Ecografía y análisis de la calidad seminal

1. Alumno:Jonathan Macas
9no. Ciclo “B”
ECOGRAFÍA Y ANÁLISIS DE
LA CALIDAD SEMINAL

2. ECOGRAFÍA
INTRODUCCIÓN
Sus comienzos en nuestra área se
remontan a los años 80 en yeguas, y más
tarde en vacas, utilizando en ambas la vía
transrectal.
El uso del ecógrafo es más efectivo y
tiene más aplicaciones que la palpación
rectal, ya que permite caracterizar
visualmente los órganos reproductores y
sus posibles patologías.

3. FUNCIONAMIENTO BÁSICO
Utiliza ondas de sonido de alta frecuencia (MHz), para producir
imágenes de órganos internos y de tejidos blandos.
1 MHz = 1’000 000 de ondas de sonido por segundo
Según la composición de la imagen que se obtenga con el ecógrafo se
podrán distinguir tres patrones ecográficos
 Hiperecogénico o hiperecoico:
 Hipoecogénico o hipoecoico
 Anecogénicos:

4. Hiperecogénico o hiperecoico:
Apreciado con una tonalidad blanca correspondiente con una elevada
reflexión de los tejidos, por ejemplo el hueso.
Fuente: Ecografía y reproducción en la vaca (Quíntelas, Luis 2006) en la que se pueden ver las costillas,
escápulas y columna ya calcificadas y por lo tanto hiperecogénicas

5. Hipoecogénico o hipoecoico:
Imágenes originadas por tejidos blandos que reflejan parcialmente el haz
de ultrasonido produciendo ecos de menor intensidad, originan puntos
menos brillantes para mostrar una escala de grises en la pantalla. Ej. tejidos
parenquimatosos.
Fuente: Ecografía y reproducción en la vaca (Quíntelas, Luis 2006) en la que se puede ver un
cuerpo lúteo hipoecogénico.

6. Anecogénicos:
Son imágenes producidas por estructuras que no reflejan sino que
transmiten las ondas, caracterizado por un color negro. Ej. vejiga,
quistes, folículos ováricos.
Fuente: Ecografía y reproducción en la vaca (Quíntelas, Luis 2006) en la que se puede ver la orina
anecogénica y el hueso hiperecogénico

7. Un transductor o sonda emite ondas que se reflejan de vuelta al
transductor, son enviadas a través de la sonda al ecógrafo en donde
son analizadas y convertidas en una imagen en una escala de grises.
Los transductores se pueden presentar de tres formas: lineales,
convexos o sectoriales

8. Transductor lineal
Los cristales pizoeléctricos están
alineados a lo largo de su
superficie.
Las ondas emitidas viajan de
forma paralela y en línea recta.
La imagen obtenida es
rectangular.
La sección observada es,
generalmente, un plano sagital
con respecto al cuerpo del
animal.

9. Transductor convexo
Tienen una superficie convexa.
Sus cristales están dispuestos
sobre la superficie convexa por lo
que la imagen obtenida es en
forma de abanico.
Fueron diseñados para facilitar la
obtención de ovocitos a través de
punciones foliculares intraováricas.
También pueden emplearse en la
ablación de quistes foliculares y
folículos dominantes.

10. Transductor sectorial
Tienen una superficie semicircular
y sus cristales pizoeléctricos están
organizados de esa forma.
Las imágenes obtenidas son en
forma de abanico completamente
abierto. (Ej. espacio intercostal)

11. CUIDADOS Y MANEJO
En el caso de los estudios
transrectales, se recomienda
proteger la sonda con un guante
descartable largo, previa
aplicación de gel sobre la zona
de los cristales.
Al finalizar, debemos limpiarlo
con un trapo o paño limpio y
húmedo, y sólo lavamos con
agua la sonda desde el
transductor hasta el control
remoto

12. APLICACIONES EN REPRODUCCIÓN ANIMAL
1. Diagnóstico temprano de gestación
Con el ecógrafo se diagnostican gestaciones de 20 días y menos, sin
embargo no es muy aconsejable hacerlo antes de los treinta días.
La imagen que se aprecia en el monitor es la de unas zonas negras
(anecogénicas) dentro del útero, que corresponden al líquido
amniótico y alantoideo.
Entre los 30 y 35 días empieza a observarse el latido cardiaco.
Imágenes ecográficas
de una gestación de
30 días

13. 2. Superovulación
La ultrasonografía ha sido determinante para estimar el inicio adecuado
del tratamiento superovulatorio y su respuesta en las vacas donantes.
Permite el chequeo reproductivo de las posibles receptoras.
3. Diagnóstico gemelar
Requiere tomarse más tiempo al hacer la ecografía y ello es más fácil
cuanto más temprano en la gestión lo diagnosticamos.
Puede ser de interés sexar los dos fetos por el fenómeno del
freemartinismo

14. 4. Diagnóstico de viabilidad embrionaria
En el embrión se aprecia con facilidad el palpitar cardiaco a partir del
día treinta y dos, su ausencia indica muerte embrionaria.
5. Sexaje fetal
La primera evidencia del sexo es la localización relativa del tubérculo
genital, que aparece como una imagen hiperecogénica bilobulada.
Ubicado inicialmente entre los miembros posteriores (día 48-50), migra
hacia craneal en el feto macho para ubicarse inmediatamente caudal al
cordón umbilical, hacia el día 55-56, mientras que en la hembra se
dirige hacia dorsal y caudal, ubicándose ventral a la base de la cola

15. 6. Diagnóstico de patologías reproductivas
Quistes Ováricos
La presencia de ovarios quísticos
(foliculares y/o luteales) es
bastante frecuente, principalmente
en ganado lechero y yeguas.
Los quistes foliculares,
anovulatorios, se visualizan como
un folículo de gran tamaño (más de
22 mm), de paredes muy finas en
el caso de poder visualizarlas.

16. Los quistes luteales, anovulatorios, poseen una pared de varios
mm causada por la luteinización parcial de la capa granulosa

17. 7. Diagnóstico de metritis
Se visualiza líquido dentro del útero.
Este líquido es más ecogénico que el de preñez, tiene un aspecto
de nevado con punteado en blanco.
Si el contenido es muy purulento y de alta densidad, la imagen
dentro del útero es muy ecogénica.

18. 8. Endometritis
Contenido gris homogéneo que corresponde a un exudado
mucopurulento.
Contenido negro (anecogénico) con puntos blancos (nuboso) que
nos habla de material mucoso que contiene granulos de pus.
Contenido blanco (hiperecogénico) homogéneo, que corresponde
a un contenido purulento denso y que podría parecernos similar en
ecogenicidad al útero que le rodea.

19. 9. Piometra
Reconocemos un contenido de las mismas características que en la
endometritis, pero la pared uterina que suele tener un grosor
debido a la presión que ejerce el contenido mucopurulento sobre
ella.
Se acompaña de cierre del cuello uterino y de un cuerpo lúteo en
el ovario

20. Ecografía en ovejas, cabras y cerdas
En los pequeños rumiantes sólo es posible mediante un vástago o
adaptador rígido para el transductor, en las cerdas puede utilizarse el
mismo vástago o por manipulación transrectal.
Podemos detectar la preñez en forma práctica en ovejas a partir de los
16-17 días post inseminación y también determinar la presencia de
gestaciones múltiples sobre los 20- 22 días (cuando el embrión mide
aprox. 1 cm).
En la cerda puede determinarse desde los 18-20 días post-servicio
mediante la observación de pequeñas cantidades de líquido, pudiendo
identificar a los embriones en una misma imagen a partir de los 22-23
días.

21. VENTAJAS
Maximizar la efectividad de los tratamientos, especialmente los de
sincronización de celos.
La mayoría de los casos, no sea necesaria la sedación del animal para
su realización.
Se pueden diagnosticar alteraciones patológicas, observar folículos y
cuerpos lúteos presentes en los ovarios, diagnóstico de gestación.
Proporciona imágenes en movimiento de las estructuras, pudiendo
diferenciar distintos tipos de tejidos.
No emite radiaciones ionizantes que puedan producir efectos
biológicos adversos.

22. DESVENTAJAS
La inversión económica es costosa
Coste de mantenimiento: este tipo de equipos requiere un
servicio de mantenimiento específico.
Utilizando algunas herramientas de posprocesado de forma
inadecuada podemos perder información diagnóstica.

23. ANÁLISIS DE LA CALIDAD SEMINAL
Parámetros macroscópicos
Volumen: Es esencial para obtener el
número total de espermatozoides y células
no espermáticas en el eyaculado. Se
expresa en mililitros (mL), y su lectura se
hace por medio de un tubo recolector
graduado.
Color: El color del eyaculado depende del
contenido de riboflavina, siendo
normalmente desde blanquecino marfil
hasta amarillento.

24. ANÁLISIS DE LA CALIDAD SEMINAL
Parámetros macroscópicos
Olor: Las muestras de semen recolectadas higiénicamente, de
toros sanos y fértiles, tienen un débil olor sui géneris.
Aspecto: Se refiere a la cantidad de células que tiene en
suspensión, y se relaciona directamente con el volumen de
eyaculado y del número de espermatozoides/mm3.
pH: Se evalúa extrayendo una gota de semen del tubo y
colocándola sobre una tira indicadora de pH. Se considera un pH
normal, entre 6,8 - 7

25. ANÁLISIS DE LA CALIDAD SEMINAL
Parámetros microscópicos
Motilidad masal
• Muy buena (MB), movimiento vigoroso en remolinos.
• Buena (B), remolinos más lentos y ondas.
• Mala (M), escasa o ninguna motilidad.
Moltilidad individual
• Muy Bueno (MB): 80 a 100% de células móviles
• Bueno (B): 60 a 80% de células móviles.
• Regular (R): 40 a 60% de células móviles
• Malo (M): menos de 40% de células móviles.

26. ANÁLISIS DE LA CALIDAD SEMINAL
Parámetros microscópicos
Morfología: Se basa en la relación directa que hay entre la proporción de
los espermatozoides normales en el eyaculado el tipo de defecto y su
influencia sobre la fertilidad de los toros
Concentración: Permite evaluar la capacidad de producción de
espermatozoides del semental y calcular el número de dosis a producir
por eyaculado.
Vitalidad: Mide el número de espermatozoides vivos y se expresa como
el porcentaje de células muertas. Para medir la vitalidad de una muestra
de semen, se utilizan colorantes, como el colorante eosina-nigrosina, solo
los espermatozoides muertos serán teñidos de color rojo o en rosa.