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Cromatografía de intercambio iónico
Electroforesis                                                                                 Centrifugación             ...
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Técnicas de estudio en biología- Apoyo

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Técnicas de estudio en biología- Apoyo

  1. 1. MET: Partes Microscopio electrónico de barridoLa MET no explora superficies: el haz de electrones incidenteatraviesa la muestra y genera una sombra de la ultraestructura que escapturada en una pantalla fosforescente , ubicada en la parte inferior En el microscopio electrónico de barrido lade la columna. muestra es recubierta con una capa de metal delgado, y es barrida con electrones Cañón de electrones, que emite los electrones que chocan contra el enviados desde un cañón. Un detector mide espécimen, creando una imagen aumentada. Lentes magnéticas para crear campos que dirigen y enfocan el haz la cantidad de electrones enviados que de electrones, ya que las lentes convencionales utilizadas en los microscopios ópticos no funcionan con los electrones. arroja la intensidad de la zona de muestra, Sistema de vacío es una parte muy importante del microscopio electrónico. Debido a que los electrones pueden ser desviados por las siendo capaz de mostrar figuras en tres moléculas del aire, se debe hacer un vacío casi total en el interior de dimensiones, proyectados en una imagen de un microscopio de estas características. Placa fotográfica o pantalla fluorescente que se coloca detrás del TV. objeto a visualizar para registrar la imagen aumentada. Sistema de registro que muestra la imagen que producen los electrones, que suele ser una computadora.
  2. 2. Cromatografía de intercambio iónico
  3. 3. Electroforesis Centrifugación Las centrífugas son instrumentos que permiten someter a las muestras a intensas fuerzas que producen la sedimentación en poco tiempo de las partículas que tienen una densidad mayor que la del medio que las rodea. Tipo: – centrífugas (de pocas g a aprox. 3000 g) – super-centrífugas (o centrífugas de alta velocidad, rango de 2000 g a 20000 g) – ultracentrífugas (de 15000 g a 600000 g). En las centrífugas se suele controlar la temperatura de la cámara para evitar sobrecalentamiento de las muestras debido a la fricción. En las ultracentrífugas, la velocidad extrema (más de 100000 rpm), hace que sea necesario hacer un intenso vacío en la cámara de la centrífuga para evitar el calentamiento de rotor y muestra.Centrifugación: coeficientes de Separación por sedimentación ensedimentación Centrifugación diferencial gradiente de sacarosa El coeficiente de sedimentación de una partícula o macromolécula se calcula dividiendo su velocidad constante de sedimentación (en m/s) por la aceleración aplicada (en m/s2). El resultado tiene dimensiones de tiempo y se expresa habitualmente en svedbergs (S). Los valores de coeficientes de sedimentación no son aditivos, debido a que dependen tanto de la masa, como de la forma que tenga la molécula. Una partícula formada por la unión de dos partículas 5 S no tiene un coeficiente de sedimentación de 10 S. Por ejemplo, los ribosomas eucarióticos están formados por dos subunidades, una 60 S y otra 40 S. Sin embargo, el valor final del conjunto del ribosoma no es 100 S, sino 80.

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