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Stevia. workshop ciat-sept-2014

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Stevia. workshop ciat-sept-2014

  1. 1. MANEJO BIOLOGICO DEL CULTIVO DE LA STEVIA PROPUESTA ORGANICA SANOPLANT Carlos Anibal Montoya M I.A. M.Sc Gerente Sanoplant
  2. 2. CAUSALES DE DISTURBIOS
  3. 3. MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS RESEÑA HISTORICA Empresa que nace desde el año 2002 en el Valle del Cauca, en la ciudad de Palmira, buscando producir hongos entomopatogenos que contribuyeran a implementar un sistema de agricultura Biologica u Organica, permitiendo : 1.Capacitar a los Agricultores en el conocimiento y aplicación de Hongos y Bacterias beneficas para una agricultura limpia. 2.Manejo, uso y evaluación en campo. . Empresa que brinda los servicios de producción, desarrollo, asistencia técnica y transferencia de tecnología a partir del empleo de hongos entomopatógenos y antagonistas para el control biológico de artrópodos en diferentes explotaciones Agricolas y Pecuarias. Actualmente cuenta con una colección de cepas de varios géneros de hongos y bacterias: -Beauveria -Paecilomyces -Metarhizium -Trichoderma - Nomoraea - Gliocladium -Lecanicillium - Bacillus -Pseudomonas -Azotobacter -Azospirillium
  4. 4. INVERNADEROS Y CASAS DE MALLAS-CIAT
  5. 5. CASAS DE MALLA
  6. 6. Figura 2. Plantas de Stevia
  7. 7. AVANCE EN LA IDENTIFICACIÓN DE ORGANISMOS PATÓGENOS ASOCIADOS A STEVIA (Muestra de mayo 06, 2013) Figura 1. Lesiones en plántulas
  8. 8. Figura 4. Corte longitudinal en el tallo
  9. 9. Figura 7. Lesiones en las inflorescencias
  10. 10. Clorosis Enrojecimiento Necrosis Figura 5. Lesiones foliares
  11. 11. Figura 3. Lesiones radicales
  12. 12. 3 4 2
  13. 13. 7 8 9 11 10
  14. 14. Figura 6. Chancros en las yemas terminales
  15. 15. Figura 17. Lesiones en hojas
  16. 16. DIAGNOSTICO FITOSANITARIO
  17. 17. a b c d e ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO DE SUELO; A. ADICIÓN DE 90 ML DE ADE EN BEAKER 10 G DE SUELO; B. AGITACIÓN DURANTE 10 MIN; C. DILUCIÓN DE LA SUSPENSIÓN DE SUELO; E. SIEMBRA
  18. 18. SELECCIÓN DEL TEJIDO VEGETAL PARA LA SIEMBRA EN MEDIOS DE CULTIVOS
  19. 19. DESINFESTACIÓN Y SIEMBRA DE MUESTRAS DE STEVIA COLONIAS CRECIDAS A PARTIR DE YEMAS TERMINALES EN PDA
  20. 20. ESTRUCTURAS EN HOJAS DE Stevia 5 6
  21. 21. 12 13 14 15 16
  22. 22. 17 18
  23. 23. Fusarium sp. ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A YEMAS TERMINALES EN PDA Fusarium sp. Posible Alternaria sp. Nematodo ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A YEMAS TERMINALES EN CÁMARA HÚMEDA
  24. 24. Posible Alternaria sp. Posible Alternaria sp. Fusarium sp. ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A INFLORESCENCIAS EN PDA
  25. 25. Posible Alternaria sp. Cladosporiumsp. Fusarium sp. ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A INFLORESCENCIAS EN CÁMARA HÚMEDA Fusarium sp. Fusarium sp. ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A HOJAS EN
  26. 26. Cladosporium sp. PosibleAlternariasp. Curvulariasp. Posible Phaeophleospora Figura 15. Estructuras de los microorganismos asociados a hojas en cámara húmeda
  27. 27. Posible Trichoderma sp. Posible Trichoderma sp. Posible Trichoderma sp. ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A TALLOS Y RAICES EN PDA
  28. 28. Nematodo Fusarium sp. Cladosporium sp. ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A TALLOS Y RAICES EN CÁMARA HÚMEDA
  29. 29. MUESTRAS DE STEVIA TRAÍDAS PARA CLÍNICA Y DIAGNOSIS
  30. 30. MICROORGANISMOS ASOCIADOS A LAS HOJAS DE LAS MUESTRAS DE STEVIA
  31. 31. MICROORGANISMO EN TALLO DE STEVIA
  32. 32. MICROORGANISMO EN PLANTAS DE MAYOR AFECTACIÓN
  33. 33. a b c d e f PROCEDIMIENTO PARA DETERMINAR LA PRESENCIA DE NEMATODOS EN LA MUESTRA
  34. 34. NEMATODO LESIONADOR DE RAICES a b Figura 10. Nematodo asociado a raíces de Stevia. a. cabeza; b. cola Pratylenchus spp
  35. 35. AÑUBLO SUREÑO Sclerotium rofsi Esclerocios en la base del tallo de las muestras
  36. 36. PROTOCOLO DE DESISFESTACION DE SCLEROCIOS DEL ANUBLO SUREÑO
  37. 37. PRUEBA DE ANTAGONISMO TRCHOPLANT vs Sclerotium rofsi
  38. 38. PRUEBAS DE ENFRENTAMIENTO ENTRE LOS PATOGENOS VS LOS ORGANISMOS BENEFICOS
  39. 39. ANTOGONISMO BUSCANDO POTENCIALIZAR LAS CEPAS
  40. 40. Día 0 Día 3 Día 4 Día 5 TestigoDía 6 Día 0 Día 3 Día 4 Día 5 Testigo Día 6 PRUEBA DE ANTAGONISMO PARA POTENCIALIZAR CEPAS ESPECIFICAS
  41. 41. MODOS DE ACCION DE TRICHOPLANT Parasitism o
  42. 42. CONTROL DE ENFERMEDADES
  43. 43. Trichoderma harzianum, bioregulador del hongo patógeno Fusarium oxysporum en STEVIA y otros cultivos
  44. 44. SISTEMA VASCULAR DE PLANTA ASINTOMÁTICA Y DE UNA PLANTA ENFERMA
  45. 45. LESIONES EN RAMAS
  46. 46. Dilución 1x10-2 Dilución 1x10-3 COLONIAS DE HONGOS DEL SUELO DE STEVIA
  47. 47. a b c d Figura 13. Microorganismos de mayor presencia en el suelo. a. y b. Aspergillus sp.; c. y d. Cladosporium sp. Figura 14. Penicillium sp.
  48. 48. Sclerotium sp.Fusarium sp. Figura 15. Microorganismos asociados al suelo de Stevia
  49. 49. Figura 16. Bacterias en el suelo de Stevia Figura 17. Microorganismos crecidos a partir de los tejidos en medio de cultivo
  50. 50. b ca Figura 18. Microorganismos asociados a las hojas de Stevia
  51. 51. Figura 19. Fusarium sp. crecido en los tallos de Stevia b da c Figura 20. Microorganismos asociados a la raíz
  52. 52. PLANTULACION BAJO CONDICIONES DE INVERNADERO
  53. 53. PLANTULAS CON DISTURBIOS PATOLOGICOS
  54. 54. SIGNOS EN LAS PLANTULAS
  55. 55. PERDIDA DE SITIOS DENTRO DE LA BANDEJAS
  56. 56. PLANTULAS CON PROBLEMAS SANITARIOS
  57. 57. ESTRUCTURA DISEÑADA PARA INMERSION DE BANDEJAS PARA LOS TRATAMIENTOS BIOLOGICOS
  58. 58. SANIDAD EN LA PLANTULACION
  59. 59. BOMBEO DE AGUA PARA EL FERTIRIEGO
  60. 60. APLICACIÓN DE PRODUCTOS VIA FERTIRIEGO
  61. 61. AÑUBLO SUREÑO Sclerothium rofsi
  62. 62. USO DE COBERTURA CON MATERIA ORGANICA
  63. 63. USO DE COBERTURA CON MATERIA ORGANICA
  64. 64. ENTUBADO CON PLASTICO
  65. 65. SISTEMA DE SIEMBRA CON PLASTICO
  66. 66. PLANTULACION CON BASE EN CONTROL BIOLOGICO
  67. 67. Fusarium spp. Phytium spp. Colletotrichum sppPhytophthora sp. Botrytis sp Rhizoctonia solani Armillaria spp. Sclerotium rolfsii Control de Patogenos Trichoderma sp
  68. 68. T. koningii: 70-90% de control Aguacate- Phytophthora parasitica 80% Aguacate- Cilindrocladium sp- 80 % Citricos- Rhizoctonia solani - 90%  Guanabana-Pythium splendens: 85%  Mango– Colletotrichum gloesporioides: 82% Lulo - Sclerotinia sclerotiorum: 70% Papaya - Rhizoctonia solani: 90% Papaya – Fusarium oxysporum: 70% Mora – Botrytis cinerea: 70% Tomate de arbol– Oidium sp.: 90% PATÓGENOS DEL SUELO
  69. 69. Trichoderma Sclerotium
  70. 70. CONTROL BIOLOGICO  Trichoderma harzianum ( Pythium, Rhizoctonia, Sclerothium)  Trichoderma viridae ( Botritys, Sclerothinia, Gaemannomyces sp) Trichoderma hamatum ( Rosellinia, Ceratocystis, Sclerotinia) Trichoderma koningii ( Fusarium, Pythium, Verticillium) Trichoderma lignorum ( Phytophthora parasitica , Phytophthora capsici) Trichoderma polisporum (Cylindrocladium, Sarocladium sp)
  71. 71. INTERACCIONES ANTAGONICAS -Antibiosis -Competencia -Parasitismo -Predación -Hipovirulencia -Inducción de defensas en el hospedero (IRS)
  72. 72. TRICHODERMA VS MAYOR CRECTO
  73. 73. TRICHODERMA PROMOTOR DE CRECTO
  74. 74. Día 5 a 8 (p< 0,0001) Cepas 41-TSM-1, T. viride y Trichoplant® inhibieron completamente el crecimiento de la bacteria, comparados con el testigo que presentó 6.820 UFC/mL In vitro Tratamientos efectivos 41-TSM-1 T. viride Trichoplant ® Esterilizados por filtración o autoclavado En las mismas concentraciones 0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 1 2 3 4 5 6 7 8 UFCRs7/mL Días de evaluación Testigo aboluto 19 TSM 3A 47 PDA 3A 41 TSM 1 Agroguard® T. viride Trichoplant® Agroguard® autoclavado 41 TSM 1 autoclavado Trichoplant® autoclavado Testigo R. solanacearum 41-TSM-1 T. viride Trichoplant ®
  75. 75. Cepas 47-PDA-3A y 19-TSM-3A no presentan ningún efecto de inhibición de R. solanacearum, ya que igualaron y superaron al testigo (2.920 UFC/mL). Tratamientos efectivos T. viride 41-TSM-1 Agroguard ® Trichoplant ® Testigo R. solanacearum 47-PDA-3A 0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000 10000 1 2 3 4 5 6 7 8 UFCRs78/mL Días de evaluación Testigo 19 TSM 3A 47 PDA 3A 41 TSM 1 Agroguard® T. viride Trichoplant® Agroguard® autoclavado 41 TSM 1 autoclavado Trichoplant® autoclavado Día 5 a 8 (p< 0,0001)
  76. 76. Raíz Rizoplano Rizosfera Vello radicular Fermentación Biorreactor BACTERIAS PROMOTORAS DE CRECIMIENTO RIZOBACTERIAS
  77. 77. BIOFERTILIZACION Y CONTROL DE LEPIDOPTEROS Y ENFERMEDADES PGRP
  78. 78. BIOMASA AEREA Y RADICULAR
  79. 79. MALFORMACIÓN DE LAS RAICES DE LAS PALNTAS DE STEVIA EN LAS MUESTRAS
  80. 80. DESARROLLO BAJO CONDICIONES DE CAMPO
  81. 81. SANIDAD Y ALTA PRODUCTIVIDAD
  82. 82. CAMPOS CON ALTA SANIDAD Y EXCELENTE COMPORTAMIENTO PRODUCTIVO
  83. 83. DATOS DE CONTACTO: Telefax: (092) 2752023 – (312) 866 5646 info@sanoplant.com.co www.sanoplant.com.co

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