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Universidad Autónoma de Sinaloa
             Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia
                   Módulo de Producción de Leche




Identificación de agentes patógenos que producen mastitis subclínica y
                     resistencia a antimicrobianos.



                               Autores:

                  Gamboa González Mauricio Alfonso

                  González Navarrete Cecilia de Jesús

                     Millán Sarabia Martha Daniela

                   Vivanco Osuna Verónica Berenice



                              Asesores:

                   MVZ EPAB. Carlos Osuna Ezquer

                   Dr. Miguel Alberto Luque Agundez




                                 Culiacán Sinaloa, 09 de Diciembre de 2011




                                                                         1
Agradecimientos


Al MC Martin López Valenzuela, por el apoyo para la realización de este trabajo,
por su tiempo y esfuerzo.

A la QFB Beatriz y a la MVZ Fabiola por su apoyo y tiempo y por compartir sus
conocimientos.

A nuestros compañeros: Daniela Itzel Franco Salinas, Luis Miguel González
Luquín y Francisco Javier Mendivil García, por su apoyo incondicional y sobre todo
por su colaboración para la toma de muestras.

A los médicos responsables de cada uno de los establos lecheros, por sus
atenciones, ayuda y el permiso para realizar la investigación en sus respectivos
lugares de trabajo.

A nuestros docentes por su apoyo y por sus concejos para hacernos más fácil la
investigación.

A nuestros padres, por el apoyo, tanto moral como económico, por alentarnos
cuando nos sentíamos cansados.

Gracias a todos ellos, ya que sin su apoyo y colaboración no hubiese sido posible
realizar esta investigación.




                                                                                 2
Índice



I. Introducción…………………………………………………………….…..4

II. Antecedentes………………………………………………………….…..5

III. Objetivo………………………………………………………….……….10

IV. Materiales y métodos……….………………..…..…..….….....………11

V. Resultados y discusión…………………………………………….……12

VI. Conclusiones…………………………………………………………….15

VII. Bibliografía………………………………………………….…………..16




                                                      3
Introducción
La mastitis es una inflamación de la glándula mamaria y sus tejidos secretores, que
reduce la producción del volumen de leche, alterando su composición, incluso su sabor,
además de elevar su carga bacteriana normal es un problema poblacional multifactorial
imposible de erradicar; por consiguiente, su control depende de la aplicación de un
sistema integral de medidas cuyos objetivos son: reducir la tasa de nuevas infecciones y
reducir el tiempo de infección de cada caso de mastitis. En general, las mastitis causan
entre un 40 a 50% de disminución en los márgenes económicos netos por vaca, con la
mayor parte de estas pérdidas debidas entre 5 a 7% por disminución en la cantidad de
leche por lactancia. Las estimaciones de las pérdidas causadas por un menor rendimiento
fluctúan entre 100 a 500 kg/vaca por lactancia. Cuando las mastitis clínicas ocurren, los
gastos adicionales se presentan por: eliminación de leche anormal, las compras de
medicinas y los honorarios por la atención veterinaria. Cada caso de mastitis clínica ha
sido estimado como produciendo gastos comprendidos entre 100 a 200 USD por vaca en
una lactancia. El objetivo del presente trabajo fue identificar los agentes patógenos que
producen mastitis subclínica en diferentes establos lecheros de Culiacán, Sinaloa, México,
determinar su prevalencia y su resistencia a antimicrobianos.




                                                                                        4
Antecedentes

Es una requisitoria de las poblaciones de distintos países, que los alimentos, incluidos la
leche y los productos lácteos, sean seguros para la salud, nutritivos y de sabor fresco y
agradable. Por este motivo, los programas preventivos de mastitis y de calidad de leche
que se llevan a cabo en las lecherías deben tener como objetivo la producción de leche
de óptima calidad en su composición, provenir de vacas sanas y bien alimentadas, con la
máxima calidad higiénica posible, y sin la presencia de sustancias adulterantes de ningún
tipo. La calidad de leche que llega a la planta de industrialización no puede ser mejorada
en la misma, aun considerando el proceso de pasteurización, por lo tanto, es
determinante para el futuro proceso de la leche en la industria, la calidad con la que se
produce en las lecherías (Chaves, 2010).
La mastitis es una inflamación de la glándula mamaria y sus tejidos secretores, que
reduce la producción del volumen de leche, alterando su composición, incluso su sabor,
además de elevar su carga bacteriana normal (Gasque, 2008).
Se caracteriza por la entrada de células somáticas, principalmente neutrófilos
polimorfonucleares (PMN), en la glándula mamaria y por un aumento en el contenido de
proteasa en la leche (Kerr y Wellnitz, 2003). (Métodos de detección)**
La mastitis bovina continua siendo una de las enfermedades que causa mayor impacto
económico en las ganaderías orientadas a la producción de leche por ser una de las
enfermedades más significativas desde el punto de vista de la producción de leche y
salud pública (Rodríguez, 2006).
La mastitis es un problema poblacional multifactorial imposible de erradicar; por
consiguiente, su control depende de la aplicación de un sistema integral de medidas
cuyos objetivos son: reducir la tasa de nuevas infecciones y reducir el tiempo de infección
de cada caso de mastitis (Andresen, 2001).
En general, las mastitis causan entre un 40 a 50% de disminución en los márgenes
económicos netos por vaca, con la mayor parte de estas pérdidas debidas entre 5 a 7%
por disminución en la cantidad de leche por lactancia. Las estimaciones de las pérdidas
causadas por un menor rendimiento fluctúan entre 100 a 500 kg/vaca por lactancia.
Cuando las mastitis clínicas ocurren, los gastos adicionales se presentan por: eliminación
de leche anormal, las compras de medicinas y los honorarios por la atención veterinaria.
Cada caso de mastitis clínica ha sido estimado como produciendo gastos comprendidos
entre 100 a 200 USD por vaca en una lactancia (Concha, 2008).
La Mastitis bovina es un complejo singular de enfermedades, que causa una gran
cantidad de perdidas a nivel mundial y en especial en las regiones con una producción
lechera intensiva. La causa más común para un sacrificio temprano de las vacas lecheras
son los problemas de salud de la glándula mamaria, además de problemas de Fertilidad.
El 26.5% de las vacas lecheras sacrificadas en el continente americano es debido a
trastornos ocasionados por la mastitis (Wolter y col., 2000).
La mastitis bovina es muy persistente en el ganado lechero (Wellenberg y col., 2002),
usualmente es tratada o prevenida con antibióticos intramamarios; representando una

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carga económica muy alta a los productores de leche en todo el mundo. Las pérdidas
mundiales, anuales debido a la mastitis, se han estimado en 35 billones de dólares
americanos (Wellenberg y col., 2002; O´Flaherty y col., 2005). Revision bibliografica***
Esta enfermedad, económicamente, es la más importante en la industria lechera de los
Estados Unidos, ya que afecta a la mitad de las vacas infectadas con algún tipo de
mastitis. Se considera que esta enfermedad representa el 70% de los gastos totales para
los ganaderos lecheros, resultando en una pérdida de billones de dólares cada año
(Bradley y Green, 2001; dos Santos et al., 2002).***
La constitución anatómica de la ubre, la expone constantemente a lesiones y agentes
patológicos de diversos orígenes (Báez, 2002). El propósito de la respuesta inflamatoria
es destruir o neutralizar al agente causal y preparar la forma de sanar y retornar a su
función normal (Philpot y Nickerson, 2000; Báez, 2002).*** La Federación Internacional de
Lechería (1999), define a la mastitis bovina como una enfermedad inflamatoria de la
glándula mamaria, que tiene por objetivo la eliminación del agente patógeno y la
restauración de la funcionalidad del órgano.
Todos los métodos comerciales para producir leche tienden a proveer condiciones
favorables para la diseminación de microorganismos contagiosos de vaca a vaca en el
momento del ordeño; y la diseminación de organismos ambientales durante el intervalo
entre ordeños. La mayoría de los factores involucrados en la diseminación de
microorganismos causantes de mastitis están bajo el control directo de los dueños del
hato y sus empleados (Philpot, 2001).
Los patógenos contagiosos viven y se multiplican en la glándula mamaria y la piel del
pezón, se transmiten de animal a animal principalmente durante el ordeño e incluyen a
Staphylococcus aureus, Streptococcus agalactiae, Corynebacterium bovis y a especies de
Mycoplasma. Los patógenos ambientales son aquellos cuyo reservorio primario es el
lugar donde viven las vacas. Estos organismos constituyen un grupo heterogéneo de
géneros y especies bacterianas, siendo los más frecuentemente aislados los
estreptococos y las bacterias coliformes. Los estreptococos ambientales (EA) causantes
de mastitis bovina incluyen Streptococcus uberis, Streptococcus dysgalactiae,
Streptococcus equinus (anteriormente caracterizado como Streptococcus bovis),
Streptococcus equi, Streptococcus parauberis y Streptococcus canis. Dentro de estos, S.
uberis y S. dysgalactiae son los más prevalentes, causando infección intramamaria (IIM)
cuando se dan condiciones favorables. Streptococcus dysgalactiae puede comportarse
tanto como un patógeno ambiental como contagioso (Rodríguez,. 2000).
Se han identificado más de 130 especies, subespecies y serovares de bacterias
causantes de la enfermedad; sin embargo, más del 75% de los casos se deben a
microorganismos GRAM Positivos, particularmente especies de los géneros
Staphylococcus y Streptococcus. La enfermedad tiene dos formas básicas de
presentación: clínica y subclínica que, por lo general, no son más que fases del proceso
inflamatorio. En la forma clínica se presentan evidentes signos de inflamación como
tumefacción, rubor, dolor, cambios notables en la secreción y eventualmente, signos
sistémicos como fiebre, pérdida del apetito y depresión. La forma subclínica se caracteriza
por la existencia de inflamación sin los signos macroscópicos que permiten reconocerla,

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por lo que generalmente pasa desapercibida, a pesar de ser 20 a 50 veces más frecuente
que la forma clínica (Scaramelli, 2003).
Osteras et al. (2006), afirman que la distribución de los patógenos que producen mastitis
pueden ser diferentes entre los dos tipos arriba descritos, puesto que en los casos clínicos
la etiología puede ser por bacterias que están presentes solamente por un corto periodo
de tiempo, naturalmente desencadenando claros signos clínicos, ej. Eschericha coli. Por
el contrario, las mastitis subclínicas pueden ser causadas por patógenos que pueden
estar presentes por largos periodos de tiempo y solamente produciendo leves signos en la
ubre, ej. Staphylococcus aureus. Pero considerando básicamente la etiología, las mastitis
contagiosas son producidas por microorganismos cuyo habitat principal es el canal del
pezón o la piel externa del mismo, de forma que los contagios se producen
fundamentalmente durante el ordeño, así en este caso destacando bacterias como
Staphylococus aureus , Streptococcus agalactiae.
Numerosos estudios a nivel mundial colocan a Staphylococcus aureus como el principal
agente causal de mastitis bovina, por ejemplo en chile fue el agente bacteriano aislado
con mayor frecuencia (Montes y col., 1989; Reyes y col., 2002). En colombia se determino
al mismo agente como el principal agente involucrado en este problema con una
prevalencia del 37.45% (Londoño, 2006). En México se ha encontro como principal
causante al mismo agente con un 78.57% en un estudio realizado por Luque y Gaxiola
(1993), mientras que en 2006 un estudia realizado por Bedolla y col (2006) se encontró
una prevalencia del 73%. En 2010 un estudio realizado por Olivas en diferentes establos
lechero del municipio de Culiacan, se determino una prevalencia del 33.33% para
Staphylococcus aureus, un 24.07% para Candida albicans, un 22.22% para Streptococcus
spp, un 12.96% para Staphylococcus spp., y un 1.85% para Corynebacterium spp.,
Klebsiella spp., Escherichia coli y Pseuomona aeruginosa.
Staphylococcus aureus constituye la principal causa de mastitis infecciosa en vacas,
borregas y cabras, causando fuertes perdidas económicas a nivel mundial. Las
infecciones tienen a ser subclinicas y crónicas con episodios periódicos de mastitis clínica,
pudiendo causar también mastitis gangrenosa (Philpot y Nikerson, 1993).
Se utiliza una gran variedad de pruebas que ayudan al diagnostico de la mastitis
subclínica mismas que han quedado restringidas casi enteramente a la determinación de
la cantidad de DNA, y por lo tanto del número aproximado de leucocitos en la muestra
(Blanco, 2001).

Prueba de California para mastitis.
La prueba de California para mastitis es la utilizada con más frecuencia habiendo probado
su eficacia sobre todo en manos de operadores hábiles. Refleja la cantidad de células
somáticas (leucocitos y células epiteliales) de la leche. La combinación del DNA nuclear
de las células en la leche con un detergente (Alquil-Aril-Sulfonato más Púrpura de
Bromocresol) en un recipiente de la paleta especial produce un gel, los resultados se leen
como Negativos, Traza, 1+, 2+ y 3+ según la cantidad de gel.




                                                                                           7
Prueba de Wisconsin para mastitis
La prueba de Wisconsin para mastitis es la segunda técnica más utilizada para el
diagnóstico de la mastitis subclínica; requiere de una gradilla con 12 tubos de plástico fijos
con capacidad de 15 ml y graduación de 1 a 6 ml; presentan un orificio aereador colocado
lateralmente con un diámetro de 3.15 mm. Los tapones de hule llevan un orificio central
de 1.10 mm. El reactivo utilizado es el mismo que el de la prueba de California para
mastitis diluido en proporción de 1:1 usando agua destilada. En esta prueba se mezclan
en cada tubo 3 ml de leche con 3 ml de reactivo, posteriormente se agitan durante 10
segundos y se deja reposar la mezcla por 15 segundos, luego se vierte 15 segundos y se
procede a realizar la lectura.

Cuenta directa de las células somáticas en la leche
Uno de los procedimientos mas empleados por su utilidad y sencillez para el estudio de la
leche, es la determinación directa o indirecta del número de células somáticas.

Conductividad eléctrica en leche
La evaluación de la conductividad eléctrica como un método para la detección de mastitis
se basa en el aumento en la cantidad de sodio y cloro presentes en la leche cuando existe
una alteración de la glándula mamaria, provocándose entonces un aumento en la
conductividad de la misma.

Cloro en leche.
En la leche la relación lactosa: cloro, es influenciada por: a) estado lactacional y b)
presentación de mastitis.
En casos de mastitis el contenido de cloro en la leche tiende a incrementarse en
proporción a la lactosa, lo que ocasiona en la leche un sabor ligeramente salado.

Determinación de pH en leche.
El pH identificado en el calostro es de 6.4, en tanto que en la leche es de 6.5-6.8, cantidad
que a media lactación es de 6.6-6.7, y al final de 6.8 o mayor.
Se ha considerado que en la leche proveniente de glándulas mamaria afectada por
mastitis, el pH es alcalino, lo que se atribuye a la disminución de la lactosa e incremento
de sales que pasan de la sangre a la leche.

N-acetyl-beta-d-glucosaminidasa (nagasa).
Recientemente se ha empezado a popularizar una prueba en la leche de vacas con
mastitis llamada NAGASA, esta es una enzima que ha demostrado altas correlaciones
entre su presencia y el numero de células somáticas en la leche. Esta correlación no vario
entre los diferentes agentes etiológicos, tampoco tuvo influencia el numero de recaídas de
mastitis de las vacas.

Análisis bacteriológico de la leche.
La colección de muestras de leche en forma aséptica para los exámenes bacteriológicos
puede proveer un diagnóstico válido y correcto para el tratamiento y pronóstico de la
mastitis bovina.

                                                                                            8
Un diagnóstico bacteriológico deberá realizarse en un laboratorio especializado. Las
muestras de leche deberán ser recolectadas en tubos estériles y dentro de las primeras
24 horas, cultivarse en un caldo nutritivo de bacterias asociadas a mastitis o agar nutritivo
en cajas conteniendo el medio de cultivo.




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Objetivo


El objetivo del presente trabajo fue identificar los agentes patógenos que producen
mastitis subclínica en diferentes establos lecheros de Culiacán, Sinaloa, México,
determinar su prevalencia y su resistencia a antimicrobianos.




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Material y Métodos

El presente trabajo se realizo en el rancho El Torito ubicado en el poblado los
becos, rancho La Herradura ubicado en el poblado la laguna colorada, rancho RS
ubicado en el limón de los ramos y rancho Los Peñascos ubicado en el Salado.
Se realizaron visitas los días lunes y martes para hacer la toma de muestras.
Para la muestra de leche se uso gel desinfectante, torundas y vasos estériles,
para tomar la muestra primero se desinfectaron las manos con el gel y un poco de
algodón, se limpio y desinfecto el pezón de la vaca con la torunda, se tiraron los
primeros chorros de leche y se colecto la leche en los vasos estériles, cuidando de
no contaminar la muestra.
Las muestras fueron puestas en refrigeración y posteriormente se trasladaron al
laboratorio de microbiología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia,
donde inmediatamente se realizaron los cultivos en los diferentes medios; agar
sangre, EMB, saborou y sal y manitol. Se encendió el mechero, se esterilizo el asa
bacteriológica, se tomo una muestra de leche y se colocaron de una a dos gotas
de leche en cada uno de los medios, se extendió la muestra haciendo estrias en el
agar y terminado el procedimiento se esterilizo el asa y los cultivos fueron puestos
en la incubadora a 37.5°C por 24 horas.
Pasadas las 24 horas se realizó la lectura de los cultivos, los positivos fueron
observados al microscopio para identificar el microorganismo, los que dieron
positivos a Staphilococcus se les realizo la prueba de la coagulasa para identificar
si eran Staphilcoccus aureus o staphilococcus spp.
Posteriormente se realizo el antibiograma a todos los cultivos positivos, utilizando
una muestra del cultivo y realizando otro cultivo en un medio liquido, que fue soya,
se puso en la incubadora durante 1 hora y posteriormente se realizo un cultivo y
se coloco el disco con 12 antibióticos, se colocaron nuevamente en la incubadora
a 37.5°C durante 24 horas y se realizo la lectura de los mismos.




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Resultados y Discusión

Los resultados fueron los siguientes:

De 20 muestras recolectadas para cultivo, solo 9 (45%) presentaron crecimiento
(Cuadro 1). De las muestras observadas al microscopio todas fueron positivas a
Staphylococcus, se realizo la prueba de la coagulasa a las 9 muestras positivas,
de las cuales 6 (66.66%) fueron coagulasa positiva, determinando asi que son
Staphylococcus aureus y 3 (33.33%) son Staphylococcus spp. (Cuadro 2 y 3). En
el antibiograma realizado a las 9 muestras positivas se determino la resistencia o
sensibilidad a 12 diferentes antibióticos, encontrando solo resistencia en 3
(33.33%) de las muestras (Cuadro 3).




Cuadro 1. Cultivos



                           Cultivos bacterianos




                                               Positivo
                                                 45%
                          Negativo
                            55%




                                                                               12
Cuadro 2. Prueba de cuagulasa

No.       Coagulasa (+)            Coagulasa (-)

1                                      
2             
3             
4             
5             
6                                      
7                                      
8             
9             


Cuadro 3. Resultados de la prueba de la cuagulasa



        70.00%

        60.00%

        50.00%

         40.00%           Staphylococcus
         30.00%
                          aureus, 66.66%

         20.00%
                                                    Staphylococcus
         10.00%                                      spp., 33.33%
          0.00%


                     Staphylococcus aureus
                                               Staphylococcus spp.




                                                                     13
Cuadro 4. Resistencia a antibióticos


                           1      2      3      4      5      6      7      8      9
Amikacina (AK)             S      S      S      S      S      S      S      S      S
Ampicilina (AM)            R      S      S      S      S      S      S      S      R
Cefalotina (CF)            S      S      S      S      S      S      S      S      S
Ceftriaxona (CRO)          R      S      S      S      S      S      S      S      S
Cloranfenicol (CL)         R      S      S      S      S      S      S      S      S
Dicloxacilina (DC)         R      R      S      S      S      S      S      S      R
Enoxacina (ENX)            S      S      S      S      S      S      S      S      S
Eritromicina (E)           R      S      S      S      S      S      S      S      S
Gentamicina (GE)           R      S      S      S      S      S      S      S      S
Netilmicina (NET)          S      S      S      S      S      S      S      S      S
Penicilina(PE)             R      S      S      S      S      S      S      S      R
Trimetroprim-              R      S      S      S      S      S      S      S      S
sulfatometoxasol(SXT)


Los resultados encontrados respecto a la prevalencia del agente coinciden con lo
dicho por Mones y col., en 1989, Reyes y col., en 2002, Luque y Gaxiola en 1993,
Bedolla y col., en 2006, ellos encontraron como agente principal a Staphylococcus aureus,
al igual que en el presente trabajo.




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Conclusiones

Con la realización de este trabajo se llega a la conclusión de que la principal causa
de mastitis en México y en el mundo es la falta de higiene y el mal manejo al
momento de la ordeña, lo que ocasiona grandes pérdidas económicas en la
industria lechera debido a que esta enfermedad provoca una notable disminución
en la producción de leche, y en casos mas graves el cuarto afectado llega a
perderse por completo. También se concluye que el principal agente causante de
mastitis subclínica es el microorganismo gram positivo: Staphylococcus aureus;
género del cual existe muy poca resistencia a los antibióticos, teniendo un gran
porcentaje de sensibilidad a ellos.




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Identificación de agentes patógenos que producen mastitis subclínica y resistencia a antimicrobianos.

  • 1. Universidad Autónoma de Sinaloa Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia Módulo de Producción de Leche Identificación de agentes patógenos que producen mastitis subclínica y resistencia a antimicrobianos. Autores: Gamboa González Mauricio Alfonso González Navarrete Cecilia de Jesús Millán Sarabia Martha Daniela Vivanco Osuna Verónica Berenice Asesores: MVZ EPAB. Carlos Osuna Ezquer Dr. Miguel Alberto Luque Agundez Culiacán Sinaloa, 09 de Diciembre de 2011 1
  • 2. Agradecimientos Al MC Martin López Valenzuela, por el apoyo para la realización de este trabajo, por su tiempo y esfuerzo. A la QFB Beatriz y a la MVZ Fabiola por su apoyo y tiempo y por compartir sus conocimientos. A nuestros compañeros: Daniela Itzel Franco Salinas, Luis Miguel González Luquín y Francisco Javier Mendivil García, por su apoyo incondicional y sobre todo por su colaboración para la toma de muestras. A los médicos responsables de cada uno de los establos lecheros, por sus atenciones, ayuda y el permiso para realizar la investigación en sus respectivos lugares de trabajo. A nuestros docentes por su apoyo y por sus concejos para hacernos más fácil la investigación. A nuestros padres, por el apoyo, tanto moral como económico, por alentarnos cuando nos sentíamos cansados. Gracias a todos ellos, ya que sin su apoyo y colaboración no hubiese sido posible realizar esta investigación. 2
  • 3. Índice I. Introducción…………………………………………………………….…..4 II. Antecedentes………………………………………………………….…..5 III. Objetivo………………………………………………………….……….10 IV. Materiales y métodos……….………………..…..…..….….....………11 V. Resultados y discusión…………………………………………….……12 VI. Conclusiones…………………………………………………………….15 VII. Bibliografía………………………………………………….…………..16 3
  • 4. Introducción La mastitis es una inflamación de la glándula mamaria y sus tejidos secretores, que reduce la producción del volumen de leche, alterando su composición, incluso su sabor, además de elevar su carga bacteriana normal es un problema poblacional multifactorial imposible de erradicar; por consiguiente, su control depende de la aplicación de un sistema integral de medidas cuyos objetivos son: reducir la tasa de nuevas infecciones y reducir el tiempo de infección de cada caso de mastitis. En general, las mastitis causan entre un 40 a 50% de disminución en los márgenes económicos netos por vaca, con la mayor parte de estas pérdidas debidas entre 5 a 7% por disminución en la cantidad de leche por lactancia. Las estimaciones de las pérdidas causadas por un menor rendimiento fluctúan entre 100 a 500 kg/vaca por lactancia. Cuando las mastitis clínicas ocurren, los gastos adicionales se presentan por: eliminación de leche anormal, las compras de medicinas y los honorarios por la atención veterinaria. Cada caso de mastitis clínica ha sido estimado como produciendo gastos comprendidos entre 100 a 200 USD por vaca en una lactancia. El objetivo del presente trabajo fue identificar los agentes patógenos que producen mastitis subclínica en diferentes establos lecheros de Culiacán, Sinaloa, México, determinar su prevalencia y su resistencia a antimicrobianos. 4
  • 5. Antecedentes Es una requisitoria de las poblaciones de distintos países, que los alimentos, incluidos la leche y los productos lácteos, sean seguros para la salud, nutritivos y de sabor fresco y agradable. Por este motivo, los programas preventivos de mastitis y de calidad de leche que se llevan a cabo en las lecherías deben tener como objetivo la producción de leche de óptima calidad en su composición, provenir de vacas sanas y bien alimentadas, con la máxima calidad higiénica posible, y sin la presencia de sustancias adulterantes de ningún tipo. La calidad de leche que llega a la planta de industrialización no puede ser mejorada en la misma, aun considerando el proceso de pasteurización, por lo tanto, es determinante para el futuro proceso de la leche en la industria, la calidad con la que se produce en las lecherías (Chaves, 2010). La mastitis es una inflamación de la glándula mamaria y sus tejidos secretores, que reduce la producción del volumen de leche, alterando su composición, incluso su sabor, además de elevar su carga bacteriana normal (Gasque, 2008). Se caracteriza por la entrada de células somáticas, principalmente neutrófilos polimorfonucleares (PMN), en la glándula mamaria y por un aumento en el contenido de proteasa en la leche (Kerr y Wellnitz, 2003). (Métodos de detección)** La mastitis bovina continua siendo una de las enfermedades que causa mayor impacto económico en las ganaderías orientadas a la producción de leche por ser una de las enfermedades más significativas desde el punto de vista de la producción de leche y salud pública (Rodríguez, 2006). La mastitis es un problema poblacional multifactorial imposible de erradicar; por consiguiente, su control depende de la aplicación de un sistema integral de medidas cuyos objetivos son: reducir la tasa de nuevas infecciones y reducir el tiempo de infección de cada caso de mastitis (Andresen, 2001). En general, las mastitis causan entre un 40 a 50% de disminución en los márgenes económicos netos por vaca, con la mayor parte de estas pérdidas debidas entre 5 a 7% por disminución en la cantidad de leche por lactancia. Las estimaciones de las pérdidas causadas por un menor rendimiento fluctúan entre 100 a 500 kg/vaca por lactancia. Cuando las mastitis clínicas ocurren, los gastos adicionales se presentan por: eliminación de leche anormal, las compras de medicinas y los honorarios por la atención veterinaria. Cada caso de mastitis clínica ha sido estimado como produciendo gastos comprendidos entre 100 a 200 USD por vaca en una lactancia (Concha, 2008). La Mastitis bovina es un complejo singular de enfermedades, que causa una gran cantidad de perdidas a nivel mundial y en especial en las regiones con una producción lechera intensiva. La causa más común para un sacrificio temprano de las vacas lecheras son los problemas de salud de la glándula mamaria, además de problemas de Fertilidad. El 26.5% de las vacas lecheras sacrificadas en el continente americano es debido a trastornos ocasionados por la mastitis (Wolter y col., 2000). La mastitis bovina es muy persistente en el ganado lechero (Wellenberg y col., 2002), usualmente es tratada o prevenida con antibióticos intramamarios; representando una 5
  • 6. carga económica muy alta a los productores de leche en todo el mundo. Las pérdidas mundiales, anuales debido a la mastitis, se han estimado en 35 billones de dólares americanos (Wellenberg y col., 2002; O´Flaherty y col., 2005). Revision bibliografica*** Esta enfermedad, económicamente, es la más importante en la industria lechera de los Estados Unidos, ya que afecta a la mitad de las vacas infectadas con algún tipo de mastitis. Se considera que esta enfermedad representa el 70% de los gastos totales para los ganaderos lecheros, resultando en una pérdida de billones de dólares cada año (Bradley y Green, 2001; dos Santos et al., 2002).*** La constitución anatómica de la ubre, la expone constantemente a lesiones y agentes patológicos de diversos orígenes (Báez, 2002). El propósito de la respuesta inflamatoria es destruir o neutralizar al agente causal y preparar la forma de sanar y retornar a su función normal (Philpot y Nickerson, 2000; Báez, 2002).*** La Federación Internacional de Lechería (1999), define a la mastitis bovina como una enfermedad inflamatoria de la glándula mamaria, que tiene por objetivo la eliminación del agente patógeno y la restauración de la funcionalidad del órgano. Todos los métodos comerciales para producir leche tienden a proveer condiciones favorables para la diseminación de microorganismos contagiosos de vaca a vaca en el momento del ordeño; y la diseminación de organismos ambientales durante el intervalo entre ordeños. La mayoría de los factores involucrados en la diseminación de microorganismos causantes de mastitis están bajo el control directo de los dueños del hato y sus empleados (Philpot, 2001). Los patógenos contagiosos viven y se multiplican en la glándula mamaria y la piel del pezón, se transmiten de animal a animal principalmente durante el ordeño e incluyen a Staphylococcus aureus, Streptococcus agalactiae, Corynebacterium bovis y a especies de Mycoplasma. Los patógenos ambientales son aquellos cuyo reservorio primario es el lugar donde viven las vacas. Estos organismos constituyen un grupo heterogéneo de géneros y especies bacterianas, siendo los más frecuentemente aislados los estreptococos y las bacterias coliformes. Los estreptococos ambientales (EA) causantes de mastitis bovina incluyen Streptococcus uberis, Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus equinus (anteriormente caracterizado como Streptococcus bovis), Streptococcus equi, Streptococcus parauberis y Streptococcus canis. Dentro de estos, S. uberis y S. dysgalactiae son los más prevalentes, causando infección intramamaria (IIM) cuando se dan condiciones favorables. Streptococcus dysgalactiae puede comportarse tanto como un patógeno ambiental como contagioso (Rodríguez,. 2000). Se han identificado más de 130 especies, subespecies y serovares de bacterias causantes de la enfermedad; sin embargo, más del 75% de los casos se deben a microorganismos GRAM Positivos, particularmente especies de los géneros Staphylococcus y Streptococcus. La enfermedad tiene dos formas básicas de presentación: clínica y subclínica que, por lo general, no son más que fases del proceso inflamatorio. En la forma clínica se presentan evidentes signos de inflamación como tumefacción, rubor, dolor, cambios notables en la secreción y eventualmente, signos sistémicos como fiebre, pérdida del apetito y depresión. La forma subclínica se caracteriza por la existencia de inflamación sin los signos macroscópicos que permiten reconocerla, 6
  • 7. por lo que generalmente pasa desapercibida, a pesar de ser 20 a 50 veces más frecuente que la forma clínica (Scaramelli, 2003). Osteras et al. (2006), afirman que la distribución de los patógenos que producen mastitis pueden ser diferentes entre los dos tipos arriba descritos, puesto que en los casos clínicos la etiología puede ser por bacterias que están presentes solamente por un corto periodo de tiempo, naturalmente desencadenando claros signos clínicos, ej. Eschericha coli. Por el contrario, las mastitis subclínicas pueden ser causadas por patógenos que pueden estar presentes por largos periodos de tiempo y solamente produciendo leves signos en la ubre, ej. Staphylococcus aureus. Pero considerando básicamente la etiología, las mastitis contagiosas son producidas por microorganismos cuyo habitat principal es el canal del pezón o la piel externa del mismo, de forma que los contagios se producen fundamentalmente durante el ordeño, así en este caso destacando bacterias como Staphylococus aureus , Streptococcus agalactiae. Numerosos estudios a nivel mundial colocan a Staphylococcus aureus como el principal agente causal de mastitis bovina, por ejemplo en chile fue el agente bacteriano aislado con mayor frecuencia (Montes y col., 1989; Reyes y col., 2002). En colombia se determino al mismo agente como el principal agente involucrado en este problema con una prevalencia del 37.45% (Londoño, 2006). En México se ha encontro como principal causante al mismo agente con un 78.57% en un estudio realizado por Luque y Gaxiola (1993), mientras que en 2006 un estudia realizado por Bedolla y col (2006) se encontró una prevalencia del 73%. En 2010 un estudio realizado por Olivas en diferentes establos lechero del municipio de Culiacan, se determino una prevalencia del 33.33% para Staphylococcus aureus, un 24.07% para Candida albicans, un 22.22% para Streptococcus spp, un 12.96% para Staphylococcus spp., y un 1.85% para Corynebacterium spp., Klebsiella spp., Escherichia coli y Pseuomona aeruginosa. Staphylococcus aureus constituye la principal causa de mastitis infecciosa en vacas, borregas y cabras, causando fuertes perdidas económicas a nivel mundial. Las infecciones tienen a ser subclinicas y crónicas con episodios periódicos de mastitis clínica, pudiendo causar también mastitis gangrenosa (Philpot y Nikerson, 1993). Se utiliza una gran variedad de pruebas que ayudan al diagnostico de la mastitis subclínica mismas que han quedado restringidas casi enteramente a la determinación de la cantidad de DNA, y por lo tanto del número aproximado de leucocitos en la muestra (Blanco, 2001). Prueba de California para mastitis. La prueba de California para mastitis es la utilizada con más frecuencia habiendo probado su eficacia sobre todo en manos de operadores hábiles. Refleja la cantidad de células somáticas (leucocitos y células epiteliales) de la leche. La combinación del DNA nuclear de las células en la leche con un detergente (Alquil-Aril-Sulfonato más Púrpura de Bromocresol) en un recipiente de la paleta especial produce un gel, los resultados se leen como Negativos, Traza, 1+, 2+ y 3+ según la cantidad de gel. 7
  • 8. Prueba de Wisconsin para mastitis La prueba de Wisconsin para mastitis es la segunda técnica más utilizada para el diagnóstico de la mastitis subclínica; requiere de una gradilla con 12 tubos de plástico fijos con capacidad de 15 ml y graduación de 1 a 6 ml; presentan un orificio aereador colocado lateralmente con un diámetro de 3.15 mm. Los tapones de hule llevan un orificio central de 1.10 mm. El reactivo utilizado es el mismo que el de la prueba de California para mastitis diluido en proporción de 1:1 usando agua destilada. En esta prueba se mezclan en cada tubo 3 ml de leche con 3 ml de reactivo, posteriormente se agitan durante 10 segundos y se deja reposar la mezcla por 15 segundos, luego se vierte 15 segundos y se procede a realizar la lectura. Cuenta directa de las células somáticas en la leche Uno de los procedimientos mas empleados por su utilidad y sencillez para el estudio de la leche, es la determinación directa o indirecta del número de células somáticas. Conductividad eléctrica en leche La evaluación de la conductividad eléctrica como un método para la detección de mastitis se basa en el aumento en la cantidad de sodio y cloro presentes en la leche cuando existe una alteración de la glándula mamaria, provocándose entonces un aumento en la conductividad de la misma. Cloro en leche. En la leche la relación lactosa: cloro, es influenciada por: a) estado lactacional y b) presentación de mastitis. En casos de mastitis el contenido de cloro en la leche tiende a incrementarse en proporción a la lactosa, lo que ocasiona en la leche un sabor ligeramente salado. Determinación de pH en leche. El pH identificado en el calostro es de 6.4, en tanto que en la leche es de 6.5-6.8, cantidad que a media lactación es de 6.6-6.7, y al final de 6.8 o mayor. Se ha considerado que en la leche proveniente de glándulas mamaria afectada por mastitis, el pH es alcalino, lo que se atribuye a la disminución de la lactosa e incremento de sales que pasan de la sangre a la leche. N-acetyl-beta-d-glucosaminidasa (nagasa). Recientemente se ha empezado a popularizar una prueba en la leche de vacas con mastitis llamada NAGASA, esta es una enzima que ha demostrado altas correlaciones entre su presencia y el numero de células somáticas en la leche. Esta correlación no vario entre los diferentes agentes etiológicos, tampoco tuvo influencia el numero de recaídas de mastitis de las vacas. Análisis bacteriológico de la leche. La colección de muestras de leche en forma aséptica para los exámenes bacteriológicos puede proveer un diagnóstico válido y correcto para el tratamiento y pronóstico de la mastitis bovina. 8
  • 9. Un diagnóstico bacteriológico deberá realizarse en un laboratorio especializado. Las muestras de leche deberán ser recolectadas en tubos estériles y dentro de las primeras 24 horas, cultivarse en un caldo nutritivo de bacterias asociadas a mastitis o agar nutritivo en cajas conteniendo el medio de cultivo. 9
  • 10. Objetivo El objetivo del presente trabajo fue identificar los agentes patógenos que producen mastitis subclínica en diferentes establos lecheros de Culiacán, Sinaloa, México, determinar su prevalencia y su resistencia a antimicrobianos. 10
  • 11. Material y Métodos El presente trabajo se realizo en el rancho El Torito ubicado en el poblado los becos, rancho La Herradura ubicado en el poblado la laguna colorada, rancho RS ubicado en el limón de los ramos y rancho Los Peñascos ubicado en el Salado. Se realizaron visitas los días lunes y martes para hacer la toma de muestras. Para la muestra de leche se uso gel desinfectante, torundas y vasos estériles, para tomar la muestra primero se desinfectaron las manos con el gel y un poco de algodón, se limpio y desinfecto el pezón de la vaca con la torunda, se tiraron los primeros chorros de leche y se colecto la leche en los vasos estériles, cuidando de no contaminar la muestra. Las muestras fueron puestas en refrigeración y posteriormente se trasladaron al laboratorio de microbiología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, donde inmediatamente se realizaron los cultivos en los diferentes medios; agar sangre, EMB, saborou y sal y manitol. Se encendió el mechero, se esterilizo el asa bacteriológica, se tomo una muestra de leche y se colocaron de una a dos gotas de leche en cada uno de los medios, se extendió la muestra haciendo estrias en el agar y terminado el procedimiento se esterilizo el asa y los cultivos fueron puestos en la incubadora a 37.5°C por 24 horas. Pasadas las 24 horas se realizó la lectura de los cultivos, los positivos fueron observados al microscopio para identificar el microorganismo, los que dieron positivos a Staphilococcus se les realizo la prueba de la coagulasa para identificar si eran Staphilcoccus aureus o staphilococcus spp. Posteriormente se realizo el antibiograma a todos los cultivos positivos, utilizando una muestra del cultivo y realizando otro cultivo en un medio liquido, que fue soya, se puso en la incubadora durante 1 hora y posteriormente se realizo un cultivo y se coloco el disco con 12 antibióticos, se colocaron nuevamente en la incubadora a 37.5°C durante 24 horas y se realizo la lectura de los mismos. 11
  • 12. Resultados y Discusión Los resultados fueron los siguientes: De 20 muestras recolectadas para cultivo, solo 9 (45%) presentaron crecimiento (Cuadro 1). De las muestras observadas al microscopio todas fueron positivas a Staphylococcus, se realizo la prueba de la coagulasa a las 9 muestras positivas, de las cuales 6 (66.66%) fueron coagulasa positiva, determinando asi que son Staphylococcus aureus y 3 (33.33%) son Staphylococcus spp. (Cuadro 2 y 3). En el antibiograma realizado a las 9 muestras positivas se determino la resistencia o sensibilidad a 12 diferentes antibióticos, encontrando solo resistencia en 3 (33.33%) de las muestras (Cuadro 3). Cuadro 1. Cultivos Cultivos bacterianos Positivo 45% Negativo 55% 12
  • 13. Cuadro 2. Prueba de cuagulasa No. Coagulasa (+) Coagulasa (-) 1  2  3  4  5  6  7  8  9  Cuadro 3. Resultados de la prueba de la cuagulasa 70.00% 60.00% 50.00% 40.00% Staphylococcus 30.00% aureus, 66.66% 20.00% Staphylococcus 10.00% spp., 33.33% 0.00% Staphylococcus aureus Staphylococcus spp. 13
  • 14. Cuadro 4. Resistencia a antibióticos 1 2 3 4 5 6 7 8 9 Amikacina (AK) S S S S S S S S S Ampicilina (AM) R S S S S S S S R Cefalotina (CF) S S S S S S S S S Ceftriaxona (CRO) R S S S S S S S S Cloranfenicol (CL) R S S S S S S S S Dicloxacilina (DC) R R S S S S S S R Enoxacina (ENX) S S S S S S S S S Eritromicina (E) R S S S S S S S S Gentamicina (GE) R S S S S S S S S Netilmicina (NET) S S S S S S S S S Penicilina(PE) R S S S S S S S R Trimetroprim- R S S S S S S S S sulfatometoxasol(SXT) Los resultados encontrados respecto a la prevalencia del agente coinciden con lo dicho por Mones y col., en 1989, Reyes y col., en 2002, Luque y Gaxiola en 1993, Bedolla y col., en 2006, ellos encontraron como agente principal a Staphylococcus aureus, al igual que en el presente trabajo. 14
  • 15. Conclusiones Con la realización de este trabajo se llega a la conclusión de que la principal causa de mastitis en México y en el mundo es la falta de higiene y el mal manejo al momento de la ordeña, lo que ocasiona grandes pérdidas económicas en la industria lechera debido a que esta enfermedad provoca una notable disminución en la producción de leche, y en casos mas graves el cuarto afectado llega a perderse por completo. También se concluye que el principal agente causante de mastitis subclínica es el microorganismo gram positivo: Staphylococcus aureus; género del cual existe muy poca resistencia a los antibióticos, teniendo un gran porcentaje de sensibilidad a ellos. 15
  • 16. Bibliografía 1. Andresen, S. H. 2001. Mastitis prevencion y control. Rev inv vet peru 2001;12 (2):55-65. 2. Báez GJJ. 2002. Estudio epidemiológico de mastitis subclínica bovina en el sector II de Téjaro, Michoacán. (Tesis de licenciatura). Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, Facultad de medicina Veterinaria y Zootecnia. Morelia, Michoacán, México. Pp 27-28. 3. Bedolla, C. C. R. Mejía, A. J. G, Pérez C. O Valdivia H. Castañeda V. W. Wolter. 2006. Prevalencia de mastitis en el ganado lechero de tejaro municipio de tarimbaro Michoacán. Facultad de medicina veterinaria y zootecnia de la universidad de Michoacán de san Nicolás de Hidalgo CUCBA- U de G. instituto estatal de hessen Alemania. 4. Bladley, A. J y Green, M J. 2001. Adaptacion of escherichia coli to the bovine mammary Gland. J clin microbiol. 35 (5) 1845-9. 5. Blanco, O.M.A. 2001. Diagnostico de la mastitis subclinica bovina. Departamento de reproducción animal de rumiantes, facultad de medicina veterinaria y zootecnia. Universidad autónoma de México. 6. Chavez, C. J. 2000. Sistemas de produccion de leche en argentina y cuba. facultad de ciencias veterinarias de la UBA. Lactodiagnostico del sur Olivas Burnos Aires, A argentina 7. Concha, B.C. 2008. Mastitis bovina nuevos aspectos de diagnostico tratamiento y control. Universidad de chile. 8. Dos santos, J. N Netto dos santos, K.R,. Gentiline, E ., Sorderi, D., de Freire Bastos, M. C. 2002. Phenotypic and genetic characterization of bacteriocin producing strains of staphylococcus aureus involved in bovine mastitis. Veterinary microbiology. 85:133-144. 9. Kerr DE, y Wellnitz O. 2003. Mammary Expression of News Genes to Combat Mastitis. J Anim. Sci. 81 (suppl.3): 38-47. 10. Londoño, G. D. C. 2006. Prevalencia de los principales microorganismos causantes de mastitis en vacas lecheras del centro del valle del cauca an los años 2003 a 2006. Tesis. 11. Luque, A. M. A. y C. S. M. Gaxiola. 1993. Prevalencia, etiologia y sensibilidad antimicrobiana de mastitis subclinica en culiacan, sinaloa. Escuela de medicina veterinaria y zootecnia de la Universidad Autonoma de Sinaloa. Congreso AMPA memorias. Chihuahua, Chiahuahua. 12. Montes, S. H., A. L. Zurita, R. M. Rivas, y B. L. Moraga. 1989. Mastitis clinica. Flora microbiana aislada de vacas provenientes de algunas lecherias del area metropolitana, Departamento de Medicina Preventiva Animal. Facultad de Ciencias Veterinarias y Pecuarias, Universida de Chile. Vol. 11 n°1. Pp. 1-10. 13. O’Flaherty, S., Ross, R. P., Flynn, J., Meaney, W. J., Fitzgerald, G. F. y Coffey, A. 2005. Isolation and characterization of two anti-staphylococcal bacteriophages specific for pathogenic Staphylococcus aureus associated with bovine infections. Letters in Applied Microbiology. 41: 482–486. 16
  • 17. 14. Olivas, S.F.T., 2010. Principales agentes patologicos causantes de matitis bovina en culiacan, sinaloa. Facultad d e medicina veterinaria y zootecnia. Unuversidad autonoma de sinaloa. 15. Osteras, O. 2006. Mastitis epidemiology practical approaches and applications. XXIV World Buiatrics Congress. Nice, France. 14pp. 16. Philpot WN. 2001. Importancia de la cuenta de células somáticas y los factores que la afectan. III Congreso Nacional de Control de Mastitis y Calidad de la Leche. Junio de 2001. León, Gto. México. 26 pp. 17. Philpot, N.W.,S. C. Nickerson. 1993. Mastitis: el contrataque. Una estrategia para combatir la mastitis. Babson Bros. Co. 18. Philpot, W. N. y Nickerson, S. N. 2000. Importancia económica de la mastitis. Ganando la lucha contra la mastitis. Westfalia-Surge. Estados Unidos de América. : 1-13, 44-53. 19. Reyes, M. P., P. F. valenzuela, y O. V. saavedra. 2002. Desarrollo de metodo para determinacion microbiologica de mastitis subclinica en lecherias de la provincia de talca. Memoria de Licenciaturas. Universidad de talca(chile). 20. Rodríguez, M. G.2006. Comportamiento de la mastitis bovina y su impacto económico en algunos hatos de la sabana de Bogotá Colombia. Revista de medicina veterinaria julio-diciembre numero 012 universidad de salle Bogotá Colombia p.35.55. 21. Rodríguez, M. Y. L. 2000. Determinación de mastitis bovina en catacamas y santa maría del real. Olancho honduras. Escuela nacional de agricultura honduras. 22. Scaramelli, A. y Z, González 2003. Epizootiología y diagnostico de mastitis bovina. Laboratorio de mastitis cátedra de microbiología Facultad de Ciencias Veterinarias, universidad central de Venezuela, Maracay Venezuela departamento de salud publica, decanato de Ciencias Veterinarias Universidad centro Occidental Lisandro Alvarado. 23. Wellenberg, G. J., van der Poel, W. H. M. y Van Oirschot, J. T. 2002. Viral infections and bovine mastitis: a review. Veterinary Microbiology, Article 2361, pp. 2-21. 24. Wolter, W. V.H Castañeda. B Kloppert. M Zschoeck. 2000. La Mastitis bovina. Istituto estatal de investigaciones hesse. Universidad de guadalajara. 17
  • 18. 18