Conferencia que impartí en clase de morfología para desarrollar el tema de desarrollo embrionario a partir de la investigación de John Díaz Olarte Lili J. Marciales Caro Freddy Cristancho VásquezPablo E. Cruz Casallas

1. Trabajo de
ELITE
Excelencia en investigación científica
Fundadores:
Juan Saúl Baez Torreblanca
Juan Carlos Denicia Tlahuiz
María Andrea Hernández Tehuitzil
Jhosse Paul Márquez Ruíz
Alma Pérez López
Orgulloso integrante de
los Ornitorrincos Poseídos
PRESENTA

2. Comparación del Desarrollo Embrionario de Piaractus
brachypomus (Serrasalmidae) y Pseudoplatystoma sp.
(Pimelodidae)
Autores
John Díaz Olarte
Lili J. Marciales Caro
Freddy Cristancho Vásquez
Pablo E. Cruz Casallas
Disertante
Jhosse Paul Márquez Ruíz
22/09/11

3. Producción piscícola
Piaractus brachypomus Pseudoplatystoma sp.
¡¡¡Canibalismo!!!

4. 0:00
0:10
0:20
0:30
¿Para qué estudiar el desarrollo
embrionario?

5. • Heterogeneidad de tiempo de eclosión
• Alimentación inadecuada
• Densidades de alojamiento inapropiadas
Doble membrana, que consiste en una capa gelatinosa
externa y un gran espacio perivitelínico, característica común
a las especies neotropicales reofílicas o que presentan
migración reproductiva

6. Examinar y comparar los estados iníciales del desarrollo
embrionario entre Piaractus brachypomus y Pseudoplatystoma
sp, bajo condiciones controladas de laboratorio.
Para implementar las técnicas mas adecuadas
durante las fases de incubación, larvicultura y
alvelinaje

7. • Conocer la importancia y aplicación
General
del desarrollo embrionario
• Analizar las etapas del desarrollo
embrionario
• Aplicar e integrar el conocimiento
Particulares teórico en una situación real
• Inferir tendencias según los
conocimientos previos del
desarrollo embrionario

8. 0:00
0:10
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0:30
¿Cómo estudio el desarrollo embrionario?

9. 0:00
0:10
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¿Cómo consigo huevos fértiles?
¿Qué necesito para que sean fértiles?

10. Incubadoras
Woynarovich
Fertilización 200 L.
en seco
Extrusión
Reproducción
inducida
hormonalmente
EHC

11. EHC en hembras
Intramuscular
Pseudoplatystoma sp P. brachypomus
0.25 0.5 5 0.5 5
mg.kg-1 mg.kg-1 mg.kg-1 mg.kg-1 mg.kg-1

12. EHC en machos
Intramuscular
4 mg.kg-1
Pseudoplatystoma sp P. brachypomus

13. 100 huevos 100 huevos
Primeras
al azar cada cada
etapas del
15 min/3 hora/hasta
desarrollo
horas eclosión
Formalina buferada al 10%
• Temperatura (ºC)
• Oxígeno disuelto (mg.L-1)
Parámetros • pH
• Sólidos disueltos totales TDS (mg.L-1)
• Conductividad (μs.cm-1)

14. Microscopio óptico Estereomicroscopio

15. 0:00
0:10
0:20
0:30
¿Qué fases esperarían encontrar/distinguir
durante la incubación hasta la eclosión?

16. 0:00
0:10
0:20
0:30
Sabemos que los embriones de pez son
lecitotróficos, es decir, no reciben alimentación
directa de la madre ¿Cómo esperarían que fuera
el huevo de estas especies con respecto a la
cantidad de vitelo y su dispersión?
Por lo tanto, ¿Qué tipo de segmentación
esperarías observar?

17. Oocitos
Tamaño
Tamaño
Especie Color postfertilización
deshidratado
(hidratado)
Pseudoplatystoma sp Amarillento 850-900 μm 1930 ± 40 μm
P. brachypomus Verdiazulado 1000 - 1200 μm 1680± 34 μm

18. Cigoto pa Polo Animal
pv Polo Vegetal
Hasta la primera división ep Espacio Perivitelinico
b Blastómero
Diferenciación de polos
pd Plano De División
Obscurecimiento db Discoblástula
HPF 0:15 v Vitelo
Pseudoplatystoma sp. P. brachypomus

19. pa Polo Animal
Clivage – Primera división pv Polo Vegetal
Meroblásticos ep Espacio Perivitelinico
b Blastómero
HPF 0:30
pd Plano De División
Plano meridional (Sagital) db Discoblástula
Células de igual tamaño v Vitelo
Pseudoplatystoma sp. P. brachypomus P. brachypomus

20. pa Polo Animal
Clivage – Segunda división pv Polo Vegetal
HPF 0:45 – 1:00 ep Espacio Perivitelinico
b Blastómero
Perpendicular al primero
pd Plano De División
db Discoblástula
v Vitelo
Pseudoplatystoma sp. P. Brachypomus

21. pa Polo Animal
Clivage – Tercera división pv Polo Vegetal
Genera 8 células ep Espacio Perivitelinico
b Blastómero
Doble división paralela al primer eje
pd Plano De División
db Discoblástula
v Vitelo
Pseudoplatystoma sp. (0:45 - 1:00) P. Brachypomus (0:45-1:15)

22. pa Polo Animal
Clivage – Cuarta división pv Polo Vegetal
Genera 4 filas x 4 blastomeros ep Espacio Perivitelinico
b Blastómero
División paralela al segundo eje
pd Plano De División
db Discoblástula
Pseudoplatystoma sp. (1:00 - 1:15)
v Vitelo
P. Brachypomus (1:00 -1:30)
Quinto
32 células
clivaje 1:00 - 2:00 HPF en
Pseudoplatystoma sp
Sexto 1:00 -1:45 HPF en
64 células
clivaje P. brachypomus.

23. Pseudoplatystoma sp.
(128 células) P. Brachypomus (64 células)

24. pa Polo Animal
Blástula pv Polo Vegetal
Células envuelven al vitelo ep Espacio Perivitelinico
b Blastómero
Blastodisco
pd Plano De División
3 etapas: Inicial, elevación de la blástula db Discoblástula
y descenso v Vitelo
P. Brachypomus (2:00 - 4:00)

25. Pseudoplatystoma sp. (2:00 - 5:00)
Blastodisco inicial Elevación del blastodisco

26. Descenso del blastodisco

27. Gástrula bp borde periblasto
v vitelo
4 etapas tv tapón vitelino
• Epibolia inicial sm somitas
vk vesícula de Kupffer
• Epibolia 50%
pa parte caudal
• Epibolia 80-95%, pc parte cefálica
• Cierre del blastóporo
Pseudoplatystoma sp. (5:00 - 10:00)
Epibolia 80% Epibolia 95% Cierre del blastoporo

28. P. Brachypomus (5:00 - 8:00)
Epibolia 50% Epibolia 80%
bp borde periblasto vk vesícula de Kupffer
v vitelo pa parte caudal
tv tapón vitelino pc parte cefálica
sm somitas

29. Organogénesis
Diferenciación céfalo-caudal
Cambio de forma curvada a extendida
Simetría bilateral
4 etapas:
• Fase inicial diferenciación de órganos cefálicos como la vesícula
óptica y ótica
• Organogénesis ii: diferenciación de la parte caudal (cola)
• Organogénesis iii: diferenciación de las cavidades encefálicas
formación del cristalino y los otolitos
• Organogénesis tardía: somitas pareadas, vasos del sistema
circulatorio y formación de aletas primigenia

30. bp borde periblasto vk vesícula de Kupffer
v vitelo pa parte caudal
tv tapón vitelino pc parte cefálica
sm somitas
Pseudoplatystoma sp. (8:00 - 16:00)
Diferenciación antero-posterior en posición arqueada

31. bp borde periblasto vk vesícula de Kupffer
v vitelo pa parte caudal
tv tapón vitelino pc parte cefálica
sm somitas
P. Brachypomus (8:00 - 13:00)
Diferenciación antero-posterior en posición arqueada

32. Eclosión
Pseudoplatystoma sp se observó desde las 14:00 HPF hasta las 18:00 HPF,
mientras que en P. bachypomus se inició a las 12:00 HPF y llego al 80% de
larvas eclosionadas a las 14:00 HPF

33. • En Pseudoplatystoma sp existe un mayor espacio que en P.
brachypomus
• El diámetro de los oocitos hidratados después de la fertilización
de Pseudoplatystoma sp es mayor que los de P. brachypomus,
lo cual le proporcionaría al embrión una mayor protección de
los daños mecánicos del ambiente
• Pseudoplatystoma sp presenta un ritmo más heterogéneo en la
división, mientras que P. brachypomus es más rápido y más
homogéneo
• La heterogeneidad de eclosión provoca el canibalismo