1. IIII Sistemas Ambientales y Sociedades
I.E.S. Santa Clara.
1ºBACHILLER
Dpto Biología y Geología.
http://biologiageologiaiessantaclarabelenruiz.wordpress.com/bachillerato-internacional/sistemas-ambientales-y-
sociedades/

4. 2.3.1. USO DE CLAVES DICOTÓMICAS

7. ¿ CÓMO ESTUDIAR UNA BIOCENOSIS ?
Una población es la unidad (por ejemplo: conjunto de individuos de la
especie Quercus ilex) de la que se quiere obtener información. En cambio,
una muestra es una parte elegida que representa un determinado porcentaje
de la población y que esla que se utiliza para inferir a la población en general

8. Población silvestre= Conjunto de individuos de una especie que habita en un área
determinada.
Los métodos disponibles para caracterizar la abundancia de las poblaciones varían en
función de las características de la especie a estudiar.
2.3.2. ¿ CÓMO ESTUDIAR UNA BIOCENOSIS ?
Abundancia: cantidad de
individuos o biomasa

9. ESTIMACIÓN DEL TAMAÑO DE UNA POBLACIÓN
TÉCNICAS DE MUESTREO PARA ESTIMAR EL TAMAÑO
DE UNA POBLACIÓN:
Estimar el tamaño o densidad de una población contando el número de individuos
que hay en un área determinada. Es posible:
Si los individuos son grandes y el área es pequeña.
Técnicas de muestreo de una población cuando el área es grande . Se realiza un
MUESTREO DE LA POBLACIÓN para ello se determina el tamaño de una población
en un área pequeña y se usa esta información para estimar la población total. Se
presupone:
La muestra es representativa de toda la población.
Se deben de tomar varias muestras para limitar el efecto de que una muestra
no sea representativa.

10. Los métodos para estimas el tamaño de un población son los siguientes:
 Censo: se recuenta el nº total de individuos de una población .Sólo es factible en
el caso de poblaciones pequeñas y aisladas, donde no hay migraciones de
individuos.
 Muestreo: de la densidad (nº de individuos por unidad espacial). Este dato
multiplicado por la extensión del área ocupada por la población arroja una
estimación del número total de individuos.
 Método de captura/recaptura: Se utiliza para poblaciones de micro mamíferos
y reptiles. Mediante trampas se capturan individuos que son marcados y
devueltos a su ambiente. Después de cierto período de tiempo, suficiente para
que los marcados se mezclen con el resto de la población se realiza una nueva
captura y se establece la proporción entre animales marcados y no marcados.
Conocido el número de individuos marcados inicialmente se puede determinar el
tamaño de la población a partir de dicha proporción.
2.3.2.1. MEDIDA DE LA ABUNDANCIA

11. DISTRIBUCIÓN ESPACIAL DE LAS MUESTRAS.

12. DISTRIBUCIÓN ESPACIAL DE LAS MUESTRAS.
Aleatorio Estratificado Sistemático

13. Cada elemento de la población tiene
la misma probabilidad de ser elegido.
Apropiado cuando el ambiente de
muestreo sea homogéneo.
Por ejemplo, si se quiere conocer la
abundancia promedio de Quercus
ilex en un bosque mediterráneo
Previa a la entrada al bosque se
debe cuadricular el croquis o mapa y,
del total de estos cuadros, se debe
seleccionar, aleatoriamente,un
determinado número de cuadros que
serán muestreados.
Todos los elementos tienen la misma
probabilidad de ser elegidos.
Muestreo al azar simple

14. Muestreo aleatorio sistemático
Se elige un individuo al azar y a partir de él, a intervalos constantes, se eligen
los demás hasta completar la muestra.
Ejemplo: Si tenemos una población formada por 100 elementos y
queremos extraer una muestra de 25 elementos, en primer lugar
debemos establecer el intervalo de selección que será igual a 100/25 = 4.
A continuación elegimos el elemento de arranque, tomando
aleatoriamente un número entre el 1 y el 4, y a partir de él obtenemos los
restantes elementos de la muestra.
2, 6, 10, 14,..., 98

15. Se realiza cuando el ambiente a muestrear es heterogéneo y la probabilidad de encontrar
individuos es diferente en las distintas partes del hábitat.
La población en estudio se separa en subgrupos o estratos que tienen cierta homogeneidad
(Figura C). Después de la separación, dentro de cada subgrupo se debe hacer un muestreo
aleatorio simple.
Muestreo al azar estratificado

16. Se divide la población en clases o estratos y se escoge, aleatoriamente, un
número de individuos de cada estrato proporcional al número de componentes
de cada estrato.
Ejemplo: En una fábrica que consta de 600 trabajadores queremos tomar
una muestra de 20. Sabemos que hay 200 trabajadores en la sección A, 150
en la B, 150 en la C y 100 en la D

17. El requisito principal para aplicar este método de muestreo es el conocimiento
previo de la información que permite subdividir a la población.
Ejemplo: Un bosque mediterráneo, 3 tipos de bosque y zona de transición entre
estos tipos de bosque. Eso quiere decir que no todo el bosque es homogéneo.
Puede ser que en alguno de los tipos de bosque la abundanciade Q. ilex sea
mayor, o viceversa. Si se conoce los tipos de bosque, se podría aplicar el
muestreo aleatorio estratificado, donde los estratos serían los tipos de bosque y
en los cuales se debe muestrear aleatoriamente.
Se subdivide el hábitat en estratos para que la muestra esté constituida por
elementos de cada uno de ellos. Un estrato es una porción del terreno de
características homogéneas. La ubicación de las unidades muestrales en cada
estrato se elige al azar.

18. Se aplica cuando todos los individuos que forman parte de la población se encuentran
naturalmente agrupados, ya sea por características del hábitat o por causas
comportamentales.
El muestreo se realiza eligiendo varios de esos grupos al azar.
Muestreo por grupo o conglomerados (“clusters”)

22. Depende de objetivos, abundancia, movilidad y detectabilidad de los
objetos y su arreglo espacial.
Cuadradas: simplifican el diseño. Útiles para
cuantificar objetos fijos (nidos, heces, animales
muertos, alimento disponible, composición
florística)
ansectos: largas y estrechas.
Circulares: menor perímetro por área (minimizan
sesgo de borde)
FORMA Y TAMAÑO DE LAS MUESTRAS

24. Muestra lineal o rectangular para contar el número de organismos a lo
largo de un recorrido a través del área de estudio.
Para especies conspicuas, grandes o visibles.
Puede ser usado para estudiar cambios en los organismos como
resultado de un gradiente medioambiental, tales como la zonación de
una pendiente, de una orilla rocosa, de un pastizal o un bosque, o la
medida del cambio de la composición de las especies desde una
fuente de contaminación.
Transectos

25. A. Transecta lineal simple (Unidimensional)
Se registran organismos en proporción a su abundancia.
Se usan para cuantificar la densidad de vegetación u objetos fijos.
Se coloca una cinta métrica o cuerda en dirección del gradiente
medioambiental siendo las especies que son tocadas por la cuerda las
que son muestreadas
Se recorre una ruta y registran los animales observados o escuchados.
Para el estudio de comunidades vegetales
que se desarrollan a lo largo de sistemas
lineales, se pueden estudiar mediante
recorridos longitudinales tomando
registros de los ejemplares observados.
Por lo que la densidad se expresa como
individuos pro kilómetro u otra medida de
longitud.

26. B. Transectos de ancho variable
Se cuentan los animales detectados y se estiman las distancias entre
cada animal y la línea base (ancho a).
Bueno cuando: el número de animales detectados disminuye
gradualmente con la distancia y para poblaciones esparcidas porque
aprovecha todas las observaciones.

27. C. Transectos de banda
Un área en forma rectangular , de longitud y ancho conocidos, que el
investigador ubica al azar sobre la comunidad bajo estudio.
Se colocan dos transectos lineales paralelos separados, normalmente de
0,5 ó 1 metro. Las especies que quedan dentro son muestreadas.

28. El observador se desplaza a lo largo de una línea recta de longitud
x y registra el número de individuos o rastros a ambos lados.
El ancho de banda (a) se establece a priori.
D= n
L*2a
Premisas:
Franjas paralelas a ambos lados de la línea donde todos los objetos son
registrados hasta una distancia umbral x (caída abrupta de la
detectabilidad).
La ubicación de los objetos es fija y no se afecta por el conteo.
Se determina exactamente la distancia desde la línea base hasta el animal.
Detección depende de: actividad del animal, vocalización audible o
reacción de escape ante el observador.
L
a

29. Es ampliamente utilizado por la rapidez con se mide y por la mayor heterogeneidad
con que se muestrea la vegetación.
Un transecto es un rectángulo situado en un lugar para medir ciertos parámetros de
un determinado ecosistemas. El tamaño de los transectos puede ser variable y
depende del grupo que se vaya a medir.

31. El método de los cuadrantes es una de las formas más comunes de muestreo de
vegetación.
Los cuadrantes hacen muestreos más homogéneos y tienen menos impacto de borde
en comparación a los transectos. El método consiste en colocar un cuadrado sobre por
ejemplo, la vegetación, para determinar la densidad, cobertura y frecuencia de las
plantas. Puede estar dividido en subsecciones.
Cuadrantes

32. TALLA DEL CUADRANTE ÁREA DEL CUADRANTE ORGANISMOS
10 x10 cm 0.01 m2
Muy pequeños
organismos tales como
líquenes en árboles,
troncos, muros o algas.
0,5 x 0,5 m 0.25 m2
Pequeñas plantas:
hierba, pequeños
arbustos,. Animales
sésiles o de lento
movimiento (mejillones,
lapas)
1.0 x1.0 m 1 m2
Plantas de talla media:
grandes arbustos
5.0 x5.0 m 25 m2
Árboles maduros
LA TALLA DEL CUADRANTE SE ESCOGE DEPENDIENDO DE LA TALLA DE LOS
ORGANISMOS QUE SE VAN A MUESTREAR.

33. Cuando el número de especies encontradas es
estable, se han encontrado todas las especies en el
área. En el ejemplo 8 muestras son suficientes.
Si se incrementa la talla del cuadrante (desde talla 10
cm a 15 cm, a 20 cm etc) cuando el número de
especies encontradas alcanza un valor constante
entonces se tiene la talla del cuadrante que se debe
usar.
¿CÓMO COLOCAR CUADRANTES?
1. CUADRANTES ALEATORIOS:
Mapear el área a muestrear.
Dibujar una cuadrícula sobre el área de
estudio.
Numerar cada cuadro.
Usar una tabla de números aleatorios para
identificar qué cuadrantes se necesitan
muestrear.

34. ¿CÓMO COLOCAR CUADRANTES?
1. MUETREO ESTRATIFICADO AL AZAR:
Se realiza para muestreos de áreas dónde hay
diferencias de zonas.
Tratar cada área por separado.
Dibujar una cuadrícula en cada área.
Numerar los cuadrantes de cada área.
Usar una tabla de números aleatorios para
identificar qué cuadrantes se necesitan
muestrear.

35. MUESTREOS SIGUIENDO UN GRADIENTE : LA ZONACIÓN

37. MÉTODO DE CAPTURA , MARCAJE Y RECAPTURA

38. MÉTODO DE CAPTURA , MARCAJE Y RECAPTURA

39.  Pretende estimar la población de una especie en un lugar , una muestra compuesta por n1animales es tomada de la población, los animales
son entonces marcados para su futura identificación y luego son puestos en libertad. Luego de un tiempo que permita la mezcla de los
individuos marcados y no marcados, se extrae una segunda muestra de n2 animales entre los que habrá m2 marcados. Asumiendo que la
proporción de marcados en la segunda muestra es un razonable estimador de la proporción poblacional desconocida, se puede de:
 La población es cerrada (la mortalidad, la emigración, la natalidad y la inmigración son despreciables), por lo que N es constante.
 Todos los animales tienen la misma probabilidad de ser capturados en la primera muestra.
 La marca no afecta la probabilidad de captura de un animal.
 La segunda muestra es una muestra aleatoria simple, o sea que cualquiera de las posibles muestras tiene igual oportunidad de ser
elegida.
 El tipo de marcas usadas para registrar los animales debe permitir poder hacer un seguimiento del animal, no se puede confundir con
las de otros estudios que se hayan o estén realizando en la zona, y no debe borrarse, no debe ser dañino para el animal.
Dadas esas condiciones, el tamaño de la población estimada sería:
N= n1 x n2 / m2
Donde:
N =Numero de la población total estimada.
n1= Número total de animales capturados y marcados en la primera visita.
n2 = Número total de animales capturados en la segunda visita.
m2 = Número de animales capturados en la primera visita que luego fueron recapturados en la segunda visita.
MÉTODO DE ANÁLISIS DE LINCOLN-PETERSEN

40. N
n1
N
n2m

42. ES LA ABUNDANCIA POR UNIDAD ESPACIAL (SUPERFICIE O VOLUMEN), suele
expresarse en distintas formas:
 Densidad: número de plantas por metro cuadrado. Se utiliza cuando la especie está
formada por individuos que pueden cuantificarse fácilmente.
 Biomasa de organismos por unidad espacial: se utiliza cuando los individuos son
muy pequeños . La biomasa se estima mediante el peso seco de los organismos.
 Cobertura porcentual: Es la variable más utilizada para cuantificar la abundancia de
especies vegetales, en lugar de números individuales debido que crecen y se
extienden. Es la proporción de la superficie muestreada recubierta por la proyección
vertical de la vegetación.
 Frecuencia: es la probabilidad de encontrar una especie en un área dada.
1.5. MEDIDA DE LA ABUNDANCIA EN PLANTAS

43. RECUBRIMIENTO: es el porcentaje de
sustrato recubierto en proyección vertical
por una especie. El RECUBRIMIENTO
TOTAL puede superar el 100%, ya que es la
suma de los recubrimientos de todas las
especies presentes. Es importante no
confundirlo con COBERTURA (conjunto de
especies). La cobertura tiene un máximo del
100%,
Puede ser estimado comparando el área muestreada (figura superior) y
posteriormente puede crearse una escala de 0 a 5.

44. DENSIDAD DE LA POBLACIÓN= Corresponde al número de individuos de la misma
especie que habitan en una unidad de superficie o de volumen. Ejemplo: 65 ovejas /
Km2
. Esta propiedad permite tener un parámetro sobre el tamaño de la población y su
relación con el espacio.
Por ejemplo, se quiere estudiar el puntaje que alcanzan los alumnos universitarios en la
asignatura de Educación Física. La escala de notas va del 0% al 100%, obteniéndose la
siguiente colección de valores:
75- 82 - 68 - 90 - 62 - 88 - 88 - 73
60- 93 - 71 - 59 - 75 - 87 - 74 - 62
95- 78 - 82 - 75 - 94 - 77 - 69 - 74
89- 83 - 75 - 95 - 60 - 79 - 97 - 97
78- 85 - 76 - 65 - 73 - 67 - 88 - 78
62- 76 - 73 - 81 - 72 - 63 - 76 - 75
DENSIDAD DE LA POBLACIÓN, FRECUENCIA
PORCENTUAL.

45. El modo más sencillo de agrupar los datos, es mediante una tabla de datos, que
indique, para cada uno de los valores de la colección, el número de veces que aparece,
es decir, su frecuencia de aparición.
DISTRIBUCIONES DE
FRECUENCIA.
Frecuencia absoluta (ni):
corresponde al número de veces
que se observa dicho valor, o en
otras palabras al número de veces
que se presenta un cierto dato.
Para agrupar los datos por su
frecuencia, se deben seguir los
siguientes pasos:
Se ordenan los datos en orden
creciente o decreciente.
Se cuenta la frecuencia absoluta de
cada valor (cuántas veces se repite
cada magnitud)
De acuerdo a los datos anteriores,
se observa que el número menor es
59 y el número mayor es 97.

46. Frecuencia absoluta Acumulada (Ni ): es la suma de las frecuencias absolutas de cada
intervalo. La frecuencia acumulada hasta el último intervalo es igual a la frecuencia total
de toda la distribución.
Si se amplía la Tabla de distribución del ejemplo, la frecuencia absoluta acumulada se
obtiene sumando el número que está escrito en una línea con el número de la línea
siguiente.

48. Frecuencia relativa (fi): >corresponde a la razón (división) entre la frecuencia absoluta
(ni) y el número total (N) de individuos de la población.

50. Frecuencia relativa porcentual: es la frecuencia relativa expresada en
porcentajes (%)
Pi = f i ● 100
N

52. COBERTURA PORCENTUAL.
COBERTURA: el área o porcentaje del sustrato cubierto por una especie vista desde
arriba y en forma perpendicular es, por tanto, una medida que se fundamenta en el tamaño
de los individuos y no en su abundancia como ocurre con la densidad.
En el caso de las mediciones de cobertura, los resultados se pueden equiparar
directamente cuando la unidad en que se expresan son porcentajes
Mide la “extensión” de la vegetación en términos de superficie de
suelo cubierta por las plantas; en general se expresa en porcentaje o
fracción del área de estudio. Más en detalle, la cobertura de una
especie se define a partir de la superficie que ocupa su proyección
sobre el suelo -la de su área basal o la de su copa en el caso de un
árbol-. No hay
que confundir la cobertura con la densidad o número de individuos
por unidadde superficie

53. PORCENTAJE DE COBERTURA
Método A:
En un cuadrante de un metro cuadrado dentro de una parcela de 5-10m2
a la vez. Su
parcela debería albergar entre 5-10 parcelas más pequeñas, de un metro cuadrado.
Se Calculará una especie a la vez. Después calcular la cobertura de una planta, s
coloca un pedacito de cinta adhesiva encima para que puedan identificar las plantas que,
ya, han contado.
Se coloca un marco en el suelo. De pie en el exterior del marco, se mira hacia abajo,
hacia la superficie del terreno.
Se localiza una planta, y se calcula su cobertura total (cantidad del terreno que está
cubierta por la biomasa de la planta) en relación con el área total, que es el 100%. Se
registra la especie y el porcentaje de cobertura en la hoja de datos. Se calculan todas
las plantas de la misma especie, asegurándose de que colocan el pedacito de cinta
adhesiva en cada una después de haberla contado.
Se calcula todas las plantas dentro del marco de 1m x 1m. Se registran especies y
porcentaje de cobertura en la hoja de datos.
Se retiran una pequeña muestra de plantas sin identificar para su análisis con una clave
dicotómica.
Ejemplo de un marco de 1m x 1m usado en el método A:

54. PORCENTAJE DE
COBERTURA
Método b:
Mida 25 metros colocando la cinta
métrica en el suelo. Asegúrense de
que la cinta esté lo más tensa
posible.
Empezando en el 0, sigan la línea
hasta que den con la primera
planta. Registren la especie, el
punto donde empieza y el punto
donde acaba en la hoja de datos.
Por ejemplo, una planta que
empiece en el punto 1.1 m de la
cinta, y termine en 1.4 m.
Repitan el proceso hasta que
lleguen a la marca de los 25 m en la
cinta métrica, sin olvidar registrar la
especie de la planta, el punto donde
empieza y el punto donde acaba.

57. Los métodos disponibles para caracterizar la abundancia de las poblaciones varían en
función de las características de la especie a estudiar.
2.3.3. ESTIMACIÓN DE LA BIOMASA.
CÁLCULO DE BIOMASA EN PLANTAS:
Es simple pero destructivo.
PARA VEGETACIÓN BAJA Y HIERBA:
Se crea una talla adecuada de cuadrante.
Recolectar todo l a vegetación sobre el cuadrante.
Lavarlo para eliminar cualquier insecto.
Secarlo a una temperatura entre 60º-70º hasta alcanzar un peso constante. El agua
contenido puede variar enormemente por lo que la masa de agua debería ser
eliminado y la masa darse en peso seco.
Para que los resultados sean más exactos se debería repetir 3 a 4 veces para obtener
un significativo valor por unidad de superficie.
El resultado puede ser extrapolado a el total e biomasa.
PARA ÁRBOLES Y ARBUSTOS:
Seleccionar los árboles y arbustos para realizara la muestra.
Recolectar las hojas desde 3 a 5 ramas.
Repetir los pasos dde 3 a 6 veces.

58. 2.3.3. ESTIMACIÓN DE LA BIOMASA.
CÁLCULO DE LA PRODUCTIVIDAD PRIMARIA
En ecosistemas acuáticos (marinos y de agua potable).
La productividad primaría se calcula desde la concentración de oxígeno:
 Se rellenan dos botellas con agua del ecosistema.
 Una de las botellas es de vidrio transparente y la otra está cubierta de un vidrio
oscuro que le impide a la luz llegar.
 Se mide la cantidad de oxígeno, se utiliza el método de Winkler, se apunta como
mg de oxigeno por litro de agua.
 Se plantan igual cantidad de plantas de las mismas especies en cada botella.
 Ambas botellas deben ser selladas con agua y cubiertas (el aire no debería estar
presente)
 Se incuba durante varias horas.
 Se mide la cantidad de oxígeno en ambas botellas. Se comparan con la original
cantidad de oxígeno.
 La botella con luz realizará la fotosíntesis y la respiración, mientras que la de
cristal sólo realizará la respiración.

59. 2.3.3. ESTIMACIÓN DE LA BIOMASA.
La productividad primaria de un ECOSISTEMA TERRESTRE:
 Se eligen tres tamaños iguales de cuadrantes con similar vegetación (ejemplo:
hierba)
 El primer cuadrante (A) es cosechado inmediatamente y la biomasa medida.
 El segundo cuadrante (B) en cubierto con un plástico negro no hay fotosíntesis
sólo respiración).
 El tercer cuadrante (C ) se deja tal y como se encuentra.
 Después de un tiempo exitosos (dependiendo de la estación del año) ,
cuadrantes B y C son cosechados y la biomasa medida.
 A partir de ella se calculan todos los demás parámetros.
PRODUCTIVIDAD SECUNDARÍA:
 Se les alimenta con una cantidad conocida de alimento.
 La comida y el herbívoro son pesados.
 Después de un tiempo, la comida que permanece, el herbívoro y las heces son
pesadas.

60. Importa tanto la variedad
como la cantidad de
individuos de cada especie
Biodiversidad
(Río de Janeiro,
1992)
Variedad de especies que
hay en la Tierra
Diversidad de ecosistema
del planeta
Ecosistemas terrestres y
acuáticos
Diversidad genética
Los genes de los individuos
permiten la evolución, se
enriquecen por cruzamiento y
permiten su adaptación
2.3.4. BIODIVERSIDAD.

61. biodiversidad
• Importancia:
especies => relaciones => autorregulación => estabilidad
““ Ventaja:Ventaja: ante una perturbación ( introducción nueva especie oante una perturbación ( introducción nueva especie o
extinción de una especie) el ecosistema con mayor diversidad => másextinción de una especie) el ecosistema con mayor diversidad => más
posibilidad de amortiguar los efectos de la perturbación y alcanzar elposibilidad de amortiguar los efectos de la perturbación y alcanzar el
equilibrioequilibrio””
Cada especie es el resultado de millones de años de evolución y cada unaCada especie es el resultado de millones de años de evolución y cada una
es única e irrepetible, posee un bagaje genético que le permite ocupar unes única e irrepetible, posee un bagaje genético que le permite ocupar un
nicho ecológico determinadonicho ecológico determinado
La diversidad biológica da estabilidad al ecosistema, debido al alto nº de
relaciones causales que se dan entre las especies
Las especies raras son importantes, ante la variación de condiciones
ambientales podrían ampliar su nicho ante la extinción de especies dominantes
 aumento de la estabilidad del ecosistema

62. BIODIVERSIDAD
Cambios en las condiciones medioambientales
Extinción de especies
Sobre todo k estrategas
5 extinciones masivas5 extinciones masivas
Finales del Ordovícico: trilobites y otrosFinales del Ordovícico: trilobites y otros
Finales del Devónico: trilobites y otrosFinales del Devónico: trilobites y otros
Finales del Paleozoico: casi todas las especiesFinales del Paleozoico: casi todas las especies
Finales del Triásico: reptilesFinales del Triásico: reptiles
Finales del Cretácico: dinosauriosFinales del Cretácico: dinosaurios
Índice de
extinción
Una especie cada
500 – 1000 años

63. BIODIVERSIDAD
Aumento de
la población
Aumento de
la población
PROBLEMA de la
pérdida de la
BIODIVERSIDAD
Provocan
Incremento
del uso de
recursos
Incremento
del uso de
recursos
Cuyas causas se
resumen en
SobreexplotaciónSobreexplotación Alteración y
destrucción de
hábitats
Alteración y destrucción
de
hábitats
Deforestación con fines
madereros, sobrepastoreo,
caza y pesca, coleccionismo y
comercio ilegal de especies
protegidas
Introducción y
sustitución de
especies
Introducción y
sustitución de
especies
Cambios en el uso del suelo,
extracción masiva del agua,
fragmentación de hábitats
naturales, construcción de
obras públicas,
contaminación del agua y el
aire, cambio climático e
incendios
Introducción de especies
foráneas y sustitución de
especies naturales por
otras obtenidas por
selección artificial

64. BIODIVERSIDAD
Medidas para evitar la pérdida de
biodiversidad.
 Proteger las áreas geográficas de especies amenazadas: crear
espacios protegidos.
 Realizar estudios sobre el estado de los ecosistemas. Como los
indicadores PER (Presión, estado, respuesta): la Huella ecológica y el
Índice del Planeta Viviente.
 Decretar y respetar las leyes promulgadas para la preservación de
especies y ecosistemas (Convenio CITES).
 Crear bancos de genes y de semillas de las especies
amenazadas.
 Fomentar el turismo ecológico y la educación ambiental.

65. Principales amenazas para la biodiversidad
1. Destrucción y fragmentación del hábitat.
La Unión Mundial para la Conservación de la Naturaleza (IUCN) estima que alrededor del 85% de las especies en
peligro están en esta condición debido a la pérdida de su hábitat.
Conversión a la agricultura
Casi todas las prácticas agrícolas requieren la eliminación de la vegetación original y su reemplazo por cultivos y
animales domesticados.
Prácticas forestales
Desde hace siglos, los bosques han sido eliminados para obtener combustible, materiales de construcción, para
despejar el terreno para la agricultura, etc. Estas prácticas se conocen como deforestación, concepto que se
refiere a la destrucción de gran parte de la tierra boscosa. Por otro lado, además de servir como cobijo a
animales y plantas, los bosques proporcionan muchos otros servicios al ecosistema, modificando el clima,
reduciendo la incidencia de inundaciones y protegiendo al suelo de la erosión. Las plantas mantienen también el
agua en las superficies, por lo que reducen el índice de desbordamientos. Al disminuir, una mayor cantidad de
agua penetra en el suelo, recargando los acuíferos.
Pastizales y prácticas de pastoreo
Eliminan específicamente ciertas especies de plantas, bien por ser venenosas o bien por no servir de alimento para
los animales. En otros casos, se producen persecuciones y matanzas de la fauna nativa, si ésta representa una
amenaza para el ganado; es el caso de predadores o de otras especies que pueden transmitir enfermedades al
ganado.
Pérdida del hábitat en los ecosistemas acuáticos
El método más utilizado para recolectar peces y mariscos que viven en profundidad es el que utiliza las redes de
arrastre, produciendo una pérdida total de l ecosistema. Los lagos y ríos son modificados para la navegación,
irrigación, control de inundaciones, generación de energía y para la práctica de deportes acuáticos, lo que altera
la cantidad y especies de organismos acuáticos presentes en una zona.

66. Principales amenazas para la biodiversidad
Conversión del territorio a urbano y uso industrial
Una gran proporción de áreas urbanas está cubierta por superficies impermeables que impiden el crecimiento de
las plantas y desvían el agua de las lluvias a corrientes locales.
2.Sobreexplotación de especies.
El ser humano, como especie omnívora, utiliza especies de lo más variadas para su alimentación, aunque en
muchas ocasiones son utilizados con otros los fines. Es el caso de muchas plantas y animales, que se usan
como decoración, flores que son cortadas, pieles de animales que son utilizadas como vestidos; incluso algunas
partes de animales son utilizadas por sus supuestas cualidades afrodisíacas.
Entre las actividades que provocan un mayor impacto a la biodiversidad se encuentran la pesca excesiva e
incontrolada por parte de las industrias pesqueras, la recolección no sostenible de especies marinas y
dulceacuícolas, y la captura para el comercio de la acuariofilia.
3.Introducción de especies exóticas y enfermedades.
Muchas especies llegan de manera accidental, como polizones en materiales importados, otras directamente
son introducidas por el hombre. Aunque muchas especies exóticas no prosperan en las nuevas áreas, algunas lo
han hecho a costa de las especies autóctonas, compitiendo con ellas por los recursos alimenticios, cazándolas, o
introduciendo parásitos que provocan enfermedades a las que éstas no pueden hacer frente.
La introducción de especies exóticas es especialmente dañina en los ecosistemas insulares, ya de por sí muy
frágiles. Es el caso de las ratas, que han provocado en muchas islas un impacto importante sobre la anidación
de las aves, ya que se comen sus huevos y matan a sus crías.
Los ecosistemas de agua dulce también se han visto afectados de manera radical por las introducciones
accidentales de especies como el mejillón cebra o el cangrejo americano. En el caso del mejillón su presencia
tiene tres impactos principales, ya que atasca las tuberías de las plantas de tratamiento de aguas, establece sus
colonias sobre las de los mejillones nativos, ocasionándoles la muerte, y altera los ecosistemas al filtrar
demasiado plancton y permitir que crezcan más plantas acuáticas.

67. C
A
S
O
E
S
P
A
Ñ
O
L

68. • Funciones:
– Contribución a mantener los niveles de gases
en la atmósfera y el equilibrio de los ciclos
biogeoquímicos.
– Influencia en el establecimiento del flujo de
energía y reciclado de la materia (formación
de suelos).
– Intervención en la regulación de los climas.
– Factor fundamental en el equilibrio y
estabilidad de los ecosistemas.
biodiversidad

69. Importancia de la Biodiversidad
Es clave para el desarrollo de la vida y como garantía de supervivencia de las especies.
VALORES ECOLÓGICOS:
 Fijación fotosintética de la energía solar.
 Protección de las cuencas hidrográficas.
 Estabilización del clima.
 Generación y conservación del suelo.
 Almacenamiento y reciclaje de nutrientes.
 Disolución y descomposición de algunos contaminantes.
VALORES ECONÓMICOS:
 Alimentos.
 Compuestos activos para medicamentos.
 Sustancias químicas para elaborar insecticidas y pesticidas.
 Comercio legal de especies animales y vegetales.
 Modelos par ala industria electrónica e ingeniería mecánica.
 Paisajes para ocio y turismo.
VALOR ESTÉTICO:
 Paisaje visual de escenarios naturales.
 Es razón para la creación de Parques Nacionales

70. VALORES ÉTICOS:
 El mundo es interdependiente. Está constituido por comunidades naturales y humanas.
Del bienestar de unas especies depende el bienestar de las otras.
 La humanidad es parte de la naturaleza y los humanos están sujetos a las mismas leyes
ecológicas que las demás especies de la Tierra.
 Todos los seres vivos dependen del funcionamiento de los sistemas naturales para
asegurar el abastecimiento de materia y energía.
 La cultura humana debe cimentarse sobre un profundo respeto a la naturaleza,
comprendiendo que se es parte de ella y que sus actividades deben estar en
consonancia con la misma.
 Todas las especies tienen un derecho inherente a existir. Los procesos ecológicos que
mantienen al ecosistema y a su diversidad de especies deben mantenerse a
perpetuidad.
 La humanidad tiene derecho a utilizar los recursos naturales y a explotarlos pero siempre
asegurando su existencia de manera sostenida y a perpetuidad. (Uso sostenible de la
Tierra)
 El bienestar de las futuras generaciones dependen de las acciones de hoy. Tenemos la
obligación de utilizar con visión de futuro los recursos, de manera que las generaciones
venideras puedan disfrutar de los recursos lo mismo que hoy en día.

71. RIQUEZA Y UNIFORMIDAD

72. TÉCNICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE POBLACIONES ANIMALES
BAJO NINGUNA CIRCUNSTANCIA NINGÚN ANIMAL DEBERÍA SER ESTRESADO O
MATADO DURANTE LA INVESTIGACIÓN

73. TÉCNICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE POBLACIONES DE ANIMALES
PEQUEÑOS. EN ECOSISTEMAS TERRESTRES.
Las técnicas inofensivas y seguras que pueden ser usadas para capturar
insectos:
 Pitfall traps (trampas de caída).
Sweep traps (trampas de barrido).
Tree beating (batida de árboles).
Pooter (Aspirador).
Embudo tullgreem (tullgren funnel)
Longworth small mammal trap
Precauciones:
Asegurarse que no hay insectos venenosos en el área.

74. TRAMPA DE CAÍDA(PITFALL TRAP)
Técnica de muestreo pasivo. Sirve para atrapar
pequeños insectos y animales que se arrastren y no
vuelen.
Los insectos son atraídos por carne en descomposición
o una solución azucarada (esta debe ser cubierta para
que los insectos no caigan y se ahoguen).
Se coloca un vaso de precipitados (recipiente de yogurt,
tarro de mermelada) que se entierra de manera que el
labio del vaso esté a nivel con la superficie del suelo.
Los insectos que llegan al borde de la hoja del vaso,
caen y entonces son incapaces de superar esa
situación.
Varias de estas trampas se colocan en el área a
muestrear y se controlan cada seis horas, anotando el
número de especies distintas y la cantidad de ellas.
PRECAUCIONES:
 No poner un fluido en el fondo de la trampa, no se quiere matar a los insectos.
No abandonar las trampas, como máximo 24 horas.

75. SWEEP NET (RED DE BARRIDO)
Red en forma de embudo unida a
un mango. El mango largo se
echa hacia atrás y hacia adelante
a través del follaje. Los insectos
son capturados en la red.
El paso de la red se considera un
barrido.
Las redes de barrido son de
varias tallas se utilizan a distintas
alturas para capturar muchos
insectos.
Se vacían en contenedores
limpios para posteriormente ser
contabilizadas (número y
cantidad).

76. RED DE LATIDO (TREE BEATING)
Simplemente se coloca una
bandeja de captura por debajo
de una rama del árbol y se
golpea suavemente la rama. Las
especies caerán sobre la bandeja,
posteriormente se registran las
especies diferentes y su cantidad.
Para las polillas, se coloca una luz
detrás de una hoja blanca, las
polillas se asientan sobre ésta
pudiéndose observar
directamente y cuantificar.

77. ASPIRADOR (POOTER)
Un aspirador, también conocido como pooter
es un dispositivo usado en la colección de
insectos, crustáceos y otros organismos
frágiles, pequeños.
Uno de los diseños más comunes consiste en
un pequeño frasco cuya tapa está penetrada
por dos tubos.
Uno de ellos, su extremo interior está
protegido de una malla fina u otro tipo de filtro
este tubo en la zona exterior conduce a la boca
del usuario.
El final de los segundo tubo está en la cámara
de recogida, y su otro extremo se puede
colocar sobre un pequeño organismo de
insectos u otros.
El usuario chupa en el primer tubo, y el
insecto se introduce en la cámara de recogida
a través de la otra.
No hay peligro de tragar la muestra porque
existe una gasa en el extremo del tubo de la
boquilla

78. EMBUDO TULLGREEM (TULLGREN FUNNEL)
Un embudo Tullgren es un embudo de ordinario en el que se coloca un puñado de tierra o de
hojarasca (a menudo esta hojarasca es apoyado por una capa de malla). El embudo se coloca
por encima de un tarro de mermelada u otro recipiente de recogida con lados resbaladizas y
con un trozo de papel de seda ligeramente húmedo colocado en la parte inferior de la jarra.
Una luz se posiciona de modo que brille sobre el sustrato dentro del embudo. Durante un
período de unas pocas horas los insectos, ácaros y otros invertebrados presente trabajo
gradualmente su camino hacia abajo, alejándose de la fuente de luz y calor, y caen en el frasco
donde pueden ser examinados.

79. LONGWORTH SMALL MAMMAL TRAP
Para los mamíferos más pequeños, como
ratones y topillos se pueden utilizar
métodos de captura en vivo de determinar
directamente la condición de género, el
peso y la cría de cada individuo.
De esta manera también es posible llevar
a cabo "estudios de marcado y recaptura”.
La caja para anidar está apoyada en un
ángulo para que la orina y el agua de la
lluvia drene.

80. TÉCNICAS DE TOMA DE MUESTRAS DE POBLACIONES DE ANIMALES
PEQUEÑOS. EN ECOSISTEMAS ACUÁTICOS.
Las técnicas inofensivas y seguras que pueden ser usadas para capturar
insectos:
 Red de plancton.
Kick sampling.

81. RED DE PLANCTON
El colector de plancton es el recipiente
que está situado al final de una red de
plancton para que se depositen los
organismos planctónicos colectados.

82. Se debe tener en cuenta el tamaño,
pues dependiendo de lo que se
necesite muestrear, así debe ser la
medida de la malla de la red de
plancton o el tamaño de poro del
filtro.
La dimensión de poro de la malla
puede variar según las necesidades,
con rangos desde 0.45 µm, hasta 500
µm.

83. KICK SAMPLING
Una técnica muy utilizada para
muestrear los habitantes del fondo
(invertebrados bentónicos).
Se lleva a cabo a menudo en los
rápidos, es decir, áreas de un
arroyo donde hay un sustrato que
sea fácilmente perturbados al
patearlo.
Una red se coloca bajo el agua,
corriente abajo de la zona a
muestrear y el lecho del arroyo en
frente de la red se ve perturbado
por patadas con las botas durante
30 segundos. Los animales
desalojados se mueven río abajo y
se quedan atrapados en la red.
La red se vacía en un recipiente
para cuantificar las especies.
Se repite el muestreo tres veces
para asegurar los resultados.

84. MUESTREO DE PECES

85. 2.3.5. ÍNDICE DE BIODIVERSIDAD DE SIMPSON

90. Actividades
 Describe la utilidad de las siguientes técnicas de muestreo en un contexto de
muestreo:
 Kick sample technique: proporciona una muestra semicuantitativa de sustrato
en invertebrados cuyo sustrato está en agua en movimiento.
 Beating tray:
 Red de plancton:
 Sweep net:
 Pooter:
 Tullgren funnel.
 Pitfall trap:
 Explica por qué las trampas pitfall no es recomendada para estimar la densidad de
población.
 Explica la importancia del tamaño de la malla en la eficiencia de la red de plancton.
¿cómo influiría esto cuando se muestrea animales en un estanque?

91. Bibliografía y páginas web
 ENVIRONMENTAL SYSTEMS AND SOCIETIES. RUTHERFORD, Jill. WILLIAMS, Gillian. Editorial Oxford.
 ECOLOGY. GREENWOOD, Trancey. SHEPHERD, Lyn. ALLAN, Richard. BUTLER, Daniel. Editorial
BIOZONE International Ldt.
 CUADERNO DE CAMPO del Intermareal MUESTREO (C.I.L., LA MARUCA)
 http://ecologiaazulturquesa.blogspot.com.es/2013/01/como-medir-o-determinar-los-factores.html
 http://www.ehowenespanol.com/herramientas-medicion-factores-ecologicos-abioticos-lista_559303/
 http://www.librosvivos.net/smtc/pagporformulario.asp?idIdioma=ES&TemaClave=1189&pagina=5&est=1
 http://ieslamadraza.com/webpablo/web1esoespanol/7plantas/ClaveHojas.html
 http://pdf.usaid.gov/pdf_docs/Pnacl893.pdf
 http://revistareduca.es/index.php/biologia/article/viewFile/905/918
 http://www.profesorenlinea.cl/matematica/Estadistica1(VF).htm
 http://www.vitutor.com/estadistica/inferencia/inferenciaContenidos.html
 http://books.google.es/books?id=-
guS_4nYra0C&pg=PA90&lpg=PA90&dq=transectos+en+banda&source=bl&ots=Zd5wY638lA&sig=_oTeTAb
24N_KEFEmH_25AMhlI78&hl=es&sa=X&ei=7ux0VPH0Cc7faOnKgNAN&ved=0CCMQ6AEwAA#v=onepage
&q=transectos%20en%20banda&f=false
 http://slideplayer.es/slide/1058056/#
 http://www.ecoplexity.org/node/590?page=0,2