer en el mundo
800.000 muertes/año
• Principal causa de muerte por cáncer en Chile
3.000 muertes/año
• Tasa de sobrevida a los 5 años: 20%
• Metástasis ocurre en 80-90% de los individuos
RadioGraphics 26 (4), 2006
Guía Clínica del Cáncer Gástrico, MINSAL, 2009
4. Células NKT
•
• Subclase de linfocitos T (LT).
• Expresan en su membrana moléculas tanto
de células NK como de LT.
TCR (Vα24β11), CD56, CD3, entre otras
• Poseen RNAm almacenados para diversas
citoquinas, quimioquinas y enzimas.
• Reconocen, a través del TCR, glicolípidos
asociados a CD1d, presentados por células
presentadoras de antígenos (APC).
Frecuencia:
• 0,2% del total de linfocitos T en sangre periferica (similar en médula ósea y bazo).
• 0,01% del total de linfocitos T del timo 1% en hígado.
5. Activación y función de las células NKT
Cerundolo et al., Nat Rev Immunol, 2009
Taniguchi et al., Nat Immunol, 2003
6. Racional
En algunos tipos de cáncer:
• La frecuencia de células NKT se encuentra disminuida.
• Las células NKT presentan una capacidad reducida para
producir IFN-γ.
Por lo tanto, ¿la regulación inmune mediada por estas células estaría
comprometida en cáncer?
¿Cuál es el rol de estas células en cáncer gástrico?
• Frecuencia en sangre y tejido tumoral.
• Función citotóxica y producción de citoquinas.
7. Hipótesis
La frecuencia de células NKT en la sangre periférica de
pacientes con cáncer gástrico se encuentra disminuida
con respecto a la de individuos sanos.
8. Objetivos específicos
Medir la frecuencia de células NKT en la sangre de individuos sanos.
Medir la frecuencia de células NKT en la sangre de pacientes con
cáncer gástrico.
Medir la frecuencia de células NKT en mucosa gástrica y tejido
tumoral de pacientes con cáncer gástrico.
9. Métodos
Muestra sanguínea de pacientes con cáncer Preparación de batería de tubos Lisis de eritrocitos por
gástrico e individuos normales en tubos con 100 μL de sangre total cada uno medio de Buffer ACK (1X)
heparinizados
Lavado de muestras con PBS-SFB
y posterior centrifugado
10. Métodos
Maceración del tejido tumoral Obtención de células en suspención
(y de mucosa gástrica adyacente al tumor)
Células tumorales que se
someterán a análisis
11. Proceso común de tinción con anticuerpos y
citometría de flujo
Muestras tisulares y sanguíneas marcadas con
Incubación por 30 min a 4º C
anticuerpos específicos (conjugados a fluorocromos)
para diversos marcadores de células NKT
Citómetro FACScalibur y datos obtenidos
por medio del software CellQuest Una vez marcadas, las muestras se
transfieren a tubos de citometría
12. Citometría de flujo
• Emisor de rayo láser.
• Flujo de solución + buffer.
• Detector de dispersión frontal.
• Barra de oscurecimiento.
• Detector de dispersión lateral.
• Filtros de fluorescencia.
• Computador + Software.
http://probes.invitrogen.com/resources/education/tutorials/4Intro_Flow/player.html
TCR (Vα24β11) - FITC
CD3 - APC
13. Resultados
NKTs de sangre periférica – Individuos sanos (n=2)
TCR (Vα24β11) - FITC
CD3 - APC
Tinción:
anti-CD3 - APC
anti-CD56 - PE
anti-TCR
(Vα24β11) - FITC
CD56 - PE CD56 - PE
TCR (Vα24β11) - FITC
CD3 - APC
Tinción:
anti-CD3 - APC
anti-CD56 - PE
anti-TCR
(Vα24β11) - FITC
CD56 - PE CD56 - PE
14. Resultados
NKTs de sangre periférica – Paciente CG25
TCR (Vα24β11) - FITC
CD3 - APC
CD56 - PE CD56 - PE
Tinción:
anti-CD3 - APC
anti-CD56 - PE
anti-TCR
(Vα24β11) - FITC
15. Resultados
NKTs de sangre periférica – Paciente CG26
TCR (Vα24β11) - FITC
CD3 - APC
CD56 - PE CD56 - PE
Tinción:
anti-CD3 - APC
anti-CD56 - PE
anti-TCR
(Vα24β11) - FITC
16. Resultados
Frecuencia de células NKT e n la sangre periferica
de pacientes con cáncer gástrico
% células Vα24β11+ de linfocitos totales
0.250
n pacientes = 2
n controles = 2
0.125
0.000
controles sanos pacientes CG
Individuos
17. Resultados
NKTs de mucosa gástrica “normal” – Paciente CG25
TCR (Vα24β11) - FITC
CD3 - APC
CD56 - PE CD56 - PE
Tinción:
anti-CD3 - APC
anti-CD56 - PE
anti-TCR
(Vα24β11) - FITC
18. Resultados
NKTs de tejido tumoral – Paciente CG25
TCR (Vα24β11) - FITC
CD3 - APC
CD56 - PE CD56 - PE
Tinción:
anti-CD3 - APC
anti-CD56 - PE
anti-TCR
(Vα24β11) - FITC
19. Resultados
NKTs de mucosa gástrica “normal” – Paciente CG26
TCR (Vα24β11) - FITC
CD3 - APC
CD56 - PE CD56 - PE
Tinción:
anti-CD3 - APC
anti-CD56 - PE
anti-TCR
(Vα24β11) - FITC
20. Resultados
Frecuencia de células NKT en la mucosa gástrica y
te jido tumoral de pacientes con cáncer gástrico
% células Vα24β11+ de linfocitos totales
1.8
n pacientes = 2
1.2 n controles = 2
0.6
0.0
mucosa tumor
Individuos
21. Resultados
Frecuencia de células NKT en pacientes con cáncer gástrico
% células Vα24β11+ de linfocitos totales
1.8
n pacientes = 2
1.2 n controles = 2
0.6
0.0
sangre mucosa tumor
Muestra
22. Conclusiones
En pacientes con cáncer gástrico, el porcentaje de células NKT en
sangre periférica son menores que en individuos sanos.
El porcentaje de células NKT en tejido tumoral y mucosa gástrica de
pacientes con cáncer gástrico son mayores que en la sangre del mismo
paciente.
Las células NKT podrían estar migrando desde la sangre periférica
hacia el tejido tumoral y mucosa gástrica.
Por lo tanto, las células NKT podrían estar cumpliendo un rol activo
en la respuesta inmune contra el adenocarcinoma gástrico.
23. Proyecciones
Correlacionar la frecuencia de células NKT con el estadío del tumor.
Estudiar el perfil de citoquinas producidas por las células NKT
presentes tanto en la sangre como en el tumor.
Determinar el efecto del microambiente tumoral en la respuesta
inmune y, más específicamente, sobre la acción de las células NKT en
dicha respuesta.
Notas del editor
Frente al cáncer el sistema inmune responde a través de reconocimiento antigénico por parte de las células dendríticas (CDs) de DAMPs expresados por las células tumorales. Estas a su vez presentan dichos antígenos a Linfocitos vírgenes en los linfonodos iniciando la diferenciación de los distintos tipos celulares linfocitarios, como también a células NK, y más relevantemente en este proyecto, a células NKT. One of the earliest steps toward mounting an adaptive response to TAAs is the capture and presentation of these molecules by professional APCs such as DCs. Additionally, to present costimulatory molecules, such as B7, to T lymphocytes, APCs must be activated by danger signals. In conjunction with costimulation (for example, B7-CD28 interaction), activated APCs carry TAAs to the lymph nodes where the TAA-derived peptides are presented via MHC class II molecules to CD4+ and MHC class I molecules to CD8+ T lymphocytes. Stimulated CD4+ T cells subsequently express CD40L, which, in turn, further stimulates CD40-expressing APCs. B lymphocytes (not shown) are also likely to be involved in this immune response.TAA-specific lymphocytes develop into activated effector cells—CD8+ CTLs and CD4+ T helper cells—with the ability to migrate into the tissue to mount an attack against the developing melanoma.This is likely to involve both CD4+, CD8+ T cells and local APCs (possibly B cells, macrophages and DCs). (APC, antigen-presenting cell; CTL, cytotoxic T lymphocyte; DC, dendritic cell; HSP, heat shock protein;TH,T helper lymphocyte.)
Chicos, cambié algunas cosas en esa diapo, que quedó muy bien.
The fact that some types of cancer iNKT cells present deffective capacity to produce IFN-γ, a TH1 cytokine important for tumor elimination, provides the basis for a compromised immune regulation of these cells in cancer. Likewise, it is possible that, in GC, iNKT cell cytokine production can also be skewed to a suppressive and tolerogenic phenotype characterized by higher IL-10 and/or TGF-β production by these cells, which could favor the development of an immune suppressive response mediated by Tr1 and/or Th3 cells in detriment of a TH1 response. So far, there is no evidence for the frequency of tumor-derived and peripheral blood iNKT cells in GC; moreover, their functional activity and cytokine profile have not been addressed either. Therefore, a correlation of these iNKT cells features with patient characteristics, the stage and the type of the tumor could help define the contributory role of iNKT cells in the development and prognosis of gastric cancer. Based on what has been previously discussed, we propose here that a population of T lymphocytes that infíltrate the gastric adenocarcinoma tissue and that are also present in the peripheral blood of GC patients is composed of increased numbers of iNKT cells that secrete immunosuppressive cytokines, such as TGF-β and/or IL-10. Concomitantly, these cells present decreased capacity to produce IFN-γ and/or TNF-α, which, along with increased secretion of IL-10 and/or TGF-β, would create a tolerogenic microenvironment that would favor Tregs development, especially Tr1 and Th3-type cell subsets, thus contributing to tumor immune escape and tumor progression.
Doidinhos!!! La foto es del freezer -80!!! Mejor poner una del refri, mismo… ;-))