Méthodes et difficultés de l'échantillonnage des anophèles vecteurs sur le terrain - Présentation de la 1ère édition du Cours international « Atelier Paludisme » - RATOVONJATO Jocelyn, Médecin, IP de Madagascar.
Méthodes et difficultés de l'échantillonnage des anophèles vecteurs sur le terrain
1. Méthodes et difficultés de
l’échantillonnage
des anophèles vecteurs
sur le terrain
Jocelyn RATOVONJATO
Groupe de recherche sur le paludisme
Atelier sur le paludisme
24 Avril 2003
2. Objectifs
• Faire l’inventaire des espèces présentes
• Etudier leur abondance et leur comportement :
– Agressivité => transmission
– Préférences trophiques
– Endo-exophagie
– Endo-exophilie
3. Les méthodes d’échantillonnage des
vecteurs du paludisme
• Stade imaginal
• Capture manuelle sur gîtes de repos
• Pulvérisation d’insecticide à l’intérieur des maisons
• Echantillonnage direct sur appâts (homme ou animal)
• Pièges lumineux type CDC
• Piège OBET
• Moustiquaires – pièges
• Echantillonnage par des pièges de sorties
• Stades aquatiques
• Récipient émaillé
• Filets
• Louche
4. Méthodes manuelles
– Intérêts
• Vecteurs capturés vivants => identification possible
– Types
• Tubes à essai ou tube à hémolyse (densité faible)
• Aspirateur (forte densité)
– Difficultés
• Non quantitative
• Temps de recherche long
• Proportion de moustiques échappant aux chercheurs
• Accessibilité au lieux de repos (variable selon le stade gonotrophique)
• Résultats dépend du zèle du chercheur
5. Récolte par aspersion
d’insecticide
• Intérêts
– simple
– évalue la densité anophélienne endophile
• Difficultés
– échappement des moustiques Cases ouvertes,
séparations internes imparfaites
– refus de la pulvérisation d’insecticide
– moustiques abîmés => empêche différenciation des formeS
– possibilité d’apparition d’un effet répulsif de l’insecticide utilisé
6. Capture sur appâts humains
• Intérêts
– simple, exige peu de matériels
– évalue la population agressive
– densité vecteurs faible : captureurs - appâts
– densité forte : un appât humain + deux assistants captureurs
• Difficultés
– facteurs personnels =>roulement des captureurs et des appâts
– recrutement d’effectifs assez nombreux
– surveillance stricte des captureurs
– problème éthique : exposition aux maladies vectorielles
7. Moustiquaires – pièges
• Intérêts
– méthode quantitative
– effort de changer la méthode de capture directe sur homme
– principe simple <= moustiquaire
L’homme appât n’a pas à rester éveiller
• Difficultés
• exige une surveillance stricte
• calcul de l’ouverture de la moustiquaire – piège
– ouverture large moustique mâle peuvent y entrer
surestimation de l’anthropophilie
8. Pièges à odeur
Type OBET
Intérêts
étude de la préférence trophique
méthode visant à éliminer le contact appât/vecteur
Difficultés
matériel lourd à mettre en œuvre
9. Echantillonnage dans les abris
extérieurs
– Types
• Abris naturels : étables…
• Abris artificiels : Puits de MUIRHEAD-THOMSON
– Difficultés
• Non utilisable dans des endroits à risque d’inondation
• Existence de nappe d’eau souterraine près de la surface
10. Pièges lumineux type CDC
• Intérêts
– établir la composition de la faune anophélienne
– échantillonnage à l’intérieur des maisons
• Difficultés
– Afrique : utilisation limitée en présence des lumières parasites
12. Echantillonnage des vecteurs et
évaluation de la transmission
• Méthodes
1. capture sur homme (intérieur et extérieur)
2. pièges – lumineux
3. (Vaporisation)
• Intérêts
– direct : calcul du P/H/nuit (ma) => capacité vectorielle
– indirect : taux d’infectivité des moustiques (s)
14. Pourquoi échantillonner les
stades aquatiques ?
— Intérêts
– déterminer espèces présentes
– évaluer l’efficacité d’un programme de lutte anti-larvaire
– détermination les gîtes de ponte des adultes
– déterminer si stades aquatiques sont présents après une lutte anti-adulte
– vecteurs dont le stade imaginal est difficile à collecter
— Les méthodes disponibles
– prélèvement direct par pipette
– puisage avec de récipients émaillés
– filet
– Les difficultés
– taille inadéquate des gîtes
– données quantitatives difficiles à interpréter
– larves de certains espèces difficile à collecter
15. Discussion - Conclusion
• Echantillonnage = fraction de la population
⇒ Représentativité des données collectées ?
• Choix des méthodes à utiliser
– Selon objectif et contexte surtout épidémiologique
• Echantillonnage des vecteurs sur le terrain : travail d’ équipe
16. Bibliographie
1. Mosquito ecology – Field Sampling Methods, Second edition - M W
SERVICE – Vector Biology and Control, Liverpool, Liverpool School of
Tropical Medecine
2. OMS – Guide d’Entomologie appliqué à la lutte antipaludique dans la
région africaine de l’OMS
3. Duchemin JB, Tsy JM, Rabarison P, Roux J, Coluzzi M, Costantini C
Zoophily of Anopheles arabiensis and An. gambiae in Madagascar
demonstrated by odour-baited entry traps.
Med Vet Entomol. 2001 Mar;15(1):50-57.
4. http ://www.Pasteur.fr/santé/socpathex/pdf/2001n2b/Dia.pdf
5. http://pest.cabweb.org/PDF/BER/BER88-5/503.pdf
6. A new odour baited- trap to collect host seeking mosquitoes
Costantini et al . Parassitologia 35 : 5 – 9 ; 1993.
