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CROMATOGRAFIA 
Histórico 
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pigmentos vegetais em colunas recheadas com 
adsorventes sólidos e solventes variados. 
éter de 
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pigmentos 
pigmentos 
separados 
Cromatografia = 
kroma [cor] + graph [escrever] 
(grego) 
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“Xpомофиллы в растительном и животном мире” (Chromophils 
in plant and 
animal world) Doctor of Science dissertation,Warsaw, 1910, 380 
pp. Reprinted from 
Chromatographic adsorption analysis, selected works of M. S. 
Tswet by Academy
CROMATOGRAFIA 
Princípio Básico 
Separação de misturas por interação diferencial dos seus 
componentes entre uma FASE ESTACIONÁRIA (líquido ou 
sólido) e uma FASE MÓVEL (líquido ou gás).
CROMATOGRAFIA 
Modalidades e Classificação 
FM = Líquido 
FM = Gás 
Cromatografia 
Líquida 
Cromatografia 
Gasosa (CG) 
Em CG a FE 
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Líquida 
Cromatografia 
Gás-Sólido (CGS) 
Cromatografia 
Gás-Líquido (CGL)
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Histórico 
Presentemente: 
Vendas de equipamentos e acessórios para CG nos EUA 
estimadas em mais de US$ 750.000.000 (1995). 
1940 
1950 
1960 
“CGS” rudimentar 
CGL proposta (Martin e Synge) 
Separação de ácidos orgâni-cos por 
CGL: primeiro cro-matógrafo (Martin e 
James) 
Primeiro equipamento comer-cial (Griffin 
& George) 
Detector por Densidade de Gás 
(Martin e James) 
Detector por Ionização em Chama 
(McWillian e Dewar) 
Detector por Captura de Eletrons (Lovelock e 
Lipsky) 
Colunas Capilares (Golay)
Emily Hilder and Robert Shellie 
theAnalytical Scientist 
March 2013, 25-31
http://www.pharmainfo.net/reviews/introduction-analytical-method-development- 
pharmaceutical-formulations
t t 
R M 
2 
k 
   
Cromatograma com as medidas relacionadas à determinação de parâmetros cromatográficos 
C.H. Collins, G.L. Braga, P.S. Bonato, 
Fundamentos de Cromatografia, 4ª 
edição .,:Editora da Unicamp, 
Campinas, 2006. 
R 
M 
M 
t 
t 
t 
k 
' 
 
 
 
2 
1 
1 
' 
R 
t 
' 
R 
t 
k 
 
  
 
 
t t 
R R 
2 1 2 1,177 
  
s w w 
 
 
R R 
2 1 
 
 
   
 
 
  
 
 
 
 
1 2 
1 2 
h h 
b b 
t t 
w w 
R
Variação do volume de retenção (VM) da uracila e da tiouréia em função 
do tipo e da quantidade de modificador orgânico. Coluna: Restek Allure- 
C18 150 × 4,6 mm. VM = tM x F, onde F é a vazão da fase móvel Y. 
Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical Scientists, Wiley- 
Interscience Hoboken, 2005.
L 
N 
H  
2 2 
 
 
 
 
R 
R 
t 
t 
545 , 5 16   
 
  
 
   
 
  
 
 
h 
b 
w 
w 
N
Medida e cálculo do fator de assimetria do pico. A. Braithwaite, 
F.J.Smith, “Chromatographic Methods”, 4a. edição, Chapman and Hall, 
Londres, 1985.
Medida e cálculo do fator de alargamento do pico, segundo a 
USP
When Peaks Collide 
(Part 2) 
Oct 1, 2010 
By: John V. Hinshaw 
LCGC Europe 
Volume 23, Issue 9
Nov 1, 2010 
By: John V. 
Hinshaw 
LCGC Europe 
Volume 23, Issue 
10
Oct 1, 2009 
By: John V. Hinshaw 
LCGC Europe 
Volume 22, Issue 9
Oct 1, 2010 
By: John W. Dolan 
LCGC Europe 
Volume 23, Issue 9
Efeito da retenção, da eficiência e da seletividade sobre a 
resolução (adaptado da referencia
C 
 
B 
H  A  
 
L 
M t 
  
http://www.chromedia.org/chromedia?waxtrapp=yqegzCsHqnOxm 
OlIEcCbC&subNav=wnjedDsHqnOxmOlIEcCbCmF
R.M. Ornaf, M.W. Dong In S. Ahuja, M.W Dong (Eds) 6th Volume, 
Handbook of Pharmaceutical Analysis by HPLC, Elsevier 
Academic Press, Londres, 2005, pg 19-45.
푑푝 2휇 
퐷푀 
푣 = 
a) 
+ 푐푣 
b) 
퐻 = 퐴푑푝 + 
퐵퐷푀 
휇 
+ 퐶 
휇푑푝 
퐷푚 
ℎ = 
퐻 
푑푝 
ℎ = 푎 + 
푏 
푣 
a) Gráficos de van Deemter b) gráficos de Knox . Dm para a 
acetofenona é 1.2 × 10−9 m2/s . Fase móvel 30/70 acetonitrile/água 
temperatura: 40 ◦C, Colunas Acquity BEH C18, 1.7 m, 10 cm × 2.1mm 
ID; XBridge C18, 3.5m, 15 cm×4.6mm ID; XBridge C18, 5 m, 25 
cm×4.6mm ID. de Villiers et al. / J. Chromatogr. A 1127 (2006) 60–69
Fekete et al., 
Journal of 
Chromatography 
A 1228 (2012) 57- 
71
ΔP = (ηFL)/(K0πr2dp2) 
onde K0 é a permeabilidade específica, η 
é a viscosidade da FM, F é a vazão da 
FM, r é o raio interno da coluna e dp é o 
diâmetro médio das partículas da fase 
estacionária (FE) que recheiam a coluna
Transferência de método do HPLC para o UPLC, metodologia empregada para analisar uma formulação 
farmacêutica de composto 6 onde se encontram onze impurezas (a) método original para HPLC: coluna, 
XBridge C18 (150×4.6 mm, 5 μm); vazão: 1000 μL min−1; volume de injeção, 20 μL; tempo de gradiente, 45 
min. (b) método UHPLC transferido para HPLC: coluna, Acquity BEH C18 (50×2.1 mm, 1.7 μm); vazão, 
610 μL min−1; volume de injeção, 1.4 μL; tempo de gradiente, 5.1 min. (c) Otimização do método UHPLC: 
columa, Acquity BEH C18 (50×2.1 mm, 1.7 μm); vazão, 1000 μL min−1; volume de injeção, 1.4 μL; tempo 
total de gradiente, 3.1 min. Figura adaptada Guillarme et al. Anal Bioanal Chem (2010) 397:1069–1082.
Jul 1, 2012 
By: Fabrice Gritti, Georges Guiochon 
LCGC North America Volume 7, Issue 30
DA,B é o coeficiente de difusão de um soluto A em um solvente 
B, (cm2 s−1), MB é a massa molecular do solvente B (g mol−1), 
T é a temperatura absoluta em (K), ηB é a viscosidade do 
solvente B (cP) a uma temperatura T, VA é o volume molar do 
soluto A (cm3 g−1 mol−1) e ϕB, é o coeficiente de associação do 
soluto com a fase móvel B (adimensional) (Guillarme et al / 
Journal of Chromatography A, 1052 (2004) 39–51)
Van Deemter plots das colunas Kinetex, Ascentis Express (2.7 μm), e sub-2 μm totalmente porosas. Fase 
móvel : (A) 48% acetonitrila–52% água para o estradiol e (B) 95% acetonitrila–5% água para a ivermectina. 
Temperatura: 35 °C, injeção: 0.5 μL, analito: (A) estradiol (B) ivermectina. (E. Olah et al. / J. Chromatogr. A 
1217 (2010) 3642–3653)
Curvas H–u (curvas de van Deenter) de colunas 1.7 μm core–shell (Kinetex C18, 5 cm×2.1mm) e 1.7 μm 
totalmente porosas (Waters BEH C18, 5 cm×2.1mm). Fase móvel: 440/560/1 (para proteínas de 18.8 kDa), 
470/530/1 (para proteínas de 38.9 kDa) e 610/390/1 (para BSA, 66.3 kDa) acetonitrila/água/TFA, 
temperatura: 60 ◦C, injeção: 0.5 μl, analitos teste: proteínas. S. Fekete et al. / Journal of Pharmaceutical and 
Biomedical Analysis 54 (2011) 482–490.
Distribuição do tamanho de 
partícula. (A) Zorbax-XDB- 
1.8 μm, (B) Acquity-BEH- 
1.7 μm, (C) Kinetex-1.7 
μm, and (D) EiS-150-1.7 
μm. (E) Sobreposição de 
todas as figuras. 
Omamogho & Glennon; 
Anal. Chem. 2011, 83, 
1547-1556
Y.-F. Cheng, T.H. Walter, Z. Lu, P. Iraneta, B.A. Alden, C. 
Gendreau, U.D. Neue, J.M. Grassi, J.L. Carmody, J.E. 
O’Gara, R. Fisk, LC–GC 18 (2000) 1162-1172.
%ACN tR(NB), min k(NB) tR(PP), min k(PP) α (PP/NB) 
100 1,02 0,28 1,02 0,28 1 
90 1,04 0,3 1,04 0,3 1 
80 1,18 0,48 1,12 0,39 0,83 
70 1,38 0,73 1,27 0,59 0,81 
60 1,73 1,16 1,57 0,96 0,83 
50 2,37 1,96 2,29 1,86 0,95 
40 3,73 3,66 3,73 3,66 1 
30 6,55 7,19 8,62 9,78 1,36 
25 9,25 10,56 15,35 18,19 1,72 
20 13,46 15,83 30,75 37,44 2,37 
%MeOH tR(NB),min k(NB) tR(PP), min k(PP) α (PP/NB) 
100 1,02 0,28 1,02 0,28 1 
90 1,08 0,35 1,08 0,35 1 
80 1,25 0,56 1,25 0,56 1 
70 1,5 0,88 1,68 1,1 1,26 
60 2,02 1,53 2,73 2,41 1,58 
50 3,05 2,81 5,65 6,06 2,16 
40 5,07 5,34 14,36 16,95 3,18 
30 8,91 10,14 41 50,25 4,96 
25 11,78 13,73 74 91,5 6,67 
Tempo de retenção (tR), fator de 
retenção (k) e seletividade (α) do 
nitrobenzeno (NB) e do 
propilparabeno (PP) em função 
da percentagem e do tipo de 
modificador orgânico. Coluna: 
Symmetry C18, 3 μm, 75 × 4,6 
mm, Waters. Vazão: 1mL/min. 
Temperatura 40 °C
Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical 
Scientists, Wiley-Interscience Hoboken, 2005.
Selectivity for steroids as a function of organic mobile-phase 
component. Chromatograms showing the elution order of all eight 
congeners as a function of organic modifier with 0.1% formic acid as 
the buffer phase on YMC ODS-AQ column at ambient temperature. 
(Top panel) 25% acetonitrile, 1.5-mL/min flow rate; (middle panel) 
45% methanol, 1.2-mL/min flow rate; (bottom panel) 20% 
tetrahydrofuran, 1.5- mL/min flow rate. (Reprinted from reference 
51, with permission.) P. Zhuang, R. Thompson, and T. O’Brien, J. 
Liq. Chrom. Rel. Technol. 28 (2005), 1345–1356.
Time (min) A (%) B (%) 
0 100 0 
4 55 45 
40 0 100 
45 0 100 
48 100 0 
A. Stafiej et al. / J. Biochem. Biophys. 
Methods 69 (2006) 15–24
Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical 
Scientists, Wiley-Interscience Hoboken, 2005.
Theoretical retention versus pH profiles for acidic and a zwitterionic component. Chromatographic 
conditions: Column: 15-cm × 0.46-cm Phenoemenex Luna C18(2), 5μm; 70% 15mM K2HPO4 
adjusted pH 2–9 with phosphoric acid; 30% MeCN; flow rate, 1mL/min; temperature, 25°C. R. 
LoBrutto, A. Jones, Y. V. Kazakevich, and H. M. McNair, J. Chromatogr. A 913 (2001), 
173–187
Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical 
Scientists, Wiley-Interscience Hoboken, 2005.
R. LoBrutto, A. Jones, Y. V. Kazakevich, and H. M. McNair, J. Chromatogr. A 913 (2001), 173–187
Buszewski, B., Jezierska, M., Wełniak, M. and Berek, D. (1998), 
Survey and Trends in the Preparation of Chemically Bonded Silica 
Phases for Liquid Chromatographic Analysis. J. High Resol. 
Chromatogr., 21: 267–281.
Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical Scientists, Wiley- 
Interscience Hoboken, 2005.
http://pubs.acs.org/cen/coverstory/86/8617cover.html 
acessada em 2 de fevereiro de 2011.
Diferentes seletividades obtidas para uma mistura de compostos básicos com fases estacionárias preparadas com 
diferentes tipos de ligantes químicos sobre a mesma sílica. Colunas: 250 x 4,6 mm, dp 5 μm, todas da ACE. Fase 
móvel: metanol:tampão fosfato (pH 6; 25 mmol/L) 80:20 (v/v). Vazão: 1.5 mL/min. Identificação dos solutos: 1 = 
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Dolan, J. W.; LCGC North Am. 2007, 25, 1014
J. Layne / J. Chromatogr. A 957 (2002) 149–164
H. Engelhardt, R. Grüner, M. Schererv 
Chromatographia, 53 (2001), pp. 
S154–S161 
Separation of tricyclic antidepressants on an (a) Prontosil C18 H and (b) Prontosil C 18 
ACE/EPS column (150 mm × 4.6 mm, dp 5 μm). Mobile phase 65:35 (v/v) 
methanol:phosphate buffer (20 mM, pH 7). Peaks: 1 = uracil, 2 = protriptyline, 3 = 
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Fundamentos de lc e gc

  • 1. •http://chemkeys.com/br/2000/07/18/cromatografia-a-gas-curso-em-diapositivos/ CROMATOGRAFIA Histórico M. TSWEET (1903): Separação de misturas de pigmentos vegetais em colunas recheadas com adsorventes sólidos e solventes variados. éter de petróleo CaCO3 mistura de pigmentos pigmentos separados Cromatografia = kroma [cor] + graph [escrever] (grego) http://chemkeys.com/br/2000/07/18/cromatografia-a-gas-curso-em-diapositivos/
  • 2. “Xpомофиллы в растительном и животном мире” (Chromophils in plant and animal world) Doctor of Science dissertation,Warsaw, 1910, 380 pp. Reprinted from Chromatographic adsorption analysis, selected works of M. S. Tswet by Academy
  • 3. CROMATOGRAFIA Princípio Básico Separação de misturas por interação diferencial dos seus componentes entre uma FASE ESTACIONÁRIA (líquido ou sólido) e uma FASE MÓVEL (líquido ou gás).
  • 4. CROMATOGRAFIA Modalidades e Classificação FM = Líquido FM = Gás Cromatografia Líquida Cromatografia Gasosa (CG) Em CG a FE pode ser: Sólida Líquida Cromatografia Gás-Sólido (CGS) Cromatografia Gás-Líquido (CGL)
  • 5. CROMATOGRAFIA GASOSA Histórico Presentemente: Vendas de equipamentos e acessórios para CG nos EUA estimadas em mais de US$ 750.000.000 (1995). 1940 1950 1960 “CGS” rudimentar CGL proposta (Martin e Synge) Separação de ácidos orgâni-cos por CGL: primeiro cro-matógrafo (Martin e James) Primeiro equipamento comer-cial (Griffin & George) Detector por Densidade de Gás (Martin e James) Detector por Ionização em Chama (McWillian e Dewar) Detector por Captura de Eletrons (Lovelock e Lipsky) Colunas Capilares (Golay)
  • 6.
  • 7. Emily Hilder and Robert Shellie theAnalytical Scientist March 2013, 25-31
  • 9.
  • 10. t t R M 2 k    Cromatograma com as medidas relacionadas à determinação de parâmetros cromatográficos C.H. Collins, G.L. Braga, P.S. Bonato, Fundamentos de Cromatografia, 4ª edição .,:Editora da Unicamp, Campinas, 2006. R M M t t t k '    2 1 1 ' R t ' R t k      t t R R 2 1 2 1,177   s w w   R R 2 1              1 2 1 2 h h b b t t w w R
  • 11. Variação do volume de retenção (VM) da uracila e da tiouréia em função do tipo e da quantidade de modificador orgânico. Coluna: Restek Allure- C18 150 × 4,6 mm. VM = tM x F, onde F é a vazão da fase móvel Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical Scientists, Wiley- Interscience Hoboken, 2005.
  • 12. L N H  2 2     R R t t 545 , 5 16               h b w w N
  • 13. Medida e cálculo do fator de assimetria do pico. A. Braithwaite, F.J.Smith, “Chromatographic Methods”, 4a. edição, Chapman and Hall, Londres, 1985.
  • 14. Medida e cálculo do fator de alargamento do pico, segundo a USP
  • 15. When Peaks Collide (Part 2) Oct 1, 2010 By: John V. Hinshaw LCGC Europe Volume 23, Issue 9
  • 16. Nov 1, 2010 By: John V. Hinshaw LCGC Europe Volume 23, Issue 10
  • 17. Oct 1, 2009 By: John V. Hinshaw LCGC Europe Volume 22, Issue 9
  • 18. Oct 1, 2010 By: John W. Dolan LCGC Europe Volume 23, Issue 9
  • 19. Efeito da retenção, da eficiência e da seletividade sobre a resolução (adaptado da referencia
  • 20. C  B H  A   L M t   http://www.chromedia.org/chromedia?waxtrapp=yqegzCsHqnOxm OlIEcCbC&subNav=wnjedDsHqnOxmOlIEcCbCmF
  • 21. R.M. Ornaf, M.W. Dong In S. Ahuja, M.W Dong (Eds) 6th Volume, Handbook of Pharmaceutical Analysis by HPLC, Elsevier Academic Press, Londres, 2005, pg 19-45.
  • 22.
  • 23. 푑푝 2휇 퐷푀 푣 = a) + 푐푣 b) 퐻 = 퐴푑푝 + 퐵퐷푀 휇 + 퐶 휇푑푝 퐷푚 ℎ = 퐻 푑푝 ℎ = 푎 + 푏 푣 a) Gráficos de van Deemter b) gráficos de Knox . Dm para a acetofenona é 1.2 × 10−9 m2/s . Fase móvel 30/70 acetonitrile/água temperatura: 40 ◦C, Colunas Acquity BEH C18, 1.7 m, 10 cm × 2.1mm ID; XBridge C18, 3.5m, 15 cm×4.6mm ID; XBridge C18, 5 m, 25 cm×4.6mm ID. de Villiers et al. / J. Chromatogr. A 1127 (2006) 60–69
  • 24. Fekete et al., Journal of Chromatography A 1228 (2012) 57- 71
  • 25. ΔP = (ηFL)/(K0πr2dp2) onde K0 é a permeabilidade específica, η é a viscosidade da FM, F é a vazão da FM, r é o raio interno da coluna e dp é o diâmetro médio das partículas da fase estacionária (FE) que recheiam a coluna
  • 26. Transferência de método do HPLC para o UPLC, metodologia empregada para analisar uma formulação farmacêutica de composto 6 onde se encontram onze impurezas (a) método original para HPLC: coluna, XBridge C18 (150×4.6 mm, 5 μm); vazão: 1000 μL min−1; volume de injeção, 20 μL; tempo de gradiente, 45 min. (b) método UHPLC transferido para HPLC: coluna, Acquity BEH C18 (50×2.1 mm, 1.7 μm); vazão, 610 μL min−1; volume de injeção, 1.4 μL; tempo de gradiente, 5.1 min. (c) Otimização do método UHPLC: columa, Acquity BEH C18 (50×2.1 mm, 1.7 μm); vazão, 1000 μL min−1; volume de injeção, 1.4 μL; tempo total de gradiente, 3.1 min. Figura adaptada Guillarme et al. Anal Bioanal Chem (2010) 397:1069–1082.
  • 27.
  • 28. Jul 1, 2012 By: Fabrice Gritti, Georges Guiochon LCGC North America Volume 7, Issue 30
  • 29. DA,B é o coeficiente de difusão de um soluto A em um solvente B, (cm2 s−1), MB é a massa molecular do solvente B (g mol−1), T é a temperatura absoluta em (K), ηB é a viscosidade do solvente B (cP) a uma temperatura T, VA é o volume molar do soluto A (cm3 g−1 mol−1) e ϕB, é o coeficiente de associação do soluto com a fase móvel B (adimensional) (Guillarme et al / Journal of Chromatography A, 1052 (2004) 39–51)
  • 30. Van Deemter plots das colunas Kinetex, Ascentis Express (2.7 μm), e sub-2 μm totalmente porosas. Fase móvel : (A) 48% acetonitrila–52% água para o estradiol e (B) 95% acetonitrila–5% água para a ivermectina. Temperatura: 35 °C, injeção: 0.5 μL, analito: (A) estradiol (B) ivermectina. (E. Olah et al. / J. Chromatogr. A 1217 (2010) 3642–3653)
  • 31. Curvas H–u (curvas de van Deenter) de colunas 1.7 μm core–shell (Kinetex C18, 5 cm×2.1mm) e 1.7 μm totalmente porosas (Waters BEH C18, 5 cm×2.1mm). Fase móvel: 440/560/1 (para proteínas de 18.8 kDa), 470/530/1 (para proteínas de 38.9 kDa) e 610/390/1 (para BSA, 66.3 kDa) acetonitrila/água/TFA, temperatura: 60 ◦C, injeção: 0.5 μl, analitos teste: proteínas. S. Fekete et al. / Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis 54 (2011) 482–490.
  • 32. Distribuição do tamanho de partícula. (A) Zorbax-XDB- 1.8 μm, (B) Acquity-BEH- 1.7 μm, (C) Kinetex-1.7 μm, and (D) EiS-150-1.7 μm. (E) Sobreposição de todas as figuras. Omamogho & Glennon; Anal. Chem. 2011, 83, 1547-1556
  • 33. Y.-F. Cheng, T.H. Walter, Z. Lu, P. Iraneta, B.A. Alden, C. Gendreau, U.D. Neue, J.M. Grassi, J.L. Carmody, J.E. O’Gara, R. Fisk, LC–GC 18 (2000) 1162-1172.
  • 34. %ACN tR(NB), min k(NB) tR(PP), min k(PP) α (PP/NB) 100 1,02 0,28 1,02 0,28 1 90 1,04 0,3 1,04 0,3 1 80 1,18 0,48 1,12 0,39 0,83 70 1,38 0,73 1,27 0,59 0,81 60 1,73 1,16 1,57 0,96 0,83 50 2,37 1,96 2,29 1,86 0,95 40 3,73 3,66 3,73 3,66 1 30 6,55 7,19 8,62 9,78 1,36 25 9,25 10,56 15,35 18,19 1,72 20 13,46 15,83 30,75 37,44 2,37 %MeOH tR(NB),min k(NB) tR(PP), min k(PP) α (PP/NB) 100 1,02 0,28 1,02 0,28 1 90 1,08 0,35 1,08 0,35 1 80 1,25 0,56 1,25 0,56 1 70 1,5 0,88 1,68 1,1 1,26 60 2,02 1,53 2,73 2,41 1,58 50 3,05 2,81 5,65 6,06 2,16 40 5,07 5,34 14,36 16,95 3,18 30 8,91 10,14 41 50,25 4,96 25 11,78 13,73 74 91,5 6,67 Tempo de retenção (tR), fator de retenção (k) e seletividade (α) do nitrobenzeno (NB) e do propilparabeno (PP) em função da percentagem e do tipo de modificador orgânico. Coluna: Symmetry C18, 3 μm, 75 × 4,6 mm, Waters. Vazão: 1mL/min. Temperatura 40 °C
  • 35. Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical Scientists, Wiley-Interscience Hoboken, 2005.
  • 36.
  • 37.
  • 38. Selectivity for steroids as a function of organic mobile-phase component. Chromatograms showing the elution order of all eight congeners as a function of organic modifier with 0.1% formic acid as the buffer phase on YMC ODS-AQ column at ambient temperature. (Top panel) 25% acetonitrile, 1.5-mL/min flow rate; (middle panel) 45% methanol, 1.2-mL/min flow rate; (bottom panel) 20% tetrahydrofuran, 1.5- mL/min flow rate. (Reprinted from reference 51, with permission.) P. Zhuang, R. Thompson, and T. O’Brien, J. Liq. Chrom. Rel. Technol. 28 (2005), 1345–1356.
  • 39. Time (min) A (%) B (%) 0 100 0 4 55 45 40 0 100 45 0 100 48 100 0 A. Stafiej et al. / J. Biochem. Biophys. Methods 69 (2006) 15–24
  • 40. Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical Scientists, Wiley-Interscience Hoboken, 2005.
  • 41. Theoretical retention versus pH profiles for acidic and a zwitterionic component. Chromatographic conditions: Column: 15-cm × 0.46-cm Phenoemenex Luna C18(2), 5μm; 70% 15mM K2HPO4 adjusted pH 2–9 with phosphoric acid; 30% MeCN; flow rate, 1mL/min; temperature, 25°C. R. LoBrutto, A. Jones, Y. V. Kazakevich, and H. M. McNair, J. Chromatogr. A 913 (2001), 173–187
  • 42. Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical Scientists, Wiley-Interscience Hoboken, 2005.
  • 43. R. LoBrutto, A. Jones, Y. V. Kazakevich, and H. M. McNair, J. Chromatogr. A 913 (2001), 173–187
  • 44.
  • 45. Buszewski, B., Jezierska, M., Wełniak, M. and Berek, D. (1998), Survey and Trends in the Preparation of Chemically Bonded Silica Phases for Liquid Chromatographic Analysis. J. High Resol. Chromatogr., 21: 267–281.
  • 46. Y. Kazakevich, R. Lobrutto, HPLC for Pharmaceutical Scientists, Wiley- Interscience Hoboken, 2005.
  • 48. Diferentes seletividades obtidas para uma mistura de compostos básicos com fases estacionárias preparadas com diferentes tipos de ligantes químicos sobre a mesma sílica. Colunas: 250 x 4,6 mm, dp 5 μm, todas da ACE. Fase móvel: metanol:tampão fosfato (pH 6; 25 mmol/L) 80:20 (v/v). Vazão: 1.5 mL/min. Identificação dos solutos: 1 = norefedrina; 2 = nortriptilina; 3 = tolueno; 4 = amitriptilina; 5 imipramina Dolan, J. W.; LCGC North Am. 2007, 25, 1014
  • 49. J. Layne / J. Chromatogr. A 957 (2002) 149–164
  • 50. H. Engelhardt, R. Grüner, M. Schererv Chromatographia, 53 (2001), pp. S154–S161 Separation of tricyclic antidepressants on an (a) Prontosil C18 H and (b) Prontosil C 18 ACE/EPS column (150 mm × 4.6 mm, dp 5 μm). Mobile phase 65:35 (v/v) methanol:phosphate buffer (20 mM, pH 7). Peaks: 1 = uracil, 2 = protriptyline, 3 = nortriptyline, 4 = doxepine, 5 = imipramine, 6 = amitryptyline, 7 = trimipramine, 8 = clomipramine.