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TOMA DE MUESTRAS
OBJETIVO

Garantizar una adecuada toma de muestra
con el fin de apoyar correctamente el
diagnostico, tratamiento y seguimiento de
los pacientes,
TOMAR
Ident.
ANTICOAGULANTES Y TUBOS USADOS EN LA
   RECOLECCIÓN DE MUESTRAS SANGUÍNEAS
EDTA: (ETILEN – DIAMINO – TETRA – ACETATO). Es un compuesto
que evita que la sangre se coagule mediante la absorción de los
iones de calcio. Por esta razón se recomienda para el cuadro
hemático, (Hemograma)

CITRATO DE SODIO: Generalmente en concentraciones al 3.8 % y se
utiliza comúnmente para determinar actividad de protrombina y
estudios de coagulación. (T.P – T.P.T)

HEPARINA: Se utiliza tanto en algunos estudios de rutina como
especializados. Su presentación puede incluir heparina con
concentraciones de sodio o litio.
Los tubos deben mezclarse inmediatamente, una vez
que la sangre ha entrado en ellos. Invertir suavemente
(10 – 15 veces) o colocarlos en rotores especiales, para
           así obtener mezclas homogéneas.


Tubo seco
Sin anticoagulante
EXAMENES – EDTA
  SECCION HEMATOLOGIA
CUADRO HEMATICO O HEMOGRAMA
HEMATOCRITO (HTO)
HEMOGLOBINA (HB)
RECUENTO DE PLAQUETAS
RECUENTO DE LEUCOCITOS
RETICULOCITOS
SICLEMIA
VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN GLOBULAR (VSG)
HEMOCLASIFICACIÓN
HEMOPARÁSITO
EXTENDIDO DE SANGRE PERIFÉRICA (ESP)
HEMOGLOBINA GLICOSILADA
SECCION COAGULACION
        CITRATO SODIO 3.8%


• TP (TIEMPO DE PROTROMBINA)
• TPT (TIEMPO DE TROMBOPLASTINA
  PARCIAL ACTIVADA)
SECCION QUIMICA CLINICA
       TUBO SECO SIN ANTICOAGULANTE

• ÁCIDO ÚRICO                • ALBÚMINA
• AMILASA                    • CALCIO
• BILIRRUBINA TOTAL Y
  DIRECTA                    • FÓSFORO
• COLESTEROL TOTAL           • POTASIO
• TRIGLICÉRIDOS              • SODIO
• HDL COLESTEROL             • CLORO
• CREATININA
                             • LDH
• DEPURACIÓN DE CREATININA
                               (DESHIDROGENASA
• UREA- BUN
                               LÁCTICA)
• GLUCOSA
• PROTEÍNAS TOTALES          • CK (NAC activado) Y
• TRANSAMINASAS: GOT Y GPT     CK-MB
• FOSFATASA ALCALINA: ALP
INMUNOLOGIA Y HORMONAS
• PRUEBA DE EMBARAZO
  (GCH)
• HORMONA ESTIMULANTE DE
  LA TIROIDES (TSH)
• ANTÍGENO ESPECÍFICO DE LA
  PRÓSTATA (PSA)
• PROLACTINA
• VDRL
• VIH
• ASTO
• PROTEÍNA C REACTIVA (PCR)
• FACTOR REUMATOIDEO (RA)
• ANTÍGENOS FEBRILES
CAUSAS DE ERROR EN LA EXTRACCIÓN SANGUÍNEA
1. Empleo de anticoagulantes inadecuados o en proporción errónea

2. Colocar la cinta elástica durante un tiempo largo antes de practicar la
punción venosa

3. Extracción sanguínea excesivamente lenta

4. Introducción de la sangre en el tubo con la aguja puesta en la jeringa

5. Agitación excesiva de la mezcla sangre-anticoagulante

6. Errores de identificación del paciente

7. Llenado insuficiente de los tubos al vacío que tienen una proporción
determinada de anticoagulante

8. Presión excesiva del dedo para conseguir la salida de cantidad escasa de
sangre
OTRAS MUESTRAS
ORINA: Micción espontánea, sonda, punción suprapúbica.

Frasco limpio y seco. 25-30 ml aprox.



MATERIA FECAL:        Recipiente limpio, debe tenerse cuidado de no
mezclarse con orina

Se recomienda la primera materia fecal de la mañana.

enviar rápidamente al laboratorio especialmente si son líquidas o
semilíquidas.
MUESTRAS DEL TRACTO RESPIRATORIO INFERIOR


EXPECTORACIÓN
En las condiciones habituales de la clínica diaria, no es una
muestra representativa de la situación
existente en el tracto respiratorio inferior por su mezcla con
secreciones procedentes de todo el árbol traqueo-bronquial.


No obstante es un método fácil y rápido cuya utilidad o
relación entre resultado obtenido y verdadera etiología
depende en gran
medida de su correcta obtención, control de calidad antes de
iniciar su procesamiento.

MATERIAL NECESARIO.
• - Frasco estéril de boca ancha y hermético.
• - Suero fisiológico estéril y nebulizador ocasionalmente.

TÉCNICA O METODOLOGÍA DE OBTENCIÓN DE LA MUESTRA.
• - Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución
  salina.
• - Obtener el esputo tras una expectoración profunda luego
  de un esfuerzo de tos.
• - La muestra debe provenir del sector bajo del tracto
  respiratorio.
• La saliva no sirve para realizar este estudio.
De no producirse expectoración espontánea, puede
inducirse el esputo con nebulizaciones de suero
fisiológico estéril tibio (15 ml durante 10 minutos).

VOLUMEN MÍNIMO.
• De 2 a 10 ml, si es posible.

TRANSPORTE Y CONSERVACION.
• Envío inmediato al laboratorio (no superior a 2
  horas).
HERIDAS SUPERFICIALES Y ABSCESOS ABIERTOS.

MATERIAL NECESARIO.
• - Suero fisiológico.
• -Jeringa y aguja estériles.
• -Recipientes estériles con tapa de rosca.
• -Hisopos con medio de transporte tipo Stuart-Amies.

 TECNICA.
• - Lavar con suero fisiológico estéril cuidadosamente la superficie de
   la herida para retirar la flora colonizante.

• - Recoger el pus mediante jeringa y aguja, aspirando
  preferentemente de zonas profundas.

• - Cuando los procedimientos anteriores no sean factibles podrá
  efectuarse un frotis de los bordes de la herida con un hisopo.
NUMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN.

• Para muestras líquidas se intentara obtener 1-10 ml.
• En el resto de las ocasiones se enviará la máxima
  cantidad posible.

 TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN.
• El envío al laboratorio debe ser inmediato. Se utilizará
   para el envío tubos estériles con tapa rosca.


OBSERVACIONES. Es importante especificar sitio
anatómico de donde se realizó la toma de muestra.
GRACIAS POR SU
  ATENCIÓN

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Toma de muestra

  • 2. OBJETIVO Garantizar una adecuada toma de muestra con el fin de apoyar correctamente el diagnostico, tratamiento y seguimiento de los pacientes,
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  • 17. ANTICOAGULANTES Y TUBOS USADOS EN LA RECOLECCIÓN DE MUESTRAS SANGUÍNEAS EDTA: (ETILEN – DIAMINO – TETRA – ACETATO). Es un compuesto que evita que la sangre se coagule mediante la absorción de los iones de calcio. Por esta razón se recomienda para el cuadro hemático, (Hemograma) CITRATO DE SODIO: Generalmente en concentraciones al 3.8 % y se utiliza comúnmente para determinar actividad de protrombina y estudios de coagulación. (T.P – T.P.T) HEPARINA: Se utiliza tanto en algunos estudios de rutina como especializados. Su presentación puede incluir heparina con concentraciones de sodio o litio.
  • 18. Los tubos deben mezclarse inmediatamente, una vez que la sangre ha entrado en ellos. Invertir suavemente (10 – 15 veces) o colocarlos en rotores especiales, para así obtener mezclas homogéneas. Tubo seco Sin anticoagulante
  • 19. EXAMENES – EDTA SECCION HEMATOLOGIA CUADRO HEMATICO O HEMOGRAMA HEMATOCRITO (HTO) HEMOGLOBINA (HB) RECUENTO DE PLAQUETAS RECUENTO DE LEUCOCITOS RETICULOCITOS SICLEMIA VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN GLOBULAR (VSG) HEMOCLASIFICACIÓN HEMOPARÁSITO EXTENDIDO DE SANGRE PERIFÉRICA (ESP) HEMOGLOBINA GLICOSILADA
  • 20. SECCION COAGULACION CITRATO SODIO 3.8% • TP (TIEMPO DE PROTROMBINA) • TPT (TIEMPO DE TROMBOPLASTINA PARCIAL ACTIVADA)
  • 21. SECCION QUIMICA CLINICA TUBO SECO SIN ANTICOAGULANTE • ÁCIDO ÚRICO • ALBÚMINA • AMILASA • CALCIO • BILIRRUBINA TOTAL Y DIRECTA • FÓSFORO • COLESTEROL TOTAL • POTASIO • TRIGLICÉRIDOS • SODIO • HDL COLESTEROL • CLORO • CREATININA • LDH • DEPURACIÓN DE CREATININA (DESHIDROGENASA • UREA- BUN LÁCTICA) • GLUCOSA • PROTEÍNAS TOTALES • CK (NAC activado) Y • TRANSAMINASAS: GOT Y GPT CK-MB • FOSFATASA ALCALINA: ALP
  • 22. INMUNOLOGIA Y HORMONAS • PRUEBA DE EMBARAZO (GCH) • HORMONA ESTIMULANTE DE LA TIROIDES (TSH) • ANTÍGENO ESPECÍFICO DE LA PRÓSTATA (PSA) • PROLACTINA • VDRL • VIH • ASTO • PROTEÍNA C REACTIVA (PCR) • FACTOR REUMATOIDEO (RA) • ANTÍGENOS FEBRILES
  • 23. CAUSAS DE ERROR EN LA EXTRACCIÓN SANGUÍNEA 1. Empleo de anticoagulantes inadecuados o en proporción errónea 2. Colocar la cinta elástica durante un tiempo largo antes de practicar la punción venosa 3. Extracción sanguínea excesivamente lenta 4. Introducción de la sangre en el tubo con la aguja puesta en la jeringa 5. Agitación excesiva de la mezcla sangre-anticoagulante 6. Errores de identificación del paciente 7. Llenado insuficiente de los tubos al vacío que tienen una proporción determinada de anticoagulante 8. Presión excesiva del dedo para conseguir la salida de cantidad escasa de sangre
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  • 25. OTRAS MUESTRAS ORINA: Micción espontánea, sonda, punción suprapúbica. Frasco limpio y seco. 25-30 ml aprox. MATERIA FECAL: Recipiente limpio, debe tenerse cuidado de no mezclarse con orina Se recomienda la primera materia fecal de la mañana. enviar rápidamente al laboratorio especialmente si son líquidas o semilíquidas.
  • 26. MUESTRAS DEL TRACTO RESPIRATORIO INFERIOR EXPECTORACIÓN En las condiciones habituales de la clínica diaria, no es una muestra representativa de la situación existente en el tracto respiratorio inferior por su mezcla con secreciones procedentes de todo el árbol traqueo-bronquial. No obstante es un método fácil y rápido cuya utilidad o relación entre resultado obtenido y verdadera etiología depende en gran
  • 27. medida de su correcta obtención, control de calidad antes de iniciar su procesamiento. MATERIAL NECESARIO. • - Frasco estéril de boca ancha y hermético. • - Suero fisiológico estéril y nebulizador ocasionalmente. TÉCNICA O METODOLOGÍA DE OBTENCIÓN DE LA MUESTRA. • - Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución salina. • - Obtener el esputo tras una expectoración profunda luego de un esfuerzo de tos. • - La muestra debe provenir del sector bajo del tracto respiratorio.
  • 28. • La saliva no sirve para realizar este estudio. De no producirse expectoración espontánea, puede inducirse el esputo con nebulizaciones de suero fisiológico estéril tibio (15 ml durante 10 minutos). VOLUMEN MÍNIMO. • De 2 a 10 ml, si es posible. TRANSPORTE Y CONSERVACION. • Envío inmediato al laboratorio (no superior a 2 horas).
  • 29. HERIDAS SUPERFICIALES Y ABSCESOS ABIERTOS. MATERIAL NECESARIO. • - Suero fisiológico. • -Jeringa y aguja estériles. • -Recipientes estériles con tapa de rosca. • -Hisopos con medio de transporte tipo Stuart-Amies. TECNICA. • - Lavar con suero fisiológico estéril cuidadosamente la superficie de la herida para retirar la flora colonizante. • - Recoger el pus mediante jeringa y aguja, aspirando preferentemente de zonas profundas. • - Cuando los procedimientos anteriores no sean factibles podrá efectuarse un frotis de los bordes de la herida con un hisopo.
  • 30. NUMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN. • Para muestras líquidas se intentara obtener 1-10 ml. • En el resto de las ocasiones se enviará la máxima cantidad posible. TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN. • El envío al laboratorio debe ser inmediato. Se utilizará para el envío tubos estériles con tapa rosca. OBSERVACIONES. Es importante especificar sitio anatómico de donde se realizó la toma de muestra.
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  • 32. GRACIAS POR SU ATENCIÓN