Ce document renseigne sur l'hyperéosinophile notamment lors de la présence d'un parasite dans l'organisme.

1. Université Salah boubnider Constantine 3
Faculté de Médecine
Département de pharmacie

2. Plan:
1. Le polynucléaire éosinophile
1.1. définition
1.2. Morphologie de l’Eosinophile
1.3. L’hyperéosiniphilie
1.4. Principales fonctions des éosinophiles
2. Les étiologies d’une hyperéosinophilie
3. Cinétique de l’hyperéosinophilie
4. Conduite à tenir devant une hyperéosinophilie
4.1. Antécédents médicaux et épidémiologiques
4.2. Données cliniques:
4.3. Examens complémentaires
4.4. Diagnostic parasitologique
4.5. Stratégie thérapeutique
5. Conclusion

3. 1. Le polynucléaire éosinophile

4. 1.1. Définition:
- Cellule appartenant à la lignée granulocytaire de
répartition essentiellement tissulaire (< 1 % dans sang
circulant)
- cellule mobile, capable de phagocytose
- Produit dans la moelle osseuse

5. 1.2. Morphologie de l’Eosinophile
Eosinophile (12 – 17µm) Eosinophile coloré (MGG)
caractérisé par :
 sa coloration par l’éosine
Cette propriété tinctoriale est due la présence dans le cytoplasme de protéines
cationiques spécifiques donnant l’aspect rouge orangé sur frottis sanguin coloré
 la présence d'un noyau bilobé
 l’expression de diverses molécules de surface

6. Le polynucléaire éosinophile contient des granules
caractéristiques formés de protéines spécifiques:
•major basicprotein(MBP)
•oesinophil cationic protein(ECP)
•eosinophil derived neurotoxin(EDN)
•eosinophil peroxidase(EPO). Etc..
Ces protéines éosinophiles jouent un rôle dans:
•la réaction inflammatoire et allergique (IgE)
•la défense contre les parasites
Eosinophile

7. 1.3. L’hyperéosiniphilie
•Taux normal : le nombre des éosinophile sanguin varie de 0.05 à
0.45 G/L ( 50 à 450 /mm3)
•Hyperéosinophilie: Polynucléaires éosinophiles circulants > 0,5 G/L
sur la numération formule sanguine.

8. 1.4. Principales fonctions des éosinophiles:
 Fonctions cytotoxique:
Action anti parasitaire ( principalement antihelminthique)via le
mécanisme d’ADCC (cytotoxicité anticorps dépendante ),
conduisant à la libération des protéines cationiques: MBP, ECP,
EDN et EPO
 Fonction pro- inflammatoires:
en cas: asthme, allergie, atteinte cutanées ou digestives

10. 2. Les étiologies d’une hyperéosinophilie
 les infections parasitaires:
 Les helminthes: l’hyperéosinophilie sanguine lors des maladies
parasitaires est due aux helminthes (rond, plat, segmenté ou non).
l’intensité de l’éosinophilie est plus marquée au moment de la migration
larvaire
 Certaines larves d’insectes: larves de mouches (myiases)
 Protozoaires: rarement
exemple: Isospora belli et Diemtamoeba fragilis peuvent être
responsables d’une discrète hyperéosinophilie

11.  causes non parasitaires:
- allergiques: asthme, rhinite allergique, …
- toxiques: médicamenteuse, ou autre ( manipulation des
substances toxiques)
- hématologiques: hémopathies malignes
- dermatologiques
- cancéreuses
- maladies de système

12. 3. Cinétique de l’hyperéosinophilie

13. - Après un temps de latence, le taux des éosinophiles augmente (correspond à
la migration et à la maturation larvaire).
- Après un maximum, la courbe redescend. C’est la courbe en « coup
d’archet » de Lavier.
Exemple: Ascaridiose, ankylostomiase
courbe de Lavier typique dans l’ascaridiose

14. Dans certaines parasitoses (filarioses, distomatoses, larva
migrans), l’éosinophilie reste longtemps élevée Courbe de Lavier en plateau
- Eosinophilie massive et persistante
- Parasites intra tissulaires
- Exemple: toxocarose, trichinillose

15. Eosinophilie évolue de manière oscillante cyclique
Exemple: l’anguillulose, en raison de cycles internes d’auto-infestation, la
courbe de l’éosinophile a un aspect particulier, oscillante, caracteristique de
la parasitose.

16. 4. Conduite à tenir devant une hyperéosinophilie

17. 4.1. Antécédents médicaux et épidémiologiques
Les informations recueillies au cours de l’interrogatoire du patient sont
indispensables pour l’exploration d’une hyperéosinophilie
- le lieu de naissance
- la profession actuelle et passée du patient : métiers exposant à des toxiques,
militaires de carrière, agriculteur,…
- le lieu de résidence : habitat urbain ou rural ;
- la présence éventuelle d’un potager et la protection de son accès vis-à-vis des
animaux ;
- la présence d’animaux de compagnie (chats et chiens) et leur statut sanitaire;
- les habitudes alimentaires : consommation de viande (cheval, sanglier, bœuf)
ou de poissons crus ou peu cuits, de salades sauvages (pissenlits) ou venant
de potagers familiaux ;
- la prise de médicaments, qu’elle soit : transitoire ou chronique

18. 4.2. Données cliniques:
Examen clinique complet du patient :
- Existence de manifestations cliniques: même passées: prurit cutané ou
anal, lésions cutanées, toux, dyspnée, fièvre, diarrhée, douleurs
abdominales, signes urinaires, …
- certains signes sont pathognomoniques, comme l’observation d’une
reptation sous-conjonctivale vermineuse signant une loase.

19. 4.3. Examens complémentaires
basés sur tous les renseignements obtenus par des examens effectués en
fonction du contexte clinique
 Marqueurs de l’inflammation (VS et CRP)
- éosinophilies allergiques les marqueurs de l’inflammation sont
habituellement à un niveau normal.
- un syndrome inflammatoire est constamment observé au cours de certaines
helminthiases :
Exemple:
fasciolose, à la phase d’invasion ,
schistosomoses à S. mansoni ou S. japonicum, à la phase d’invasion
 l’imagerie médicale

20. 4.4. Diagnostic parasitologique:
En fonction des antécédents et des symptômes, certains examens sont
indispensables, pour la recherche des différentes parasitoses.
• Parasitose intestinale :
- examen parasitologique des selles:
examen direct avec et sans coloration : (si possible au moins 3
examens à des jours différents)
examen après concentration
culture des selles

21. Exemples:
Ascaris lumbricoides Ankylostoma duodenale
Trichuris trichiura Fasciola hepatica

22. - Test de Graham: Scotch test anal
Enterobius vermicularis

23. - Technique de Baermann et Lee : extraction des larves rhabditoïdes (
larves de Strongyloides stercoralis)
Hygrotropisme et
thermotropisme
T°: 45°C
3 heures

24. • Parasitose urinaire (bilharziose) :examen parasitologique des urines.
• Parasitose pulmonaire (paragonimose) :examen des crachats.
• Filariose : recherche de microfilaires dans le sang (loase, filariose
lymphatique) ou dans la peau (onchocercose).
• Parasitose tissulaire (larva-migrans,hydatidose) : sérodiagnostic
Œuf de Schistosoma heamatobium
Œuf de Paragonimus sp

25. • Recherche de sarcoptes
Une hyperéosinophilie peut accompagner une gale, surtout au cours des
formes disséminées comme la gale norvégienne.
Sarcoptes scabiei

26. • Sérologies parasitaires
- Sérologies parasitaires des helminthiases: possibilité des réactions croisées
qui le plus souvent ne permettent pas d’incriminer formellement la
parasitose suspectée.
- Plusieurs techniques peuvent être utilisées: immuno enzymatiques,
immunofluorescences, immunoprécipitations, ….

27. 4.5. Stratégie thérapeutique
 Après traitement de la parasitose, l’hyperéosinophilie disparait
progressivement
 En l’absence de cause et en cas de persistance de l’hyperéosinophilie
pendant plus de 6 mois, un syndrome d’hyperéosinophilie idiopathique
doit être envisagé : traiter par corticoïdes

28. 5. Conclusion
- La prise en charge diagnostique et thérapeutique d’un patient présentant une
hyperéosinophilie persistante est souvent délicate.
- L’exploration d’une hyperéosinophilie a visée de diagnostic parasitologique
plusieurs arguments interrogatoire épidémiologique et médical,
examen clinique, examen parasitologique et autres examens complémentaires
- L’absence d’une hyperéosinophilie ne permet pas d’écarter d’hypothèse d’une
hélminthose.