La Dra. Gende presentó sobre sustancias naturales para el control de enfermedades de las abejas como la loque americana, la varroosis y la nosemosis. Analizó aceites esenciales y extractos vegetales y sus efectos antibacterianos y acaricidas. Los resultados mostraron que sustancias como el aceite de laurel tienen actividad contra Paenibacillus larvae. También evaluó el uso de propóleos y su baja toxicidad para las abejas.
1. “SUSTANCIAS NATURALES
PARA EL CONTROL DE ENFERMEDADES DE LAS
ABEJAS (APIS MELLIFERA)”
Dra. Liesel Brenda Gende
V JORNADAS DE MICROBIOLOGIA CLINICA, INDUSTRIAL Y AMBIENTAL
DE LA PROVINCIA DE BUENOS AIRES
Fotografia Ariel Perissinotti
2. "If the bee disappeared off the surface of the globe
then man would only have four years of life left.
No more bees, no more pollination, no more
plants, no more animals, no more man.“
Albert Einstein
3. Cuadro de enfermedades
apícolas
Cría abierta Cría operculada
ESTADIO HUEVO LARVA PUPA ABEJA ADULTA
DURACIÓN 3 6 12
(en días)
LOQUE EUROPEA LOQUE
AMERICANA ACARIOSIS
NOSEMOSIS
El conocer la etapa en que la CRIA YESIFICADA
VARROOSIS
patología se manifiesta es de
importancia no sólo en el AMEBIASIS
tratamiento sino en la forma de VARROOSIS
VIROSIS
aplicación del medicamento INTOXICACIONES
4. Loque americana
Nosemosis Quimioterapia
Antibióticos
Varroosis Acaricidas de síntesis
Formulaciones comerciales disponibles
o recetas caseras
Alternativa natural Sustancias naturales
5. Sustancias naturales
Aceite
esencial
Cortar y pesar hojas de laurel
Hidrodestilación
Análisis e identificación de
compuestos activos
13. Resultados de ensayos de campo
Inoculación artificial
100 control
aceite esencial
antibiótico 83,91±13,39 a
80
% de larvas enfermas
60
40
31,49 ±5,84 b
20 Inóculo inicial alto 19,06 ±6,43 b
0
10 15 20 25 30 35
días desde infección experimental
15. Análisis con propóleos in vitro
Método de difusión en agar
Placas con agar MYPGP +
Suspensión de P. larvae en
superficie del medio
20 µl del extracto
Las placas se incubaron 48 hs a 35±0,5 ºC
16. MONITOREO
200000
12000
150000 10000 Pudo observarse:
8000 una relación entre
el grado de enfermedad
Nº UFC/abeja
100000
UFC/abeja
6000
diagnosticado a campo
50000
4000
y el número de UFC/abeja
2000 en las colonias.
0
0
-2000
0 1 2 3 0 1
grado de enfermedad grado de enfermedad
Apiario tratado con antibiótico: Grado 0: Colmenas sin
- Enmascaramiento de los signos de LA sintomatología clínica con altos
- Aumento en los niveles de esporas por conteos, estado subclínico de la
abeja en los apiarios. patología.
17. SARDEGNA Si se pudo establecer un umbral
2009-2010 3000 esporas/abeja
15000
10000
UFC/bee
5000
0
apiary number
18. Análisis con propóleos
30
25
La dosis letal 50 del
20
72hs propóleos en abejas es
% Mortalidad
15 48hs
mayor a 50.000 ppm, lo que
24hs
10 indica que resulta muy poco
5
tóxico.
0
50000 25000 12500 6250 3125 control
Concentración de propóleos
Colmenas tratadas con propóleos por asperjado: 14 esporas/abeja
Colmenas tratadas con propóleos en jarabe: 33 esporas/ abeja
Colmenas control (no tratadas): 180 esporas/ abeja
19. Películas biodegradables
Películas proteicas con distintos porcentajes de aceite
acorde a las CIM determinadas previamente.
5 mm
25. Varroa destructor
Mini-Colmenas
Control Tratadas
17,44% ± 9,39 vs 32,85% ± 12,1
Causas de baja eficacia:
Insuficiencia de sólo tres tratamientos,
Baja concentración de las dosis aplicadas
Bajo número de dosis
Posible variabilidad introducida por el método utilizado para el
conteo de ácaros caídos, ya que las minicolmenas no presentaban
pisos técnicos especializados
32. MUCHAS GRACIAS !!!
Dra. Gende, Liesel B.
Facultad de Ciencias Exactas y
Naturales (UNMDP)
CONICET
lgende@mdp.edu.ar
Notas del editor
Los aceites esenciales son las fracciones líquidas volátiles, que contienen las sustancias responsables del aroma de las plantas, destilables por arrastre con vapor de agua o hidrodestilación. Están ampliamente distribuidos en el mundo vegetal; especialmente en algunas flias como Lauráceas, Rutáceas, Mirtáceas, Umbelíferas , Verbenáceas, Labiadas entre otras. Se han testeado alrededor de 150 A.E. y sus componentes, mostrando un efecto acaricida muy diverso. El efecto sobre V. destructor puede ser tanto atractante/repelente y/o Tóxico.
El aceite esencial fue diluido en etanol 96º hasta obtener las concentraciones deseadas colocándose 2 ml de cada solución en el fondo de una cápsula de Petri (150 x 20 mm). Se utilizaron concentraciones entre 2,5 y 20 µl de aceite esencial por cápsula. Se dejó evaporar totalmente el solvente y se agregaron 5 ácaros hembra adultas y 5 abejas obreras jóvenes en cada cápsula. Se realizaron controles con alcohol y 5 repeticiones por tratamiento. Las abejas se alimentaron mediante dispositivos con candy y agua. Las abejas y los ácaros fueron mantenidos a 29 ºC y 65% de HR y se cuantificó su mortalidad después de 24, 48 y 72hs de tratamiento. Se utilizó el método probit para estimar las CL50, tanto para ácaros como para abejas y se calcularon los índices de selectividad.
Para el ensayo, se utilizaron cápsulas de Petri (90 x 15 mm) provistas con un papel de filtro absorbente en el fondo y una entretapa de malla metálica. En cada cápsula se colocaron 5 ácaros hembra y 5 abejas obreras adultas. Una vez que los ácaros se hallaban sobre el cuerpo de las abejas, se aplicaron a través de la malla metálica 1 ml de solución de extractos al 0,5; 1; 2; 4; 7 y 10 % (p/v) usando un pulverizador manual. Un dispositivo con candy y agua fue colocado dentro de la cápsula de Petri modificada, a modo de alimento para las abejas (Figura 4.3). Cápsulas tratadas con solución alcohólica al 55% se incluyeron como control. Se mantuvieron 5 replicas por tratamiento. Todas las unidades experimentales se incubaron en estufa a 29 ± 0.5ºC y 70% HR. Las abejas y ácaros muertos se contabilizaron a las 24 y 48h después del inicio de los tratamientos. Todas las abejas, vivas o muertas durante el tratamiento, fueron inspeccionadas individualmente por la presencia de ácaros.
Los extractos blandos previamente obtenidos fueron resuspendidos en etanol 55% en orden de reducir el efecto del etanol sobre los organismos experimentales. Las soluciones fueron elaboradas considerando el contenido de humedad del extracto blando. Las concentraciones usadas fueron 1,25; 2,5; 5; 7,5 y 10% (p/v). Las aplicaciones tópicas se realizaron mediante una adaptación de la metodología utilizada por Garedew y col. (2002). Por cada tratamiento, 6 ácaros fueron ubicados sobre un papel de filtro de 3 x 3 cm en una cápsula de Petri, sobre los cuales se aplicaron 200 μl de una concentración dada (Figura 3.9). Cada tratamiento fue detenido después transcurrido el tiempo de contacto permitido, removiendo los ácaros con el papel de filtro de la cápsula. Luego, los parásitos fueron transferidos a una cápsula de Petri limpia (90 x 15 mm). Con el propósito de observar el efecto del tiempo de contacto con la solución de propóleos sobre la actividad de V. destructor , se expuso a los ácaros en contacto con la solución durante 15, 30, 45, 60, 75 y 90 s. Así, los ácaros permanecieron en contacto con cada concentración de tratamiento durante 6 tiempos de contacto crecientes diferentes. Estos tiempos de exposición fueron utilizados al evaluar la toxicidad de una de las muestras de propóleos testeadas, con el objetivo de determinar el tiempo mínimo de contacto requerido para que los ácaros respondan de forma diferencial. Los ácaros expuestos a los extractos obtenidos de las demás muestras permanecieron en contacto con la solución únicamente durante 30s. Se realizaron 5 réplicas por cada unidad experimental. Controles fueron realizados tratando a los ácaros con solución de etanol al 55% durante los diferentes tiempos de tratamiento. Todos los ensayos se llevaron a cabo a temperatura ambiente (22 °C) y los ácaros tratados se incubaron a 28 ± 0.5°C y 60% H.R. La actividad de los ácaros se observó bajo lupa de disección a los 10 min, 30 min, 60 min y cada 1 hora por las siguientes 7 horas después del inicio de cada tratamiento. Cada ácaro individual fue clasificado como móvil o inactivo; fue considerado inactivo cuando no mostró movimiento de las patas o alguna parte del cuerpo al ser estimulado. Si un ácaro permaneció inactivo por 8 horas después del inicio de los tratamientos, fue considerado muerto.
Dispositivo 1: el dispositivo consistió de cápsulas de Petri de 9 cm de diámetro diseñadas de modo de quedar divididas en cuatro zonas como muestra la Figura 3.7. En extremos opuestos de la cápsula se colocó una pupa de abeja en estadio ojos púrpura, una de ella se embebió con 8 µl de solución alcohólica de propóleos al 10% y la otra, sólo con la solución alcohólica madre (al 55%). Al iniciar el ensayo, un único ácaro hembra adulto se colocó sobre la zona central del dispositivo. Se mantuvieron 20 dispositivos, cada uno provisto de una pupa con propóleos y otra sin propóleos en cada extremo y, 20 tratamientos con las pupas sin propóleos en ambos extremos, a modo de control. El test prosperó durante 90 minutos a temperatura ambiente y en oscuridad. Luego de transcurrido este tiempo, se registró la posición de cada ácaro de acuerdo a las zonas de división de los dispositivos. De acuerdo a Kraus y col (1994), los efectos de orientación más pronunciados pueden ser observados durante este período de tiempo. Dispositivo 2: El otro dispositivo se diseñó dividiendo la cápsula de Petri de 9 cm de diámetro también en 4 zonas, pero sólo se colocó, en uno de los extremos, un disco de papel de filtro absorbente de 1 cm de diámetro embebido con la solución de propóleos (20 µl), y se la dejó evaporar, como se muestra en la figura 3.8. Al inicio del ensayo, un único ácaro se dispuso en la zona central del dispositivo. Se mantuvieron 20 dispositivos provistos de un disco de papel con solución de propóleos en un extremo; y otros 20 dispositivos con un disco de papel embebido en solución alcohólica a modo de control. El test prosperó durante 90 minutos a temperatura ambiente y en oscuridad. Luego de transcurrido este tiempo, se registró la posición del ácaro de acuerdo a las zonas de división de cada dispositivo individual.
Las minicolmenas de experimentación (25 x 45 x 15 cm) Veinte días previos al inicio de los tratamientos, las minicolmenas fueron infestadas artificialmente con el ácaro V. destructor . Se adicionaron 30 ácaros por minicolmena. El colmenar experimental se dividió en dos grupos de 6 minicolmenas cada uno. El primer grupo recibió tres tratamientos, a intervalos de 7 días, con solución azucarada alcohólica de propóleos al 10 %. Las soluciones fueron elaboradas homogeneizando el extracto alcohólico de propóleos en jarabe de azúcar 2:1 (2 partes de azúcar y 1 de agua), de modo que la concentración final sea de 10% de propóleos en solución alcohólica de 55%. Las soluciones se asperjaron en igual cantidad por cada cara de cuadro con abejas (2 ml) presentes en las colmenas. El volumen asperjado fue calculado de acuerdo a la metodología utilizada para el asperjado de soluciones de ácido oxálico sobre cuadros con abejas (Imdorf y col. 2003). El segundo grupo recibió tratamiento control asperjando la misma cantidad por cuadro con abejas pero sólo de solución azucarada alcoholada. Se contabilizaron semanalmente los ácaros caídos durante los tratamientos y, una semana luego de concluido el ensayo completo, se realizó un tratamiento con un acaricida de síntesis de elevada eficacia conocida (Cumavar®). El ensayo culminó un mes después con el conteo de los ácaros caídos por la acción del cumafós. La eficacia de los tratamientos se calculó como el cociente entre el número de ácaros caídos durante tres aplicaciones sucesivas sobre el total (caídos durante los tratamientos + caídos por el tratamiento con cumafós).
El nivel de infestación en las colonias del grupo control difirió del grupo de colonias tratadas (F[1,9] = 5,486; p = 0,044). El promedio de ácaros presentes en el grupo control fue de 45 ± 22,25 mientras que el grupo tratadas presentó un valor promedio de 84,8 ± 33,95 ácaros por colonia de abejas. Ambos valores resultados significativamente diferentes entre sí. La eficacia de los tratamientos resultó significativamente diferente con respecto al control (F[1,9] = 5,676; p = 0,041). La eficacia media en el grupo control fue de 17,44% ± 9,39 y en el grupo tratadas de 32,85% ± 12,1 (Tabla 6.6). Los resultados indican una mortalidad diferencial de los ácaros parasitando colonias de abejas expuestos a tres tratamientos sucesivos con soluciones de propóleos. Al inicio de los tratamientos, las minicolmenas presentaron un promedio de 5,71 cuadros con abejas. Después de los tratamientos, las colonias del grupo tratadas mostraron una leve reducción de la población de abejas. Después de la primera semana de tratamiento con la solución de propóleos aplicada en forma asperjada, se observó la desaparición de dos reinas (colmenas 8 y 9), mientras que una tercera colonia (colmena 10) perdió su reina después del segundo tratamiento. Otra de las observaciones realizadas fue la abundante presencia de ácaros caídos por los tratamientos con piezas corporales faltantes o alguna de ellas roídas por las abejas (Figura 6.5). Esto indica la presencia del comportamiento de grooming en las abejas tratadas con soluciones de propóleos. Otro punto a tener en cuenta es que 3 de las 5 colmenas tratadas por asperjado con extractos de propóleos en solución azucarada perdieron sus reinas, debido talvez a la perturbación de los olores naturales de la colonia con el agregado de jarabe y propóleos. Las minicolmenas contienen colonias con un número limitado de abejas obreras que, de acuerdo a la estimación de la población de abejas de Burgett y Burikam (1985), sería de no más de 3.000 abejas obreras. Es probable que, debido a este escaso número poblacional, la colonia entera sufra cualquier tipo de perturbación de un modo mucho más agudo que una colonia de tamaño normal que presenta entre 30.000 a 60.000 abejas.