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RESULTADOS
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AGUA
Fase lag (h)
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UFC/ml/h)
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CONCLUSIONES
•  Si bien no se observa influencia de la población
probiótica sobre el crecimiento de las cepas estudiadas,
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CONCLUSIONES
•  Reconstitución a 70ºC de los PPL (FAO/OMS):
Importante efecto lesivo sobre Cronobacter sakazakii
y Salmone...
CONCLUSIONES
Reconstitución de los PPL a 40-50ºC:
• No reduce el riesgo de infección por ninguna de las cepas
en ninguna d...
MUCHAS GRACIAS
EVA MARÍA HERNÁNDEZ QUESADA
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  1. 1. EVALUACIÓN DEL EFECTO DE LA TEMPERATURA DE RECONSTITUCIÓN Y DE SU MANTENIMIENTO A 20 Y 30ºC EN EL CRECIMIENTO DE SALMONELLA TYPHIMURIUM Y CRONOBACTER SAKAZAKII EN PREPARADOS EN POLVO PARA LACTANTES. UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE BARCELONA FACULTAD DE VETERINARIA DEPARTAMENTO DE CIENCIA ANIMAL Y DE LOS ALIMENTOS Hernández-Quesada, E.M.; Roig-Sagués, A.X.; Hernández-Herrero, M.; Centre Especial de Recerca Planta de Tecnología dels Aliments (CERPTA), XiT, Departament de Ciencia Animal i dels Aliments, Facultat de Veterinària, Edifici V, Universitat Autònoma de Barcelona, 08193 Bellaterra (Barcelona), Spain. OCTUBRE 2012
  2. 2. OBJETIVO Controversia   medidas   seguridad   preparación  y   uso     Prác6cas   deficientes   en  el   ámbito   domés6co   Gravedad   infecciones     Evaluar el efecto sobre el crecimiento de las cepas implicadas de: -  temperatura del agua de reconstitución, -  temperatura de conservación -  composición del PPL
  3. 3. MATERIALES Y MÉTODOS LECHE POLVO SIN PROBIÓTICOS 20º 30º 70º50º40º 60º 2-4-6-8 HRS 30º Salmonella Typhimurium CECT 772 Cronobacter sakazakii DSM 4485 20º 24-72 HRS / 37ºC LECHE POLVO CON PROBIÓTICOS FÓRMULA ESPECIAL PROTEÍNA SOJA MATRIZ ALIMENTARIA Tª RECONSTITUCIÓN AGUA DESTILADA ESTÉRIL INOCULACIÓN CEPAS Ci 50-100 UFC/ml Tª CONSERVACIÓN MUESTRAS ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO INCUBACIÓN RECUENTO Y MODELIZACIÓN T=0: ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO MEDIO CROMOGÉNICO ESPECÍFICO ANÁLISIS RESULTADOS MONITORIZACIÓN T
  4. 4. RESULTADOS LECHE SOJA T AMB T AGUA Fase lag (h) µ máx (log UFC/ml/h) Fase lag (h) µ máx (log UFC/ml/h) 20 20 4.70±1.06 a 0.34±0.12 b 3.81±0.83 abc 0.21±0.03 cde 30 3.89±0.76 ab 0.30±0.06 b* 4.23±0.62 ab 0.17±0.06 cde* 40 2.88±0.70 cd* 0.28±0.04 b 5.04±1.25 a* 0.28±0.09 bcd 50 3.40±1.33 bc 0.31±0.06 b* - 0.08±0.07 de* 60 - 0.02±0.09 c - -0.29±0.43 f 70 - -0.03±0.05 c - -0.09±0.03 ef 30 20 2.68±0.32 cde 0.55±0.05 a* 3.38±0.76 bc 0.69±0.11 a* 30 2.43±0.61 cdef 0.66±0.05 a 2.81±0.48 c 0.59±0.06 ab 40 1.80±0.23 ef* 0.63±0.06 a 2.97±0.38 bc* 0.62±0.01 ab 50 1.46±0.24 f* 0.65±0.04 a 2.53±0.33 c* 0.58±0.07 ab 60 1.90±0.26 def* 0.66±0.06 a* 2.84±0.17 c* 0.48±0.13 abc* 70 3.41±1.22 bc 0.34±0.46 b 2.84 c 0.32±0.38 bcd ! LECHE SOJA T AMB T AGUA Fase lag (h) µ máx (log UFC/ml/h) Fase lag (h) µ máx (log UFC/ml/h) 20 20 2.55±1.41 a 0.34±0.11 b 3.62±1.98 a 0.32±0.10 bc 30 2.70±0.74 a 0.40±0.14 b 3.19±0.33 a 0.25±0.07 cd 40 1.43±0.29 bc* 0.47±0.06 b* 2.35±0.84 a* 0.25±0.06 cd* 50 1.55±0.17 bc* 0.44±0.08 b 2.82±0.56 a* 0.25±0.04 cd 60 2.02±0.59 abc 0.41±0.13 b* 2.57±0.74 a 0.19±0.10 cd* 70 - d* 0.01±0.12 c - a* -0.04±0.30 d 30 20 2.60±0.25 a* 0.66±0.09 a 3.24±0.51 a* 0.67±0.14 a 30 2.20±0.45 ab* 0.67±0.11 a 3.13±0.88 a* 0.69±0.20 a 40 1.27±0.39 c* 0.75±0.09 a* 2.30±0.69 a* 0.56±0.07 ab* 50 1.32±0.45 c 0.75±0.09 a* 1.88±0.39 a 0.58±0.12 ab* 60 1.57±0.31 bc* 0.82±0.10 a* 2.25±0.33 a* 0.60±0.18 ab* 70 4.36±1.49 d 0.79±0.33 a* 3.59 a 0.27±0.24 c* ! Salmonella Typhimurium CECT 722 Cronobacter sakazakii DSM 4485
  5. 5. RESULTADOS (a) (b) c) (d) -­‐1 0 1 2 3 4 5 6 0 2 4 6 8 log  ufc/ml Tiempo  (h) Salmonella  typhimurium  CECT 722 -­‐ LECHE  T  AMB  20 20 30 40 50 60 70 0 1 2 3 4 5 6 0 2 4 6 8 log  ufc/ml Tiempo  (h) Salmonella  typhimurium  CECT  722  -­‐ SOJA  T  AMB  30 20 30 40 50 60 70 -­‐1 0 1 2 3 4 5 6 0 2 4 6 8 log  ufc/ml Tiempo  (h) Salmonella  typhimurium  CECT  722  -­‐ SOJA  T  AMB  20 20 30 40 50 60 70 0 1 2 3 4 5 6 0 2 4 6 8 log  ufc/ml Tiempo  (h) Salmonella  typhimurium  CECT 722 -­‐ LECHE  T  AMB  30 20 30 40 50 60 70
  6. 6. RESULTADOS (a) (b) c) (d) 0 1 2 3 4 5 6 7 0 2 4 6 8 log  ufc/ml Tiempo  (h) Cronobacter  sakazakii  DSM  4485  -­‐ LECHE  TAMB  20 20 30 40 50 60 70 0 1 2 3 4 5 6 7 0 2 4 6 8 log  ufc/ml Tiempo  (h) Cronobacter  sakazakii  DSM  4485  -­‐ LECHE  TAMB  30 20 30 40 50 60 70 0 1 2 3 4 5 6 7 0 2 4 6 8 log  ufc/ml Tiempo  (h) Cronobacter  sakazakii  DSM  4485  -­‐ SOJA  TAMB  20 20 30 40 50 60 70 0 1 2 3 4 5 6 7 0 2 4 6 8 log  ufc/ml Tiempo  (h) Cronobacter  sakazakii  DSM  4485  -­‐ SOJA  TAMB  30 20 30 40 50 60 70
  7. 7. RESULTADOS (a) 15 19 23 27 31 35 39 43 47 51 55 59 63 67 0 1 2 3 4 5 6 7 8 Temperatura  (ºC) Tiempo  (hrs) TEMPERATURA  AMBIENTE  20ºC 20 30 40 50 60 70 20 30 40 50 60 70
  8. 8. RESULTADOS (b) 15 19 23 27 31 35 39 43 47 51 55 59 63 0 1 2 3 4 5 6 7 8 Temperatura  (ºC) Tiempo  (hrs) TEMPERATURA  AMBIENTE  30ºC 20 30 40 50 60 70 20 30 40 50 60 70
  9. 9. CONCLUSIONES •  Si bien no se observa influencia de la población probiótica sobre el crecimiento de las cepas estudiadas, sí hay efecto en función de la composición nutricional de las fórmulas. •  El mantenimiento de los PPL reconstituidos a T ambiente favorece el desarrollo de ambas cepas, especialmente si la temperatura de reconstitución se encuentra cercana al rango óptimo de crecimiento de las mismas.
  10. 10. CONCLUSIONES •  Reconstitución a 70ºC de los PPL (FAO/OMS): Importante efecto lesivo sobre Cronobacter sakazakii y Salmonella Typhimurium = ê riesgo. •  Reconstitución a 60ºC à inactivación inicial PERO: conservación inadecuada = crecimiento. •  C. sakazakii DSM 4485 > termorresistencia que Salmonella Typhimurium CECT 722.
  11. 11. CONCLUSIONES Reconstitución de los PPL a 40-50ºC: • No reduce el riesgo de infección por ninguna de las cepas en ninguna de las matrices. • SI tiempo hasta la toma >1,5 h à riesgo incluso a la temperatura de conservación de 20ºC, especialmente para C. sakazakii. • Justamente tras la reconstitución la permanencia en el intervalo de temperatura óptimo de crecimiento es superior que a otras temperaturas. en ninguna de las dos matrices estudiadas.
  12. 12. MUCHAS GRACIAS EVA MARÍA HERNÁNDEZ QUESADA SEPTIEMBRE 2012

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