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Méthodes et difficultés de
    l’échantillonnage
 des anophèles vecteurs
       sur le terrain


      Jocelyn RATOVONJATO
 Groupe de recherche sur le paludisme

       Atelier sur le paludisme
             24 Avril 2003
Objectifs

• Faire l’inventaire des espèces présentes
• Etudier leur abondance et leur comportement :
         –   Agressivité => transmission
         –   Préférences trophiques
         –   Endo-exophagie
         –   Endo-exophilie
Les méthodes d’échantillonnage des
        vecteurs du paludisme
• Stade imaginal
     •   Capture manuelle sur gîtes de repos
     •   Pulvérisation d’insecticide à l’intérieur des maisons
     •   Echantillonnage direct sur appâts (homme ou animal)
     •   Pièges lumineux type CDC
     •   Piège OBET
     •   Moustiquaires – pièges
     • Echantillonnage par des pièges de sorties

• Stades aquatiques
     • Récipient émaillé
     • Filets
     • Louche
Méthodes manuelles
– Intérêts
    • Vecteurs capturés vivants => identification possible

– Types
   • Tubes à essai ou tube à hémolyse (densité faible)
   • Aspirateur (forte densité)


– Difficultés
    •   Non quantitative
    •   Temps de recherche long
    •   Proportion de moustiques échappant aux chercheurs
    •   Accessibilité au lieux de repos (variable selon le stade gonotrophique)
    •   Résultats dépend du zèle du chercheur
Récolte par aspersion
                                       d’insecticide

•       Intérêts

    –       simple
    –       évalue la densité anophélienne endophile


•       Difficultés

    –       échappement des moustiques             Cases ouvertes,
                                                   séparations internes imparfaites
    –       refus de la pulvérisation d’insecticide
    –       moustiques abîmés => empêche différenciation des formeS
    –       possibilité d’apparition d’un effet répulsif de l’insecticide utilisé
Capture sur appâts humains

•   Intérêts

     –   simple, exige peu de matériels
     –    évalue la population agressive
     –   densité vecteurs faible : captureurs - appâts
     –   densité forte : un appât humain + deux assistants captureurs

•   Difficultés

     –   facteurs personnels =>roulement des captureurs et des appâts
     –   recrutement d’effectifs assez nombreux
     –   surveillance stricte des captureurs
     –   problème éthique : exposition aux maladies vectorielles
Moustiquaires – pièges

• Intérêts
   – méthode quantitative
   – effort de changer la méthode de capture directe sur homme
   – principe simple <= moustiquaire
       L’homme appât n’a pas à rester éveiller


• Difficultés
       • exige une surveillance stricte
       • calcul de l’ouverture de la moustiquaire – piège
           – ouverture large     moustique mâle peuvent y entrer
             surestimation de l’anthropophilie
Pièges à odeur
                                    Type OBET



Intérêts
           étude de la préférence trophique
           méthode visant à éliminer le contact appât/vecteur


Difficultés
           matériel lourd à mettre en œuvre
Echantillonnage dans les abris
                          extérieurs

– Types
    • Abris naturels : étables…
    • Abris artificiels : Puits de MUIRHEAD-THOMSON


– Difficultés
    • Non utilisable dans des endroits à risque d’inondation
    • Existence de nappe d’eau souterraine près de la surface
Pièges lumineux type CDC


•   Intérêts
     – établir la composition de la faune anophélienne
     – échantillonnage à l’intérieur des maisons



•   Difficultés
     – Afrique : utilisation limitée en présence des lumières parasites
Biologie des adultes
            Objectifs                Endophagie    Endophilie/      répartition
                           Parité    /exophagie     exophilie    spatio-temporelle
Méthodes


par aspirateur                  -       -              +               +/-
capture sur homme              +        +               -               +
vaporisation insecticide        -       -              +                +
pièges - lumineux              +       +/-              -               +
puits Muirhead-Thomson          -       -              +                +
OBET                           +        -               -               +
Moustiquaires-pièges           +/-     +/-              -               +
Pièges de sorties          -            -             +/-               +
Echantillonnage des vecteurs et
          évaluation de la transmission
•    Méthodes

    1.   capture sur homme (intérieur et extérieur)
    2.    pièges – lumineux
    3.   (Vaporisation)


•     Intérêts
    –     direct : calcul du P/H/nuit (ma) => capacité vectorielle
    –     indirect : taux d’infectivité des moustiques (s)
Méthodes d’ échantillonnage des
      stades aquatiques
Pourquoi échantillonner les
                stades aquatiques ?

— Intérêts
–   déterminer espèces présentes
–   évaluer l’efficacité d’un programme de lutte anti-larvaire
–   détermination les gîtes de ponte des adultes
–   déterminer si stades aquatiques sont présents après une lutte anti-adulte
–   vecteurs dont le stade imaginal est difficile à collecter

— Les   méthodes disponibles
          – prélèvement direct par pipette
          – puisage avec de récipients émaillés
          – filet

– Les difficultés
          – taille inadéquate des gîtes
          – données quantitatives difficiles à interpréter
          – larves de certains espèces difficile à collecter
Discussion - Conclusion


•   Echantillonnage = fraction de la population
     ⇒ Représentativité des données collectées ?


•   Choix des méthodes à utiliser
     – Selon objectif et contexte surtout épidémiologique


•   Echantillonnage des vecteurs sur le terrain : travail d’ équipe
Bibliographie
1. Mosquito ecology – Field Sampling Methods, Second edition - M W
SERVICE – Vector Biology and Control, Liverpool, Liverpool School of
Tropical Medecine

2. OMS – Guide d’Entomologie appliqué à la lutte antipaludique dans la
région africaine de l’OMS

3. Duchemin JB, Tsy JM, Rabarison P, Roux J, Coluzzi M, Costantini C
Zoophily of Anopheles arabiensis and An. gambiae in Madagascar
demonstrated by odour-baited entry traps.
Med Vet Entomol. 2001 Mar;15(1):50-57.

4. http ://www.Pasteur.fr/santé/socpathex/pdf/2001n2b/Dia.pdf

5.   http://pest.cabweb.org/PDF/BER/BER88-5/503.pdf

6. A new odour baited- trap to collect host seeking mosquitoes
Costantini et al . Parassitologia 35 : 5 – 9 ; 1993.

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Méthodes et difficultés de l'échantillonnage des anophèles vecteurs sur le terrain

  • 1. Méthodes et difficultés de l’échantillonnage des anophèles vecteurs sur le terrain Jocelyn RATOVONJATO Groupe de recherche sur le paludisme Atelier sur le paludisme 24 Avril 2003
  • 2. Objectifs • Faire l’inventaire des espèces présentes • Etudier leur abondance et leur comportement : – Agressivité => transmission – Préférences trophiques – Endo-exophagie – Endo-exophilie
  • 3. Les méthodes d’échantillonnage des vecteurs du paludisme • Stade imaginal • Capture manuelle sur gîtes de repos • Pulvérisation d’insecticide à l’intérieur des maisons • Echantillonnage direct sur appâts (homme ou animal) • Pièges lumineux type CDC • Piège OBET • Moustiquaires – pièges • Echantillonnage par des pièges de sorties • Stades aquatiques • Récipient émaillé • Filets • Louche
  • 4. Méthodes manuelles – Intérêts • Vecteurs capturés vivants => identification possible – Types • Tubes à essai ou tube à hémolyse (densité faible) • Aspirateur (forte densité) – Difficultés • Non quantitative • Temps de recherche long • Proportion de moustiques échappant aux chercheurs • Accessibilité au lieux de repos (variable selon le stade gonotrophique) • Résultats dépend du zèle du chercheur
  • 5. Récolte par aspersion d’insecticide • Intérêts – simple – évalue la densité anophélienne endophile • Difficultés – échappement des moustiques Cases ouvertes, séparations internes imparfaites – refus de la pulvérisation d’insecticide – moustiques abîmés => empêche différenciation des formeS – possibilité d’apparition d’un effet répulsif de l’insecticide utilisé
  • 6. Capture sur appâts humains • Intérêts – simple, exige peu de matériels – évalue la population agressive – densité vecteurs faible : captureurs - appâts – densité forte : un appât humain + deux assistants captureurs • Difficultés – facteurs personnels =>roulement des captureurs et des appâts – recrutement d’effectifs assez nombreux – surveillance stricte des captureurs – problème éthique : exposition aux maladies vectorielles
  • 7. Moustiquaires – pièges • Intérêts – méthode quantitative – effort de changer la méthode de capture directe sur homme – principe simple <= moustiquaire L’homme appât n’a pas à rester éveiller • Difficultés • exige une surveillance stricte • calcul de l’ouverture de la moustiquaire – piège – ouverture large moustique mâle peuvent y entrer surestimation de l’anthropophilie
  • 8. Pièges à odeur Type OBET Intérêts étude de la préférence trophique méthode visant à éliminer le contact appât/vecteur Difficultés matériel lourd à mettre en œuvre
  • 9. Echantillonnage dans les abris extérieurs – Types • Abris naturels : étables… • Abris artificiels : Puits de MUIRHEAD-THOMSON – Difficultés • Non utilisable dans des endroits à risque d’inondation • Existence de nappe d’eau souterraine près de la surface
  • 10. Pièges lumineux type CDC • Intérêts – établir la composition de la faune anophélienne – échantillonnage à l’intérieur des maisons • Difficultés – Afrique : utilisation limitée en présence des lumières parasites
  • 11. Biologie des adultes Objectifs Endophagie Endophilie/ répartition Parité /exophagie exophilie spatio-temporelle Méthodes par aspirateur - - + +/- capture sur homme + + - + vaporisation insecticide - - + + pièges - lumineux + +/- - + puits Muirhead-Thomson - - + + OBET + - - + Moustiquaires-pièges +/- +/- - + Pièges de sorties - - +/- +
  • 12. Echantillonnage des vecteurs et évaluation de la transmission • Méthodes 1. capture sur homme (intérieur et extérieur) 2. pièges – lumineux 3. (Vaporisation) • Intérêts – direct : calcul du P/H/nuit (ma) => capacité vectorielle – indirect : taux d’infectivité des moustiques (s)
  • 13. Méthodes d’ échantillonnage des stades aquatiques
  • 14. Pourquoi échantillonner les stades aquatiques ? — Intérêts – déterminer espèces présentes – évaluer l’efficacité d’un programme de lutte anti-larvaire – détermination les gîtes de ponte des adultes – déterminer si stades aquatiques sont présents après une lutte anti-adulte – vecteurs dont le stade imaginal est difficile à collecter — Les méthodes disponibles – prélèvement direct par pipette – puisage avec de récipients émaillés – filet – Les difficultés – taille inadéquate des gîtes – données quantitatives difficiles à interpréter – larves de certains espèces difficile à collecter
  • 15. Discussion - Conclusion • Echantillonnage = fraction de la population ⇒ Représentativité des données collectées ? • Choix des méthodes à utiliser – Selon objectif et contexte surtout épidémiologique • Echantillonnage des vecteurs sur le terrain : travail d’ équipe
  • 16. Bibliographie 1. Mosquito ecology – Field Sampling Methods, Second edition - M W SERVICE – Vector Biology and Control, Liverpool, Liverpool School of Tropical Medecine 2. OMS – Guide d’Entomologie appliqué à la lutte antipaludique dans la région africaine de l’OMS 3. Duchemin JB, Tsy JM, Rabarison P, Roux J, Coluzzi M, Costantini C Zoophily of Anopheles arabiensis and An. gambiae in Madagascar demonstrated by odour-baited entry traps. Med Vet Entomol. 2001 Mar;15(1):50-57. 4. http ://www.Pasteur.fr/santé/socpathex/pdf/2001n2b/Dia.pdf 5. http://pest.cabweb.org/PDF/BER/BER88-5/503.pdf 6. A new odour baited- trap to collect host seeking mosquitoes Costantini et al . Parassitologia 35 : 5 – 9 ; 1993.