MACHALA RESULTADOS.pdf

UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TRABAJO DE TITULACIÓN SOMETIDO A CONSIDERACIÓN DEL H. CONSEJO
DIRECTIVO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS COMO
REQUISITO PREVIO PARA OPTAR AL TÍTULO DE GRADO DE:
MÉDICO VETERINARIO Y ZOOTECNISTA
TEMA:
“DETERMINACIÓN DE Ehrlichia canis EN PERROS EN LA CIUDAD
DE MACHALA “
JUAN PABLO VALAREZO OJEDA
AUTOR
MACHALA EL ORO ECUADOR
2013

III
CERTIFICACIÓN:
Este trabajo de titulación ha sido aceptado en forma presente por el tribunal de grado
nominado por el H. Consejo Directivo de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la
Universidad Técnica de Machala, como requisito para optar al grado de:
MÉDICO VETERINARIO Y ZOOTECNISTA
Dr. Segundo Martínez Salinas Mg. Sc.
Director
Dr. Luis Hurtado Flores Mg. Sc.
Miembro de tesis
Dr. Silvio Granda Velepucha.
Miembro de tesis

IV
La responsabilidad por las
investigaciones, resultados y
discusión del presente trabajo,
pertenece exclusivamente al autor.
Juan Pablo Valarezo Ojeda.

V
DEDICATORIA
Con mucho amor a mis padres que se han sacrificado muchos años de sus vidas por dejarme
la mejor herencia como es la educación, por haberme apoyado incondicionalmente durante
toda mi carrera y siempre guiarme y darme buenos consejos, a mi Padre por haberme
inculcado la honradez y valores, a mi Madre por ser la rectora de mi vida y la que siempre ha
estado a mi lado.
A mis hermanos Rosa, Miguel y Wilson, a mis sobrinos Joel, Alex y Josué por ser parte muy
importante de mi vida.
A Dios porqué sin él, nada de esto fuera posible por darme fuerzas y valor para alcanzar este
primer paso de mi carrera como Médico Veterinario.

VI
AGRADECIMIENTO
Agradezco principalmente a Dios por darme fortaleza, sabiduría capacidad para concluir mis
estudios Universitarios a más de prestarme salud para realizarlo e iluminarme día a día con su
inmenso amor.
A mis padres por todo el apoyo incondicional que me brindaron en todo momento de mi
carrera profesional, porque sin su apoyo no hubiese logrado alcanzar esta meta, gracias papas
por esos sabios consejos que perdurarán por siempre en mi mente y por ser el pilar de mi vida.
A mis hermanos por su motivación de ser un profesional.
A mis dos mejores amigos que los aprecio mucho por brindarme su apoyo incondicional en
toda etapa de mi vida Marita Loayza y Kevin Olvera.
De la misma manera agradezco al Dr. Walter Paredes que me brindo sus conocimientos
profesionales e incondicionales para empezar este trabajo de investigación.
De manera especial al Dr. Segundo Martínez Salinas partícipe directo en la elaboración y
culminación de este proyecto.
Igualmente agradezco al Dr. Luis Hurtado y al Dr. Silvio Granda colaboradores miembros de
mi tesis.

VIII
ÍNDICE
1. INTRODUCCIÓN 14
1.1 Objetivos 15
1.1.1. Objetivo general 15
1.1.2. Objetivo específico 15
2. REVISIÓN DE LITERATURA 16
2.1. Antecedentes 16
2.2. Ciclo biológico de la garrapata (rhipicephalus sanguineus ). 16
2.3. Ehrlichiosis canina 17
2.3.1. Definición 17
2.3.2. Morfología 18
2.3.3. Taxonomía 18
2.3.4. Sinónimos 18
2.3.5. Etiología 19
2.3.6. Distribución 21
2.3.7. Hospedadores 21
2.3.8. Transmisión 21
2.3.9. Ciclo de ehrlichia canis 22
2.3.10 patogenia 23
2.3.11 suceptibilidad 24
2.3.12. Sintomatología 25
2.3.13. Diagnóstico 27
2.3.13.1. Diagnóstico etiológico 27
2.3.13.2. Inmuno diagnóstico 27
2.3.13.3. Diagnóstico diferencial 28
2.3.14. Lesiones 29

IX
2.3.15. Tratamiento 29
2.3.16. Profilaxis 31
2.3.17. Prevención 32
2.3.18. Ocurrencia en el hombre 32
3. MATERIALES Y MÉTODOS 33
3.1. Métodos 33
3.1.1. Localización del estudio 33
3.1.1.1. Ubicación geográfica y política 33
3.1.1.1.1. Mapa político del ecuador 34
3.1.1.1.2. Mapa del cantón machala 34
3.1.1.2. Equipos y materiales 35
3.1.1.3. Universo y muestra 36
3.1.1.3.1. Universo 36
3.1.1.3.2. Muestra 36
3.2. Obtención de la muestra de sangre 37
3.2.1 frotis sanguíneo 38
3.2.2. Tinción de giemsa 38
3.2.3. Variables analizadas 39
3.2. 4. Metodología 39
3.2.5. Métodos de análisis de laboratorio 40
3.2.6. Análisis estadístico 40
4. RESULTADOS Y DISCUCIÓN 41
4.1. Determinación del índice de prevalencia de ehrlichia canis. 41
4.2. Determinación de ehrlichia canis en relación al sexo. 42
4.3. Determinación de ehrlichia canis en relación a la edad. 43
4.4. Determinación de ehrlichia canis en relación a la raza. 44
5. CONCLUSIÓNES 46

X
6. RECOMENDACIONES 47
7. RESUMEN 48
8. SUMMARY 49
9. BIBLIOGRAFÍA 50
10. ANEXOS 50

XI
ÍNDICE DE TABLAS
Tablas Páginas
1. Determinación total del Índice de Prevalencia de Ehrlichia Canis 41
2. Determinación de Ehrlichia Canis en relación al sexo. 42
3. Determinación de Ehrlichia Canis en relación a la edad. 43
4. Determinación de Ehrlichia Canis en relación a la raza. 44

XII
ÍNDICE DE FIGURAS
Figuras Páginas
1. Determinación total de Ehrlichia Canis en perros en la ciudad de Machala. 41
2. Casos positivos y porcentajes de caninos infectados por Ehrlichia Canis en relación al
sexo, Machala, 2014. 42
3. Casos positivos y porcentajes de caninos infectados por Ehrlichia Canis en relación a
la edad, Machala, 2014. 43
4. Casos positivos y porcentajes de caninos infectados por Ehrlichia Canis en relación a
la Raza, Machala, 2014. 45

XIII
ÍNDICE DE ANEXOS
Anexos Páginas
ANEXO N° 1 Hoja de control 54
ANEXO N° 2 Tabla de registro 55 - 62
ANEXO N° 3 Fotos 63
Foto 1. Toma de muestra sanguínea del animal 63
Foto 2. Caninos con presencia de garrapatas. 64
Foto 3. Caninos con síntomas de la enfermedad ( Petequias ). 65
Foto 4. Realización del Frotis sanguíneo. 66
Foto 5. Preparación de la placa con metanol. 67
Foto 6. Preparación de la placa con la tinción de Giemsa. 68
Foto 7. Observación de EHRLICHIA canis en el Laboratorio de Microbiología. 69
Foto 8. Observación de EHRLICHIA canis en el Laboratorio de Microbiología. 70
Foto 9. Leucocito que contiene Mórula Ehrlichia Canis. 71

14
1. INTRODUCCIÓN
Las hemoparasitosis en general son enfermedades causadas por parásitos que se han adaptado,
a las condiciones del sistema sanguíneo tanto, del hombre como de los animales domésticos o
silvestres, sean estos mamíferos, aves o reptiles, entre este grupo de agentes patógenos
tenemos los parásitos del sistema sanguíneo del perro.
Las enfermedades que afectan a los perros son de gran importancia en el mundo entero dentro
de la práctica clínica diaria, tanto de la frecuencia de su presentación como por la severidad de
los cuadros clínicos que producen, afectando a la zootecnia canina, que es la ciencia
encargada del estudio y la industrialización de los animales de compañía.
En el presente trabajo se reúne lo más relevante acerca de una de las enfermedades infecciosas
más importantes y letales de los perros como lo es la EHRLICHIOSIS canina ya que se
encuentra ampliamente difundida en todo el territorio Ecuatoriano. Por lo cual se propone
medir la presencia de esta enfermedad y tomar las acciones necesarias para gestionar las
medidas pertinentes respecto a este caso y disminuir los vectores causantes de esta patología
como son las garrapatas que no solo afectan al bienestar animal, sino también a los seres
humanos.
Es de especial interés realizar una investigación referente a este tema en la ciudad de
Machala, con la finalidad de actualizar datos que permitan a los veterinarios tener una fuente
de información que pueda servir para prevenir y tratar la misma. Por qué en esta ciudad como
en todo el trópico continental se dan los medios adecuados para la supervivencia y
multiplicación de estos parásitos como son: humedad, temperatura y hospedadores.
Es por esto que el Ministerio de Salud debe de declarar a la Ehrlichiosis como una
enfermedad de notificación obligatoria de Laboratorio, y tiene que ser un deber de nuestra
profesión generar los diagnósticos, tratamientos en los perros afectados, y más importante que
el gremio vea con seriedad esta patología y genere los registros para un trabajo en conjunto
con las áreas de la Salud Pública.
La EHRLICHIA canis es causada por un parásito intracelular obligado de las células
sanguíneas, esencialmente monocitos, perteneciente a la familia Rickettsaceae,
EHRLICHIA spp. La más común de todas ellas es E. canis que es transmitida por la
garrapata que infesta con frecuencia a los perros Rhipicephalus sanguineus, por lo tanto es
necesario conocerla con el propósito de diagnosticarla para aplicar un tratamiento adecuado y
sobre todo para poder prevenirla.

15
1.1 OBJETIVOS
1.1.1. Objetivo general
1.1.1.1 Determinación del Índice de Prevalencia de EHRLICHIA canis en
perros en la ciudad de Machala.
1.1.2. Objetivo específico
1.1.2.1. Determinar del Índice de Prevalencia de EHRLICHIA canis en perros
en la ciudad de Machala.
1.1.2.2. Determinar la relación existente con las variables según el sexo, edad y
raza de los perros que han contraído la enfermedad.

16
2. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1. ANTECEDENTES
KREIER et al (1977), WANER y HARRUS (2000) y ATRIA (2002), refieren que E. canis
fue por primera vez reconocida en monocitos circulares por DONATIEN y LESTOQUARD
en Argelia 1935; En un principio se llamó Rickettsia canis, pero luego, en 1945 se le cambia
el nombre a EHRLICHIA canis, en honor al bacteriólogo alemán Paúl Ehrlich.
Debido a la alta morbilidad y mortalidad hizo que se la llamara durante algún tiempo
Pancitopenia Tropical Canina, pero se comprobó que era el mismo agente que él descrito por
Donatien en 1935, solo que en presencia de una cepa más virulenta (KREIER et.al,1977;
WANER y HARRUS, 2000 y ATRIA, 2002).
La enfermedad asumió gran importancia durante la guerra de Vietnam en 1960, la
Ehrlichiosis provocó la muerte de cientos de perros militares. Pero esta enfermedad recibió
mayor atención en 1987, cuando otro tipo de Ehrlichia, E. Chaffeensis fue identificada como
la causa de ehrlichiosis monocítica humana, en 1996 se demostró que E. Chaffeensis
provocaba las mismas manifestaciones clínicas que E. canis en los cánidos (KREIER et.al,
1977); (WANER & HARRUS, 2000); y (ATRIA, 2002).
2.2. CICLO BIOLÓGICO DE LA GARRAPATA (Rhipicephalus
sanguineus ).
Según HOSKINS (1991), el ciclo biológico de Rhipicephalus sanguineus, es de tres
hospedadores. Las hembras alimentadas realizan una puesta aproximada de unos 4,000
huevos, tras un período de pre-ovoposición variable de 3–85 días, en lugares protegidos de la
luz y de la desecación. Las larvas eclosionan entre los 8–67 días (período de incubación) y
después de un período de maduración, están capacitadas para fijarse a un primer hospedador;
esta fase presenta un período de supervivencia que en condiciones favorables, puede
sobrepasar los 253 días.
Entre los 3 y los 7 días post-fijación, la larva se suelta una vez alimentada y busca un lugar
resguardado donde realizar su primera muda. Las ninfas aparecen entre los 6 y los 23 días
después de la caída de las larvas alimentadas y casi de forma inmediata, están preparadas a
subir a un segundo hospedador con el fin de volver alimentarse. Aunque esta fase no son tan

17
resistentes como en la fase larvaria, puede llegar a sobrevivir más de 183 días en ayunas. El
tiempo que necesita para alcanzar la repleción varía entre 4 –9 días, pasado, los cuales la ninfa
alimentada se suelta de su hospedador, cae al suelo y busca un sitio resguardado para realizar
la segunda muda a partir de la cual emergerán los adultos entre los 12–129 días después de la
caída de la ninfa repleta; puede sobrevivir más de 568 días en espera de un hospedador
(HOSKINS, 1991).
Tanto los machos como las hembras se fijan en un tercer hospedador para realizar la ingestión
de sangre. Las hembras solo se fijan y succionan sangre una vez, mientras, que los machos se
alimentan de forma intermitente y persisten más tiempo sobre el hospedador, para que la
mayoría de las hembras queden fecundadas; estas una vez alimentadas (6–50 días) caen al
suelo y buscan refugio donde realizar la puesta. (HOSKINS, 1991).
Según HOSKINS (1991), en condiciones favorables, el ciclo de R. sanguineus, puede
completarse en 63 días. En zonas cálidas, pueden darse varias generaciones por año, mientras,
que en zonas templadas es más frecuenten la prolongación del ciclo.
2.3. EHRLICHIOSIS canina
2.3.1. DEFINICIÓN
La EHRLICHIOSIS canina es una enfermedad infecciosa, causada por un parásito
intracelular obligado perteneciente a la familia Rickettsaceae, Ehrlichia spp, para (HOSKINS,
1991; RISTIC Y HOLLAND, 1992), la más común de todas ellas es E. canis que es
transmitida por la garrapata que infesta con frecuencia a los perros: Rhipicephalus sanguineus.
Según HOSKINS (1991); RISTIC Y HOLLAND (1992), la Ehrlichiosis es una enfermedad
zoonótica, (es conveniente saber que la mordedura de un estado ninfal pasa desapercibida al
hombre), EHRLICHIA canis es reconocida por un bajo potencial zoonótico, por eso una gran
proporción de los casos de Ehrlichiosis humana son debidas a este agente.
Por medio de la sangre va extendiéndose por los distintos órganos del perro produciendo
inflamaciones en los mismos esta enfermedad es reconocida como una enfermedad infecciosa
muy importante y potencialmente fatal para los cánidos y otros miembros de la familia
canidae (HOSKINS, 1991; RISTIC Y HOLLAND, 1992).

18
2.3.2. MORFOLOGÍA
GREENE (2008), manifiesta que el género Ehrlichia está formado por bacterias
intracelulares obligadas gram negativas, transmitidas por garrapatas que infectan
principalmente leucocitos(monocitos, macrófagos, granulocitos). Estos cocobacilos
pleomórficos sensibles a ácidos miden alrededor de 0,5 um de diámetro son aerobios que no
tienen una vía glucolítica, se presentan en forma intracitoplásmica en grupos de organismos
llamados mórulas. E. canis, E. chaffeensis, E. ewingii y E. muris siguen siendo miembros del
género E. (cowdria) ruminantium, que provoca hidropericardio de ganado en África.
2.3.3. TAXONOMÍA
Según WANER y HARRUS (2000); y ATRIA (2002), se clasifica de la siguiente manera:
Reino: Monera
Phylum: Ciliophora
Clase: Rickettsiae
Orden: Ricketsiales
Familia: Ricketsiaceae
Género: Ehrlichia
Especie: E. canis
2.3.4. SINÓNIMOS
Para GREENE (2008), la enfermedad es conocida como:
 Rickettsiosis canina
 Fiebre hemorrágica canina
 Enfermedad de los perros rastreros
 Tifus canina de las garrapatas
 Pancitopenia tropical canina
 Desorden hemorrágico de Nairobi

19
2.3.5. ETIOLOGÍA
2.3.5.1. Tabla 1. Especies y características de Ehrlichia que infectan a humanos y
animales domésticos y de laboratorio, (GREENE, 2008).
Especies Nombre
Común De La
Enfermedad
Hospedador Células
Afectadas
Vector
Primario
Distribución
"E. bovis" Ehrlichiosis
bovina
Bovinos Células
mononucleres
Hyalomma
spp.
Medio este,
África,
Sri Lanka
E. canis Ehrlichiosis
canina
Perros Principalmente
celulas
mononucleres
Rhipicephalus
sanguineus
mundial
E. chaffeensis Eherlichiosis
monocitica
humana (HME)
Perro,
ciervos ,
cabras ,
humano.
Principalmente
células
mononucleres
Amblyomma
americanum
USA
E. equi Equine
ehrlichiosis
Caballos
roedores y
llama
granulocitos Ixodes
pacificus
USA,
Europa
E. ewingii Ehrlichiosis
granulocitica
canina
perros granulositos Amblyomma
americanum
USA
"E. ovina" Ehrlichiosis
ovina
ovejas Células
mononucleres
desconocido medio este.
E.
phagocytophila
Fiebre de la
picadura , fiebre
del heno.
Ovejas,
bison, cabras
, ciervo
Principal
granulocitos
Ixodes ricinus Europa
"E. platys" Trombocitopenia
ciclica
Perros plaquetas desconocido USA,
Taiwán,
Grecia ,
Israel
Agente EGH Ehrlichiosis
granulocitica
humana
Ciervos y
roedores
salvajes
granulocitos Ixodes
scapularis
and I.
pacificus in
the USA; I.
ricinus in
Europe
USA,
Europe

20
HARRUS (1999) y SAINZ et. al (2000), refieren que la EHRLICHIOSIS canina es una
enfermedad rickettsial, causada por Ehrlichia spp. y transmitida por la garrapata marrón del
género Rhipicephalus sanguineus.
Existen otras especies de Ehrlichia, que pueden infectar a los perros como, E. platys, E. equi,
E. ewingii, y E. chaffeensis, esta última considerada como agente principal de la Ehrlichiosis
monocítica humana. Según algunos autores la infección por los agentes anteriormente
nombrados, producirían manifestaciones clínicas más benignas en comparación a las que
produce Ehrlichia canis, (CODNER Y FARRIS-SMITH, 1989).
CODNER Y FARRIS-SMITH (1989), indican que todas las Ehrlichia spp. son
microorganismos intracelulares que infectan leucocitos, salvo Ehrlichia platys, que se
encuentra en plaquetas. Son varias las especies de Ehrlichia capaces de infectar al perro,
aunque desde un punto de vista clínico es EHRLICHIA canis la de mayor importancia.
E. canis infecta el citoplasma de los linfocitos y los monocitos sanguíneos de los perros
afectados y más recientemente HARRUS (2003), agrega que E. canis infecta tanto a los
monocito, como a los macrófagos de los monocitos del sistema fagocitario.
Según KREIER et al (1977), fueron DONATIEN Y LESTOQUARD (1935), quienes
concluyeron, que los parásitos de células mononucleares E. canis, E. bovis y E. ovis,
presentaban tres estadios, es decir, que dentro de su cíclo biológico se pueden distinguir
diferentes formas:
 Cuerpo elemental (0.2 –0.6 μm) que se dividen por fisión binaria para dar
lugar a los cuerpos iniciales.
 Cuerpo inicial (0.4 –2 μm) se divide produciéndose hasta 40 mórulas.
 Mórula (3 –6 μm).
Inclusión compatible con Ehrlichia spp. en el interior de una célula mononuclear en
extensión sanguínea.

21
2.3.6. DISTRIBUCIÓN
E. canis presenta una distribución mundial y está relacionada con la distribución del vector
Rhipicephalus Sanguineus, según (GREENE, 2008), se ha descrito su ocurrencia en cuatro
continentes (Asia, África, Europa, y América) a pesar de la presencia de vectores adecuados,
parece que las áreas oceánicas o insulares que mantuvieron cuarentena, como Australia y el
Reino Unido no presentan infección por E. canis.
2.3.7. HOSPEDADORES
GREENE (2008), sugiere que los huéspedes vertebrados de E. canis incluyen miembros de la
familia cánidos, se considera que el coyote, el zorro, y el chacal además del perro doméstico
son huéspedes reservorios. Existe información nueva que sugiere que E. canis o un
organismo estrechamente relacionado puede a demás infectar a gatos.
2.3.8. TRANSMISIÓN
SOULBY (1987); HARRUS (1999); WANER y HARRUS (2000); SAINZ et al, (2000);
VARELA (2003); FRISBY (2004) e IRWIN (2004), describen que EHRLICHIA canis se
transmite por la picadura de un único vector conocido Rhipicephalus sanguineus, esta
garrapata se convierte en un vector de E. canis cuando ingiere sangre de perros infestados,
adquiriendo el parásito en forma de larva o ninfa y transmitiéndola en forma de ninfa o adulto.
WANER y HARRUS (2000), han demostrado recientemente la transmisión experimental de
E. canis, por medio de Dermacentor variabilis (garrapata americana del perro).
La garrapata, al alimentarse de un perro con ehrlichiosis, puede ingerir glóbulos blancos con
Ehrlichia en su citoplasma. Este hecho es mucho más frecuente, si la garrapata se fija a
perros en fase aguda de la enfermedad, ya que es en esta fase, cuando se encuentran un
mayor número de leucocitos infectados en sangre (HIBTER et. al, 1986).

22
De acuerdo a WANER y HARRUS (2000); SAINZ et al (2000); MERCK (2000) y FRISBY
(2004), las Ehrlichias son diseminadas por los hemocitos, desde el intestino de la garrapata
hacia sus glándulas salivales (estas constituyen la fuente de transmisión para el perro).Cuando
las garrapatas se están alimentando en su hospedador, inyectan una secreción de las glándulas
salivales, la cual está contaminada con EHRLICHIA canis.
Los tres estadios de la garrapata son capaces de transmitir la enfermedad para (GREENE,
2008), ha sido demostrado que las garrapatas adultas pueden sobrevivir entre 155 a 568 días
sin alimentarse y transmitir hasta por 155 días, después de haberse infectado con
EHRLICHIA canis.
SAINZ et al (2000); y WANER y HARRUS (2000), describen que la transmisión de E. canis
en la garrapata, es de tipo trans- estadial, es decir, de larva a ninfa y de ninfa a adulto, sin que
se haya podido demostrar hasta el momento la existencia de transmisión trans - ovárica (de
una generación de garrapatas a la siguiente).
Mientras que (KREIER et al, 1977), citando a (GROVES, 1975); y (LEWIS, 1975),
aseguran que la transmisión trans-ovárica ocurre en la garrapata. Según (IRWIN, 2004),
aunque no es la forma natural de transmisión de la enfermedad, pero puede ser transmitida, a
través del empleo de sangre de perros donantes positivos a ehrlichiosis en una transfusión
sanguínea al can receptor.
Existe un estudio que indica que la transfusión con sangre de perros con infección crónica,
que habían contraído la infección 5 años antes, provocó enfermedad a los perros receptores.
Por ello, es recomendable confirmar que los perros empleados como donantes sean negativos
a ehrlichiosis (IRWIN, 2004).
2.3.9. CICLO DE EHRLICHIA canis
DAVOUST (1993); y GREGORY (1990) citados por VIGNARD – ROSEZ (2002),
sostienen que el ciclo de EHRLICHIA está constituido por tres fases:
 Penetración de los cuerpos elementales en los monocitos, en los cuales
permanecen en crecimiento por aproximadamente 2 días.

23
 Multiplicación de Ehrlichia por un periodo de 3 a 5 días, con la formación
de los cuerpos iniciales.
 Formación de las mórulas estando éstas formadas por un conjunto de cuerpos
elementales envueltos por una membrana.
 DAVOUST (1993); COUTO (1998), citados por VIGNARD – ROSEZ (2002),
señalan que en una misma célula, podemos encontrar más de una mórula, esta
permanece en la célula hospedadora entre 3 a 4 días para luego ser liberadas
por lisis celular (rompimiento de la membrana celular).
2.3.10 PATOGENIA
Una gran variedad de factores como el tamaño de inóculo, cepa de EHRLICHIA, inmunidad
del paciente, enfermedades concomitantes producidas por otros parásitos transmitidos por
garrapatas, pueden influir en el curso y el resultado de la infección (GREENE, 2008).
GREENE (2008), señala que no hay predilección de edad, sexo y raza en esta enfermedad, sin
embargo parece que los Pastores Alemanes son más susceptibles que otras razas, es más la
enfermedad en esta raza es más grave y presenta un pronóstico más débil que en otros. El
perro se infecta por la mordedura de una garrapata que al alimentarse inyecta en el lugar
secreciones salivales contaminadas con EHRLICHIA canis o en forma iatrogénica por medio
de transfusiones sanguíneas de un perro infectado a otro susceptible.
Para SAINZ et al (2000); HARRUS (1999); y WANER (2000), el período de incubación de
la enfermedad es de 8 a 20 días. Clásicamente se describen tres fases de la enfermedad
(aguda, subclínica y crónica), aunque en la práctica clínica no se diferencian fácilmente.
SAINZ et al (2000); WANER y HARRUS (2000), concuerdan que luego que E. canis, ha
entrado en células mononucleares, se desencadena la fase aguda, donde, los parásitos entran
en el torrente sanguíneo y linfático y parasitan a los macrófagos del sistema retículo -
endotelial en el bazo, hígado y ganglios linfáticos, donde se replican por fisión binaria, al
entrar E. canis, a estos órganos, causa una hiperplasia, manifestándose clínicamente, con un
aumento del tamaño de estos órganos. A demás, E. canis se puede diseminar por un gran
número de órganos (pulmón, riñones, meninges) en los que suele provocar lesiones
inflamatorias.

24
La fase aguda puede durar entre 2 y 4 semanas. Los perros mal tratados o no tratados pueden
desarrollar posteriormente una fase subclínica que aunque sin signos clínicos de la
enfermedad mantiene recuentos bajos de plaquetas. Estos pacientes se transforman en
portadores sanos por un período que puede llegar hasta los 3 años (SAINZ et al, 2000);
(WANER & HARRUS, 2000).
Según IRWIN (2004), en algunos casos el cuadro puede desencadenar una coagulación
intravascular diseminada, que puede acabar con la vida del animal. Como consecuencia de la
infección, se produce una respuesta inmunitaria humoral importante, que a menudo no es
capaz de eliminar el agente patógeno. Este fenómeno suele presentarse en la fase subclínica
de la enfermedad, es especialmente frecuente, la presencia de trombocitopenia y
trombocitopatías motivadas fundamentalmente por procesos inmunomediados.
Para IRWIN (2004), en los pacientes con fase crónica de la enfermedad en su forma más
grave, el cuadro se caracteriza por la reducción de la producción de elementos sanguíneos de
la médula ósea. Algunos animales con buena respuesta celular, pueden superar la infección
sin necesidad de ser tratados, sin embargo, en la mayoría de los casos la enfermedad progresa
a una fase crónica cuya severidad es variable. Esta severidad depende fundamentalmente del
grado de afección de algunos órganos vitales. En este sentido, los casos con insuficiencia
renal no suelen responder bien al tratamiento. Igualmente en ocasiones la médula ósea se
puede afectar hasta el extremo de presentarse una aplasia medular que produce un cuadro de
pancitopenia que suele desembocar en la muerte del animal.
2.3.11 SUCEPTIBILIDAD
Varios autores como WANER y HARRUS (2000); CARTER (2003); y FRISBY (2004),
concuerdan en que los canes de la raza Pastor Alemán, tienden a desarrollar una fase crónica
severa ó un cuadro Clínico más grave de esta enfermedad, más a menudo que otras razas;
Agregando (FRISBY, 2004), que también los Doberman Pinschers y Springer Spaniels,
tienden a padecer esta forma severa de la enfermedad.

25
Además de lo dicho anteriormente CARTER (2003), agrega que los cachorros y perros
jóvenes son los más susceptibles a padecer la enfermedad (WANER y HARRUS, 2000), citan
que esta susceptibilidad observada posiblemente se debe a una reacción inmunomediada
celular, que induce autoinmunidad en esta raza. La muerte puede ocurrir como consecuencia
de una hemorragia o por una infección secundaria.
ORTEGON et al (2004), encontró una mayor predisposición en términos generales para los
machos, resultados compartidos por los encontrados por, (ETTINGER, 1997). Mientras que,
(SAINZ et al, 2000), afirma que no hay predisposición de raza, edad o sexo a presentar esta
enfermedad, considerándose que la respuesta inmune de cada paciente juega un papel
importante en la patogenia.
2.3.12. SINTOMATOLOGÍA
La EHRLICHIOSIS canina presenta una gran variedad de síntomas clínicos no específicos o
atípicos, causas múltiples, desordenes y anormalidades hematológicas, su severidad está en
dependencia de la cepa de E. canis, el estado inmunitario y su respuesta ante el parásito,
infecciones concomitantes con otras enfermedades transmitidas por garrapatas y la
coexistencia de este organismo con otros hemoparásitos (IRWIN, 2004).
Según FRISBY (2004), la EHRLICHIOSIS puede presentarse en tres fases:
 Fase aguda
 Fase sub-clínica
 Fase crónica
La fase aguda FRISBY (2004), indica que los síntomas se manifiestan entre la 1ra
a la
3ra
semana, luego de que la garrapata infectó al huésped, la fase aguda tarda entre 2 a 4
semanas, la EHRLICHIA entra en los leucocitos y se reproduce dentro de ellos, estos
leucocitos se encuentran en los ganglios linfáticos, bazo, hígado, en la médula espinal y en la
sangre .Como resultado de la infección los ganglios linfáticos, el bazo y el hígado están
inflamados, los síntomas más frecuentes durante esta fase son:

26
 Anemia
 Fiebre
 Depresión
 Letárgia
 Pérdida del apetito
 Dolor
 Rigidez articular y disnea
 Aumento de los nódulos linfáticos
 Hemorragias leves como epistaxis o petequias en el abdomen o mucosas
La fase sub-clínica FRISBY (2004), manifiesta que el animal puede parecer normal o
presentar sólo una leve anemia, esta fase puede durar hasta cinco años y el perro o bien
elimina Ehrlichia del cuerpo o la infección puede progresar a la fase crónica.
La fase crónica según FRISBY (2004), se presenta entre el 1er
al 4to
mes, luego del piquete
de la garrapata infectada, durante esta fase la EHRLICHIOSIS, se puede presentar de una
forma leve o severa, para (FRISBY, 2004); e (IRWIN, 2004), los síntomas más frecuentes
son:
 Pérdida de peso
 Anemia
 Signos neurológicos
 Sangrado o hemorragias
 Inflamaciones en los ojos y en las extremidades
 Palidez de mucosas
 Puede desarrollarse edema en miembros posteriores y escroto
 Artritis
 Insuficiencia renal y glomerulonefritis (inflamación del riñón).

27
SIGNOS NEUROLÓGICOS
IRWIN (2004), agrega que los signos neurológicos que se han relacionado con la
EHRLICHIOSIS son muy variados y pueden estar causados por hemorragias y compresión
de vasos sanguíneos alrededor de las meninges, ocurre progresiva pérdida en la locomoción
de los miembros posteriores y disminución en los reflejos. Estos animales suelen presentar
una rápida respuesta al tratamiento, recuperando por completo la funcionalidad neurológica.
2.3.13. DIAGNÓSTICO
2.3.13.1. Diagnóstico etiológico
El diagnóstico de esta enfermedad para KUEHN Y GAUNT (1985), en una primera etapa, se
realiza en base a la sintomatología clínica y al cuadro hematológico, el que consiste en:
pancitopenia, anemia y trombocitopenia; ésta última es considerada como la alteración más
consistente en la infección por E. canis.
Según FRISBY (2004), EHRLICHIA canis aparece transitoriamente en la sangre, durante
aproximadamente tres días, en la fase aguda, por lo que son muchos los perros con
ehrlichiosis, en los que no encontramos estos cuerpos de inclusión. También se puede intentar
establecer un diagnóstico etiológico a partir de muestras de médula ósea, ganglio. Este
método diagnóstico no es él más adecuado, porque pueden pasar por desapercibidos los canes
positivos.
2.3.13.2. Inmuno diagnóstico
Para FRISBY (2004), las técnicas serológicas y en especial, la inmunofluorescencia indirecta
(IFI) son las más empleadas en la práctica clínica. La detección de un título de anticuerpos
positivo, en un perro con signos clínicos o alteraciones en la analítica compatibles con
Ehrlichiosis, permite realizar un diagnóstico de la enfermedad.
Las IgG tardan en aparecer entre 14 y 21 días después de la infección, por lo que en fases
agudas podemos encontrar títulos por debajo del umbral de positividad; Según (FRISBY,
2004), los anticuerpos no pueden ser detectados en la fase temprana de la enfermedad, cuando

28
la Ehrlichiosis empieza a progresar los niveles de anticuerpos, alcanzan niveles significativos,
por lo que recomienda realizar dos exámenes IFI, con dos semanas de diferencia, los canes
que estén infectados mostraran un aumento en los niveles de anticuerpos.
Otro tipo de examen más reciente para el diagnóstico de Ehrlichiosis, es la técnica de ELISA,
la cual puede ser realizada en los laboratorios veterinarios y en la actualidad se ofrecen en el
mercado, algunos test comerciales (GREENE, 2008).
Según FRISBY (2004), los anticuerpos contra EHRLICHIA pueden permanecer activos por
un año o más, pero ellos no hacen inmune al can a la Ehrlichiosis, el can puede volver a
padecer la enfermedad.
Aunque no son técnicas habitualmente accesibles para el clínico, tanto el Westernblot, como
la PCR, empleados en laboratorios especializados, son especialmente útiles en casos dudosos
y a la hora de distinguir infecciones por diferentes especies o cepas de EHRLICHIA
(GREENE, 2008).
2.3.13.3. Diagnóstico diferencial
Como ya se ha comentado, la gran variedad de signos clínicos con los que puede cursar la
Ehrlichiosis, hace que el diagnóstico diferencial, deba incluir muy variadas patologías. No
obstante, la que con más frecuencia se puede confundir con Ehrlichiosis, es la leishmaniosis
canina, debido a la similitud de muchos de sus síntomas (hemorragias, apatía, linfadenopatía,
pérdida de peso, uveítis, etc.), especialmente en animales con hiperproteinemia (FRISBY,
2004).
FRISBY (2004), manifiesta que también no se deben descartar otras enfermedades
transmitidas por garrapatas como la Babesiosis o la Hepatozoonosis, por la similitud tanto de
sus vectores como, en ocasiones, de su sintomatología. Así mismo se debe diferenciarse de
lupus eritematoso sistémico, mieloma, leucemia linfocítica crónica y leptospirosis.

29
2.3.14. LESIONES
Para GREENE (2008), los hallazgos patológicos macroscópicos de perros infectados por E.
canis incluyen hemorragias petequiales y esquimóticas en las superficies mucosas y serosas
de la mayoría de los órganos, incluso la cavidad nasal, el pulmón, el riñón, la vejiga urinaria,
el tracto gastrointestinal y el tejido subcutáneo.
Durante la etapa aguda, las lesiones generalmente no son específicas según GREENE (2008),
es común observar esplenomegalias, hepatomegalia generalizada y pulmones decolorados.
Histológicamente se evidencia una hiperplasia linforreticular e infiltrados de célula plasmática
perivascular en gran cantidad de órganos, incluidos los pulmones, el cerebro, las menínges,
los riñones los ganglios linfáticos, el bazo. En los casos crónicos estas lesiones pueden ir
acompañadas de hemorragias difusas y aumento de la infiltración en los órganos de células
mononucleares.
2.3.15. TRATAMIENTO
De acuerdo a SAINZ et al, (2000); WANER y HARRUS (2000); y VARELA (2003), los
fármacos más empleados, en el tratamiento de la EHRLICHIOSIS canina son
DOXICICLINA Y DIPROPIONATO DE IMIDOCARB.
Para SAINZ et al (2000); WANER y HARRUS (2000); VARELA (2003); y FRISBY (2004),
doxiciclina se suele emplear a dosis de 10 mg/kg/24 horas durante 28 días, con protocolos de
tratamiento más cortos pueden dar lugar a una mejoría inicial del paciente, pero los síntomas
en ocasiones vuelven a aparecer, en aquellos casos que presentan un cuadro severo,
frecuentemente se instaura un tratamiento combinado basado en doxiciclina y el dipropionato
de imidocarb.
El dipropionato de imidocarb se puede emplear, administrando dos inyecciones de 5 mg/kg,
vía SC, con un intervalo de dos semanas entre ambas, según (SAINZ et al, 2000); y (WANER
& HARRUS, 2000), el dipropionato de imidocarb, provoca efectos secundarios como disnea,
sialorrea, diarrea, exudado nasal y taquicardia, que parecen ser debidos a un efecto
anticolinesterasa del fármaco, estos signos remiten tras la administración de atropina.

30
Generalmente, el pronóstico durante la fase aguda es favorable, siempre y cuando, el can este
bajo un tratamiento adecuado, mientras que los pacientes que se encuentran en la fase crónica
de la enfermedad, su pronóstico es desfavorable (FRISBY, 2004).
Algo similar dice WANER y HARRUS (2000), en que la mayoría de los casos, los canes en
la fase aguda responden favorablemente al tratamiento en 24-72 horas. Los canes en la fase
subclínica de la enfermedad necesitan un tratamiento más prolongado, se demostró en un
ensayo la persistencia de la infección (por PCR) estando un can solamente de 4 canes con
infección subclínica que fueron tratados con doxiciclina (10 mg/kg, cada 24horas) por 42
días.
Según SAINZ et. al (2000); y VARELA (2003), el uso de enrofloxacina, para el tratamiento
de la EHRLICHIOSIS canina a dosis de 5 mg/kg, cada 24 horas durante 15 días ha sido
inefectiva; Coincidiendo con WANER y HARRUS (2000), que el uso de enrofloxacina es
ineficaz contra la EHRLICHIOSIS canina, usando estos últimos enrofloxacina oral (5 a 10
mg/kg cada 12horaspor 21 días).
Existen otras drogas que son eficaces contra E. canis como son hydrocloridro de tetraciclina
(22 mg/kg, cada8 horas), Oxitetraciclina (25 mg/kg, cada8 horas), minociclina (20 mg/kg,
cada12 hrs) y cloranfenicol (50mg/kg, cada 8 hrs). Las tetraciclinas están contraindicadas
debido a que el uso de estas en los canes menores de 6 meses, ocasiona daños en el esmalte
dental (manchado dental) (WANER y HARRUS, 2000).
FRISBY (2004), asegura que algunos canes, pueden necesitar transfusión de sanguínea o una
terapia de fluidos intravenosos dependiendo de la severidad de la enfermedad. Algunos daños
causados por EHRLICHIA se pueden deber a la propia respuesta auto inmune del organismo,
por lo cual, altas dosis de corticosteroides (ej: prednisolona) son algunas veces administradas
durante la fase inicial.
GREENE (2008), coincide que los fármacos eficaces han incluido tetraciclinas, cloranfenicol,
dipropionato de imidocarb, y amicarbalida. En el pasado, se consideraba que los mejores
fármacos iniciales eran la tetraciclina y la oxitetraciclina y aún funcionan correctamente,
aunque en la actualidad se utilizan con mayor frecuencia la doxiciclina y la minociclina, estas

31
últimas son tetraciclinas semisintéticas y solubles en lípidos que se absorben con facilidad
para provocar concentraciones altas en sangre, tejido.
Tabla 2. Tratamiento antimicrobiano para EHRLICHIOSIS monocitotrópica canina
(GREENE, 2008).
2.3.16. PROFILAXIS
Según FRISBY (2004), el control de las garrapatas tanto en el animal, como en el medio en el
que se encuentre, es la principal vía para la prevención de la Ehrlichiosis. Se pueden utilizar
productos como fipronil, collares de amitraz, ivermectinas, o el uso combinado de ellos
durante el tiempo de mayor incidencia de garrapatas, en áreas endémicas para Ehrlichiosis
algunos veterinarios recomiendan la aplicación de dosis bajas de tetraciclina o doxiciclina,
durante la temporada de garrapatas, con la controversia que estas medidas ocasionan, debido a
la posibilidad de creación de resistencias.
Las medidas profilácticas también deben aplicarse a aquellos animales diagnosticados con
Ehrlichiosis debido al riesgo de reinfecciones que estos animales tienen, ya que normalmente
el medio en el que residen continúa siendo el mismo (FRISBY, 2004).
FÁRMACO DOSIS
(mg/kg)
VÍA PREFERIDA
(ALTERNATIVA)
INTERVALO
(HORAS)
DURACIÓN
(DÍAS)
Doxiciclina 10 Oral(IV) 12-24 28
Minociclina 10 Oral(IV) 12 28
Tetraciclina 22 Oral 8 28
Oxitetraciclina 25 Oral(IV) 8 28
Cloranfenicol 15-25 Oral(IV, SC) 8 28
Dipropionato de
I.
5 IM 1 vez Repetir en 2-3
semanas
Amicarbalida 5-6 IM 1 vez Repetir en 2-3
semanas

32
2.3.17. PREVENCIÓN
GREENE (2008), manifiesta que en la actualidad no se dispone de una vacuna por lo tanto el
principal medio de prevención, es el control del vector de E. canis (Rhipicephalus
sanguineus) tanto del animal como del medio en el cual habita, hay muchos métodos para el
control de las garrapatas, incluyendo baños, aerosoles, pipetas y collares a base de piretroides,
amitraz, fipronil.
También se debe tener la atención específica con el cuidado de la casa, fumigar el área donde
está el can mascota como patios o jardines. Para infecciones de E. canis en perreras, se ah
demostrado que la tetraciclina es un fármaco preventivo eficaz contra la infección inicial o
reinfección cuando se la administra vía oral en dosis de 6,6 mg/kg/día, la aplicación
indiscriminada de este fármaco a todos los perros con conduciría en teoría a resistencia al
mismo (GREENE, 2008).
2.3.18. OCURRENCIA EN EL HOMBRE
Según GREENE (2008), antes de 1986, la única especie de EHRLICHIA reconocida como
infectante de seres humanos era N. sennetsu. Este agente primero aislado en Japón es
responsable de un leve síndrome tipo mononucleosis, desde entonces se ha informado que un
nuevo agente de EHRLICHIA provocó la enfermedad en seres humanos en los Estados
Unidos como lo es E. chaffeensis, agente causal de E. monocitotrópica humana que se
presenta como una enfermedad aguda similar a la gripe, caracterizada por la fiebre, cefalea,
malestar y a veces muerte en seres humanos afectados en forma grave. E. chaffeensis está
estrechamente relacionada con E. canis y los perros no desarrollan enfermedad clínica a pesar
de que pueden infectarse de forma experimental.
Cabe resaltar que las personas no se infectan directamente de un perro, sino a través de una
picadura de garrapata (GREENE, 2008).

33
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. MÉTODOS
3.1.1. Localización del estudio
El presente trabajo de investigación se realizó en la ciudad de Machala, provincia de El Oro,
con mascotas de distintos sectores con la colaboración de sus propietarios, para este estudio se
tomó en cuenta tres parroquias como son: Área 1 que representa a la parte norte; El Cambio y
la Providencia y el Área 2 que representa la parte sur; Puerto Bolívar.
3.1.1.1. Ubicación geográfica y política
Machala, capital de la provincia de El Oro, está ubicada al sur oeste del Ecuador, cuenta con
una población de 267.460 habitantes y cuenta con las siguientes coordenadas geográficas.
Longuitud 79°53´34.76” w
Latitud 3°15’30.20” s
Altitud 4 msnm
Superficie 349,9 km2
Temperatura promedio oscila entre 22 y 36°c
Limites:
Al Norte con los cantones El Guabo y Pasaje
Al Sur y Este cantón Santa Rosa
Al Oeste Archipiélago de Jambelí
Coordenadas UTM:
Este: 616231. 45m E
Norte: 9638889.32 m S
Zona: 17 M

34
3.1.1.1.1. Mapa Político del Ecuador
3.1.1.1.2. Mapa del Cantón Machala
La Providencia

35
3.1.1.2. Equipos y materiales
 Mandil
 Sangre venosa
 Anticoagulante ( EDTA)
 Colorante Giemsa
 Porta objeto
 Cubre objeto
 Aceite de cedro
 Microscopio compuesto
 Alcohol
 Algodón
 Bozal
 Jeringas de 3 cc.
 Tijeras
 Guantes
 Gradillas
 Detergente
 Cámara digital
 Hojas de registro
 Calculadora

36
3.1.1.3. Universo y Muestra
3.1.1.3.1. Universo
De acuerdo a fuentes obtenidas en el Departamento de Epidemiologia de la Dirección
Provincial de Salud de El Oro, censo que se realizó en XIV Campaña de vacunación canina
en El Oro 2013, la población canina se calcula de la siguiente forma:
Población humana x 14,29% = total de Población Canina
267460 x 14,29% = 38.220 de la población canina.
3.1.1.3.2. Muestra
Para determinar la muestras a investigar se tomo en cuenta el nivel de confianza (95%) =
1.96, la precisión para nuestro estudio y una idea del valor aproximado del parámetro a medir,
el valor p = 0.5 (50 %).
N = Total de la población
Z2
= 1.962 (si la seguridad es del 95 %)
P = proporción esperada (en este caso 5 % = 0.05)
Q = 1 – p (en este caso 1-0.05 = 0.95)
d = precisión (en este caso deseamos un 3 %).

37
Para la realización del presente trabajo se tomaron 200 muestras de mascotas de diferentes
edades, sexo y razas. En las hojas de registro diaria se anotó todos los datos respectivos de
cada canino como son: fecha en que se realizó el examen, nombre del propietario, sexo, edad,
raza, y si se registran positivos o negativos a esta patología.
Tabla 3. Resultados de la campaña de vacunación canina en las parroquias muestreadas
de la ciudad de Machala.
AREAS DE SALUD Población canina Calculada
Cantón Machala 38.220
Área 1 Machala Norte
Providencia 6917
El cambio 1599
Área 2 Machala Sur
Puerto bolívar 5449
Cuadro N°1. Áreas de la Ciudad de Machala Muestreadas.
3.2. Obtención de la muestra de sangre
Para la obtención de la muestra se procedió a seguir los siguientes pasos: (Anexo 3, fotos 1-
6).
 Se depiló la zona donde se realizó la punción para extraer la sangre.
 Se desinfecta con alcohol o yodo en la zona.
 Se hizo un torniquete para obtener una mayor visibilidad de la vena radial.
 Se realizó la punción con una jeringuilla de 3 cc en la que previamente se colocó una
gota de anticoagulante EDTA para extraer 2cc de sangre.
 La jeringuilla se identificó y se le asignó un código para la hoja de trabajo.

38
 Luego se llevó las muestras al laboratorio clínico de la Universidad Técnica de
Machala, en el cual se procedió a realizar el frotis de sangre y la tinción
correspondiente.
3.2.1 Frotis sanguíneo
Se realizó siguiendo los pasos que se describen a continuación: (Anexo 3, fotos 4).
 Se colocó una pequeña gota de sangre sobre un porta objeto limpio, libre de grasas,
cuyos extremos estén lisos y no rotos.
 Se colocó otro porta objeto en la parte superior para extender la sangre, sosteniéndola
por su extremidad derecha formando un ángulo aproximadamente de 45°.
 El porta objeto superior se desliza hacia atrás hasta tocar las muestra y después hacia
adelante para efectuar el extendido de las células.
 Los frotis deben ser delgados y uniformes. Su espesor está determinado por:
 El tamaño de la gota.
 El ángulo de la lámina extensora.
 Cuando se ha verificado dicha extensión, es conveniente acelerar el secado mediante
un poco de calor o una corriente de aire.
 Se tiñe inmediatamente.
3.2.2. Tinción de Giemsa
La tinción de Giemsa propiamente es la tinción de la placa con el frotis sanguíneo y se lo
realizó de la siguiente forma: (Anexo 3, fotos 4 – 7).
 Se preparó una extensión de sangre bien fina en un porta objeto limpio y dejar secar.
 Cubrir la preparación con metanol durante 10 minutos.
 Dejar escurrir y secar al aire.
 Colocar el colorante Giemsa en líquido en un vaso de Coplan e introducir el frotis por
un tiempo de 10 minutos.
 Lavar durante dos minutos con agua destilada.
 Dejar secar la placa al aire, en posición vertical.

39
 Colocar una gota de aceite de cedro y Observar al microscopio a lente de inmersión de
100 x.
 Se consideró positivo a la muestra que presentó por lo menos un glóbulo blanco
infectado.
3.2.3. Variables Analizadas
Para la realización de este estudio se utilizaron las siguientes variables:
 Determinación de la presencia de EHRLICHIA canis: Para determinar esta variable
cualitativa se realizó la prueba de sangre en cada uno de los animales verificando su
positividad.
 Edad: Para determinar la presencia de Ehrlichiosis según la edad se distribuyeron los
caninos en 3 grupos etarios: menores de 9 meses, de 9 meses a 2 años, y mayores de 2
años.
 Sexo: En esta variable se identificaron hembras y machos.
 Raza: El análisis de esta variable incluye 24 razas seleccionadas en forma aleatoria.
3.2. 4. Metodología
El tipo de investigación en este trabajo fue de tipo exploratorio y descriptivo. Para la
realización de un correcto diagnóstico de la enfermedad a nivel de laboratorio, se tomó la
muestra de sangre de 200 animales de 3 parroquias de la ciudad de Machala y mediante el
método de extensión sanguínea se determinó si el caso fue positivo o negativo; los resultados
se asentaron en las hojas de control previamente elaboradas (Anexo 1).

40
3.2.5. Métodos de análisis de laboratorio
Las muestras de sangre, extraídas con jeringuilla de 3cc, fueron depositadas en tubos con
anticoagulante (EDTA) tapón lila para su envío al laboratorio donde se les realizó el
procedimiento diagnóstico respectivo, y se procedió a su registró en la hoja de control.
3.2.6. Análisis estadístico
Para este estudio se utilizó una estadística descriptiva, con cuadros y figuras, para demostrar
el índice de prevalencia se utilizó la siguiente fórmula:

41
4. RESULTADOS Y DISCUCIÓN
4.1. DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DE EHRLICHIA
canis.
En el presente trabajo se determinó el Índice de prevalencia de EHRLICHIA canis en perros
en la ciudad de Machala.
Para la realización de este proyecto las variables evaluadas fueron sexo, edad, y raza, por lo
cual de los 200 animales muestreados 9 resultaron positivos a EHRLICHIA canis lo que
representa un 4,5% de positividad (Tabla 1).
Tabla 1. Determinación total del Índice de Prevalencia de EHRLICHIA canis en perros en
la ciudad de Machala.
Figura 1. Determinación del Índice de Prevalencia de EHRLICHIA canis en perros en la
ciudad de Machala.
Una vez evaluada todas las variables en el presente trabajo de investigación el índice de
prevalencia es mayor en relación con los datos obtenidos por CAMPOS y RODRÍGUEZ
(2005), quienes determinaron un 0,19% de positividad de E. canis en Managua capital de
Nicaragua.
95,5 %
4,5 %
191
9
0
50
100
150
200
250
Negativo Positivo
Determinación total del Índice de Prevalencia de
Ehrlichia canis Positivos y Negativos.
Total %
Total casos
Total casos Negativos Porcentaje Positivos Porcentaje
200 191 95,5 9 4,5

42
4.2. DETERMINACIÓN DE EHRLICHIA canis EN RELACIÓN AL SEXO.
Se determinó un índice de prevalencia de 4,5 % de animales positivos, de acuerdo a esta
variable se determinó un 2% en machos y 2,5 % en hembras, lo cual indica que EHRLICHIA
canis tiene preferencia por las hembras (Tabla 2).
EHRLICHIA CANIS
Sexo N° muestras Positivos Total % positivos
Machos 103 4 2
Hembras 97 5 2,5
Total 200 9 4,5
Tabla 2. Casos positivos y porcentajes de caninos infectados por EHRLICHIA canis en
relación al sexo, Machala, 2014.
Figura 2. Casos positivos y porcentajes de caninos infectados por EHRLICHIA canis en
relación al sexo, Machala, 2014.
Con respecto a esta variable, los datos obtenidos por CAMPOS Y RODRÍGUEZ (2005), en
Managua capital de Nicaragua coinciden con esta investigación que las hembras fueron más
susceptibles.
0
20
40
60
80
100
120
Machos Hembras
4 5
2 % 2,5 %
103 97
Determinación de Ehrlichia en
relación al Sexo
Positivos
Total %
N° de Casos

43
4.3. DETERMINACIÓN DE EHRLICHIA canis EN RELACIÓN A LA EDAD.
En esta variable se determinó que de 78 canes muestreados de 1 – 9 meses 3 resultaron
positivos lo que representa (1,5%), y de 79 canes mayores de 2 años 6 resultaron positivos lo
cual representa (3%) (Tabla 3).
EHRLICHIACANIS
Edad ( años ) N° muestras Positivos Total % positivos
1 – 8 meses 78 3 1,5
9 meses – 2 años 43 0 0
2 años en adelante 79 6 3
Total 200 9 4,5
relación a la edad, Machala, 2014.
relación a la edad, Machala, 2014.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
1 - 9 meses 9 meses - 2
años
mas de 2 años
3 0
6
1,50% 0% 3%
78
43
79
Determinación de Ehrlichia en relación
a la Edad.
Positivos
Total %
N° de Casos

44
4.4. DETERMINACIÓN DE EHRLICHIA canis EN RELACIÓN A LA RAZA.
En cuanto a esta variable se determinó que EHRLICHIA canis infecta a canes de raza Pitbull
(1,5%), Labrador (0,5%), Pequinés (0,5%), Beagle (0,5%) y a Mestizos (1,5%) (Tabla 4).
EHRLICHIA CANIS
Raza N° muestras Positivos Total % positivos
French Poodle 36 0 0
Schnauzer 14 0 0
Shit-zu 11 0 0
Chiwawa 5 0 0
Beagle 3 1 0,5
Pitbull 7 3 1,5
Mestizo 67 3 1,5
Golden retriver 7 0 0
Basset hound 1 0 0
Mastín napolitano 3 0 0
Salchicha 1 0 0
Pequinés 5 1 0,5
Chow- chow 1 0 0
Labrador 6 1 0,5
Rot-wailer 3 0 0
Bóxer 8 0 0
Cocker 4 0 0
Pastor Alemán 5 0 0
Samoyedo 4 0 0
Bulldog Inglés 2 0 0
San Bernardo 2 0 0
Fox terrier 1 0 0
Siberiano 1 0 0
Pug 3 0 0
TOTAL 200 9 4,5
relación a la raza, Machala, 2014.

45
relación a la Raza, Machala, 2014.
Los resultados obtenidos en el presente estudio en relación a la raza muestran que los canes de
raza Pitbull y Mestizos fueron los más susceptibles a padecer la enfermedad en un mayor
porcentaje.
0,5%
1,5%
1,5%
0,5%
0,5 %
0 10 20 30 40 50 60 70 80
French Poodle
Schnauzer
Shit-zu
Chiwawa
Beagle
Pitbull
Mestizo
Golden retriver
Basset hound
Mastín napolitano
Salchicha
Pequinés
Chow- chow
Labrador
Rot-wailer
Bóxer
Cocker
Pastor Alemán
Samoyedo
Bulldog Inglés
San Bernardo
Fox terrier
Siberiano
Pug
Determinación de Ehrlichia en relación a la
Raza.
N° de Casos
Total %
Positivos

46
5. CONCLUSIÓNES
 Se determinó un índice de prevalencia de EHRLICHIA canis de 4,5% en perros de la
ciudad de Machala.
 El índice de prevalencia en relación con la variable sexo muestra un porcentaje
ligeramente superior en hembras (2,5%) que en machos (2%), lo cual indica que las
hembras fueron más susceptibles a padecer la enfermedad.
 La EHRLICHIA canis tiene preferencia para perros mayores de 2 años.
 En cuanto a la raza en este estudio EHRLICHIA canis infecta en mayor porcentaje a
canes de raza Pitbull y Mestizos.

47
6. RECOMENDACIONES
 El antecedente de garrapata es un factor esencial en la presentación de
Ehrlichiosis canina, por lo que se recomienda, a manera de prevención, revisar
(para encontrar garrapatas) a todo animal que llegue a la clínica y aplicar la
técnica de diagnóstico en frotis sanguíneo para determinar la presencia de E.
canis.
 Darle continuidad a este estudio que incluyan otras variables como habitad y
presencia de garrapatas para conocer su real situación en nuestro medio y
poder aplicar el trabajo realizado en su prevención.
 Ejercer un control sistémico de ectoparásitos con el fín de prevenir las
hemoparasitosis.

48
7. RESUMEN
El presente trabajo de investigación se realizó en la ciudad de Machala provincia del Oro,
durante los meses de Diciembre del 2013 a Febrero del 2014. Los objetivos de esta
investigación fueron: Determinación del Índice de Prevalencia de EHRLICHIA canis en
perros en la ciudad de Machala. Determinar la relación existente con las variables según el
sexo, edad y raza de los perros que han contraído la enfermedad.
El número de muestras fueron de 200 animales los mismos que presentaron como síntoma
principal las garrapatas.
La cantidad de muestras se dividió para tres parroquias de la ciudad de Machala como son:
Área 1 que representa a la parte norte; El Cambio y la Providencia y el Área 2 que representa
la parte sur; Puerto Bolívar.
La metodología usada fue la extracción de 3 cc de sangre con una gota de anticoagulante
EDTA, de la vena radial o safena y se tomó los datos respectivos de cada paciente muestreado
como edad, sexo, raza, nombre del propietario, para posteriormente ser trasladada al
Laboratorio de Análisis Clínico de la Universidad Técnica de Machala, Facultad de Ciencias
Agropecuarias.
En esta investigación se determinó que la presencia de EHRLICHIA canis en perros en la
ciudad de Machala fue de 9 animales positivos de los 200 muestreados lo cual representa un
4,5%.

49
8. SUMMARY
This research was conducted in the city of Machala Oro province, during the months of
December 2013 to February 2014 The objectives of this research were: Determining
Prevalence Index EHRLICHIA canis in dogs in the city of Machala. Determine the
relationship with the variables according to sex, age and breed of dogs that have the disease.
The number of samples were 200 animals the same as the main presenting symptom ticks.
The number of samples was divided to three Parroquias de la ciudad de Machala: Area 1
representing the northern part; El Cambio and La Providencia and Area 2 represents the
southern part; Puerto Bolívar.
The methodology used was the extraction of 3 cc of blood with EDTA anticoagulant drop,
radial or saphenous vein and the respective data for each patient sampled as age, sex, breed,
owner's name was taken, to be later transferred to Clinical Analysis Laboratory of the
Universidad Técnica de Machala, Facultad de Ciencias Agropecuarias.
In this investigation it was determined that the presence of EHRLICHIA canis in dogs in the
city of Machala was 9 positive animals sampled 200 which represents 4.5%

50
9. BIBLIOGRAFÍA
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http://veterinaris.com/servicios/med_interna/ehrlichiosis_canina.htm (consultado
el 1 de agosto del 2013).
http://periodismo3ecs.wordpress.com/2012/06/20/ehrlichia-canina-enfermedad
desconocida/(consultado el 5 de agosto del 2013).
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agosto del 2013).
22. Disponible en el sitio web: http://cenida.una.edu.ni/Tesis/tnl10a594.pdf
(consultado el 13 de agosto del 2013).

54
ANEXO N° 1
HOJA DE CONTROL
Caso #:
Fecha:
Nombre del Paciente:
Raza:
Nombre del Propietario:
Dirección:
Teléfono:
EDAD.
Cachorro Joven Adulto
SEXO.
Hembra Macho
EHRLICHIA CANIS.
Positivo Negativo

55
ANEXO N° 2
HOJAS DE REGISTRO
Caso # Nombre del Paciente Nombre del Propietario Raza Edad Sexo Resultado Direccion
1 Kiara Mery Samaniego Golden Retriver 2 años hembra Negativo El cambio
2 Bella Mirian Aguilar Mestizo 1 1/2 años hembra Negativo El cambio
3 Anni Jenniffer Aguirre Boxer 3 años hembra Negativo El cambio
4 Daisy Nelson Jaramillo Mestizo 7 meses hembra Negativo El Cambio
5 Penny JUAN PABLO French Poodle 5 meses hembra Negativo El Cambio
6 Rufo Cristhian Zamora Mestizo 5 años macho Negativo El Cambio
7 Bambi Edgar Alvarado French Poodle 3 años macho Negativo El Cambio
8 Chester Rosa Zambrano Pit - bull 5 años macho Negativo El Cambio
9 Adino Maria Motina Mestizo 2 años macho Negativo El Cambio
10 Adán Carlos Tapia Mestizo 1 1 /2 años macho Negativo El cambio
11 Negro Mirian Gualpa Mestizo 3 años macho Negativo El cambio
12 Lucky Juan Cevallos Mestizo 3 años macho Negativo El cambio
13 Manchas Leyla Arias Shit - zu 2 años macho Negativo El cambio
14 Rocky Cesar Valarezo Mestizo 4 años macho Negativo El cambio
15 Boby Jorge Pérez French Poodle 3 años macho Negativo El cambio
16 Niña Manuel Jima Mestizo 2 años macho Negativo El cambio
17 Loly Joel Berrezueta Mestizo 1 1/2 años hembra Negativo El cambio
18 Muñeco Jandry Sánchez French Poodle 5 años macho Negativo El cambio
19 Titina Jose Guallpa French Poodle 5 años hembra Negativo El cambio
20 Dana Mireya Carrión Cocker 3 años hembra Negativo El cambio
21 Myka Kevin Riofrio Golden Retriver 1 año hembra Negativo El cambio
22 Frisa Verónica Torres Golden Retriver 2 años hembra Negativo El cambio
23 Loba Freddy Gualpa Mestizo 5 Meses hembra Positivo El cambio
24 Sebas Carlos Narvaez Basset 1 1/2 año macho Negativo El cambio
25 Cocky Fabian Solano Mestizo 3 años macho Negativo El cambio
Tabla de Control Campo de Tesis.

56
26 Negro Dayanna Narvaez Shit - zu 8 meses macho Negativo El cambio
27 Pongo Wilson Armijos Rot - waller 3 años macho Negativo El cambio
28 Tiburon Javier Torres Mestizo 2 años macho Negativo El cambio
29 Rambo Nadia Castillo Mestizo 5 años macho Negativo El cambio
30 Tommy Jackeline Jima Shit - zu 7 años macho Negativo El cambio
31 Lucky Sebastian Jimenez Mestizo 3 años macho Negativo El cambio
32 Toby María León Mestizo 2 años macho Negativo El cambio
33 Linda Norma Alvarez Pit - bull 4 años hembra Negativo El cambio
34 Balto Enrique Narváez Mestizo 2 años macho Negativo El cambio
35 Tigre Daniel Valverde Mestizo 3 años macho Negativo El cambio
36 Canela America Muñoz Boxer 1 1/2 año hembra Negativo El cambio
37 Mini Olga León Mestizo 5 años hembra Negativo El cambio
38 Fido Wilmer Lascano Salchicha 6 años macho Negativo El cambio
39 Tarzán Claribel Toro Mestizo 2 años macho Negativo El cambio
40 Spay Maria Benalcazar Schnauzer 3 años macho Negativo El cambio
41 Pelusa Mishiell Parra Pequinés 3 años hembra Positivo El cambio
42 May Mirian Valdiviezo French Poodle 2 años macho Negativo El cambio
43 Lassie Zoila Narvaez Mestizo 2 años hembra Negativo El cambio
44 Suco Cesar Olvera Mestizo 5 años macho Negativo El cambio
45 Salvador Lucia Chamba French Poodle 6 años macho Negativo El cambio
46 Fede Kevin López Schnauzer 7 años macho Negativo El cambio
47 Anita Pablo Ortiz Mestizo 10 meses hembra Negativo El cambio
48 Gordo Euding Perez Mestizo 5 años macho Negativo El cambio
49 Cocky Irsis Maldonado Shit - zu 2 ños macho Negativo El cambio
50 Mery Tatiana Rodriguez Mestizo 3 años hembra Negativo El cambio

57
51 Eymi María Redrován Schnauzer 1 1/2 años hembra Negativo El cambio
52 Pancho Martha Vera Mestizo 4 años macho Negativo El cambio
53 Body Rosa Herrera Golden Retriver 2 años macho Negativo El cambio
54 Omero Juan Granda Mestizo 2 años macho Negativo El cambio
55 Pipo Mercedes Villa French Poodle 5 años macho Negativo El cambio
56 Tommy Betty Márquez Aguilar Mestizo 6 años macho Negativo El Cambio
57 Tobby Angel Mendoza Rivas Mestizo 9 meses macho Negativo El cambio
58 Muñeca Norma Jima Alvarez Mestizo 1 1/2 años hembra Negativo El cambio
59 Pinki Iris Arias Arcentales Mestizo joven hembra Negativo El cambio
60 Soffy Evelling Perez Shit - zu 6 años hembra Negativo El cambio
61 Biyu Magdalena Jima Molina Shit - zu 1 mes hembra Negativo El cambio
62 Bethoven Alberto Orellana Quezada Mestizo 3 años macho Negativo El cambio
63 Max Yaritza Ortega Rivas French Poodle 5 meses macho Negativo El cambio
64 Patucha Marlon Ramón Coello French Poodle 3 años hembra Negativo El cambio
65 Chiquita Sonia Renda Quezada Labrador 5 meses hembra Positivo El cambio
66 Zeus Angel a Ramón Mestizo 7 meses macho Negativo El cambio
67 Manchas María León León Pit - bull 3 años macho Positivo El cambio
68 Tita Rosa Fajardo lazo Mestizo 6 años hembra Negativo El cambio
69 Vela Carlos Enriquez Loja Mestizo 9 meses hembra Negativo El cambio
70 Balto Melva Obaco Lanche French Poodle 8 meses macho Negativo El cambio
71 Dalila Juan Añazco Ocampo Chihuahua 10 meses hembra Negativo El cambio
72 Tomasa Lucia Arce Fernandez French Poodle 1 mes hembra Negativo El cambio
73 Princesa Guillermo Arevalo Robalino French Poodle 4 meses hembra Negativo El cambio
74 Principe Walter Arias Gomez Boxer 6 años macho Negativo El cambio
75 Bonansier Einsten Aguilar Mestizo 2 años macho Negativo El cambio

58
76 Lasi María Ayala reyes Mestizo 8 meses macho Negativo El cambio
77 Arenita Mirna Berrezueta Espinoza French Poodle 2 meses hembra Negativo El cambio
78 Samira Aida Cabrera Montero Chow - Chow 5 meses hembra Negativo El cambio
79 Lex Luz Cabrera Delgado Pit - bull 8 años hembra Positivo El cambio
80 Lucas Sonia Cabrera Uzho Boxer 1 1/2 años macho Negativo El cambio
81 Ruffo Hida Campoverde Mastin Napolotano 7 años macho Negativo El cambio
82 Negra Enma Carrión Soto Mestizo 3 años hembra Negativo El cambio
83 Patitas Andrés Carvajal Garcia Labrador 5 meses macho Negativo El cambio
84 Zafiro Carmen Castro Mora Pug 6 meses hembra Negativo El cambio
85 Cerebro Luis Castro Rodriguez Pit - bull 3 años macho Negativo El cambio
86 Winnie Yandry Cedeño Landin Rot - waller 4 meses macho Negativo El cambio
87 Marihuana Cristhian Chamba Gonza Mestizo 7 años hembra Negativo El cambio
88 Adelle Sonia Chimbo León Shit - zu 6 meses hembra Negativo El cambio
89 Sasha Raúl Criollo Orellana Schnauzer 10 meses hembra Negativo El cambio
90 Camila Nardy delgado Buestán French Poodle 2 años hembra Negativo El cambio
91 Campana Bertha Espinoza Bravo French Poodle 3 meses hembra Negativo El cambio
92 Eymi Jose Espinoza Fernández French Poodle 2 meses hembra Negativo El cambio
93 Fifi Lidia Espinoza Piedra Cocker 5 años hembra Negativo El cambio
94 Capitán Mariuxi Espinoza Castillo Mestizo 1 mes macho Negativo El cambio
95 Soldado Ana Floril Bautista Samoyedo 6 meses macho Negativo El cambio
96 Bloo Gladys García Ramón Chihuahua 7 meses macho Negativo El cambio
97 Tarzán Elsa Garzón Gómez Mestizo 7 años macho Negativo El cambio
98 Casimiro Arnulfo Guambuguete Paredes Beagle 4 meses macho Negativo El cambio
99 Roberth Nixon Guerrero Guerrero Pequinés 1 1/2 años macho Negativo El cambio
100 Cuco Martha Laines Reyes Rot - waller 9 meses macho Negativo El cambio

59
101 Aitor Laura Gia Cuenca Mestizo 6 años macho Negativo La providencia
102 Arnulfo Luis Garzón Valarezo French Poodle 2 años macho Negativo La providencia
103 Apolo Miryam Galarza Ramirez Golden Retriver 2 meses macho Negativo La providencia
104 Azúcar Jaqueline Flores Montero Cocker 1 mes hembra Negativo La providencia
105 Suca Luis Flores Sánchez Beagle 8 meses hembra Positivo La providencia
106 Balú Hugo Herrera Añazco Pit - bull 8 meses macho Negativo La providencia
107 Atila Victor Granda Cárdenas Mestizo 4 años hembra Positivo La providencia
108 Arturo Elba Jimenez Banchon Chihuahua 6 meses macho Negativo La providencia
109 Aspen Carmen Guzmán AlvaradoMastin Napolotano 9 meses macho Negativo La providencia
110 Bambaky Andres Landázuri Estupiñan Mestizo 6 años macho Positivo La providencia
111 Akira Pepe león Iñiguez Lobo Siberiano 6 años hembra Negativo La providencia
112 Alan Georgina Lima López Schnauzer 3 meses macho Negativo La providencia
113 Alex Tuco León Jimenez Boxer 5 años macho Negativo La providencia
114 Angus Dulis Loaiza Ponton Bull Dog Ingles 8 meses macho Negativo La providencia
115 Anselmo Yadira Loaiza Jaramillo San Bernardo 5 años macho Negativo La providencia
116 Arti Miriam Loayza Salazar French Poodle 10 meses macho Negativo La providencia
117 Babas Blanca López López Samoyedo 10 meses macho Negativo La providencia
118 Suco Elvira Lucas Solórzano Labrador 8 meses macho Negativo La providencia
119 Dexter Asunción Luna Bustamante French Poodle 7 meses macho Negativo La providencia
120 Bart Alirio Macas Salazar Shit - zu 6 meses macho Negativo La providencia
121 café Jimmy Cortez Pit - bull 3 años macho Positivo La providencia
122 Beki Jose García Maldonnado Mestizo 9 meses hembra Negativo La providencia
123 Sasha Jorge Macas Granda Labrador 10 hembra Negativo La providencia
124 Tom Gilma Macias Macias Mestizo 10 meses macho Negativo La providencia
125 Patan Isidro Manchay Ojeda Mestizo 5 años macho Negativo La providencia

60
126 Bruno Letty Marin Torres Pastor Aleman 10 meses macho Negativo La providencia
127 Kalifa Filadelfia Márquez Vega Pequinés 10 meses hembra Negativo La providencia
128 Keiko Marianita Márquez Luna Mestizo 8 meses hembra Negativo La providencia
129 Karim Betty Medina Salinas Samoyedo 9 meses hembra Negativo La providencia
130 Keiru Francisca Martinez Ruiz Shit - zu 8 meses hembra Negativo La providencia
131 Adela Luis Maza Guerrero Schnauzer 5 meses hembra Negativo La providencia
132 Kay Irma martinez Delgado Pequinés 3 meses hembra Negativo La providencia
133 Lucero Marina Mayo Jimenez Beagle 8 meses hembra Negativo La providencia
134 Lucas Ivan Matute Ojeda Boxer 8 meses macho Negativo La providencia
135 Bobby Maruja Martinez Ruiz Mestizo 10 meses macho Negativo La providencia
136 Princesa Jose Matute Vasquez Shit - zu 7 meses hembra Negativo La providencia
137 Kenya Bertha Méndez Romero Samoyedo 11 meses hembra Negativo La providencia
138 Lucho Maryuri Merchán Medina Mestizo 1 año macho Negativo La providencia
139 Lusi Patricia Mendieta Jurado French Poodle 11 meses hembra Negativo La providencia
140 Luppi Xavier Chacón Mendieta French Poodle 6 meses hembra Negativo La providencia
141 Luz Jacqqueline Mera Álvarez Shit - zu 1 mes hembra Negativo La providencia
142 Safiro Sonia Mendoza Cedeño Chihuahua 9 meses hembra Negativo La providencia
143 Mili Susana Morales Jaramillo Fox Terrier 6 años hembra Negativo La providencia
144 Miki Carmen Morocho Cevallos Pug 5 años hembra Negativo La providencia
145 Camila Patricia Morocho Mendoza French Poodle 7 meses hembra Negativo La providencia
146 Milu Dolores Muñoz Álvarez Labrador 1 año hembra Negativo La providencia
147 Ninosca María Ojedda Castro Mastin Napolotano 1 1/2 años hembra Negativo La providencia
148 Osito Ana Ortiz Quevedo French Poodle 2 meses hembra Negativo La providencia
149 Mathias Ivonne Paredes Romero Mestizo 8 meses macho Negativo La providencia
150 Sasi Piedad Procel Florencia Schnauzer 4 años hembra Negativo La providencia

61
151 Mimi Kevin Bryan Olvera Carriión French Poodle 3 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
152 Isis Paola Olvera Carrión French Poodle 3 años hembra Negativo Pto. Bolivar
153 Mocho Mayra Carrión Macas Mestizo 5 años macho Negativo Pto. Bolivar
154 Boby Juan Loayza Golden Retriver 11 meses macho Negativo Pto. Bolivar
155 Kiara Javier Aguilar Ojeda Mestizo 5 años hembra Negativo Pto. Bolivar
156 Princesa Paula De la cruz Bravo Mestizo 6 años hembra Negativo Pto. Bolivar
157 Rambo Mónica Rubio Asanza Mestizo 3 años macho Negativo Pto. Bolivar
158 Lina Luis Tapia Maldonado Mestizo 9 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
159 Luci Carlos salazar Soriano Mestizo 6 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
160 Pawer Jose Gualpa Pastor Aleman 8 meses macho Negativo Pto. Bolivar
161 Paquita Daniel Valarezo Bull Dog Ingles 1 mes hembra Negativo Pto. Bolivar
162 Suca Josue Ojeda Pequinés 5 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
163 Punk Kevin Nagua Labrador Refriver 3 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
164 Roni Dennisse Angulo Chihuahua 3 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
165 Rita Tatay valarezo Pit - bull 8 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
166 Mikey Nataly Carbajal Cocker 7 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
167 Bronco Jose David Garcia Schnauzer 5 meses macho Negativo Pto. Bolivar
168 Gigante Josue Alcivar Mestizo 2 meses macho Negativo Pto. Bolivar
169 Ponki Fernando García Mestizo 4 años hembra Negativo Pto. Bolivar
170 Princesa Domenica Lengua Schnauzer 9 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
171 Kitty Eduardo Andrade French Poodle 3 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
172 Lucas Melkin Cruz Schnauzer 10 meses macho Negativo Pto. Bolivar
173 Trini Jose Valdiviezo Mestizo 9 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
174 Tita Nancy Tandazo Schnauzer 7 años hembra Negativo Pto. Bolivar
175 Rosi Charles Tamayo Mestizo 3 meses hembra Negativo Pto. Bolivar

62
176 Kiara Juan Valdiviezo Golden Retriver 10 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
177 Titina Rosa Villavivencio French Poodle 8 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
178 Katyta Jose carrión French Poodle 6 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
179 Pelusa Rosa Valarezo French Poodle 7 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
180 Peni Letty Tejada Mestizo 7 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
181 Trucha Edison Brito San Bernardo 11 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
182 Pito Jose Manuel Arias Mestizo 8 meses macho Negativo Pto. Bolivar
183 Principe Bryan Riofrio Schnauzer 2 meses macho Negativo Pto. Bolivar
184 Tiburron Nayeli Mestanza Mestizo 1 mes macho Negativo Pto. Bolivar
185 Bongo Mario Ortiz Pastor Aleman 3 años macho Negativo Pto. Bolivar
186 Dovi Genesis Ortiz French Poodle 10 meses macho Negativo Pto. Bolivar
187 Suany Julissa Vera French Poodle 5 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
188 Susy Isabel Garcia Mestizo 5 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
189 Tormenta Sandy carrión Mestizo 2 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
190 Tito Jorge Bustamante Schnauzer 10 meses macho Negativo Pto. Bolivar
191 Sanson Juan Valarezo Pastor Aleman 6 meses macho Negativo Pto. Bolivar
192 Milo Jose Alarcoon Mestizo 8 meses macho Negativo Pto. Bolivar
193 Michi Mishelle De la Cruz French Poodle 2 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
194 Max Joel Ojeda Pastor Aleman 5 meses macho Negativo Pto. Bolivar
195 Pawer Maximiliano Correa Schnauzer 5 meses macho Negativo Pto. Bolivar
196 Doki María Veintimilla Boxer 6 meses macho Negativo Pto. Bolivar
197 Trixi Mayra Macas French Poodle 3 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
198 Mocha Patricia Feijoo Mestizo 7 meses hembra Negativo Pto. Bolivar
199 Rufo Mauricia Tejada French Poodle 10 meses macho Negativo Pto. Bolivar
200 Tony Andrea Barreiro French Poodle 9 meses macho Negativo Pto. Bolivar

63
ANEXO N° 3 FOTOS
Foto 1. Toma de muestra sanguínea del animal

64
Foto 2. Caninos con presencia de garrapatas.

65
Foto 3. Caninos con síntomas de la enfermedad ( Petequias ).

66
Foto 4. Realización del Frotis sanguíneo.

67
Foto 5. Preparación de la placa con metanol.

68
Foto 6. Preparación de la placa con la tinción de Giemsa.

69
Foto 7.Observación de EHRLICHIA canis en el Laboratorio de Microbiología.

70
Foto 8. Observación de EHRLICHIA canis en el Laboratorio de Microbiología.

71
Foto 9. Leucocito que contiene Mórula EHRLICHIA canis.
Ehrlichia
Ehrlichia

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