Apuntes de bacteriologia medica ii

BACTERIOLOGÍA MÉDICA II 7° SEM, DE QUIMICO BIOLOGO PARASITOLOGO, UACQB
UAG. QBP AIDA BARRIOS CASARRUBIAS 28 /08/2010

UNIVERSIDAD AUTONOMA DE
GUERRERO
UNIDAD ACADEMICA
DE CIENCIAS QUÍMICO BIOLÓGICAS

APUNTES DE BACTERIOLOGÍA MÉDICA II

MATERIAL DE APOYO PARA LOS ALUMNOS DEL 7°
SEMESTRE DEL PROGRAMA EDUCATIVO DE
QUIMICO BIOLOGO PARASITOLOGO

ELAB0RO

QBP AIDA BARRIOS CASARRUBIAS

CHILPANCINGO, GRO. AGOSTO DEL 2010

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INDICE
PÁGINA

I. Diagnóstico de las enfermedades infecciosas 3

II. Infecciones de las Vías Respiratorias Superiores 32

III. Infecciones del Ojo 4I

IV. Infecciones de las Vías Respiratorias Inferiores 45

V. Infecciones del Tracto Urinario 58

VI. Enfermedades de Transmisión Sexual (ETS) 66

VII. Infecciones del Tracto Gastrointestinal 85

VII. Infecciones Bacterianas del Sistema Tegumentario 105

IX. Infecciones Bacterianas del Sistema Circulatorio 118

X. Infecciones del Sistema Músculo Esquelético 124

XI. Infecciones del Sistema Nervioso Central 127

XII. Infecciones Nosocomiales 135

XIII. Bibliografía 171

2


APUNTES DE BACTERIOLOGÍA MÉDICA II

I DIAGNÓSTICO DE LAS ENFERMEDADES INFECCIOSAS.

El diagnóstico microbiológico clínico y de laboratorio

La microbiología difiere de las demás especialidades médicas en que el
objetivo de la mayoría de las pruebas microbiológicas es aislar organismos
viables. Eso significa que la muestra debe recogerse adecuadamente,
transportada con rapidez al laboratorio en un sistema de transporte adecuado, e
inoculado en los medios necesarios para el crecimiento de los patógenos más
probables. La recogida de la muestra apropiada y su transporte rápido al
laboratorio clínico son responsabilidad del clínico, mientras que la selección del
sistema de transporte y los métodos de cultivo correctos dependerá del
microbiólogo. Sin embargo, esas responsabilidades no se excluyen entre sí, el
microbiólogo debe estar preparado para instruir al clínico sobre la recogida
adecuada de la muestra para un diagnóstico específico, y el clínico debe
proporcionar al microbiólogo información sobre el diagnóstico clínico, de forma que
éste pueda seleccionar los medios de cultivo y las condiciones de crecimiento más
favorables. Siempre que se sospeche un patógeno inusual o delicado (p. ej.
Bordetella pertussis, Francisella tularensis, etc.) es necesario notificarlo al
laboratorio para usar el sistema de transporte y los medios de cultivo más
favorables.

El ciclo de diagnóstico que se muestra en la figura 1 proporciona un modelo
útil para entender el papel que juega el laboratorio de microbiología en la
certificación de calidad. Es una secuencia de pasos concernientes a la
recolección, el procesamiento y el análisis de muestras clínicas derivadas para
cultivo, lo que conduce a una información que puede ser empleada para
establecer el diagnóstico clínico y de laboratorio de las enfermedades infecciosas.

El ciclo de diagnóstico comienza cuando el paciente consulta al médico acerca
de los signos y síntomas que sugieren una enfermedad infecciosa. Dependiendo
de lo que encuentre el médico al revisar la historia clínica y realizar el examen
físico del paciente, se pueden indicar cultivos de uno o más sitios anatómicos. Una
muestra apropiada para cultivo debe ser recogida y transportada en recipientes
seleccionados en los que se pueda mantener la viabilidad de los microorganismos
patogénicos durante el traslado.

El recipiente con la muestra debe de estar rotulado en forma adecuada con el
nombre del paciente, lugar, fecha, hora de toma y debe indicar el tipo de muestra.

Lo ideal es que la orden de pedido incluya los hallazgos clínicos esenciales, un
diagnóstico presuntivo y cualquier información que pueda necesitar el personal de
laboratorio para aplicar procedimientos distintos de los de rutina para recuperar
microorganismos poco comunes o particularmente difíciles.

3


EL CICLO DIAGNÓSTICO

EL PACIENTE CONSULTA
AL MÉDICO, CON
SIGNOS/SÍNTOMAS DE
ENFERMEDAD
INFECCIOSA

EL MÉDICO INTERPRETA
EL INFORME E
EL MÉDICO EXAMINA AL PACIENTE INSTAURA LA TERAPIA
Y FORMULA UN DIAGNÓSTICO APROPIADA
CLÍNICO TENTATIVO

SE PREPARA EL
SE TOMAN MUESTRAS INFORME FINAL DEL
APROPIADAS PARA CULTIVO Y CULTIVO Y SE ENVÍA AL
SE ROTULAN LOS RECIPIENTES CONSULTORIO DEL
MÉDICO, CLÍNICA U
HOSPITAL

EN EL FORMULARIO DE
PEDIDO DE LABORATORIO SE EXAMINAN LOS
SE MARCA EL CULTIVO RESULTADOS DE LAS
SOLICITADO Y CON LA PRUEBAS DE
MUESTRA SON ENVIADOS IDENTIFICACIÓN
AL LABORATORIO

AL RECIBIR LA MUESTRA EN EL
LABORATORIO, LOS DATOS DEL LOS CULTIVOS SE
FORMULARIO SON INGRESADOS EN EXAMINAN Y SE
UN ARCHIVO DE COMPUTADORA 0 PREPARAN SISTEMAS DE
EN UN LIBRO DE REGISTRO IDENTIFICACIÓN

LA MUESTRA SE EXAMINA
DIRECTAMENTE. PUEDEN LAS MUESTRAS SON
PREPARARSE EXTENDIDOS Y PROCESADAS EN LOS
TINCIONES MEDIOS SELECCIONADOS,
INOCULADOS E INCUBADOS

Koneman y col.
PUEDEN O NO ELABORARSE
INFORMES PRESUNTIVOS O
PRELIMINARES

4


Algunos medios de cultivo necesarios para la recuperación óptima de ciertos
microorganismos difíciles o de crecimiento lento pueden no estar disponibles, o no
ser usados en muchos laboratorios. Por ejemplo, la recuperación de especies de
bacterias como Brucella, Pasteurella, Moraxela, Haemophilus, Neisseria,
Leptospira, Vibrio, Campylobacter y Legionella entre otras necesitan medios de
cultivo especiales, estos microorganismos no se detectan con los medios y las
técnicas de cultivo de rutina, usados por un laboratorio, son pedidos especiales..

Una vez que la muestra es recibida en el laboratorio, la información contenida
en el formulario de pedido es ingresada en un archivo de computadora o asentada
en un libro de registro. Las muestras se examinan visualmente y según las
ordenes del médico y la naturaleza de la muestra, pueden prepararse los montajes
frescos y extendidos para teñirlos y observarlos con el microscopio. Las
observaciones pueden ser informadas inmediatamente o no a los médicos, según
lo definitivo de los resultados. Esta información puede ser utilizada para establecer
un diagnóstico presuntivo e instituir el curso específico de una terapia.

Las muestras continúan siendo procesadas para identificar en forma definitiva
los microbios patogénicos. Se seleccionan uno o más medios de cultivo. Todas las
placas con agar son estriadas para aislar colonias y se incuban con las
condiciones adecuadas de temperatura y ambientales para facilitar el crecimiento
y la replicación de los microorganismos. Después de la incubación, los cultivos se
examinan macroscópicamente y microscópicamente y se pueden realizar
identificaciones presuntivas. El informe final se elabora cuando es posible dar una
respuesta definitiva, si no, hacer subcultivos y pruebas adicionales para identificar
definitivamente los microorganismos.

Los microbiólogos deben asumir la responsabilidad de ver que se respeten las
reglas y prácticas por las cuales se toman las muestras y se transportan al
laboratorio y que se elaboren informes precisos para asegurar la calidad de la
atención de los pacientes.(3,6)

El cultivo de sangre es uno de los procedimientos más importantes realizados
en el laboratorio de microbiología clínica. El éxito de esta prueba guarda relación
directa con los métodos empleados para recoger las muestras de sangre. La
bacteriemia y la fungemia se definen como presencia de bacterias u hongos
respectivamente en el torrente sanguíneo, y estas infecciones se conocen en
conjunto como septicemias que pueden ser continuas o intermitentes. La
septicemia continua se observa fundamentalmente en infecciones intravasculares
(p. ej., endocarditis, tromboflebitis séptica, infecciones de catéter intravascular) o
en la sepsis sobreaguda (shock séptico). La septicemia intermitente se produce en
la mayoría de las demás infecciones con foco en un lugar distante (p. ej.,
pulmones, tracto urinario, infecciones de tejidos blandos). La cronología de la
recogida de la sangre no tiene importancia en los pacientes con septicemia
continua, mientras que resulta crítica en los enfermos con septicemia intermitente.

5


Además, los signos clínicos de sepsis (p. ej., fiebre, escalofríos, hipotensión)
constituyen una respuesta a la liberación de endotoxinas y exotoxinas por los
microorganismos, esos signos pueden aparecer hasta una hora después de que
los gérmenes hayan desaparecido del torrente sanguíneo. Así pues, la recogida
de muestras de sangre durante un episodio febril puede representar el aislamiento
del microorganismo. Se deben recoger dos o tres muestras de sangre a intervalos
durante un período de 24 horas. El número de muestras recogidas tiene más
importancia cuando se sospecha una septicemia intermitente. La toma de más de
tres muestras en 24 horas se ha mostrado innecesaria, incluso entre los pacientes
que reciben antibióticos.

Se debe recoger un volumen grande de sangre, puesto que más de la mitad de
todos los pacientes con septicemia presentan menos de un microorganismo por
mililitro de sangre. 20 ml de sangre en los adultos para cada hemocultivo y
volúmenes proporcionalmente menores en los niños y los recién nacidos. El
volumen de sangre cultivada tiene gran importancia, puesto que se obtiene un
aumento del 40% de positividades significativas cuando el volumen de sangre
sube desde 10 ml hasta 20 ml. Muchos pacientes del hospital son susceptibles a
infecciones por gérmenes que colonizan la piel, tiene importancia la desinfección
cutánea cuidadosamente con alcohol seguido por yodo al 2%.

La mayoría de las muestras de sangre se inoculan en viales con caldos
nutrientes enriquecidos en el momento de recoger la muestra. Para asegurar la
máxima recuperación de organismos importantes se inoculan dos viales por cada
muestra. Una vez que los viales de caldo inoculados se reciben en el laboratorio,
se incubarán a 35°C e inspeccionarán a intervalos regulares para buscar
crecimiento microbiano. Cuando se detecta crecimiento, los caldos son sometidos
a subcultivo para aislar el germen, con el fin de proceder a su identificación y a las
pruebas de susceptibilidad a los antimicrobianos.

La mayor parte de los gérmenes con significado clínico se detectarán durante
los dos primeros días de incubación, sin embargo, todos los cultivos se deben
incubar durante un mínimo de 5 a 7 días.

La meningitis bacteriana es una enfermedad seria con morbilidad y mortalidad
altas si se retrasa el diagnóstico. Algunos patógenos son lábiles (p. ej., Neisseria
meningiditis, Streptococcus pneumoniae), el líquido cefalorraquídeo (LCR) se
debe procesar inmediatamente y se recoge de manera aséptica desinfectando la
piel con alcohol y yodo. La muestra se inocula en tubos estériles con tapón de
rosca, que deben ser transportados inmediatamente al laboratorio. En ningún caso
se someterá la muestra a refrigeración o calentamiento. Al recibirla en el
laboratorio, la muestra es concentrada mediante centrifugación y el concentrado
se emplea para inocular medios bacteriológicos, preparar una tinción de gram y
otras tinciones si se sospechan infecciones por hongos o micobacterias y realizar
pruebas encaminadas a la detección directa de antígenos bacterianos p. ej., para
Haemophilus influenzae, Neisseria meningiditis, Streptococcus pneumoniae y
Streptococcus grupo B.

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Las pruebas de antígenos tienen un valor limitado, aunque pueden ser útiles en
pacientes con infecciones parcialmente tratadas. El laboratorio se pondrá en
contacto con el médico inmediatamente si alguna prueba (tinción, antígenos,
cultivo) es positiva.

OTROS LÍQUIDOS NORMALMENTE ESTÉRILES.

Líquido abdominal (peritoneal), torácico (pleural) sinovial y pericárdico. Si es
posible recoger un volumen grande de líquido mediante aspiración percutánea ( p.
ej., líquido abdominal o torácico) se debe inocular en viales de hemocultivo. Una
porción pequeña se enviará al laboratorio en un tubo estéril para preparar
extensiones apropiadas para Gram, KOH, acido-alcohol resistentes. Si la cantidad
de líquido es menor, la muestra se puede inocular directamente en medios de agar
o en un tubo estéril y transportarlo al laboratorio, no se deben transportar las
muestras en jeringas. Pueden existir pocos organismos en la muestra por lo que
es importante cultivar el mayor volumen de producto posible. Quizás existan
anaerobios en la muestra (en casos de infección intraabdominal o pulmonar), por
lo que se evitará la exposición de la muestra al oxígeno.

Tabla 1 DIAGNÓSTICO DE LAS INFECCIONES BACTERIANAS EN
DIFERENTES SITIOS DEL CUERPO

Sitio de Signos y Muestra a Bacterias asociadas con
Infección Síntomas Cultivar Infeción.
Heridas Secreción serosa o Aspirado o Staphylococcus aureus
purulenta drenaje Streptococcus pyogenes
Absceso subcutáneo Hisopado Especies de Clostridium,
Enrojecimiento y profundo de Bacteroides y otras bacterias
Edema secreción. Anaerobias
Crepitación (gas) Biopsia tisular Enterobacterias
Dolor y Ulceración Pseudomonas aeruginosa
Especies de Enterococcus
Huesos y Edema articular Aspirado Staphylococcus aureus
Articulaciones Enrojecimiento y articular Haemophilus influenzae
calor Biopsia Streptococcus pyogenes
Dolor al moverse líquido sinovial Neisseria gonorrhoeae
Sensibilidad por Espículas de Streptococcus pneumoniae
palpación. hueso o Enterobcterias
Sinovitis y aspirado de Especies de Mycobacterium
Osteomielitis médula ósea

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Sitio de Signos y Síntomas Muestra a Bacterias asociadas con
Infección Cultivar Inf.
Tracto Tracto Superior: Aguda: Streptococcus pneumoniae
Respirato- Nariz y Senos. Hisopado Streptococcus pyogenes
rio Dolor de cabeza nasofaríngeo Staphylococcus aureus
Dolor y enrojecimiento Lavados de Haemophilus influenzae
en el pómulo. senos. Especies de Klebsiella y otras
Rinitis Crónica: Enterobacterias
Radiografía: Niveles Lavados de Especies de Bacteroides y
de líquido o senos otros anaerobios
engrosamiento de Muestra de
membrana de seno Biopsia
quirúrgica.

Tracto Superior: Hisopado de Streptococcus pyogenes
Garganta y Faringe faringe Corynebacterium diphtheriae
Enrojecimiento y posterior Neisseria gonorrhoeae
edema de mucosa Hisopado de Bordetella pertusis
Exudación de amígdalas
amígdalas (absceso)
Formación de seudo Hisopado
membranas nasofaríngeo
Edema de úvula
Cubierta gris de la
lengua
Lengua aframbuesada
Agrandamiento de los
ganglios cervicales

Tracto Inferior: Esputo Streptococcus pneumoniae
Pulmones y Sangre Staphylococcus aureus
Bronquios Secreciones Haemophilus influenzae
Tos sangrienta, Dolor broncoscópicas Klebsiella pneumoniae y otras
de pecho Aspirado Enterobacterias
Dificultad para respirar transtraqueal Moraxella catarrhalis
(Disnea), Ronquidos Aspirado de Especies de Legionella,
Solidez del pulmón pulmón o Mycobacterium
Sonidos respiratorios Biopsia Fusobacterium nucleatum
disminuidos Prevotella melaninogenicus y
Lesiones de cavidad otros anaerobios
Empiema (pus en el Especies de Bordetella
pulmón)

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Sitio de Signos y Síntomas Muestra a Bacterias asociadas con Inf.
Infección Cultivar
Oído medio Drenaje seroso o Aguda Aguda
purulento Hisopado Streptococcus pneumoniae y
Dolor profundo en oído nasofaríngeo otros estreptococos
y mandíbula Aspirado de Haemophilus influenzae
Dolor de cabeza con membrana Crónica
palpitaciones timpánica Pseudomonas aeruginosa
Membrana timpánica Drenaje crónico Especies de Proteus
abultada y roja del meato Bacterias anaerobias
externo
Tracto Superior: Estómago Biopsia gástrica Helicobacter pylori
Gastroin- y Duodeno o duodenal
testinal Ulcera gástrica y
péptica

Inferior: Intestino Muestra de Campylobacter jejuni y otras
delgado y grueso materia fecal especies de Campylobacter
Diarrea Disentería Hisopado rectal Especies de Salmonella,
( purulenta, mucosa o moco rectal Shigella, Escherichia coli
sangrienta) Cultivo de (cepas toxigénicas)
Dolor abdominal con sangre (fiebre Vibrio cholerae y otras
contracción tifoidea) especies de Vibrio
Especies de Yersinia
Clostridium difficile
(demostración de toxina

Sitio de Signos y Síntomas Muestra a Cultivar Bacterias asociadas con
Infección Infección
Vias Infección de vejiga Chorro medio de Enterobacterias:
Urinarias Piuria (pus) orina Escherichia coli
Disuria (dificultad o Orina cateterizada Especies de Klebsiella
dolor) Aspiración Especies de Proteus
Hematuria suprapúbica de Especies de Enterococos
Dolor y sensibilidad orina Pseudomonas aeruginosa
suprapúbica o de Staphylococcus aureus,
abdomen bajo Staphylococcus
epidermidis
Infección de Riñón Staphylococcus
Dolor en la espalda saprophyticus

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Tracto Hombres Secreción uretral Neisseria gonorrhoeae
genital Secreción uretral: Secreción Neisseria meningitidis
serosa y purulenta prostática Haemophilus ducreyi
Ardor al orinar Treponema pallidum
Hematuria terminal Especies de Mobiluncus y
Mujeres otros anaerobios
Secreción vaginal Cérvix uterino Gardnerella vaginalis
purulenta Recto (hisopado de Especies de
Ardor al orinar esfínter anal) Mycoplasmas
Dolor en el abdomen Hisopado uretral Chlamydia trachomatis
bajo, cólicos y dolor a No bacterianos
la palpación Trichomonas vaginalis
Chancro de membrana Examen de campo Candida albicans
mucosa oscuro Virus del herpes simple

Sitio de Signos y Síntomas Muestra a Cultivar Bacterias asociadas
Infección con Inf.
Sistema Dolor de cabeza Líquido Neisseria meningitidis
nervioso Dolor de cuello y cefalorraquídeo Haemophilus influenzae
central espalda Aspirado subdural Streptococcus
Rigidez de cuello (por debajo de la pneumoniae
Elevación de los dura madre, que es Streptococcus del Gpo A
miembros inferiores la membrana más Streptococcus del Gpo B
extendidos externa que cubre al (lactantes)
Náuseas y vómito cerebro) Enterobacterias en
Estupor a coma Cultivo de sangre pacientes debilitados,
Erupción petequial Cultivo de garganta o lactantes y
esputo postcraneotomía
Listeria monocytogenes
Ojo Secreción conjuntival: Secreción purulenta Haemophilus sp, Especies
serosa o purulenta Fondo de saco de Moraxella , Neisseria
Enrojecimiento con- inferior gonorrhoeae, S aureus, S
juntival (hiperemia): ojo Canto interno pneumoniae y pyogenes,
rojo Pseudomonas aeruginosa
Dolor ocular y
sensibilidad
Sangre Picos de fiebre, Sangre: tres cultivos Streptococcus del Gpo A
temblores con intervalos de 1 Streptococcus viridans
Soplos cardíacos hora o más, hasta (endocarditis)
(endocarditis) 24 horas. Gpos A, B, D (neonatos)
Petequias: piel y Líquido Streptococcus
membranas mucosas cefalorraquídeo pneumoniae
“Hemorragias en Tracto respiratorio Staphylococcus aureus
astillas” en uñas Piel-umbilical Listeria monocytogenes
Malestar Piel-oído Corynebacterium jekeium
Heridas Haemophilus influenzae

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Vías urinarias Escherichia coli, S. typhi
Pseudomonas aeruginosa
Bacteroides fragilis y otras
bacterias anaerobias
Koneman y col.

SELECCIÓN, RECOLECCIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS PARA
ESTUDIOS MICROBIOLÓGICOS(5).

En la recuperación del o los microorganismos causantes de la infección lo más
importante es la correcta recolección de una muestra para su estudio
microbiológico. Esta recolección comprende cuatro pasos:

a) Seleccionar el sitio anatómico más adecuado para tomar la muestra.

b) Usar la técnica más apropiada.

c) Poner la muestra recolectada en un envase que favorezca la viabilidad de
los microorganismos causantes del proceso infeccioso, y que además impida la
filtración o derrame de la muestra, como medida de protección para el personal
que posteriormente la manipula.

d) Enviar la muestra en forma rápida al laboratorio, y en caso de que esto no
sea posible, asegurarse que sea almacenada a la temperatura y en los medios de
transporte adecuados.

Una muestra mal recolectada puede inducir a error en el aislamiento del
microorganismo etiológico real, y la recuperación de contaminantes puede llevar a
indicar una antibioticoterapia incorrecta y a veces incluso perjudicial. El proceso de
toma de muestra se inicia al lado del paciente siendo éste parte activa, es
necesario explicarle el porqué del procedimiento y el tipo de técnica a realizar,
para lograr así su colaboración y participación, lo que lleva a la obtención de la
muestra en óptimas condiciones.

RECOLECCIÓN Y TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS.

Recolección.

En todos los casos en que la muestra se obtenga con aguja o por aspiración,
se debe desinfectar la piel con alcohol al 70% seguido por algún yodóforo, el que
se deja actuar no menos de un minuto (esperar que seque). Si el paciente
presenta hipersensibilidad al yodo, debe usarse solamente alcohol. En áreas
altamente contaminadas, el procedimiento de desinfección debe repetirse.

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Si es posible obtener muestras líquidas mediante aguja o aspiración no debe
usarse hisopos. La cantidad o volumen de muestra que se envía al laboratorio es
generalmente menor que lo requerido. No existe consenso sobre los volúmenes
mínimos, excepto para algunas muestras como hemocultivos, LCR

Hay una gran variedad de métodos de recolección, desde el simple hisopo en
un tubo hasta aparatos recolectores de muestras, como los usados en el tracto
respiratorio. Los hisopos deben de ser de un material que no inhiba el crecimiento
bacteriano (alginato de calcio o poliéster).

Luego de tomada la muestra, se introducen en un envase estéril con un medio
de transporte.

Para muestras líquidas, lo más adecuado es usar envases de plástico estériles
o tubos con tapa de rosca estériles.

No existe un consenso sobre el número adecuado de muestras para lograr
una recuperación óptima del agente etiológico, exceptuando las muestras para
hemocultivo, baciloscopía. En los demás casos, el tomar más de una muestra en
forma simultánea, es caro e innecesario.

No deben usarse hisopos sin medio de transporte porque esto lleva a la
desecación de la muestra y a la pérdida de la viabilidad bacteriana.

Los medios de transporte recomendados cuando se usan hisopos, en el
caso de las secreciones, son Stuart, Amies. Estos no tienen nutrientes y ayudan a
preservar los microorganismos en la muestra, minimizando el sobrecrecimiento.
Esto es especialmente importante en aquellas muestras que contienen mezclas de
microorganismos de importancia médica, en baja proporción.

En el caso de los coprocultivos, el medio de transporte adecuado es Cary
Blair, que permite una mejor recuperación de las cepas de Salmonella sp.,
Shigella sp., Yersinia sp., y Vibrio sp.

Las muestras de orina no sembradas deben guardarse en el refrigerador
por un máximo de 4 horas para poder ser procesadas. Aquellas que son
sembradas en medio de transporte/medio de cultivo (un laminocultivo, que
generalmente lleva por un lado Agar Cistina-Lactosa-Electrolito-Deficiente o CLED
y por el otro lado, Agar MacConkey) deben mantenerse a temperatura ambiente.

En el caso de muestras de aspirados o líquidos en que se solicite cultivo
anaeróbico, deben colocarse en frascos o recipientes con medio de transporte y
atmósfera sin oxígeno (medio de transporte anaeróbico). En estas condiciones
sobreviven 24 horas o más a temperatura ambiente (no refrigerar).

Para la búsqueda de Micoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum,
también se requiere de un medio de transporte especial, el que contiene suero

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fetal bovino, sacarosa y fosfato (medio de transporte Micoplasma-Ureaplasma). En
este medio, la muestra puede mantenerse a 4°C hasta 24 horas.

Aun usando medio de transporte, las muestras deben llevarse al laboratorio
lo más rápido posible, ya que los nutrientes presentes en la misma muestra
pueden permitir el crecimiento de los microorganismos menos exigentes y alterar
la proporción de aquellos organismos originalmente presentes.

Desafortunadamente, no es posible o práctico transportar y procesar las
muestras dentro de las primeras dos horas después de la recolección. Aunque no
es lo óptimo, algunas muestras pueden refrigerarse hasta 12 horas, esto incluye
expectoración y orina. Las muestras en que se sospeche de Neisseria o
anaerobios deben mantenerse a temperatura ambiente, ya que disminuye su
viabilidad a 4°C.

MUESTRAS PARA ESTUDIO DE ANAEROBIOS.

Muchos anaerobios forman parte de la flora habitual del cuerpo humano.

Muestras adecuadas.

Sangre, líquido cefalorraquídeo, líquidos corporales (pleural, pericárdico,
articular, sinovial, biliar), Abscesos cerrados (aspirados, ej.,seno maxilar,
endometrio, herida quirúrgica), Muestras pleuropulmonares obtenidas mediante
aspiración transtraqueal, toracocentesis, punción percutánea con aguja y
aspiración del pulmón, Tejidos (muestras de biopsia, quirúrgicas y de autopsia),
Médula ósea, Orina por punción suprapúbica, cistoscopia, ureterostomía,
nefrostomía, Deposición en búsqueda de Clostridium difficile.

Muestras inadecuadas.

Expectoración, Muestras faríngeas o nasofaríngeas, hisopados gingivales,
Muestras broncoscopicas, lavado broncoalveolar, Muestras obtenidas por tubo
naso traqueal, endotraqueal o traqueostomía, Contenido gástrico, hisopo rectal,
Deposiciones (excepto búsqueda de Clostridium difficile.), Secreción vaginal,
vulvar, endocervical, uretral, perineal, Líquido seminal, Orina (de 2ª micción y por
catéter), Muestras de la superficie de úlceras, lesiones de piel.

Recolección

Las muestras para cultivo anaeróbico deben obtenerse mediante la
aspiración con aguja y jeringa (expulsando todo el aire de la jeringa antes de
colocarla en el medio de transporte), descontaminando previamente la superficie
con povidona yodada o alcohol al 70.

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El cultivo anaeróbico de tejidos es válido sólo si el tejido se introduce en un
envase que lo proteja de la exposición al oxígeno (caldo tioglicolato).

Las muestras obtenidas con hisopo son inadecuadas porque se exponen
los anaerobios al oxígeno del ambiente, y se obtienen volúmenes pequeños.

Las muestras deben enviarse al laboratorio en un medio de transporte para
anaerobios, ya que el oxígeno es letal para estos microorganismos. Una vez
expulsado todo el aire de la jeringa, se inyecta la muestra (pus, líquidos) a través
del tapón de goma. Si luego de haber vaciado la muestra al frasco, el medio de
transporte adquiere un color azul, significa que ha entrado oxígeno al frasco, por lo
tanto si esa muestra es procesada en el laboratorio para búsqueda de anaerobios
los resultados serán no concluyentes.

La jeringa con la aguja insertada en un tapón de goma puede servir como
transporte directo hasta el laboratorio si la muestra es procesada dentro de los 30
minutos posteriores a su recolección.

Las muestras para anaerobios pueden estar un máximo de 24 horas en
medio de transporte para anaerobios antes de ser sembradas.

REGLAS BÁSICAS A CONSIDERAR EN EL MOMENTO DE TOMAR Y
ENVIAR UNA MUESTRA.

a) La muestra debe ser tomada con máximas precauciones de asepsia,
usando el instrumental adecuado y estéril.

b) La muestra debe ser representativa del proceso infeccioso, es decir, debe
tomarse del sitio de infección, evitando la contaminación con tejido
adyacente, órganos o secreciones.

c) Se debe obtener una cantidad suficiente de muestra, según el número de
exámenes requeridos, y debe ponerse en receptáculos adecuados y
estériles.

d) Una vez obtenida la muestra, ésta debe enviarse al laboratorio a la
brevedad (en medios de transporte adecuados),

e) En lo posible, para que la muestra tenga un valor significativo, ésta debe
obtenerse antes de la administración de antibióticos. Esto es especialmente
importante en el aislamiento de Streptococcus β-hemolíticos (muestras
faríngeas), Neisseria gonorrhoeae (cultivos genitourinarios), H. influenzae y
Neisseria meningitidis (líquido cefalorraquídeo). Si el enfermo ya está en
tratamiento con antibióticos, éstos deberán suspenderse por un plazo
mínimo de cuatro veces la vida media del fármaco y posteriormente tomar
la muestra.

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f) La muestra debe rotularse en forma adecuada e ir acompañada de una
solicitud de examen, en la que se anotará, en forma legible:

Nombre completo del paciente.
Edad (especialmente si el examen solicitado es un coprocultivo).
Número ficha clínica.
Procedencia (si es hospitalizado, indicando servicio y número de cama, o si es
ambulatorio.
Tipo de muestra.
Fecha y hora en que se recolectó la muestra.
Examen solicitado.
Diagnóstico clínico o agente etiológico probable.
Si hay tratamiento antibiótico previo o actual, tratamientos concomitantes.
Nombre del médico.
Otras observaciones (si se trata de una repetición, si es un control, técnica
usada en la obtención de la muestra, etc.)(5)

TÉCNICAS PARA TOMAS DE MUESTRA:

Fig. 1 Técnica de cultivo de garganta. Se solicita al paciente que abra bien la boca
y que emita un “ah”. La lengua se baja suavemente con un abatelengua estéril y
se guía un hisopo por encima de ésta hacia la faringe posterior. La muestra se
recolecta con un movimiento suave de barrido de atrás hacia delante de la mucosa
detrás de la úvula y entre los pilares amigdalinos(3).

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Fig. 2

Prescott y col.

16


Fig.3
A) Vista frontal y B) Lateral de la técnica de aspiración translaríngea
(transtraqueal), una aguja de calibre 14 se introduce por la piel a través de
la membrana cricotiroidea. Se adosa a la aguja un catéter de polietileno y
se extiende en la tráquea. Se une una jeringa al catéter y el material es
aspirado tirando el émbolo(3).

Fig 4 Puntos a considerar para obtener una buena Muestra de Esputo
espontáneo o inducido.
1. Indispensable informar al paciente el procedimiento
2. Se prefiere la primera muestra de la mañana
3. Remover prótesis dentales efectuar cepillado de encías y lengua,
lavado de boca y gárgaras con agua.
Una buena muestra de expectoración es la que proviene del árbol
bronquial obtenida después de un esfuerzo de tos y no la que se obtiene de
faringe o por aspiración de secreciones nasales o saliva.

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Fig 5 Aspiración de Secreción

Fig.6 Toma de muestra para exudado uretral. Cuando la descarga uretral es
escasa, se recomienda tomar la muestra en la mañana antes de orinar, el exudado
puede extraerse con suavidad por el orificio uretral mediante una delicada presión
del pene, si no se obtiene material con rapidez, puede insertarse la punta de un
hisopo delgado en un soporte de aluminio o plástico 3 o 4 cm en la uretra anterior.
(3)
.

Exudado Uretral
Emplear hisopo de alambre flexible con torunda de dacrón o algodón

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Eliminar exceso de pus con gasa estéril
Introducir hisopo de 3 a 4 cm en el conducto uretral
Rotar con cuidado para descamar
Efectuar una pausa por 5 seg.
Retirar y hacer extensión y/o cultivo

Recolección de muestras en genitales femeninos

Niñas y Adolescentes
Sin aseo previo con antisépticos locales OJO (BAÑADA NORMAL SI)
Recostar a la paciente en camilla de exploración en posición ginecológica
Usar hisopo estéril humedecido o no con solución salina
Tomar del introito vaginal sin introducir el hisopo
Mujeres púberes mas de 15 años usar pipeta de vidrio en forma de L
Procesar de inmediato

Mujeres Sexualmente Activas

Observaciones:
Entrevista a la paciente
Registrar características del fluido
No tomar en periodo menstrual
Empleo de espejos ginecológicos cuando se requiera
No importa si la paciente miccionó previo a la toma de muestra
No relaciones sexuales en 72 hrs.
No usar antisépticos locales

Exudado Vaginal
Sin aseo previo a la toma
Recostar a la paciente en camilla de exploración en posición ginecológica
Introducir pipeta de vidrio estéril en el introito vaginal y aspirar la secreción
con perilla
Retirar y procesar de inmediato

Toma Endocervical con Escobillón Citológico
Retirar exceso de mucosidad del exocervix
Introducir despacio el escobillón y rotar 360º para favorecer la descamación
Sacar el escobillón sin tocar las paredes de la vagina
Hacer extensión y/o cultivo

Toma Endocervical con Hisopo
Retirar el exceso de mucosidad del exocervix
Introducir un hisopo de alginato
Rotar el hisopo de 5 a 10 segundos
Retirar el hisopo evitando tocar paredes vaginales
Proceder rápidamente al cultivo y frotis

19


Fig. 7 Técnica de la toma de muestra para cultivo de endometrio. Con la
ayuda de un espéculo, se introduce un catéter en el orificio cervical y a través de
él se extiende un hisopo en la cavidad endometrial. Esto ayuda a evitar la
contaminación del hisopo por contacto con la pared vaginal o cervical. (3).

INDICACIONES DE LA TOMA CORRECTA DE MUESTRA PARA
UROCULTIVO.

Fig. 8 Aspiración suprapúbica de vejiga urinaria. Una aguja se dirige a través de la
piel dentro de la vejiga justo encima de la sínfisis pubiana. La orina puede
extraerse con una jeringa. (3).

20


Fig. 9 Recolección del chorro medio de orina. A) Los labios se separan con los
dedos y se limpian con una gasa de 10 x 10 cm. Saturada con jabón, enjuagar con
gasas estériles humedecidas con agua hervida.
B) La porción media del chorro de orina se recoge en recipiente estéril(3).

Koneman y col

21


Fig. 10 Técnica de drenaje espinal. El paciente yace sobre un costado, con las
rodillas flexionadas y la espalda arqueada para separar las vértebras lumbares.
El paciente es cubierto con campos quirúrgicos y el área que cubre la columna
lumbar se desinfecta.
B) El espacio entre las vértebras lumbares L-3 y L.4 se palpa con un dedo cubierto
con guante estéril.
C) La aguja espinal se dirige cuidadosamente entre los procesos espinales, a
través de los ligamentos intraespinales dentro del canal espinal. (3).

Fig. 11 CONJUNTIVITIS BACTERIANA, TOMAR DE LA SECRECIÓN CON
UN HISOPO ESTÉRIL (4).

22


Fig 12 Desinfectando la sonda

Fig 13 Medios para Hemocultivo y para muestras de anaerobios

23


Tabla 2 CRITERIOS PARA EL RECHAZO DE MUESTRAS Y/O SOLICITUDES
DE EXÁMENES MICROBIOLÓGICOS
Categoría Criterios de rechazo Acciones

Identificación Discrepancia entre la Hablar con el médico o devolverla
identificación del paciente y la No procesar a menos que la
del frasco de la muestra solicitud esté con el envase
Falta de identificación en el Llamar al médico o al servicio.
envase de la muestra
No se indica el tipo de muestra o
cultivo deseado
Muestra Enviada en medio de transporte Informar al médico y solicitar
inadecuado o sin medio de nueva muestra
transporte.
Enviada en envase no estéril Esterilizar la muestra y pedir otra
Enviada en envase o tubo con nueva.
derrame
Inadecuada para examen Devolver la solicitud al médico,
solicitado señalando: Muestra Inadecuada
para realizar el Examen.

Solicitud de cultivo anaerobio en Tachar cultivos anaerobios en la
esputo, orina 2ª micción, mues- solicitud y Explicar las razones al
tras, de garganta, boca, piel, he- médico solicitante.
ces, sec. nasal, sec. vaginal, etc
Muestra identificada sólo por el Requerir mayor información.
sitio anatómico (pecho, pierna) o
en forma general herida,
secreción
Muestra en cantidad insuficiente Solicitar muestra adicional, si no
para realizar exámenes es posible establecer prioridades
solicitados de procesamiento

Muestras repetidas el mismo día. Debe procesarse una y avisar al
médico para que justifique el
procesamiento de las demás
Muestra contaminada Descartar la muestra y pedir otra

Orina mantenida por más de 2 Devolver la muestra y solicitar
horas a temperatura ambiente. otra, explicando el problema
Orina o expectoración Las muestras son inaceptables y
recolectada durante 24 horas solicitar 6 muestras en días
para búsqueda de micobacterias consecutivos de orina o 3 de
u hongos expectoración matinales
Montiel

24


La piel y las membranas mucosas actúan como barreras mecánicas contra los
microorganismos de las infecciones bacterianas. Las barreras mecánicas son: Piel
intacta, Moco, Movimiento de los cilios, Tos, Estornudo, Desprendimiento de
células, Lavado de los microorganismos por lágrimas, saliva, orina, transpiración,
otros líquidos corporales, El vómito y la diarrea ayudan a eliminar los
microorganismos.

La mayoría de los microorganismos no pueden originar infecciones sin
penetrar a través de la piel o las mucosas. Los ácidos grasos libres producidos en
las glándulas sebáceas, el ácido láctico de la transpiración, el pH bajo y el
ambiente relativamente seco de la piel son desfavorables para la supervivencia de
la mayoría de los microorganismos. La lisozima y la lactoferrina son sustancias
antimicrobianas presentes en las secreciones de las superficies mucosas. La
lisozima induce lisis de las bacterias por ruptura de los enlaces que unen al ácido
N-acetilmurámico con la N-Acetilglucosamina en las paredes de las bacterias
grampositivas. La lactoferrina, una proteína ligadora de hierro, compite con los
microorganismos por ese elemento, privandolos del hierro libre que necesitan para
su crecimiento. En las superficies mucosas existe también la inmunoglobulina IgA
secretora que puede interferir con la adherencia de las bacterias a las células
huéspedes, inhibir la motilidad microbiana, aglutinar los microorganismos y
neutralizar sus exotoxinas. El medio ácido del estómago y el peristaltismo
intestinal regulan también los organismos capaces de colonizar el tracto intestinal.

Los microorganismos inhalados con el polvo o las gotitas mayores de 5μm
se adhieren a la mucosa que tapiza el tracto respiratorio alto, y son arrastrados
hacia arriba por los cilios, hasta la faringe posterior y después expectorados o
deglutidos. Las partículas menores de 5μm son capaces de alcanzar las vías
aéreas bajas, por lo que deben ser fagocitadas con rapidez por los macrófagos
alveolares. Sin embargo, el humo del tabaco y otros contaminantes, así como
algunas bacterias y virus (p. ej., Bordetella pertusis, virus influenza) pueden
interferir con ese mecanismo de limpieza al lesionar las células epiteliales ciliadas,
lo que convierte al paciente en susceptible a una neumonía bacteriana.

Aunque la orina puede facilitar el crecimiento bacteriano en la vejiga, el pH
ácido urinario y la micción actúan como mecanismos defensivos eficaces contra la
mayoría de los uropatógenos. Las infecciones del tracto urinario son menos
frecuentes en los hombres que en las mujeres, debido a que la uretra masculina
es más larga. La hipertrofia prostática o cálculos favorecen la infección al facilitar
el crecimiento bacteriano en la orina retenida.

25


Muchos microorganismos patógenos tienen un rango limitado de órganos o
células huéspedes en los que son capaces de replicarse, también es necesario un
mínimo de microorganismos para establecer la infección. La cifra puede ser
relativamente pequeña p. ej., son necesarias menos de 200 células de Shigella
para producir shigelosis o muy grande 108 células de Vibrio cholerae o
Campylobacter para originar las infecciones gastrointestinales.

El inóculo necesario para provocar enfermedad puede variar mucho
dependiendo de factores del huésped, p. ej., aunque se requieren un millón o más
de salmonelas para producir gastroenteritis en un individuo sano, basta con pocos
cientos o miles si el pH gástrico es neutro. De la misma forma, la presencia de un
cuerpo extraño (p. ej., prótesis, catéter, material de sutura) puede reducir en forma
dramática el número de estafilococos necesarios para causar infección en herida.

La mayoría de las infecciones son iniciadas mediante adherencia del
microorganismo a los tejidos del huésped, seguida por replicación microbiana para
establecer la colonización

26


Vías de entrada de las bacterias
Vía Ejemplo
Ingestión: Salmonella, Shigella, Yersinia enterocolitica, Escherichia
coli enterotoxigénica, Vibrio, Campylobacter, Clostridium
botulinum, Bacillus cereus, Listeria, Brucella
Inhalación: Mycobacterium, Nocardia, Mycoplasma pneumoniae,
Legionella, Bordetella, Chlamydia psittaci, Chlamydia
pneumoniae
Penetración directa
Traumatismo: Clostridium tetani, Erysipelothrix

Punción: Staphylococcus aureus, Pseudomonas

Picadura de artrópodo: Rickettsia, Coxiela, Francisella, Borrelia, Yersinia pestis

Transmisión sexual: Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis,
Treponema pallidum, Haemophilus ducreyi

Transplacentaria: Treponema pallidum

La tabla ilustra algunos ejemplos de la diversidad de microorganismos a los
que se enfrenta el ser humano.

TÉCNICAS DE INOCULACIÓN Y SELECCIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO.

Una vez que una muestra para cultivo ha sido recibida en el laboratorio de
microbiología, deben tomarse las siguientes decisiones para recuperar e identificar
los microorganismos que puedan estar presentes:
a) Seleccionar el medio de cultivo primario adecuado para el tipo de muestra
en particular.
b) Determinar la temperatura y la atmósfera de incubación, para recuperar
todos los microorganismos potencialmente significativos.
c) Determinar cuál de los aislamientos recuperados en el medio primario
requiere una caracterización posterior.
d) Determinar si se requiere pruebas de susceptibilidad a antimicrobianos, una
vez que se ha identificado al organismo.

Las placas de agar son usadas habitualmente y la inoculación de caldos de
cultivo para la recuperación de microorganismos debería estar limitada sólo a
aquellas muestras, como las de líquidos corporales, las biopsias o las
aspiraciones profundas, en la recuperación de microorganismos que se
encuentran en bajas concentraciones y para anaerobios.

Los medios pueden ser selectivos o no selectivos. Los no selectivos no
presentan inhibidores, y sustentan el crecimiento de la mayoría de los
microorganismos que se encuentran en los laboratorios clínicos. El agar con

27


sangre de oveja al 5% es el medio no selectivo más comúnmente usado y se
incluye en la batería de medios primarios de aislamiento para cualquier
muestra clínica. El agar con sangre de caballo o de oveja, suplementado con
IsoVitalex, es el preferido para la recuperación de Haemophilus influenzae ya
que es una rica fuente de factor X.

La sangre humana es recomendada para la recuperación de Gardnerella
vaginalis ya que, además de promover un buen crecimiento, permite observar
hemólisis, cosa que no ocurre en agar sangre de oveja.

El agar sangre puede hacerse selectivo si se adiciona uno o más
antibióticos como la kanamicina y la vancomicina para recuperar bacilos
anaerobios gramnegativos como Bacteroides. Una combinación de 4 o 5
antibióticos como bacitracina, novobiocina, colistin, cefalotina, polimixina B y
otros se adicionan al Campy-BAP para permitir la recuperación de
Campylobacter jejuni de la alta concentración de flora mixta en muestras de
materia fecal. La colistina y el ácido nalidíxico pueden adicionarse al agar
sangre para inhibir el crecimiento de bacterias gramnegativas en muestras
contaminadas y aumentar la recuperación de microorganismos grampositivos.

El agar MacConkey es el medio de cultivo selectivo más comúnmente
utilizado para inhibir el crecimiento de microorganismos grampositivos. Las
sales biliares y el cristal violeta son los inhibidores activos. La eosina y el azul
de metileno son los inhibidores usados en el agar eosina-azul de metileno
(EMB).

El caldo de enriquecimiento es utilizado para recuperar microorganismos
patógenos de muestras tales como materia fecal, donde hay elevada
concentración de microorganismos comensales. Por ej., E. coli y otros
comensales entéricos son mantenidos en una prolongada fase de retardo del
crecimiento por los inhibidores del caldo de enriquecimiento, permitiendo que
las pocas células bacterianas de especies de Shigella y Salmonella entren en
una fase logarítmica de crecimiento no inhibida, durante la cual pueden
competir mejor por su supervivencia.

Las bacterias crecen en la superficie de medios nutrientes sólidos en los
que producen colonias compuestas por miles de células derivadas de una
única célula madre inoculada en la superficie del agar. Las colonias de las
diferentes especies tienen a menudo morfologías características, que pueden
dar una pista de su probable identidad, por lo que son los más utilizados en
microbiología diagnóstica.

La mayoría de las especies de importancia médica tardan entre 12-48
horas para que sus colonias sean visibles en medios artificiales de laboratorio,
pero no hay un medio universal de cultivo que permita el crecimiento de todas
ellas, y todavía existen algunas especies que pueden crecer sólo en animales
experimentales (p, ej., Mycobacterium leprae y Treponema pallidum). Algunas

28


bacterias que no pueden cultivarse en medios artificiales (p. ej. clamidias y
rickettsias) pueden crecer en cultivos celulares.

Las muestras recogidas de zonas anatómicas que albergan una flora
comensal normal contendrán una mezcla de organismos entre los que deberá
diferenciarse el patógeno buscado. Las muestras se inoculan en placas de
agar con una gama de medios nutrientes y selectivos cuidadosamente elegidos
para producir colonias aisladas. Estas colonias se subcultivan a nuevos medios
para efectuar pruebas de identificación y sensibilidad a los antibióticos.

Las reacciones de identificación deben realizarse siempre sobre colonias
aisladas o en cultivos puros que son formados por un único tipo de
microorganismo que deriva de una sola célula.

Se puede hacer una identificación preliminar de las bacterias de importancia
médica sobre la base de las características de las células como:

Tinción de Gram
Morfología colonial.
Capacidad para crecer en condiciones aeróbicas o anaeróbicas
Requerimientos de crecimiento (simples o exigentes)
Capacidad para producir enzimas que pueden ser detectadas fácilmente.
Capacidad para metabolizar azúcares por oxidación/fermentación.
Capacidad para usar una determinada gama de sustratos para el
crecimiento.

MEDIOS DE CULTIVO PARA EL AISLAMIENTO BACTERIANO A PARTIR DE
MUESTRAS CLÍNICAS.

Medios selectivos: se prepara añadiendo sustancias específicas al medio
de cultivo, que permita el crecimiento de un grupo de bacterias inhibiendo
otros grupos bacterianos como Agar Salmonella-Shigella (SS). La mezcla
de sales biliares inhiben muchos grupos de coliformes.

Agar Sal y manitol la selectividad se debe a la elevada concentración de sal
(7.5%) y el manitol ayuda a diferenciar los estafilococos patógenos que
fermentan el manitol para producir ácido.

Agar Sulfito de bismuto para aislar Salmonella typhi, de muestras de heces
y de alimentos, ya que reduce el sulfito a sulfuro, resultando colonias
negras

Medios diferenciales: La incorporación de ciertos productos químicos a un
medio de cultivo puede dar lugar a un crecimiento útil para el diagnóstico
como:

29


Agar MacConkey se emplea para la recuperación de bacilos
gramnegativos. Las sales biliares y el cristal violeta de este medio inhiben el
crecimiento de bacterias grampositivas y de algunas bacterias
gramnegativas de crecimiento exigente. La lactosa es el único hidrato de
carbono

El EMB también diferencia entre fermentadoras (colonias obscuras o con
brillo metálico y no fermentadoras de lactosa (incoloras), sales y dos
colorantes.

Agar entérico Hektoen se emplea para aumentar el rendimiento de especies
de Salmonella y Shigella , la elevada concentración de sales biliares inhibe
el crecimiento de bacterias grampositivas y retrasa el crecimiento de
muchas cepas de coliformes

Medios de enriquecimiento:

La adición de sangre, suero o extractos al agar o caldo de soya triptonada
mantiene el crecimiento de bacterias exigentes, se emplean para aislar
bacterias de Líquido pleural, cefalorraquídeo, esputo y abscesos de
heridas.

Agar sangre también puede ser un medio diferencial ya que permite
diferenciar bacterias hemolíticas.

Agar chocolate, la sangre suministra factores necesarios para el
crecimiento de Haemophilus influenzae y Neisseria gonorrhoeae

PRUEBAS BIOQUÍMICAS QUE EMPLEA EL MICROBIOLOGO PARA EL
DIAGNÓSTICO

Son medios característicos que se emplean para examinar bacterias con
actividades metabólicas, productos o requerimientos especiales por
ejemplo:

Caldo Urea. Se emplea para detectar la enzima ureasa, algunas bacterias
entéricas son capaces de desdoblar la urea, en presencia de ureasa a
amoníaco y CO2.

Agar con hierro y tres azúcares (TSI). Contiene lactosa, sacarosa y glucosa
más sulfato amónico ferroso y tiosulfato sódico. Se emplea para identificar
los microorganismos entéricos por su capacidad de utilizar la glucosa, la
lactosa o la sacarosa y liberar sulfuros del sulfato amónico o del tiosulfato
sódico.

Agar citrato. Contiene citrato sódico, que sirve como única fuente de
carbono y fosfato amónico, fuente exclusiva de nitrógeno. Se emplea para

30


diferenciar las bacterias entéricas basándose en la utilización del citrato
como fuente exclusiva de carbono.

Agar lisina hierro se utiliza para diferenciar bacterias que pueden desaminar
o descarboxilar el aminoácido lisina. Este medio contiene lisina, que permite
la detección enzimática y citrato amónico férrico para la detección de la
producción de H2S.

Medio de sulfuro, indol y motilidad (SIM), se observa formación de sulfuros,
la formación de indol (un producto metabólico de la utilización de triptofano),
y la motilidad, para diferenciar microorganismos entéricos.

Prueba Bioquímica Descripción Aplicación en Laboratorio
Fenilalanina La desaminación de fenilalanina Se emplea en la
desaminasa produce ácido fenilpirúvico, que caracterización de los
puede detectarse por géneros Proteus, Morganella
colorimetría. y Providencia todos (+)

Descarboxilasas La descarboxilación de Se utiliza en la clasificación
(Lisina, Arginina, aminoácidos libera CO2 y amina de las bacterias entéricas
Ornitina)

Prueba de la β- Demuestra la presencia de una Se emplea para diferenciar
galactosidasa enzima que divide la lactosa en bacterias entéricas
(ONPG) glucosa + galactosa Citrobacter (+), Salmonella (-)
y para identificar
Pseudomonas

IMViC (Indol, rojo Se detecta indol a partir del Se emplea para diferenciar
de metilo, Voges- aminoácido triptofano, el RM es Enterobacterias y para
Proskauer, un indicador de pH para caracterizar a los miembros
Citrato determinar si la bacteria ha del género Bacillus.
producido ácido y VP detecta la
producción de acetoína

Fermentación Durante el crecimiento La fermentación de azúcares
de fermentativo con azucares se específicos se emplea para
Carbohidratos produce ácido y/o gas diferenciar bacterias
Catalasa Detecta la presencia de catalasa, Se emplea para diferenciar
que convierte el peróxido de Streptococcus (-), de
hidrógeno en agua y O2 Staphylococcus (+) y Bacillus
(+) de Clostridium (-)

31


Coagulasa Detecta la presencia de Es una prueba importante para
coagulasa, la cual hace que el diferenciar Staphylococcus
plasma se coagule aureus (+) de S. epidermidis (-)
Oxidasa Detecta la presencia de citocromo Importante para diferenciar
c oxidasa que es capaz de reducir Neisseria y Moraxella (+) de
el O2 y aceptores artificiales de Acinetobacter (-) y bacterias
electrones entéricas (-) de Pseudomonas
(+)

II INFECCIONES DEL TRACTO RESPIRATORIO SUPERIOR.

El tracto respiratorio está dividido en tracto superior (la orofaringe y la
nasofaringe) y tracto inferior (laringe, tráquea, bronquios y los sacos alveolares
aéreos de los pulmones). El oído medio también se considera parte del tracto
respiratorio superior, porque está conectado a la faringe posterior a través de la
trompa de Eustaquio.

En la vía respiratoria superior son muy importantes el sistema mucociliar de
la nasofaringe y la acción de lavado de la saliva en la orofaringe que constituyen la
primera defensa frente a la infección de las vías respiratorias superiores. Debido a
que el aire que inhalamos contiene millones de partículas suspendidas, incluidos
algunos microorganismos que pueden ser inocuos, excepto en la proximidad de
individuos infectados, el aire puede contener un elevado número de
microorganismos patógenos.

Al igual que en otras superficies corporales existen diversos
microorganismos que viven sin producir daño alguno en la orofaringe y en las vías
respiratorias superiores, colonizan la nariz, la boca, la garganta y los dientes y
están bien adaptados en estas zonas. Sin embargo pueden generar problemas
cuando se debilita la resistencia del huésped.

2.1 FLORA NORMAL DE LAS VÍAS RESPIRATORIAS.

En mas del 50% de individuos normales: Estreptococos de la boca,
Neisseria sp, Branhamella, Corinebacterias, Bacteroides, Cocos anaerobios
(Veillonella), Bacterias fusiformes, Candida albicans, Streptococcus mutans,
Haemophilus influenzae.

En menos del 10% de individuos normales: Streptococcus pyogenes,
Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis.

En menos del 1 % de individuos normales: Corynebacterium diphtheriae,
Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas, Escherichia coli, Candida albicans, las tres
últimas especialmente después de tratamiento con antibiótico.

32


2.2 FARINGITIS Y AMIGDALITIS.

La faringitis aguda es la infección más común del tracto respiratorio
superior. Entre las causas más comunes deben considerarse los estreptococos,
los virus y la difteria, esta última es una infección de los niños, que ocurre en
epidemias esporádicas, aunque los adultos pueden infectarse. La membrana
gruesa celeste o gris que cubre la faringe posterior, con edema marcado de los
tejidos subyacentes y circundantes, en general puede diferenciarse de la garganta
enrojecida de una faringitis estreptocócica observando una mucosa faríngea
inflamada y edematosa en un paciente que se queja de dolor de garganta,
dificultad para tragar y que presenta síntomas secundarios, como fiebre, dolor de
cabeza y en ocasiones erupción tipo escarlatina. También pueden observarse
exudados purulentos sobre la faringe posterior y el área amigdalina. .(4)

fig. 14 Amigdalitis estreptocócica por Streptococcus pyogenes β hemolitico del
grupo A con intenso eritema de las amígdalas y un exudado cremoso de color
amarillo.(4)

Fig. 15 Candidiasis oral.(4)

Cerca del 70% de las faringitis están producidas por virus. Los
microorganismos que producen faringitis aguda son:

Streptococcus pyogenes Produce el 10-20% de los casos de faringitis

33


aguda

Neisseria gonorrhoeae Frecuentemente asintomática, habitualmente por
contacto urogenital.

Corynebacterium diphteriae Faringitis frecuentemente leve, pero la
enfermedad tóxica puede ser grave.

Haemophylus influenzae Epiglotitis

Borrelia vincenti más bacilos Angina de Vincent (mucosa bucal, tejidos
fusiformes faríngeos y amigdalas, ulceración y
seudomembrana gris), más frecuente en
adolescentes y adultos.

La garganta se ulcera (faringitis), porque la mucosa que la tapiza está
infectada o por las respuestas inmunitarias e inflamatorias de los propios tejidos
linfoides.

Dentro de las bacterias que la producen, el Streptococcus pyogenes (β-
hemolítico del grupo A) es el más común y muy importante de diagnosticar porque
puede originar complicaciones, pero puede tratarse fácilmente con penicilina.

El Haemophylus influenzae (tipo B), que ocasionalmente produce epiglotitis
grave con obstrucción de las vías aéreas, especialmente en niños pequeños.

Todas estas bacterias se adhieren a la superficie de la mucosa, invadiendo
a veces tejidos locales.
Tabla 5 Flora comensal y patógena del tracto respiratorio
Flora Comensal Patógenos Potenciales Medios de aislamiento
Estreptococos α: Streptococcus β-hemolítico Agar sangre de oveja al 5%,
Streptococcus mutans del Gpo A con o sin trimetoprima-
Streptococcus salivarus sulfametoxasol
S. pneumoniae Streptococcus pneumoniae Agar sangre de oveja al 5%
Klebsiella pneumonia y otras y agar MacConkey
Enterobacterias
Streptococcus β no Gpo. Pseudomonas aeruginosa Agar sangre de oveja al 5%
A y agar MacConkey
Staphylococcus aureus Neisseria gonorrhoeae y Thayer Martin modificado
S epidermidis Neisseria meningitidis (MTM)
Especies de Staphylococcus aureus Agar sangre de caballo con
Haemophilus colistina y ácido nalidixico
Especies de Neisseria Haemophilus influenzae tipo Agar chocolate
b y Haemophilus influenzae
no tipificable
Especies de Corynebacterium diphtheriae Gelosa sangre con telurito,

34


Corynebacterium agar de Loeffler
(“difteroides”)
Escherichia coli y otras Moraxella catarrhalis Agar sangre de oveja al 5%
Enterobacterias o agar chocolate
Anaerobios Bordetella pertusis Agar Bordet- Gengou o
medio Regan y Lowe
Especies de Mycobacterium Medio Lowenstein-Jensen

Legionella pneumophila y Agar carbón-Extracto de
otras Legionellas levadura (CYE)

Las bacterias se identifican por cultivo de la muestra de hisopado de
garganta. Debe enfocarse en la cavidad oral una luz brillante por encima del
hombro del que toma la muestra de modo que el hisopo puede guiarse a la faringe
posterior. Se indica al paciente que incline la cabeza hacia atrás y que respire
profundamente. La lengua se baja con una espátula para lengua para visualizar la
fosa amigdalina y la faringe posterior (ver técnicas de toma de muestra pag.13). El
hisopo se extiende entre los pilares tonsilares y debajo de la úvula. Se debe tener
cuidado de no tocar las paredes laterales de la cavidad bucal o de la lengua y así
minimizar contaminaciones con bacterias comensales. Un largo “ah” producido por
el paciente sirve para elevar la úvula y evitar náuseas. El área amigdalina y la
faringe posterior deben ser frotadas con firmeza con el hisopo. Así mismo es
preciso un muestreo de cualquier exudado purulento. Debido a las complicaciones
es importante diagnosticar las infecciones por Streptococcus pyogenes y también
porque a diferencia de Streptococcus pneumoniae, sigue siendo sensible a la
penicilina. Sin embargo, está aumentando la resistencia a eritromicina y
tetraciclina.

2.3 COMPLICACIONES DE LA FARINGITIS ESTREPTOCÓCCICA.

Entre las complicaciones de las infecciones faríngeas por Streptococcus
pyogenes están el absceso periamigdalino, la escarlatina, la fiebre reumática y las
glomerulonefritis y cardiopatías reumáticas.

Estas complicaciones son importantes, aunque son menos frecuentes en
países desarrollados donde existe un buen acceso a los servicios médicos y
probablemente también una menor exposición a los estreptococos, entre las
complicaciones son las siguientes:

Absceso periamigdalino, una complicación infrecuente de la faringitis
estreptocócica no tratada.

Otitis media, sinusitis producidas por diseminación local de Streptococcus
pyogenes.

35


Escarlatina: determinadas cepas de Streptococcus pyogenes producen
una toxina eritrogénica codificada por un fago lisogénico. La toxina se disemina
por el organismo y se localiza en la piel, donde induce un exantema eritematoso
puntiforme (ver fig. 27). La lengua es inicialmente saburral y más adelante roja. El
exantema comienza como eritema facial y se disemina después hasta afectar la
mayor parte del organismo, excepto palmas y plantas. La cara está generalmente
enrojecida con palidez perioral. El exantema desaparece después de una semana
y va seguido de extensa descamación. Las lesiones cutáneas no son graves, pero
indican infección por un estreptococo potencialmente nocivo que puede
extenderse a todo el cuerpo y producir celulitis y septicemia.

Fiebre reumática: Es una complicación indirecta, los anticuerpos formados
frente a antígenos de la pared estreptocócica presentan una reacción cruzada. En
el corazón se forman granulomas después de 2-4 semanas de la faringitis, el
enfermo habitualmente un niño, desarrolla miocarditis o pericarditis, que pueden ir
acompañadas de nódulos subcutáneos de poliartritis y en raras ocaciones de
corea, que es una enfermedad del sistema nervioso central causada por
anticuerpos antiestreptocócicos que reaccionan con las neuronas.

Cardiopatía reumática. Las infecciones repetidas por Streptococcus
pyogenes pueden dar origen a lesión de las válvulas cardíacas. Algunos niños
tienen una predisposición genética a esta enfermedad inmunitaria. En muchos
países las cardiopatías reumáticas son el tipo más común de enfermedad
cardiaca.(4)

Fig. 16 Escarlatina: a) El eritema puntiforme va seguido de descamación
durante 2-3 semanas. b) La lengua presenta aspecto saburral inicialmente y
después adquiere un color rojo con las papilas muy marcadas. .(4)

Glomerulonefritis aguda. Los anticuerpos frente a componentes
estreptocócicos se combinan con éstos para formar inmunocomplejos circulantes,

36


que se depositan en los glomérulos. Donde se activan los sistemas de la
coagulación y del complemento, lo que induce inflamación local. Aparece sangre
en la orina (eritrocitos, proteínas), y después de 1-2 semanas de la faringitis, se
observan signos de un síndrome de nefritis aguda (edema, hipertensión).
Habitualmente, los anticuerpos están elevados. Sólo 4 o 5 de los 65 tipos de
Streptococcus pyogenes dan origen a esta situación y es poco probable la
infección repetida con diferentes tipos de cepas. Por tanto, no se administra
profilaxis con penicilina, los segundos episodios son raros.

2.4 OTITIS Y SINUSITIS.

Ambas pueden ser producidas por virus y por diversos invasores
bacterianos secundarios. Muchos virus son capaces de invadir los espacios
aéreos relacionados con la vía respiratoria superior (senos, oído medio).La gama
de invasores bacterianos secundarios es igual que la de otras infecciones de las
vías respiratorias superiores, esto es, Streptococcus pneumoniae y Haemophilus
influenzae y a veces algunos anaerobios como Bacteroides fragilis.

El absceso cerebral es una seria complicación, debido a que, el cierre de la
trompa de Eustaquio (trompa auditiva) o del orificio de salida de los senos por
hinchazón alérgica de la mucosa impide la eliminación mucociliar de la infección, y
la acumulación local de productos bacterianos inflamatorios provocando un
aumento de la tumefacción y la obstrucción.

Otitis media aguda.

Es común en los lactantes y niños pequeños, en parte porque las trompas
de Eustaquio están más abiertas a esas edades. Un estudio realizado en Boston
mostró que el 83% de los niños de 3 años había padecido al menos un episodio
de otitis media aguda y el 46% había tenido tres o más episodios desde el
nacimiento. Al menos el 50% de los ataques son de procedencia vírica y los
invasores bacterianos son residentes de la nasofaringe, casi siempre
Streptococcus pneumoniae y Haemophilus influenzae y a veces Streptococcus
pyogenes o Staphylococcus aureus. Puede haber síntomas generales y debe
considerarse la posibilidad de otitis media aguda en cualquier niño con fiebre,
diarrea o vómitos inexplicados. El tímpano muestra un aumento de la
vascularización y abombamiento en una fase más avanzada. El exudado persiste
en el oído medio durante semanas o meses (otitis serosa), independientemente
del tratamiento y contribuye a la aparición de déficit auditivo y dificultad del
aprendizaje.

Cuando los episodios agudos se tratan inadecuadamente, puede haber
infección continua con supuración crónica a través del tímpano perforado y
trastornos auditivos a lo que se le llama otitis media crónica purulenta.

Otitis externa.

37


Las causas de otitis externa son Staphylococcus aureus, Candida albicans
y diversos gramnegativos oportunistas como Proteus y Pseudomonas aeruginosa..
Las infecciones del conducto auditivo externo pueden producir irritación y dolor, y
deben distinguirse de la otitis media. En contraste con el oído medio, el conducto
auditivo externo tiene una flora bacteriana parecida a la de la piel (estafilococos,
corinebacterias y en menor medida propionibacterias), los patógenos
responsables de la otitis media rara vez se encuentran en la otitis externa.
Habitualmente, los colirios óticos que contienen polimixina u otros antibióticos son
un tratamiento eficaz.

Sinusitis aguda.

La etiología y la patogenia de la sinusitis aguda es similar a la de la otitis
media. Las características clínicas incluyen dolor facial e hipersensibilidad
localizada. El tratamiento se puede realizar con ampicilina o amoxicilina, o con las
nuevas cefalosporinas, para cubrir la posibilidad de organismos productores de
betalactamasas.

Epiglotitis aguda.

Su agente etiológico generalmente es Haemophilus influenzae del tipo B
capsular y se observa la mayoría de las veces en niños pequeños. Este
microorganismo se disemina desde la nasofaringe a la epiglotis, produciendo
inflamación y edema graves. Habitualmente se produce bacteriemia.

La epiglotitis aguda requiere intubación y tratamiento con antibióticos, se
caracteriza por dificultad para respirar a causa de la obstrucción de las vías
respiratorias y, hasta que se haya asegurado la vía aérea (por intubación) debe
tenerse un cuidado extremo al explorar la garganta por el riesgo de que la epiglotis
hinchada sea aspirada a la vía aérea edematosa y produzca una obstrucción total.
El tratamiento debe iniciarse inmediatamente con antibióticos eficaces para
Haemophilus influenzae como cefotaxima, cloranfenicol. El diagnóstico clínico se
confirma por el aislamiento de bacterias en el hemocultivo y a veces, de la
epiglotis. La vacuna frente a Haemophilus influenzae tipo B (Hib) es probable que
pueda reducir enormemente la frecuencia de estas y otras infecciones por
Haemophilus influenzae de tipo B.

2.5 DIFTERIA.

La difteria es producida por cepas toxigénicas de Corynebacterium
diphtheriae y puede producir obstrucción respiratoria con riesgo para la vida. Por
la amplia inmunización con el toxoide la difteria es ahora una enfermedad rara en
países desarrollados, pero es todavía frecuente en países en desarrollo. En la
faringe normal existen cepas no toxigénicas, pero deben estar presentes bacterias
toxigénicas para producir enfermedad. Pueden colonizar la faringe (especialmente

38


la región amigdalar), la laringe, la nariz y ocasionalmente el tracto genital, en los
trópicos o en personas con escasa higiene cutánea coloniza la piel.

La toxina destruye a los polimorfonucleares y las células epiteliales,
formando úlceras cubiertas con un exudado necrótico que forma una “falsa
membrana”. Esta se hace oscura y fétida y sangra cuando se intenta
desprenderla, existe una marcada tumefacción e inflamación y los ganglios
linfáticos cervicales se hipertrofian para dar un aspecto de “cuello de toro”.

La difteria nasofaríngea es la forma más grave de la enfermedad. Cuando
está involucrada la laringe puede dar lugar a obstrucción respiratoria con riesgo
para la vida. La difteria nasal es una forma leve de la enfermedad cuando ocurre
aisladamente, porque la toxina se absorbe menos desde esta zona anatómica y el
síntoma principal puede limitarse a un mayor exudado nasal. Sin embargo el
enfermo es muy contagioso.

La toxina diftérica puede producir insuficiencia cardiaca y es absorbida por
los linfáticos y la sangre, y tiene varios efectos:

Un trastorno constitucional, con fiebre, palidez y agotamiento.
Miocarditis, habitualmente dentro de las dos primeras semanas, puede
aparecer insuficiencia cardiaca, pero el enfermo puede recuperarse si se trata de
inmediato con antitoxina y antibióticos como penicilina o eritromicina.

La difteria es una enfermedad que pone en riesgo la vida del paciente y su
diagnóstico clínico debe establecerse con urgencia.(3,4)

Fig. 17

39


Fig. 18

Fig.19 Patogenia de la difteria. La difteria es una enfermedad infecciosa mediada
por exotoxina causada por Cotynebacterium diphteriae. La enfermedad es un
proceso agudo, febril contagioso, que se caracteriza por inflamación local de la
bucofaringe y formación de pseudomembranas. Si la exotoxina accede a la sangre
se disemina y puede dañar los nervios periféricos, el corazón y los riñones.

40


III INFECCIONES DEL OJO

La conjuntiva es una superficie epitelial vulnerable, fácilmente accesible a
organismos infecciosos, está cubierta por los párpados, que crean un ambiente
cerrado húmedo y caliente en el que pueden anidar rápidamente organismos
contaminantes y establecer un foco de infección. Los párpados y las lágrimas
protegen las superficies externas del ojo, tanto de forma mecánica como biológica,
cualquier interferencia con su función aumenta la probabilidad de que pueda
establecerse algún patógeno.

Las infecciones de los párpados se deben generalmente a Staphylococcus
aureus.

La conjuntiva puede ser invadida por otras vías como la sangre o el
sistema nervioso y los tejidos profundos del ojo también pueden ser invadidos
desde dentro, sobre todo por parásitos protozoos y helmintos.

3.1 Conjuntivitis.

Infecciones por Clamidias.
Existen 8 diferentes serotipos de Chlamydia trachomatis, productores de
conjuntivitis y otros cuatro serotipos responsables del tracoma, que es la infección
ocular más importante del mundo ya que existen cerca de 500 millones de
personas que padecen tracoma, de los que 5 millones están ciegos y otros sufren
algún tipo de alteración visual. La transmisión se efectúa por contacto, por ej., por
moscas, dedos o toallas contaminadas.

El tracoma es el resultado de repetidas infecciones crónicas, por falta de
higiene de manos y cara. Además de la conjuntiva, algunos serotipos de clamidias
pueden infectar el tracto urogenital, y la conjuntiva o los pulmones de los recién
nacidos pueden contagiarse durante su paso por el canal del parto infectado. En
este caso se requiere tratamiento sistémico con eritromicina.

Las infecciones por clamidias se tratan con antibióticos orales o locales
como tetraciclina (no debe utilizarse en niños) o doxiciclina y se previenen
mejorando las normas de higiene como el lavado de la cara y manos. Un estudio
en México mostró que el lavado diario de la cara redujo la incidencia de tracoma
en niños de un 48% a un 10%. El diagnóstico de laboratorio puede efectuarse
usando exudado o raspado conjuntival, utilizando técnicas de cultivos celulares en
laboratorios especializados.

Los factores de virulencia no se conocen, pero el hábitat intracelular y las
formas diferentes del ciclo vital ayudan a los microorganismos a evadir las
defensas del huésped.

41


En países desarrollados Chlamydia es responsable del 20% de los casos
de conjuntivitis. Varias bacterias como Streptococcus pneumoniae, Haemophilus
influenzae y Leptospira pueden producir conjuntivitis.

La infección por Neisseria gonorrhoeae es un riesgo neonatal durante el parto y
puede originar una conjuntivitis purulenta grave, aparece en el primero o segundo
día de vida y requiere tratamiento urgente con ceftriaxona (la resistencia a la
penicilina es muy frecuente), pero puede evitarse aplicando una pomada de
eritromicina poco después del nacimiento. Staphylococcus aureus también
produce infecciones en los recién nacidos y en los adultos. Los ojos del lactante se
pueden infectar si el microorganismo es transferido desde el cuerpo del niño o
contagiado a partir de un adulto infectado.

El uso excesivo de lentes de contacto puede provocar una reducción en la
eficacia de los mecanismos oculares de defensa, permitiendo que los patógenos
puedan llegar a establecerse, pero el riesgo más probable radica en el uso de
colirios o de soluciones de limpieza contaminados, transmitiendo directamente
diversas bacterias.

INFECCIONES BACTERIANAS DE LA CONJUNTIVA
Microorganismo Comentarios
Chlamydia trachomatis (tipos de la A-C) Causa del tracoma y con frecuencia de
ceguera.
Chlamydia trachomatis (tipos de la D-K) Causa de conjuntivitis de inclusión;
infección a través de los dedos, etc.,o
en el recién nacido, durante su paso
por el canal del parto
Neisseria gonorrhoeae Infección del recién nacido durante su
paso por el canal del parto.
Staphylococcus aureus . Causante de la infección del párpado y
supuración conjuntival en recién
nacidos.

Fig. 20
Conjuntivitis por Chlamydia es la más frecuente de conjuntivitis neonatal.(4)

42


Fig. 21 Conjuntivitis Bacteriana con exudado purulento en infecciones
producidas por Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae o
Staphylococcus aureus.(4)

3.2 INFECCIONES DE LAS ESTRUCTURAS PROFUNDAS DEL OJO.

Organismo Enfermedad Vía de infección
Virus de la rubéola Cataratas, microftalmia Infección intra útero

Citomegalovirus Coriorretinitis Infección intra útero, puede
Retinitis en el 25% de ocurrir en enfermos con SIDA
enfermos con SIDA

Pseudomonas Infección grave de las Después de traumatismos.
aeruginosa estructuras internas del Cuerpos extraños en el ojo
ojo Cirugía ocular
Colirios contaminados por
bacterias.

Toxoplasma gondii Coriorretinitis que Infección intra útero o al
(toxoplasmosis) evoluciona a ceguera ingerir ooquistes excretados
por gatos infectados o al
comer carne que contenga
quistes.

Echinococcus Distorsión del ojo por el Transmisión por huevos
granulosus crecimiento de larvas de eliminados por los perros
la tenia

Toxocara canis Coriorretinitis, ceguera Transmisión por huevos
(toxocariasis ocular) eliminados por los perros

Onchocerca volvulus Queratitis esclerosante Larvas transmitidas por la
(ceguera de los rios) (inflamación de la picadura de la mosca
en Africa y esclerótica y de la córnea) hematófaga (Simulium)

43


Centroamérica.

La sífilis congénita produce retinopatía y puede manifestarse en forma de
queratitis en épocas posteriores de la vida. La sífilis secundaria se acompaña
también de inflamación ocular

Las larvas de Toxocara canis producen una intensa respuesta inflamatoria
que pueden provocar desprendimiento de retina, El tratamiento con fármacos
antihelmínticos es beneficioso.

Las tasas de ceguera por Onchocerca volvulus pueden alcanzar hasta el
40% de la población adulta en áreas endémicas. El tratamiento antihelmíntico
reduce los niveles de microfilarias disponibles e interrumpen la transmisión, pero la
ceguera es irreversible.

Fig. 22 Tracoma. Infección activa que implica una llamativa hipertrofia folicular en
ambos párpados. Los nódulos inflamados revisten las conjuntivas engrosadas del
ojo.

3.3 DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO.

La supuración de la conjuntiva del ojo infectado se toma del fondo de saco
o del canto interno, una tinción de gram del material obtenido permite determinar
el tipo de bacterias presente.

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Si se sospecha de tracoma, los raspados de la conjuntiva deben extenderse
en un portaobjetos, secarse al aire y fijarse con metanol absoluto. Se dispone de
sistemas de detección de antígenos de clamidia y los resultados se obtienen en
una hora.

Dado que, H. influenzae son causa de conjuntivitis debe usarse agar
chocolate para su aislamiento, en este medio también se recuperan
microorganismos exigentes como N. gonorrhoeae que también causa infección.

Poner atención especial a la recuperación de P. aeruginosa de cultivo de
ojo, puede ser altamente virulenta y provocar ceguera progresiva. Bacillus subtilis,
puede causar infección en el ojo luego de un traumatismo.

IV. INFECCIONES DE LAS VÍAS RESPIRATORIAS INFERIORES.

Estas infecciones tienden a ser más graves que las de vías superiores y
pueden dividirse en agudas y crónicas.

Las infecciones agudas son: Bronquitis aguda, Bronquiolitis aguda,
Neumonía.

La gripe es una infección que en los casos graves, puede evolucionar a
bronquitis o neumonía. La tos ferina es una infección grave y aguda.

Las infecciones crónicas son: Tuberculosis, Aspergilosis, Empiema,
Absceso de pulmón e infecciones en los enfermos con fibrosis quística.

Síntomas Clínicos:

Las infecciones del tracto respiratorio inferior involucran a la tráquea y al
árbol bronquial (traqueítis, bronquitis y bronquiolitis) o al tejido pulmonar (alveolitis
y neumonía), o ambos. Los síntomas son tos y producción de esputo. En
infecciones broncopulmonares alérgicas causadas por Aspergillus y otros hongos,
en el esputo se pueden observar tapones de mucina que contienen eosinófilos y
fragmentos de hifas. Puede haber fiebre o no, dolor de pecho, ronquidos y
sonidos finos anormales que se originan dentro de las vías respiratorias y que se
aprecian en la auscultación del tórax, respiración sonora producida cuando la
laringe y las vías respiratorias se encuentran obstruidas.

Ciertas neumonías bacterianas exhiben patrones radiológicos y patológicos
de enfermedad es causada por Streptococcus pneumoniae, Klebsiella
pneumoniae o Legionella pneumophila. Klebsiella pneumoniae también produce
esputo gelatinoso, invade y causan daño del tejido y hemorragia dentro de los
alvéolos. Estos microorganismos también pueden producir bronconeumonía,
aunque Escherichia coli es la causa mas común, a menudo complicada por

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