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Nilton J. Málaga, profile picture
Subido porNilton J. Málaga
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Control de calidad enteroparasitos

Este documento describe los diferentes aspectos de un programa de control de calidad para la detección de enteroparásitos. Explica que el control de calidad debe ser una parte integral del laboratorio clínico y cubre las fases pre-analítica, analítica y post-analítica. Detalla los procedimientos específicos para cada fase como la recolección y preparación de muestras, los métodos de concentración y tinción de muestras, y la generación de informes. También cubre el control de calidad externo que incluye la comparación de

CONTROL DECONTROL DE CALIDAD ENCALIDAD EN ENTEROPARÁSITOSENTEROPARÁSITOS
PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD  El control de calidad (C.C.) debe ser parte integral del laboratorio clínico.  Cualquier persona que trabaje en el laboratorio deberá prepararse para aceptar este tipo de responsabilidad con decisión, para la producción de resultado de laboratorio de buena calidad.  El C.C: depende del esfuerzo del equipo y todos deben tener completo conocimiento de los programas del C.C: para asumirlo como un compromiso personal.
PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD  Hay dos tipos de control de calidad: Control de calidad interno comprende: C.C.I. Pre - Analítica C.C.I. Analítica C.C.I. Post - Analítica Control de calidad externo comprende: Comparación de resultados. Intercambio científico
DIAGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD INTERNO  FASE PREANALITICA: Solicitud de análisis Preparación del paciente Recolección de la muestra Conservación Transporte Control de equipos.  FASE ANALITICA: Control de materiales y reactivos. Control de procesamiento Control de observación microscópica. • FASE POST ANALITICA: Valores referenciales. Informes.
CONTROL DE CALIDAD INTERNO FASE PRE - ANALÍTICA SOLICITUD DE ANALISIS  Nombre completo, edad, sexo, fecha.  Estado de nutrición.  Procedencia geográfica del enfermo.  Ingesta de bario, bismuto o antiparásitos.  Diagnóstico clínico.  Resultado de otros exámenes del laboratorio. PREPARACION DEL PACIENTE  Usar impresos que detallan las instrucciones necesarias para la recolección de la muestra.  Restringir por tres días que anteceden al examen coprológico los alimentos que dejan demasiado residuos.
CONTROL DE CALIDAD INTERNO FASE PRE – ANALÍTICA Toma de muestra de Test de Graham:  Frecuencia : mensual  Procedimiento: • Porcentaje de muestras rechazadas. Instrucciones para recolección de muestras:  Frecuencia : mensual  Procedimiento: • Solicitar que un porcentaje de los pacientes repita verbalmente las instrucciones.
Control de equipos: • Control de calidad de los equipos utilizados por ejemplo los microscopios, centrifugas.
Control de calidad interno fase Pre - Analítica RECOLECCION DE LA MUESTRA  Tipo de recipiente empleado.  Calidad de la muestra.  Cantidad de la muestra.  Número de la muestra que se estudian.  Intervalo de días entre las muestras. Frecuencia : mensual  Procedimiento: • Porcentaje de muestras escasas. • Porcentaje de muestras excesivas.
CONTROL DE CALIDAD INTERNO FASE ANALÍTICA  Control de reactivos: • Densidad del sulfato de zinc (Método de Flotación) • Frecuencia: al prepararlo y antes del uso utilizando un densitómetro.  Control de colorantes: • Frecuencia: al prepararlo usando un control biológico.
Control de Fijadores: • Frecuencia: antes de su empleo en muestras clínicas. • Muestras liquidas , que contienen preferentemente trofozoitos, 30 minutos es el tiempo límite.  Muestras semiformadas, que pueden contener trofozoitos y quistes, 60 minutos es el tiempo límite
CONTROL DE CALIDAD INTERNO FASE ANALÍTICA Control del examen macroscópico: En muestras no preservadas se recomienda examinarse la consistencia, presencia de moco, sangre y parásitos macroscópicos. Control del examen microscópico: Cualitativos : se emplea para detectar formas parasitarias (examen directo y concentrado). Cuantitativos: reportan el número de formas parasitarias que se encuentran y sobretodo se utiliza en Helmintiasis..
CONTROL DE CALIDAD INTERNO FASE ANALÍTICA Método directo:  Permite encontrar la mayoría de los parásitos (quistes, huevos y larvas) y estudiar los caracteres de movilidad de las formas vegetativas de los protozoarios.  Desventaja : la muestra es tan pequeña que es poco representativas.  Si se tiene heces de consistencia acuosa y mucosanguinolentas se debe examinar las heces sin diluir.  Si se tiene heces de consistencia dura se debe diluir en suero fisiológico.
 Método de concentración:  Tiene como objetivo reunir en un pequeño volumen los elementos parasitarios inicialmente dispersos en una gran masa de heces.  Tipos de métodos de concentración : Flotación o sedimentación
. Método de alta densidad o flotación Solución química de densidad > 1.200 Huevos, quistes : densidad 1.050 – 1.150 Desventaja : - Mata trofozoitos - No para huevos operculados MÉTODOS DE CONCENTRACIÓN
a) Método de Faust - Sulfato de zinc al 33% - Centrifugación - Utilidad : Huevos, Quistes y larvas. - b) Método de Willis - ClNa 37.7% - No centrifugación - Utilidad : Huevos de Uncionaria y Hymenolepis.
MÉTODOS DE CONCENTRACIÓN Método de baja densidad o sedimentación - Soluciones químicas diluidas - Densidad sustancias químicas < densidad quistes, huevos - Ventaja : Menos probabilidad de error técnico.
Método de Ritchie Formol : Fija parásitos Éter : Purifica Útil : Quistes de protozoarios, huevos y larvas de helmintos Sedimentación Rápida en copa Suero Fisiológico Útil: Huevos operculados
TINCIONES PERMANENTES a) Hematoxilina Férrica de Heidenhain - Tinción protozoos (amebas y flagelados) - Identificación más exacta de parásitos - Resalta la forma nuclear - Citoplasma:azul - Núcleo, cuerpos cromatoidales, eritrocitos, bacterias : Negro
TINCIONES PERMANENTE b) Coloración ácida modificada - Identificar ooquistes de coccidios - No requiere calentar - Ooquistes : rojo brillante - Fondo : verde o azul.
CONTROL DE CALIDAD INTERNO FASE ANALITICA Control de observación microscópica. Método estadístico. Analiza solo positivos mensuales Método de la muestra al azar: Preparación de doble método directo de una misma muestra, con diferentes números correlativos Método de incorporación de muestras de referencia: Incorporar a la rutina preparaciones del material de referencia.
CONTROL DE CALIDAD INTERNO FASE POST - ANALÍTICA Se recomienda tener en el laboratorio en el lugar de transcripción una lista de los protozoos y helmintos en las forma evolutivas que se pueden encontrar. El informe debe incluir datos del paciente, fecha, método utilizado, número de muestras. Siempre se debe indicar la forma evolutiva (huevos, quistes, etc.) y el nombre científico correctamente escrito. Se recomienda no clasificar las especies encontradas de parásitos comensales.
CONTROL DE CALIDAD INTERNO FASE POST - ANALÍTICA Nombre del paciente  Parasitológico seriado (3 Muestras)  Método de directo  Método de Faust • Si el resultado es negativo: No se observan parásitos • Si el resultado es positivo: Huevos de Hymenolepis nana Quiste de Giardia lamblia.
CONTROL DE CALIDAD EXTERNO Comparación de resultado:  Los resultados informados por nuestro laboratorio se compara con los elementos identificados en el material de referencia por el comité de expertos.  Intercambio científico:  Es importante hacer el buen uso de los laboratorios de referencia, para complementar la capacitación continua.
CONTROL DE CALIDAD EXTERNO Criterios de evaluación. Se calcula el puntaje obtenido por muestra de control Nº de diagnósticos correctos x 100 Nº de diagnósticos( C. Expertos) + Nº diagnósticos incorrectos Si se envía dos muestras se deben sumar los puntajes obtenidos por cada una de las muestras y se divide entre dos. El porcentaje mínimo de aceptabilidad con este método corresponde a un 75% y el máximo a un 100% Bueno:91%-100%,regular: 75%-90% y deficiente: menos del 75%.
GRACIAS POR SU ATENCIÓN