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Instituto Mexicano del Seguro SocialDelegación Sur, Distrito FederalHospital General de Zona No. 32“Villa Coapa”“Carrera P...
RECOLECCIONTRANSPORTE YCONSERVACION DELAS MUESTRASMICOTICASPresenta: Heriberto Ramírez Morales
GENERALIDADES• Un resultado correcto en cualquier estudio de laboratorio,dependerá siempre de la correcta recolección, tra...
CLASIFICACIÓN DE LAS MICOSIS• Clásicamente según su localización anatómica, las micosis se pueden dividir en: Superficial...
LAS MUESTRAS EN LAS QUE SE REALIZAN ESTUDIOS MICOLOGICOSCON MAYOR FRECUENCIA SON: Escamas de piel. Uñas. Pelo. Exudado...
MUESTREO PARA ESTUDIO MICOLÓGICO.
• Este examen se solicita habitualmente para el diagnóstico de micosissuperficiales tales como:• Dermatofitosis, Candidias...
• Las Candidiasis superficiales corresponden a las afecciones de piel ymucosas causadas por especies de levaduras del géne...
• MATERIAL NECESARIO:• Cajas de Petri estéril,• Hoja de bisturí.• TÉCNICA:• Se realizará intenso raspado de la piel, con h...
• NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es recomendable la recolección de material suficiente para larealización de láminas par...
• MATERIAL NECESARIO:• Cajas de Petri estéril, bisturí de punta fina,pipetas Pasteur estériles, suero fisiológico, gasa, a...
• NUMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Las mismas consideraciones que paralas escamas de piel.• TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN:• Si...
• MATERIAL NECESARIO:• Cajas de Petri estéril, hojas de bisturí estérily pinzas sin dientes, estériles• TÉCNICA:• Para rea...
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• Se emplea para el diagnóstico de las micosis profundas sistémicas.• Se utiliza el mismo procedimiento que para un hemocu...
• OBTENCION DE LA MUESTRA.• El procedimiento de extracción de sangre para la realización de hemocultivos se deberealizar c...
• VOLUMEN DE LA MUESTRA.• La cantidad de sangre a introducir en cada botella es de 10 ml en el caso de pacientesadultos.• ...
• MATERIAL NECESARIO:• Portaobjetos limpios,• Hoja de bisturí,• Hisopo estéril,• Asa bacteriológica• Suero fisiológico.• T...
• TÉCNICA:• Se repetirá el procedimiento hasta realizar unas 3-4 láminas promedio,éstas se destinarán para coloraciones; s...
• NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es recomendable la realización de varias láminas para aumentar lasposibilidades diagnós...
• MATERIAL NECESARIO:• Porta objetos,• Hoja de bisturí,• Hisopo estéril,• Asa bacteriológica• Suero fisiológico• Jeringa e...
• TÉCNICA:• Si las lesiones presentan secreciones abundantes, se puede realizaraspirado con jeringa estéril y enviar rápid...
• TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN:• Si la toma de la muestra no se realiza en el laboratorio, debe enviarsedentro de las 2-4 hor...
• PREPARACIÓN DEL PACIENTE:• Debe indicársele a la paciente que 24 horas antes, no debe utilizaróvulos, pomadas o solucion...
• TÉCNICA:• Con la paciente en posición ginecológica, se introducirá el espéculo, seutilizará agua templada para lubricar ...
• NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es suficiente con 1- 2 láminas para examen micológico directo y 0.5-1mlde exudado para ...
SECRECIONES BALANO PREPUCIALES• PREPARACIÓN DEL PACIENTE:• Debe indicársele a la paciente que 24 horas antes, no debe util...
SECRECIONES BALANO PREPUCIALES• TÉCNICA:• Se realizará raspado suave con hoja de bisturí, y se extenderá en unalámina con ...
SECRECIONES BALANO PREPUCIALES• TRANSPORTE:• Debe trasladarse inmediatamente al laboratorio para su procesamiento,o manten...
CONDUCTO AUDITIVO EXTERNOEstá indicado para la búsqueda de otitis externa de etiología micótica, losmohos del género Asper...
CONDUCTO AUDITIVO EXTERNO• NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Se requieren como mínimo 2 láminas para examen micológico dire...
MICOSIS HIPODERMICAS• En este grupo de micosis se encuentran esporotricosis, cromomicosis,feohifomicosis, entre otras.• La...
MICOSIS HIPODERMICAS• Para el estudio de este grupo de micosis es fundamental que la muestra setome en el laboratorio por ...
MICOSIS PROFUNDAS• Pueden ser localizadas o sistemicas.• En todo paciente con diagnóstico presuntivo de micosis profunda s...
MICOSIS PROFUNDAS• En pacientes inmunodeprimidos pueden presentarse diversas infecciones micóticasoportunistas causadas po...
TRACTO RESPIRATORIO INFERIOREXPECTORACIÓN• Se emplea sobre todo para el estudio de las siguientes micosis:• Histoplasmosis...
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EXPECTORACIÓN• TRANSPORTE:• Debe trasladarse inmediatamente al laboratorio para su procesamiento, omantenerse refrigerada ...
LIQUIDO CEFALO RAQUIDEO• Se emplea habitualmente para el diagnóstico de criptococosis, pero también sirvepara el estudio d...
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Recoleccion transporte y conservacion de las muestras micoticas

  1. 1. Instituto Mexicano del Seguro SocialDelegación Sur, Distrito FederalHospital General de Zona No. 32“Villa Coapa”“Carrera Profesional Técnico Laboratorista Clinico”
  2. 2. RECOLECCIONTRANSPORTE YCONSERVACION DELAS MUESTRASMICOTICASPresenta: Heriberto Ramírez Morales
  3. 3. GENERALIDADES• Un resultado correcto en cualquier estudio de laboratorio,dependerá siempre de la correcta recolección, transporte ypreservación de la muestra a ser estudiada.
  4. 4. CLASIFICACIÓN DE LAS MICOSIS• Clásicamente según su localización anatómica, las micosis se pueden dividir en: Superficiales, Hipodérmicas, Profundas localizadas y Sistémicas.• Según el grado de patogenicidad del hongo se pueden dividir en: Micosis causadas por agentes oportunistas Por patógenos primarios con comportamiento oportunista Por patógenos primarios.GENERALIDADES
  5. 5. LAS MUESTRAS EN LAS QUE SE REALIZAN ESTUDIOS MICOLOGICOSCON MAYOR FRECUENCIA SON: Escamas de piel. Uñas. Pelo. Exudados de lesiones mucosas. Hemocultivos Expectoración. LCR Secreciones vaginales . Balano-Prepusiales. Oido externoGENERALIDADES
  6. 6. MUESTREO PARA ESTUDIO MICOLÓGICO.
  7. 7. • Este examen se solicita habitualmente para el diagnóstico de micosissuperficiales tales como:• Dermatofitosis, Candidiasis, Pitiriasis versicolor, Dermatitis seborreica, entreotras.• Las dermatofitosis corresponden al parasitismo de la piel y sus anexoscausada por un grupo de hongos queratinofílicos y queratinolíticosdenominados dermatofitos.MICOSIS SUPERFICIALES
  8. 8. • Las Candidiasis superficiales corresponden a las afecciones de piel ymucosas causadas por especies de levaduras del género Candida.• La Pitiriasis versicolor es una afección de la piel causada por levaduras delgénero Malassezia (clásicamentre Malassezia furfur), que se caracteriza porla aparición de máculas hipo ó hiperpigmentadas con descamaciónfurfurácea en dicho sector.MICOSIS SUPERFICIALES
  9. 9. • MATERIAL NECESARIO:• Cajas de Petri estéril,• Hoja de bisturí.• TÉCNICA:• Se realizará intenso raspado de la piel, con hoja de bisturí en la zonaafectada.• En lesiones ubicadas en piel glabra; se seleccionará preferentemente,las zonas en la que se observen bordes sobreelevados, eritematosos ydescamantes, o en la periferia de las lesiones y en aquellos casos enlos que presenten ampollas se seccionará el techo de la misma.• Las escamas de piel recolectadas, se colocarán en cajas de Petriestériles.ESCAMAS DE PIEL
  10. 10. • NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es recomendable la recolección de material suficiente para larealización de láminas para examen directo y para un mínimode 2 tubos de cultivo.• TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN:• Si la toma de la muestra no se realiza en el laboratorio, debeenviarse dentro de las 24 horas, manteniéndose atemperatura ambiente.• OBSERVACIONES:• Se deberá tener en cuenta que la sensibilidad del estudiomicológico está directamente relacionado con la cantidad dematerial obtenido; por lo cual la muestraa estudiar debe ser abundante.ESCAMAS DE PIEL
  11. 11. • MATERIAL NECESARIO:• Cajas de Petri estéril, bisturí de punta fina,pipetas Pasteur estériles, suero fisiológico, gasa, alcohol.• TECNICA:• La toma de material se realizará colocando la punta del bisturí pordebajo de la lámina ungueal y raspando firmemente; tratando de llegaral límite entre la zona sana y la afectada.• En los casos en los que el despegamiento de la lámina ungueal seaincipiente, se colocará unas gotas de suero fisiológico con pipetaPasteur por debajo de la uña con el fin de macerar dicha zona paraluego de 5-10 minutos recolectar la muestra.• En las onixis en las que predomine la afectación de la lámina externa dela uña, se obtendrá la muestra mediante raspado intenso de dicha zona.UÑAS
  12. 12. • NUMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Las mismas consideraciones que paralas escamas de piel.• TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN:• Si la toma de la muestra no se realiza en el laboratorio, debe enviarsedentro de las 24 horas, manteniéndose dentro de un sobre atemperatura ambiente.• OBSERVACIONES:• En el caso de lesiones de uñas de pies, se puede realizar limpieza de lazona con una gasa estéril mojada en alcohol, y realizar la toma luegodel secado completo de la zona.UÑAS
  13. 13. • MATERIAL NECESARIO:• Cajas de Petri estéril, hojas de bisturí estérily pinzas sin dientes, estériles• TÉCNICA:• Para realizar la toma de material en las tiñas de cuero cabelludo, serecolectarán escamas de la zona alopécica, mediante raspado intenso conhoja de bisturí;• Posteriormente, se observarán el pelo que estén clínicamente afectados yse extraerán los mismos utilizando las pinzas.• En los casos en los que se observen exudados purulentos, se realizará larecolección del mismo con asa bacteriológica y se colocará en una láminade vidrio limpia, extendiendo suavemente el material evitando losacúmulos;• Se recolectará material con jeringa estéril si elmaterial es abundante o conhisopo estéril, sin medio de transporte.CUERO CABELLUDO
  14. 14. • NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Las mismas consideraciones que en el apartado anterior.• TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN:• Si la toma de la muestra no se realiza en el laboratorio, debe enviarsedentro de las 24 horas, manteniéndose a temperatura ambiente.CUERO CABELLUDO
  15. 15. • Se emplea para el diagnóstico de las micosis profundas sistémicas.• Se utiliza el mismo procedimiento que para un hemocultivo normal• MATERIAL NECESARIO.• Frascos de hemocultivo proporcionados por el Laboratorio de Microbiología..• Ligadura de goma.• Jeringas y agujas de punción i/v.• Gasas estériles.• Guantes estériles.• Alcohol etílico o isopropílico al 70%.• Yodo povidona al 10%.HEMOCULTIVO PARA HONGOS
  16. 16. • OBTENCION DE LA MUESTRA.• El procedimiento de extracción de sangre para la realización de hemocultivos se deberealizar cumpliendo las máximas precauciones de asepsia.• 1. Lavarse las manos.• 2. Colocar ligadura y campo estéril.• 3. Palpar la vena a puncionar.• 4. Realizar antisepsia con alcohol 70% en una zona de piel de unos 10 cm de diámetroalrededor del sitio de punción. Se comenzará por el centro y se irán haciendo círculosconcéntricos hacia el exterior.• 5. Repetir el procedimiento utilizando Yodo povidona al 10%.• 6. Dejar actuar 1-2 minutos, esto es : hasta que se seque el antiséptico sobre la piel.• 7. Mientras actúa el iodóforo, desinfectar el tapón de goma del frasco de hemocultivo conalcohol 70%.• 8. Extraer la sangre sin tocar en ningún momento el campo desinfectado. Si fueranecesario palpar nuevamente la vena se cambiarán los guantes estériles y se realizaránueva antisepsia de piel.• 9. Inyectar directamente la sangre en el frasco. No es necesario cambiar de aguja.• 10. Mover los frascos para que la sangre y el medio de cultivo se mezclen.HEMOCULTIVO PARA HONGOS
  17. 17. • VOLUMEN DE LA MUESTRA.• La cantidad de sangre a introducir en cada botella es de 10 ml en el caso de pacientesadultos.• En caso de neonatos y niños pequeños es suficiente una cantidad 1-5 ml por frasco. Enestos casos se utilizan botellas de hemocultivo pediátrico.• NÚMERO DE MUESTRAS.• Dos hemocultivos por paciente, previos al tratamiento antimicrobiano.• El intervalo de tiempo entre las extracciones es suficiente con una hora, pero cuandoexista una gran urgencia en iniciar el este intervalo puede acortarse hasta 15 minutos ose pueden extraer dos muestras simultaneas de diferentes sitios de punción.• TRANSPORTE.• Deben enviarse en forma inmediata al laboratorio una vez finalizada la serie. Mientras,mantener a temperatura ambiente. Nunca debe refrigerarse ni congelarse.HEMOCULTIVO PARA HONGOS
  18. 18. • MATERIAL NECESARIO:• Portaobjetos limpios,• Hoja de bisturí,• Hisopo estéril,• Asa bacteriológica• Suero fisiológico.• TÉCNICA:• Se realizará raspado de la zona afectada con hoja de bisturí, el materialasí obtenido se colocará sobre la lámina de vidrio y se extenderásuavemente con movimientos concéntricos,LESIONES MUCOSAS
  19. 19. • TÉCNICA:• Se repetirá el procedimiento hasta realizar unas 3-4 láminas promedio,éstas se destinarán para coloraciones; si el material es abundante secolocará entre un portaobjetos y un cubreobjetos para observación enfresco, si es escaso se puede agregar una gota de suero fisiológico parala realización del mismo.• Por último se raspará enérgicamente con ansa bacteriológica estéril y secultivará en los medios adecuados.• En el caso de que la toma se realice fuera del laboratorio, o que no secuente con alguno de los materiales antes mencionados (medios decultivos, ansas bacteriológicas, laminillas); se procederá de igual formapara la obtención de láminas para coloraciones y luego se tomarán 2hisopos estériles humedecidos con suero fisiológico estéril, se pasará 2-3 veces por la lesión; uno de ellos se destinará para cultivos y el otropara el examen en fresco.LESIONES MUCOSAS
  20. 20. • NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es recomendable la realización de varias láminas para aumentar lasposibilidades diagnósticas.• TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN:• Si la toma de la muestra no se realiza en el laboratorio, debe enviarsedentro de las 2-4 horas siguientes, manteniéndose la muestrarefrigerada a 4ºC en este lapso de tiempo.• OBSERVACIONES:• La desecación de los hisopos impide el procesamiento de la muestra.LESIONES MUCOSAS
  21. 21. • MATERIAL NECESARIO:• Porta objetos,• Hoja de bisturí,• Hisopo estéril,• Asa bacteriológica• Suero fisiológico• Jeringa estéril.HERIDAS DE PIEL
  22. 22. • TÉCNICA:• Si las lesiones presentan secreciones abundantes, se puede realizaraspirado con jeringa estéril y enviar rápidamente al laboratorio (1-2 hs).De lo contrario se tomarán muestras raspando con hoja de bisturípreferentemente en los bordes de la lesión para la realización de frotispara examen directo y se tomarán muestras con hisopos para loscultivos.• NUMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es recomendable la realización de varias láminas y 2-3 hisopos.HERIDAS DE PIEL
  23. 23. • TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN:• Si la toma de la muestra no se realiza en el laboratorio, debe enviarsedentro de las 2-4 horas siguientes, manteniéndose la muestrarefrigerada a 4ºC en este lapso de tiempo.• OBSERVACIONES:• Recordar que la cantidad de muestra es crucial para obtener un buenresultado• No permitir la desecacion del hisopo con la muestraHERIDAS DE PIEL
  24. 24. • PREPARACIÓN DEL PACIENTE:• Debe indicársele a la paciente que 24 horas antes, no debe utilizaróvulos, pomadas o soluciones antisépticas vaginales; no mantenerrelaciones sexuales y para realizar el examen no debe estarmenstruando.• MATERIAL NECESARIO:• Camilla ginecológica,• Espéculo estéril,• Pipetas Pasteur estériles;• Tubos vidrio con 1 ml de suero fisiológico estéril.SECRECIONES VAGINALES(CANDIDIASIS VAGINALES)
  25. 25. • TÉCNICA:• Con la paciente en posición ginecológica, se introducirá el espéculo, seutilizará agua templada para lubricar si es necesario (no usarantisépticos u otros lubricantes).• Se recogerá la muestra aspirando con la pipeta, de la zona de mayorexudado o del fondo de saco vaginal posterior.• Se colocará la totalidad del exudado aspirado en el tubo con 1 ml suerofisiológico.• Si se observan lesiones en región vulvar se realizará raspado suave conhisopo, y se extenderá en una lámina con movimientos circulares.SECRECIONES VAGINALES(CANDIDIASIS VAGINALES)
  26. 26. • NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es suficiente con 1- 2 láminas para examen micológico directo y 0.5-1mlde exudado para examen micológico en fresco y cultivos.• TRANSPORTE:• Debe trasladarse inmediatamente al laboratorio para su procesamiento, omantenerse refrigerada a 4ºC no mas de 1- 2 hs.• MUESTRAS INADECUADAS:• No son adecuadas las muestras de exudados en medios de transporte.• OBSERVACIONES:• Si las muestras no se procesaran inmediatamente, se debe tomar porseparado una toma para búsqueda de Trichomonas vaginales y una tomapara búsqueda de hongos, ya que la conservación de las mismas difiere,requiriéndo conservación en estufa o refrigerador respectivamente.SECRECIONES VAGINALES(CANDIDIASIS VAGINALES)
  27. 27. SECRECIONES BALANO PREPUCIALES• PREPARACIÓN DEL PACIENTE:• Debe indicársele a la paciente que 24 horas antes, no debe utilizarpomadas o soluciones antisépticas; no mantener relaciones sexuales.• MATERIAL NECESARIO:• Hisopo estéril• Suero fisiológico,• Portaobjetos,• Asa bacteriológica.
  28. 28. SECRECIONES BALANO PREPUCIALES• TÉCNICA:• Se realizará raspado suave con hoja de bisturí, y se extenderá en unalámina con movimientos circulares en las zonas donde se observenlesiones.• Con asa bacteriológica estéril se tomará una muestra de la zonaafectada mediante raspado intenso,• Se colocará en un tubo con 1 ml de suero fisiológico estéril.• NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es suficiente con 1- 2 láminas para examen micológico directo y 0.5-1mlde exudado para examen micológico en fresco y cultivos.
  29. 29. SECRECIONES BALANO PREPUCIALES• TRANSPORTE:• Debe trasladarse inmediatamente al laboratorio para su procesamiento,o mantenerse refrigerada a 4ºC no mas de 1- 2 hs.• MUESTRAS INADECUADAS:• No son adecuadas las muestras de exudados en medios de transporte.
  30. 30. CONDUCTO AUDITIVO EXTERNOEstá indicado para la búsqueda de otitis externa de etiología micótica, losmohos del género Aspergillus son los involucrados frecuentemente en estapatología.• MATERIAL NECESARIO:• Asas bacteriológicas• Portaobjetos• Hisopos estériles• Suero fisiológico estéril.• TÉCNICA:• Se visualiza con otoscopio el conducto auditivo externo y se realizan lastomas con asa bacteriológica mediante raspado intenso de la zonaafectada,• Se coloca el material obtenido en láminas portaobjetos y se recolectamaterial con hisopo en forma estéril para los cultivos.
  31. 31. CONDUCTO AUDITIVO EXTERNO• NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Se requieren como mínimo 2 láminas para examen micológico directo y2 hisopos para cultivos.• OBSERVACIONES:• Si las secreciones son escasas o las lesiones se caracterizan por sereczematoasas y secas , debe embeberse previamente el hisopo ensuero fisiológico estéril.
  32. 32. MICOSIS HIPODERMICAS• En este grupo de micosis se encuentran esporotricosis, cromomicosis,feohifomicosis, entre otras.• La lesiones por este grupo de micosis se caracterizan por su pleomorfirmoen la presentación clínica; se pueden observar nódulos de tamaño pequeñoo grandes, únicos o múltiples, que se adhieren a la piel supraadyacente, conpresencia o ausencia de ulceración de piel, que deforman la región, entreotras características.• Dependiendo de las características clínicas de la lesión, es como seseleccionará la muestra a estudiar.
  33. 33. MICOSIS HIPODERMICAS• Para el estudio de este grupo de micosis es fundamental que la muestra setome en el laboratorio por el especialista y la mayoría de las veces paraestablecer un diagnóstico certero es necesario tomar mas de una muestra.• La muestra se podrá obtener por compresión intensa de bordes laterales dela lesión, sobre todo en aquellas lesiones nodulares con pequeñasulceraciones; o por punción con aguja y jeringa de los nódulos subcutáneos,o por escarificación de la piel y compresión de la zona, o por raspado delsubcutáneo, etc.• Es fundamental para el diagnóstico de estas micosis la obtención demuestras representativas (en calidad y cantidad).
  34. 34. MICOSIS PROFUNDAS• Pueden ser localizadas o sistemicas.• En todo paciente con diagnóstico presuntivo de micosis profunda sistémica debeestudiarse mas de una muestra. Por ejemplo si se obtiene LCR de un paciente quese sospecha una micosis, se debe enviar muestras de esputo y sangre.• Es comun el hallazgo de Cryptococcus neoformans en sangre con examen directo ycultivos negativos para LCR.
  35. 35. MICOSIS PROFUNDAS• En pacientes inmunodeprimidos pueden presentarse diversas infecciones micóticasoportunistas causadas por especies como:• Aspergillus,• Fusarium,• Zygomicetos,• levaduras del genero Candida y hongos del grupo de las Dematiáceas (hongosde pared color marrón-negro),• Por tanto para poder interpretar el rol de estos agentes micóticos es fundamentalque se seleccionen las muestras a estudiar en forma apropiada y que se tomen enlas condiciones adecuadas.
  36. 36. TRACTO RESPIRATORIO INFERIOREXPECTORACIÓN• Se emplea sobre todo para el estudio de las siguientes micosis:• Histoplasmosis• Paracoccidiodomicosis,• Aspergilosis pulmonar,• Criptococosis.• Su principal desventaja es su baja sensibilidad visual dependiendo del hongo encuestión.• Facil recolección, si se obtiene correctamente.• Un resultado negativo no invalida el diagnóstico y por tanto se debe seguir eldiagnóstico con el estudio de otras muestras.
  37. 37. EXPECTORACIÓN• MATERIAL NECESARIO:• Recipiente de boca ancha, con tapa de rosca, de cierre hermético, estéril.• TÉCNICA:• Se indicará al paciente realizar higiene bucal con cepillado de dientes, en formahabitual al levantarse, luego enjuagarse la boca con agua destilada o suerofisiológico y expectorar dentro del frasco.• Se explicará al paciente que el frasco se destapará solo en el momento decolocar la expectoración en su interior y se cerrará rápidamente.• NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es suficiente con 2-5 ml de secreciones.
  38. 38. EXPECTORACIÓN• TRANSPORTE:• Debe trasladarse inmediatamente al laboratorio para su procesamiento, omantenerse refrigerada a 4ºC no mas de 4 - 6 hs.• MUESTRAS INADECUADAS:• Muestras que no han sido refrigeradas para su traslado o conservación antes elenvío al laboratorio.• Muestras que contengan saliva mayoritariamente.• OBSERVACIONES:• En casos de expectoración escasa se puede inducir el esputo realizandonebulizaciones con 5-10 ml de suero fisiológico.
  39. 39. LIQUIDO CEFALO RAQUIDEO• Se emplea habitualmente para el diagnóstico de criptococosis, pero también sirvepara el estudio de otras micosis que afecten el sistema nervioso central.• MATERIAL NECESARIO:• Campos estériles.• Guantes estériles.• Gasas estériles.• Alcohol etílico o isopropílico al 70%.• Yodo povidona al 10%.• Jeringas de 5-10 ml.• Agujas de punción IM.• Trócares de punción lumbar de varios tamaños.• Tubos cónicos limpios y estériles con tapón de rosca.
  40. 40. LIQUIDO CEFALO RAQUIDEO• TÉCNICA:• Se obtendrá antes de instaurar cualquier terapéutica antibiótica.• Quien realice la toma de la muestra deberá lavarse las manos previo al procedimiento,colocarse sobretúnica y guantes estériles.• Se localiza la zona elegida para la punción lumbar mediante palpación de los espaciosintervertebrales una vez colocado el paciente en la posición adecuada.• Se desinfecta con alcohol al 70% una zona de uso 10 cm de diámetro en el área elegida• Se coloca campo estéril• Se repite la operación con Yodo povidona que se deja secar durante un minuto.• Realizar la punción entre los espacios intervertebrales L3-L4, L4-L5 o L5-S1, siguiendolas normas de la más estricta asepsia.• Al llegar al espacio subaracnoideo retirar el estilete y dejar salir libremente el líquidocefalorraquídeo que se recogerá en tres tubos, sin conservantes, con tapón de rosca.• El primer tubo es el que debe enviarse para el estudio bioquímico, el segundo para elestudio microbiológico y el tercero para investigación de células (este suele ser el mástransparente aunque la punción haya sido traumática el tubo más turbio se enviará aMicrobiología.)
  41. 41. LIQUIDO CEFALO RAQUIDEO• NUMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Es suficiente con 3 tubos de 1-2 ml de LCR.• TRANSPORTE:• Debe trasladarse inmediatamente al laboratorio para su procesamiento, omantenerse refrigerada a 4ºC no mas de 4 - 6 hs.• MUESTRAS INADECUADAS:• Muestras que no se han trasladado inmediatamente y han sido mantenidas atemperatura ambiente o en estufa; muestras con medio de transporte.
  42. 42. OTROS LIQUIDOS BIOLOGICOS: PLEURAL,PERITONEAL, DE DRENAJE, ETC.• Se emplea habitualmente para el diagnóstico de las micosis sistémicas que afectanel parénquima o ser diseminadas• También sirve para el estudio de otros agentes micóticos emergentes que puedenafectar a pacientes inmunodeprimidos, hospitalizados, etc.• MATERIAL NECESARIO:• Algodón y gasas estériles, alcohol u otro antiséptico, campos estériles, aguja yjeringa para punción (en función del sector anatómico a puncionar), tubo ofrasco pequeño de vidrio, estéril y de cierre hermético.• TÉCNICA:• El el caso de los líquidos de drenaje, la muestra se debe recolectar en formaestéril por punción del tubo de drenaje luego de la desinfección del mismo.
  43. 43. OTROS LIQUIDOS BIOLOGICOS: PLEURAL,PERITONEAL, DE DRENAJE, ETC.• NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN:• Entre 1-5 ml dependiendo del líquido a estudiar, por ej. si es humor acuoso essuficiente con 1 ml, si es líquido de drenaje es deseable 5 ml.• TRANSPORTE:• Debe trasladarse inmediatamente al laboratorio para su procesamiento omantenerse refrigerada a 4ºC no mas de 4 - 6 hs.• MUESTRAS INADECUADAS:• Muestras que no se han trasladado inmediatamente y han sido mantenidas atemperatura ambiente o en estufa; muestras con medio de transporte.
  44. 44. GRACIAS POR SU ATENCIÓN...

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  • MayDraCH

    Sep. 11, 2017
  • NicoleZeballos1

    Aug. 22, 2020

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