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Curso de planeamiento hospitalario
para la respuesta a desastres
PROCEDIMIENTO SOPORTE
NUTRICIONAL
MODULO 2
CURSO DE FORMACION
AUXILIARES EN ENFERMERIA Y FARMACIA
UNIVERSIDAD PENINSULA DE SANTA ELENA
MANUAL DE PROCEDIMIENTOS
NUTRICIONAL PARENTERAL Y ENTERAL
SOPORTE NUTRICIONAL
Definición:
Es el proceso de atención al paciente captado mediante
interconsultas, en el cual participa el equipo
interdisciplinario de soporte nutricional (Médico, Enfermera,
Farmacéutico y Nutricionista) y se decide la vía de
alimentación a suministrar, ya sea enteral o parenteral.
Objetivo:
Brindar al paciente hospitalizado que lo requiera
intervención eficaz y oportuna, de acuerdo a sus
necesidades de soporte nutricional y condición
patológica.
La administración de nutrición parenteral: Proceso
mediante el cual se brinda aporte energético, de
macro y micronutrientes, a través de una vía
intravenosa y de acuerdo a las necesidades
nutricionales del paciente.
Equipo:
Material:
- Material para la canalización de vía
venosa
- Bolsa de nutrición parenteral
- Sistema de perfusión
- Filtro antibacteriano
- Bomba de perfusión
- Guantes, mascarilla, bata y campo estéril
- Gasas, esparadrapo hipo alérgico
- Antiséptico
• Procedimiento:
Comprobar el funcionamiento correcto de la bomba de
perfusión.
Elegir el sistema adecuado a la bomba de perfusión que
vayamos a utilizar.
Proteger la bolsa de la luz, si no lo estuviera.
Si no hay vía Central canalizada, solicitar la instalación de
la vía correspondiente.
Conectar el sistema a la bolsa de N.P. y purgarlo.
Conectar al catéter del usuario
Iniciar perfusión
Aislar las conexiones con gasas estériles.
Controlar el ritmo de la perfusión, el cual debe ser
constante y continuo.
En caso de interrupción, sustituir por glucosa 10% y
comunicar al médico
Observaciones:
Administración por prescripción médica
Cambiar el sistema de perfusión cada 24h.
Control de constantes vitales y determinaciones analíticas
según prescripción médica.
Mantener la N.P. en el refrigerador hasta su utilización
Antes de su administración debe estar a temperatura
ambiente.
Mantener conectada a la red eléctrica la bomba de
perfusión siempre que sea posible para que no se agoten las
baterías. Mantener la individualidad de la vía del catéter que
está siendo utilizado para nutrición parenteral, a excepción de
los lípidos que se pueden conectar en Y con aguja a la línea
principal, estos se deben administrar en 24 horas y desechar el
equipo.
Reservar la vía distal para administrar la nutrición parenteral
cuando se utiliza un catéter de dos o tres luces)
No utilizar buretrol, ni equipos tipo multiuso, ni llaves de tres
vías en la línea utilizada para administrar nutrición parenteral.
No utilizar la luz del catéter de nutrición parenteral para la
administración de medicamentos, ni realizar medidas de
Presión Venosa Central o toma de muestras sanguíneas.
Utilizar bomba de infusión para administrar la nutrición
parenteral (aminoácidos y dextrosa), cambie los equipos
cada 48 horas, en paciente pediátrico y neonatal cada 24
horas.) Un frasco o bolsa de nutrición parenteral u otra
solución no debe permanecer instalado por más de 24 horas.
Mantener refrigerada a 4°C la mezcla que no se esté
administrando.
Retirarla del refrigerador 15 minutos antes de su infusión.
No reinstalar una solución que haya sido descontinuada o
retirada.
 Retirar el catéter utilizado para administrar
nutrición parenteral sólo por orden del Servicio de
Soporte Metabólico y Nutricional.
 Observar la mezcla parenteral que se está
administrando en busca de precipitaciones y
turbidez
• Registros:
- Anotar fecha y hora del comienzo de la perfusión
y finalización de la misma.
- Indicar ritmo de la perfusión en la hoja de registro de
enfermería
Administración de nutrición enteral :Proceso de suministro
de macro y micronutrientes, ya sea por vía oral o por
sonda, de acuerdo a las necesidades nutricionales y
condición patológica, haciendo uso de formulas
enterales definidas
Material:
- Bolsa o jeringa de alimentación.
- Vaso con agua.
- Servilleta desechable.
- Guantes desechables.
Procedimiento:
Lávese las manos y colóquese los guantes desechables.
Informe al usuario del procedimiento.
Coloque al usuario en posición sentado.
Retirar el tapón.
Conectar la jeringa vacía a la sonda.
Aspirar comprobando si hay residuo
Si no hay residuo, administrar la dieta muy lentamente o por
medio de goteo al ritmo indicado
Una vez introducida la dieta, administrar agua para el lavado.
Tapar la sonda
Retire el tapón de la sonda
Conecte la jeringa vacía, y aspire la sonda, comprobando la
ubicación y midiendo el residuo.
Conecte la bolsa o jeringa con la dieta.
Introduzca el alimento lentamente, si es por jeringa o gradúe el
ritmo de goteo, si es por bolsa.
Al término de la alimentación lavar la sonda con agua y volver a
tapar.
Observaciones:
Antes de administrar la alimentación, compruebe la
correcta colocación de la sonda.
Mantenga al usuario sentado o incorporado en la cama
hasta una hora después de la administración de la dieta.
Administre la dieta lentamente para evitar intolerancias
y diarrea.
Evite la existencia de grumos en la dieta y la
introducción de aire.
Administre la dieta a temperatura ambiente.
Suspenda la administración si hay náuseas y vómitos.
• Registros:
Anote tipo de dieta administrada y cantidad de la misma,
así como cualquier tipo de incidencia ocurrida durante su
administración
ALIMENTACION ENTERAL POR
GASTROSTOMIA Y YEYUNOSTOMÍA
Definición:
Nutrición e hidratación del usuario por vía gástrica
o intestinal directa.
• Objetivo:
Proporcionar los nutrientes
necesarios en usuario que no
puede ser alimentado por vía oral,
accediendo por vía gástrica o
intestinal directa.
Material:
Sonda de alimentación enteral
Bomba de perfusión
Dieta prescrita
Jeringa de 50 c.c.
Vaso con agua
Informar al usuario del procedimiento
Comprobar que la dieta corresponde a la
prescripción
Purgar el sistema y conectarlo a la bomba
tras comprobar su correcto funcionamiento
Observaciones:
-Si al aspirar se comprueba que existe residuo más
del 50% de lo administrado, y volver a introducirlo,
añadiendo de la nueva dieta hasta completar la
cantidad prescrita.
• Registros:
- Anotar hora de administración, tipo de dieta,
cantidad y si hay retención y cantidad
• Definición:
Es el procedimiento mediante el cual
introducimos una sonda a través del orificio
nasal, hasta el estómago.
• Objetivo:
- Eliminación de secreciones gástricas.
- Eliminación de gas acumulado.
- Administración de medicación.
- Nutrición del usuario.
SONDAJE NASOGASTRICO
Material:
- Sonda nasogástrica adecuada.
- Lubricante hidrosoluble.
- Guantes desechables.
- Jeringa de alimentación.
- Cinta adhesiva antialergénico o sistema de fijación
prefabricado.
- Gasas.
- Bolsa colectora.
- Tapón de sonda.
- Estetoscopio.
Procedimiento:
El material específico dependerá de la necesidad del
sondaje.
Debemos asegurar que la totalidad del material se lleve
en el carro o bandeja auxiliar
Sitúese a la derecha del usuario si se es diestro.
Identifique al usuario.
Explíquele como puede colaborar.
Coloque al usuario en decúbito supino, recostado en la
cama y ésta en un ángulo de 45º.
Mida la distancia de la porción de la sonda que será
introducida, extendiéndola desde la punta de la nariz del
usuario hacia el lóbulo de la oreja y de ahí hacia la parte
baja del esternón.
Marque la sonda.
 Introduzca la sonda por uno de los orificios nasales.
 Progrese lentamente la sonda.
 Verifique que la sonda se encuentra en cavidad
faríngea y no enrollada en la boca.
 A partir de este momento, pida al usuario su
colaboración deglutiendo saliva o bien un sorbo de
agua, así irá conduciendo el trayecto de la sonda.
 Deje de introducir la sonda al llegar a la señal
establecida.
 Inyectar 20 cc de aire por la sonda, al mismo tiempo
que se ausculta el epigastrio, si la sonda está
correctamente colocada, oiremos un ruido
característico.
 Fije la sonda con cinta adhesiva antialergénico a la
nariz de forma longitudinal para evitar escoriaciones o
use algún sistema prefabricado para tal fin.
 Coloque bolsa, aspiración o tapón en la zona proximal,
según el objetivo del procedimiento.
Observaciones:
- Utilice la sonda adecuada para cada caso.
- No es necesario emplear una técnica estéril.
- Asegúrese de que el usuario no posee prótesis
dentarias.
- En caso de que la sonda pasara a tráquea, el
usuario tose y aparecen signos de hipoxia. Retire la
sonda rápidamente.
Mantenimiento:
Limpieza diaria de la fosa nasal ocupada por la sonda con suero
fisiológico.
Cambie la fijación de la sonda tantas veces como sea necesario.
Retire cada día unos cinco o seis centímetros la sonda y volver a
introducirla para evitar posibles erosiones en la mucosa gástrica.
Vigile la permeabilidad y limpieza de la sonda.
Cambie la sonda cada ocho días como máximo (si la sonda es
de silicona, se puede prolongar más días).
Para evitar la entrada de aire al estómago, lo cual podría causar
distensión, mantener tapado el extremo proximal de la sonda todo
el tiempo, excepto al revisar la posición de la sonda, cuando
alimente a través de ésta, o se efectúe irrigación. Registrar:
Hora de colocación de la sonda.
Modelo y calibre de la sonda.
Motivo del sondaje.
Aspecto y cantidad del contenido evacuado.
RECOGIDA Y TOMA DE MUESTRAS
OBTENCIÓN DE MUESTRA DE ORINA
Definición: Obtención de muestra de orina con
fines diagnósticos.
Objetivo: Obtener la muestra de una manera
adecuada para la disponer de
resultados fiables.
Material: Contenedores (estériles para cultivo;
para orina de 24 horas; pequeños para
sedimento), bolsas estériles (niños), gasas estériles,
jabón neutro y gasas, guantes, jeringa y aguja y
etiquetas identificativas.
- Recogida de orina para urocultivo en
adultos:
Informar al usuario de la necesidad de una
adecuada higiene previa a la recogida de
orina, con agua y jabón, limpiando siempre
de delante hacia detrás en dirección al ano.
Recoger la orina de la primera micción del
día, desechando la primera y última parte de
ésta, en un contenedor estéril, siendo
suficiente la cantidad de 5 a 10 cc.
Tapar el bote sin tocar la parte interior.
MÉTODO:
Recogida de orina para urocultivo en niños:
1.Informar a los padres sobre la higiene adecuada como en el
apartado anterior.
2.Utilizar bolsas estériles adhesivas que se colocan alrededor de la
zona genital.
3.Para evitar contaminación de la muestra, la bolsa no debe
permanecer más de 20 minutos aproximadamente. En el caso de
no recoger en este tiempo la muestra se debe cambiar la bolsa
repitiendo el lavado de la zona.
4.Una vez regida la muestra, retirar la bolsa y cerrarla
adecuadamente, sin trasvasar la orina a otro recipiente.
Recogida de orina para urocultivo en usuarios con sonda vesical:
1.Limpiar con antiséptico el extremo visible de la sonda, en dirección
hacia la bolsa.
2.Pinzar la sonda y cuando el paciente muestre necesidad de
miccionar, despinzar y recoger directamente la orina en el frasco
estéril.
3.En el caso de que la bolsa colectora sea de uso prolongado,
pinchar en la zona de látex determinada para tal fin y extraer la
orina.
Recogida de orina 24h:
1.Informar al usuario de la necesidad de una adecuada
higiene.
2.Desechar la primera micción del día anterior a la entrega
de la muestra. Recogiendo todas las micciones incluyendo
la primera de la mañana del día de la entrega.
3.Recoger la orina en contenedores para 24 horas y
guardarlos en la nevera (zona de verduras).
ANÁLISIS DE ORINA MEDIANTE TIRA REACTIVA
Definición: Actuaciones de enfermería para
determinar algunos parámetros en la orina, con
fines diagnósticos, utilizando una tira reactiva
específica.
Objetivo: Determinar la presencia de
alteraciones en la composición y características
de la orina (hematuria, glucosuria, cetonuria,
proteinuria, etc.).
Material: Tiras reactivas específicas, recipiente
de orina, guantes y temporizador
Método:
1.Explicar al usuario la técnica que debe aplicar para la recogida de
orina y pedirle su colaboración.
2.Una vez recogida la muestra se introduce la tira en el recipiente
durante dos segundos.
3.Extraer la tira del recipiente, comprobando que está
completamente humedecida y eliminar el exceso de orina
golpeando suavemente la tira sobre el borde del recipiente. No
limpiar ni secar. Empezar a controlar el tiempo.
4.Esperar el tiempo necesario indicado en las instrucciones del
envase de las tiras reactivas.
5.Comparar el color de la tira con la tabla de colores del frasco
contenedor de las tiras.
6.Registrar el procedimiento, fecha, hora, incidencias y resultado en
la historia de salud.
Observaciones: Comprobar la conservación y la fecha de
caducidad de las tiras.
Definición: Obtención de muestra de sangre venosa
para su posterior análisis en el laboratorio.
Objetivo: Obtener una muestra de sangre de manera
adecuada para efectuar los distintos análisis:
Hematológico, bioquímico y microbiológico.
Material: Guantes, compresor de goma, alcohol de
70º, algodón, tubos, jeringas y agujas de seguridad y
etiquetas identificativas.
EXTRACCIONES DE SANGRE
Método:
1.Lavado de manos y uso de guantes.
2.Identificación del usuario y comprobación de los datos.
3.Verificar que el usuario esté en ayunas si precisa.
4.Identificar los tubos con la etiqueta del nº de registro y fecha de
extracción.
5.Elección de la zona de punción más fácil, mediante la palpación
de la vena: Flexura del codo o dorso de la mano y en el caso de
palpación deficitaria se aconseja dejar el brazo colgando e indicar
el movimiento abrir y cerrar la mano o masaje de frotamiento,
ayudando con la mano a la circulación de retorno y/ o presión con
los dedos en la zona de punción.
6.Colocar el compresor de goma sin apretar en exceso.
7.Desinfección de la zona de punción seleccionada.
8.Fijar la vena mediante estiramiento de la piel y tejido subcutáneo.
•Realizar la punción con un ángulo de 30º – 40 º y con el bisel
hacia arriba utilizando: Sistema vacutainer (fijar la campana para
evitar que se mueva en el intercambio de los tubos) o uso de
palomilla o jeringa y aguja (con esta técnica conviene dejar una
pequeña separación entre el émbolo y el cuerpo de la jeringa, la
aspiración será lenta) .
•Retirar el compresor e indicar al usuario que permanezca
durante 3–5 minutos presionando en la zona de punción con el
algodón y el brazo estirado, para favorecer la hemostasia y evitar
la aparición de hematoma. En el caso de pacientes
anticoagulados, aumentar el tiempo de presión de 10 a 15
minutos.
•Colocar los tubos en la gradilla en posición vertical mezclando
bien la sangre en los tubos que contienen anticoagulante.
•Desechar el material utilizado en el contenedor adecuado.
Educación al paciente y familia: Informar sobre la
importancia de presionar la zona de punción,
para evitar hematoma, y sangrado, con el brazo
estirado. Se le informará cuándo y dónde recoger
los resultados.
Observaciones:
Aplicar a todos los usuarios las medidas
específicas de prevención de riesgos biológicos.
No agitar los tubos secos.
Cuando se realizan extracciones a domicilio
mantener la verticalidad en el transporte de los
tubos.
Nunca encapsular las agujas.
RECOGIDA DE EXUDADOS
Definición: Obtención de muestra de un
exudado corporal con fines diagnósticos.
Objetivo: Obtener la cantidad adecuada de
muestra para ayudar al diagnóstico y
tratamiento.
Material: El específico para cada toma de
exudado. Torundas específicas de cultivo.
Método: Lavado de manos y uso de guantes.
Exudados faríngeos:
1.Confirmar que la persona no está tomando
antibióticos.
2.Informar al usuario sobre la técnica a realizar.
3.Indicar que abra la boca, sujetar la lengua con
un depresor.
4.Extraer una torunda estéril y pasarla por varios
puntos de la faringe, evitando tocar otras zonas
de la cavidad bucal.
5.Introducir la torunda en la funda de protección,
rotular la muestra y registrar.
Exudado umbilical:
1.Recoger exudado del ombligo,
con un cotonete del extremo del
cordón, antes de la aplicación
de pomadas o antibióticos.
Exudado nasal:
1.Con un cotonete, para cada orificio nasal, recoger
la muestra del interior del orifico nasal.
Exudado ótico:
1.Tirar del lóbulo hacía abajo y atrás (niños), y arriba y
atrás (adultos).
2.Recoger la muestra de cada oído introduciendo la
torunda y girándola suavemente.
Exudado conjuntival:
1.Abrir el ojo con gasas estériles sujetando el párpado.
2.Utilizando una torunda diferente para cada ojo,
previamente humedecida con suero fisiológico, se pasa
varias veces por la parte inferior de este, de ángulo interno a
externo.
Exudado de heridas:
1.Humedecer la zona con suero fisiológico, antes de tomar la
muestra.
2.Retirar la costra, si existe, para tomar la muestra del
exudado de debajo.
3.Si existe ampolla, limpieza de la zona, pinchar la ampolla
con aguja y jeringa estéril y tomar la muestra de esa zona.
Recogida de esputos
El objetivo de esta muestra es la recogida adecuada del esputo
para un posterior análisis en el laboratorio.
Las precauciones que se deben de tomar para la recogida de
esputos son: si este es para cultivo es preferible tomar la muestra
antes de administrar antibiótico, expectoración profunda al ser
posible matinal, comprobar que no hay saliva, si se necesita inducir
el esputo hablar antes con el médico y si la muestra es para un
estudio de microbacterias recoger dos muestras en dos días
consecutivos.
Esta prueba debe hacerla una enfermera o una auxiliar
que utilizará los siguientes
materiales:
agua o suero fisiológico, tubo estéril de fondo cónico,
guantes no estériles y etiquetas.
Si el esputo es inducido: nebulizador, suero fisiológico
al 20%, aspirador y recipiente de recogida de
secreciones si procede.
El personal debe lavarse las manos y ponerse guantes
no estériles.
El paciente tiene que estar incorporado, sentado y
explicarle como realizar la prueba para que se
produzca de una manera correcta.
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Procedimiento soprte nutricional

  • 1. Curso de planeamiento hospitalario para la respuesta a desastres PROCEDIMIENTO SOPORTE NUTRICIONAL MODULO 2 CURSO DE FORMACION AUXILIARES EN ENFERMERIA Y FARMACIA UNIVERSIDAD PENINSULA DE SANTA ELENA
  • 2. MANUAL DE PROCEDIMIENTOS NUTRICIONAL PARENTERAL Y ENTERAL SOPORTE NUTRICIONAL Definición: Es el proceso de atención al paciente captado mediante interconsultas, en el cual participa el equipo interdisciplinario de soporte nutricional (Médico, Enfermera, Farmacéutico y Nutricionista) y se decide la vía de alimentación a suministrar, ya sea enteral o parenteral.
  • 3. Objetivo: Brindar al paciente hospitalizado que lo requiera intervención eficaz y oportuna, de acuerdo a sus necesidades de soporte nutricional y condición patológica.
  • 4. La administración de nutrición parenteral: Proceso mediante el cual se brinda aporte energético, de macro y micronutrientes, a través de una vía intravenosa y de acuerdo a las necesidades nutricionales del paciente.
  • 5. Equipo: Material: - Material para la canalización de vía venosa - Bolsa de nutrición parenteral - Sistema de perfusión - Filtro antibacteriano - Bomba de perfusión - Guantes, mascarilla, bata y campo estéril - Gasas, esparadrapo hipo alérgico - Antiséptico
  • 6. • Procedimiento: Comprobar el funcionamiento correcto de la bomba de perfusión. Elegir el sistema adecuado a la bomba de perfusión que vayamos a utilizar. Proteger la bolsa de la luz, si no lo estuviera. Si no hay vía Central canalizada, solicitar la instalación de la vía correspondiente. Conectar el sistema a la bolsa de N.P. y purgarlo. Conectar al catéter del usuario Iniciar perfusión Aislar las conexiones con gasas estériles. Controlar el ritmo de la perfusión, el cual debe ser constante y continuo. En caso de interrupción, sustituir por glucosa 10% y comunicar al médico
  • 7. Observaciones: Administración por prescripción médica Cambiar el sistema de perfusión cada 24h. Control de constantes vitales y determinaciones analíticas según prescripción médica. Mantener la N.P. en el refrigerador hasta su utilización Antes de su administración debe estar a temperatura ambiente. Mantener conectada a la red eléctrica la bomba de perfusión siempre que sea posible para que no se agoten las baterías. Mantener la individualidad de la vía del catéter que está siendo utilizado para nutrición parenteral, a excepción de los lípidos que se pueden conectar en Y con aguja a la línea principal, estos se deben administrar en 24 horas y desechar el equipo. Reservar la vía distal para administrar la nutrición parenteral cuando se utiliza un catéter de dos o tres luces) No utilizar buretrol, ni equipos tipo multiuso, ni llaves de tres vías en la línea utilizada para administrar nutrición parenteral.
  • 8. No utilizar la luz del catéter de nutrición parenteral para la administración de medicamentos, ni realizar medidas de Presión Venosa Central o toma de muestras sanguíneas. Utilizar bomba de infusión para administrar la nutrición parenteral (aminoácidos y dextrosa), cambie los equipos cada 48 horas, en paciente pediátrico y neonatal cada 24 horas.) Un frasco o bolsa de nutrición parenteral u otra solución no debe permanecer instalado por más de 24 horas. Mantener refrigerada a 4°C la mezcla que no se esté administrando. Retirarla del refrigerador 15 minutos antes de su infusión. No reinstalar una solución que haya sido descontinuada o retirada.
  • 9.  Retirar el catéter utilizado para administrar nutrición parenteral sólo por orden del Servicio de Soporte Metabólico y Nutricional.  Observar la mezcla parenteral que se está administrando en busca de precipitaciones y turbidez • Registros: - Anotar fecha y hora del comienzo de la perfusión y finalización de la misma. - Indicar ritmo de la perfusión en la hoja de registro de enfermería
  • 10. Administración de nutrición enteral :Proceso de suministro de macro y micronutrientes, ya sea por vía oral o por sonda, de acuerdo a las necesidades nutricionales y condición patológica, haciendo uso de formulas enterales definidas
  • 11. Material: - Bolsa o jeringa de alimentación. - Vaso con agua. - Servilleta desechable. - Guantes desechables.
  • 12. Procedimiento: Lávese las manos y colóquese los guantes desechables. Informe al usuario del procedimiento. Coloque al usuario en posición sentado. Retirar el tapón. Conectar la jeringa vacía a la sonda. Aspirar comprobando si hay residuo Si no hay residuo, administrar la dieta muy lentamente o por medio de goteo al ritmo indicado Una vez introducida la dieta, administrar agua para el lavado. Tapar la sonda Retire el tapón de la sonda Conecte la jeringa vacía, y aspire la sonda, comprobando la ubicación y midiendo el residuo. Conecte la bolsa o jeringa con la dieta. Introduzca el alimento lentamente, si es por jeringa o gradúe el ritmo de goteo, si es por bolsa. Al término de la alimentación lavar la sonda con agua y volver a tapar.
  • 13. Observaciones: Antes de administrar la alimentación, compruebe la correcta colocación de la sonda. Mantenga al usuario sentado o incorporado en la cama hasta una hora después de la administración de la dieta. Administre la dieta lentamente para evitar intolerancias y diarrea. Evite la existencia de grumos en la dieta y la introducción de aire. Administre la dieta a temperatura ambiente. Suspenda la administración si hay náuseas y vómitos. • Registros: Anote tipo de dieta administrada y cantidad de la misma, así como cualquier tipo de incidencia ocurrida durante su administración
  • 14. ALIMENTACION ENTERAL POR GASTROSTOMIA Y YEYUNOSTOMÍA Definición: Nutrición e hidratación del usuario por vía gástrica o intestinal directa. • Objetivo: Proporcionar los nutrientes necesarios en usuario que no puede ser alimentado por vía oral, accediendo por vía gástrica o intestinal directa.
  • 15. Material: Sonda de alimentación enteral Bomba de perfusión Dieta prescrita Jeringa de 50 c.c. Vaso con agua Informar al usuario del procedimiento Comprobar que la dieta corresponde a la prescripción Purgar el sistema y conectarlo a la bomba tras comprobar su correcto funcionamiento
  • 16. Observaciones: -Si al aspirar se comprueba que existe residuo más del 50% de lo administrado, y volver a introducirlo, añadiendo de la nueva dieta hasta completar la cantidad prescrita. • Registros: - Anotar hora de administración, tipo de dieta, cantidad y si hay retención y cantidad
  • 17. • Definición: Es el procedimiento mediante el cual introducimos una sonda a través del orificio nasal, hasta el estómago. • Objetivo: - Eliminación de secreciones gástricas. - Eliminación de gas acumulado. - Administración de medicación. - Nutrición del usuario. SONDAJE NASOGASTRICO
  • 18. Material: - Sonda nasogástrica adecuada. - Lubricante hidrosoluble. - Guantes desechables. - Jeringa de alimentación. - Cinta adhesiva antialergénico o sistema de fijación prefabricado. - Gasas. - Bolsa colectora. - Tapón de sonda. - Estetoscopio.
  • 19. Procedimiento: El material específico dependerá de la necesidad del sondaje. Debemos asegurar que la totalidad del material se lleve en el carro o bandeja auxiliar Sitúese a la derecha del usuario si se es diestro. Identifique al usuario. Explíquele como puede colaborar. Coloque al usuario en decúbito supino, recostado en la cama y ésta en un ángulo de 45º. Mida la distancia de la porción de la sonda que será introducida, extendiéndola desde la punta de la nariz del usuario hacia el lóbulo de la oreja y de ahí hacia la parte baja del esternón. Marque la sonda.
  • 20.  Introduzca la sonda por uno de los orificios nasales.  Progrese lentamente la sonda.  Verifique que la sonda se encuentra en cavidad faríngea y no enrollada en la boca.  A partir de este momento, pida al usuario su colaboración deglutiendo saliva o bien un sorbo de agua, así irá conduciendo el trayecto de la sonda.  Deje de introducir la sonda al llegar a la señal establecida.  Inyectar 20 cc de aire por la sonda, al mismo tiempo que se ausculta el epigastrio, si la sonda está correctamente colocada, oiremos un ruido característico.  Fije la sonda con cinta adhesiva antialergénico a la nariz de forma longitudinal para evitar escoriaciones o use algún sistema prefabricado para tal fin.  Coloque bolsa, aspiración o tapón en la zona proximal, según el objetivo del procedimiento.
  • 21.
  • 22. Observaciones: - Utilice la sonda adecuada para cada caso. - No es necesario emplear una técnica estéril. - Asegúrese de que el usuario no posee prótesis dentarias. - En caso de que la sonda pasara a tráquea, el usuario tose y aparecen signos de hipoxia. Retire la sonda rápidamente.
  • 23. Mantenimiento: Limpieza diaria de la fosa nasal ocupada por la sonda con suero fisiológico. Cambie la fijación de la sonda tantas veces como sea necesario. Retire cada día unos cinco o seis centímetros la sonda y volver a introducirla para evitar posibles erosiones en la mucosa gástrica. Vigile la permeabilidad y limpieza de la sonda. Cambie la sonda cada ocho días como máximo (si la sonda es de silicona, se puede prolongar más días). Para evitar la entrada de aire al estómago, lo cual podría causar distensión, mantener tapado el extremo proximal de la sonda todo el tiempo, excepto al revisar la posición de la sonda, cuando alimente a través de ésta, o se efectúe irrigación. Registrar: Hora de colocación de la sonda. Modelo y calibre de la sonda. Motivo del sondaje. Aspecto y cantidad del contenido evacuado.
  • 24. RECOGIDA Y TOMA DE MUESTRAS OBTENCIÓN DE MUESTRA DE ORINA Definición: Obtención de muestra de orina con fines diagnósticos. Objetivo: Obtener la muestra de una manera adecuada para la disponer de resultados fiables. Material: Contenedores (estériles para cultivo; para orina de 24 horas; pequeños para sedimento), bolsas estériles (niños), gasas estériles, jabón neutro y gasas, guantes, jeringa y aguja y etiquetas identificativas.
  • 25. - Recogida de orina para urocultivo en adultos: Informar al usuario de la necesidad de una adecuada higiene previa a la recogida de orina, con agua y jabón, limpiando siempre de delante hacia detrás en dirección al ano. Recoger la orina de la primera micción del día, desechando la primera y última parte de ésta, en un contenedor estéril, siendo suficiente la cantidad de 5 a 10 cc. Tapar el bote sin tocar la parte interior. MÉTODO:
  • 26. Recogida de orina para urocultivo en niños: 1.Informar a los padres sobre la higiene adecuada como en el apartado anterior. 2.Utilizar bolsas estériles adhesivas que se colocan alrededor de la zona genital. 3.Para evitar contaminación de la muestra, la bolsa no debe permanecer más de 20 minutos aproximadamente. En el caso de no recoger en este tiempo la muestra se debe cambiar la bolsa repitiendo el lavado de la zona. 4.Una vez regida la muestra, retirar la bolsa y cerrarla adecuadamente, sin trasvasar la orina a otro recipiente.
  • 27. Recogida de orina para urocultivo en usuarios con sonda vesical: 1.Limpiar con antiséptico el extremo visible de la sonda, en dirección hacia la bolsa. 2.Pinzar la sonda y cuando el paciente muestre necesidad de miccionar, despinzar y recoger directamente la orina en el frasco estéril. 3.En el caso de que la bolsa colectora sea de uso prolongado, pinchar en la zona de látex determinada para tal fin y extraer la orina.
  • 28. Recogida de orina 24h: 1.Informar al usuario de la necesidad de una adecuada higiene. 2.Desechar la primera micción del día anterior a la entrega de la muestra. Recogiendo todas las micciones incluyendo la primera de la mañana del día de la entrega. 3.Recoger la orina en contenedores para 24 horas y guardarlos en la nevera (zona de verduras).
  • 29. ANÁLISIS DE ORINA MEDIANTE TIRA REACTIVA Definición: Actuaciones de enfermería para determinar algunos parámetros en la orina, con fines diagnósticos, utilizando una tira reactiva específica. Objetivo: Determinar la presencia de alteraciones en la composición y características de la orina (hematuria, glucosuria, cetonuria, proteinuria, etc.). Material: Tiras reactivas específicas, recipiente de orina, guantes y temporizador
  • 30. Método: 1.Explicar al usuario la técnica que debe aplicar para la recogida de orina y pedirle su colaboración. 2.Una vez recogida la muestra se introduce la tira en el recipiente durante dos segundos. 3.Extraer la tira del recipiente, comprobando que está completamente humedecida y eliminar el exceso de orina golpeando suavemente la tira sobre el borde del recipiente. No limpiar ni secar. Empezar a controlar el tiempo. 4.Esperar el tiempo necesario indicado en las instrucciones del envase de las tiras reactivas. 5.Comparar el color de la tira con la tabla de colores del frasco contenedor de las tiras. 6.Registrar el procedimiento, fecha, hora, incidencias y resultado en la historia de salud. Observaciones: Comprobar la conservación y la fecha de caducidad de las tiras.
  • 31. Definición: Obtención de muestra de sangre venosa para su posterior análisis en el laboratorio. Objetivo: Obtener una muestra de sangre de manera adecuada para efectuar los distintos análisis: Hematológico, bioquímico y microbiológico. Material: Guantes, compresor de goma, alcohol de 70º, algodón, tubos, jeringas y agujas de seguridad y etiquetas identificativas. EXTRACCIONES DE SANGRE
  • 32. Método: 1.Lavado de manos y uso de guantes. 2.Identificación del usuario y comprobación de los datos. 3.Verificar que el usuario esté en ayunas si precisa. 4.Identificar los tubos con la etiqueta del nº de registro y fecha de extracción. 5.Elección de la zona de punción más fácil, mediante la palpación de la vena: Flexura del codo o dorso de la mano y en el caso de palpación deficitaria se aconseja dejar el brazo colgando e indicar el movimiento abrir y cerrar la mano o masaje de frotamiento, ayudando con la mano a la circulación de retorno y/ o presión con los dedos en la zona de punción. 6.Colocar el compresor de goma sin apretar en exceso. 7.Desinfección de la zona de punción seleccionada. 8.Fijar la vena mediante estiramiento de la piel y tejido subcutáneo.
  • 33. •Realizar la punción con un ángulo de 30º – 40 º y con el bisel hacia arriba utilizando: Sistema vacutainer (fijar la campana para evitar que se mueva en el intercambio de los tubos) o uso de palomilla o jeringa y aguja (con esta técnica conviene dejar una pequeña separación entre el émbolo y el cuerpo de la jeringa, la aspiración será lenta) . •Retirar el compresor e indicar al usuario que permanezca durante 3–5 minutos presionando en la zona de punción con el algodón y el brazo estirado, para favorecer la hemostasia y evitar la aparición de hematoma. En el caso de pacientes anticoagulados, aumentar el tiempo de presión de 10 a 15 minutos. •Colocar los tubos en la gradilla en posición vertical mezclando bien la sangre en los tubos que contienen anticoagulante. •Desechar el material utilizado en el contenedor adecuado.
  • 34. Educación al paciente y familia: Informar sobre la importancia de presionar la zona de punción, para evitar hematoma, y sangrado, con el brazo estirado. Se le informará cuándo y dónde recoger los resultados. Observaciones: Aplicar a todos los usuarios las medidas específicas de prevención de riesgos biológicos. No agitar los tubos secos. Cuando se realizan extracciones a domicilio mantener la verticalidad en el transporte de los tubos. Nunca encapsular las agujas.
  • 35. RECOGIDA DE EXUDADOS Definición: Obtención de muestra de un exudado corporal con fines diagnósticos. Objetivo: Obtener la cantidad adecuada de muestra para ayudar al diagnóstico y tratamiento. Material: El específico para cada toma de exudado. Torundas específicas de cultivo. Método: Lavado de manos y uso de guantes.
  • 36. Exudados faríngeos: 1.Confirmar que la persona no está tomando antibióticos. 2.Informar al usuario sobre la técnica a realizar. 3.Indicar que abra la boca, sujetar la lengua con un depresor. 4.Extraer una torunda estéril y pasarla por varios puntos de la faringe, evitando tocar otras zonas de la cavidad bucal. 5.Introducir la torunda en la funda de protección, rotular la muestra y registrar. Exudado umbilical: 1.Recoger exudado del ombligo, con un cotonete del extremo del cordón, antes de la aplicación de pomadas o antibióticos.
  • 37. Exudado nasal: 1.Con un cotonete, para cada orificio nasal, recoger la muestra del interior del orifico nasal. Exudado ótico: 1.Tirar del lóbulo hacía abajo y atrás (niños), y arriba y atrás (adultos). 2.Recoger la muestra de cada oído introduciendo la torunda y girándola suavemente.
  • 38. Exudado conjuntival: 1.Abrir el ojo con gasas estériles sujetando el párpado. 2.Utilizando una torunda diferente para cada ojo, previamente humedecida con suero fisiológico, se pasa varias veces por la parte inferior de este, de ángulo interno a externo. Exudado de heridas: 1.Humedecer la zona con suero fisiológico, antes de tomar la muestra. 2.Retirar la costra, si existe, para tomar la muestra del exudado de debajo. 3.Si existe ampolla, limpieza de la zona, pinchar la ampolla con aguja y jeringa estéril y tomar la muestra de esa zona.
  • 39. Recogida de esputos El objetivo de esta muestra es la recogida adecuada del esputo para un posterior análisis en el laboratorio. Las precauciones que se deben de tomar para la recogida de esputos son: si este es para cultivo es preferible tomar la muestra antes de administrar antibiótico, expectoración profunda al ser posible matinal, comprobar que no hay saliva, si se necesita inducir el esputo hablar antes con el médico y si la muestra es para un estudio de microbacterias recoger dos muestras en dos días consecutivos. Esta prueba debe hacerla una enfermera o una auxiliar que utilizará los siguientes
  • 40. materiales: agua o suero fisiológico, tubo estéril de fondo cónico, guantes no estériles y etiquetas. Si el esputo es inducido: nebulizador, suero fisiológico al 20%, aspirador y recipiente de recogida de secreciones si procede. El personal debe lavarse las manos y ponerse guantes no estériles. El paciente tiene que estar incorporado, sentado y explicarle como realizar la prueba para que se produzca de una manera correcta.