BIOTECNOLOGIAS REPRODUCTIVAS

1. Universidad Nacional de Loja
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y
ZOOTECNIA
BIOTECNOLOGIAS REPRODUCTIVAS
Nombre:
• Karla Eras
Docente:
• Dr. Manuel Quezada
Ciclo: “9no A”
TEMA:
ECOGRAFIA Y
EVALUACIÓN
SEMINAL

2. ECOGRAFÍA Es una
Estos ecos se producen
por la reflexión de los
ultrasonidos a nivel de los
distintos tejidos.
Técnica de diagnóstico
por imagen sobre la base
de la emisión de
ultrasonidos y la
recepción de ecos.
TEMA 1: ECOGRAFIA

3. Ventajas y desventajas
VENTAJAS
• Es una herramienta
tecnológica portátil
fácilmente transportada.
• Permite ver lo que antes solo
podía percibirse a través del
tacto
• Mejora en los índices
técnicos y productivos de la
explotación.
DESVENTAJAS
• Equipo costoso
• Entrenamiento para operar el
equipo e interpretar la
imagen ecografica.
• La sonda transrectal require
cuidado especial.

4. Estructuras del ecografo:
Teclado
Especies
mayores
especies
menores
Pantalla del
ecógrafo
Transductor
lineal
Transductor
sectorial
Los cristales están en paralelo,
alineados a lo largo del transductor
los cristales están en paralelo
o en anillos concéntricos.
los transductores más usados en la
práctica clínica son de 3,5; 5 y 7,5 MHz.

5. Según las diferencias de propagación los tejidos se clasifican:
Hiperecogénicos
Anecogénicos
hipoecogénicas
Corresponde a estrcuturas
óseas y aire apreciándose
de color blanco
Ej. Tejido óseo,
tejido fibroso,
cálculos,
calcificaciones
Ej. tejidos
parenquimatosos.
Ej. vejiga, quistes,
folículos ováricos
Corresponde a estructuras
llenas de liquido y se
aprecian de color negro en
la pantalla.
Por su ecotextura, reflejan
parcialmente el haz de
ultrasonido produciendo
ecos de menor intensidad,
muestran una escala de
grises en la pantalla.

6. Aparación de artefactos
• Son estructuras que no corresponden con la realidad, los mas
frecuentes son:
Sombra Acustica: cuando una estrcutura
hiperecogenica obstruye el paso de los ultrasonidos
Sombra posterior: el eco se incrementa distalmente
a una estructura hiperecogenica obstruye el paso de
los ultrasonidos
Sombra lateral: refraccion del haz de ultrasonido en
los margenes laterals de estructuras redondeadas

7. Aplicaciones en la reproducción animal:
Diagnóstico de preñez.
 Determinación de
estructuras ováricas
Determinación del
sexo fetal.
Diagnóstico de
patologias uterinas.
Evaluación de
sementales.
Monitorear la
aspiración folicular.

8. Diagnóstico de la gestación.
Superficialmente a traves de la
cavidad abdominal(via
transabdominal
El diagnóstico de la gestación,
mediante el uso de ecografía
se puede realizar por 2 vias:
Internamente al recto
(via transrectal)

9. Tecnica de exploracion:
1. Previamente realizar una breve exploracion
rectal
2. Colocar un poco de gel en la mano a introducir
3. La sonda se introduce transrectalmente sujeta
entre los dedos pulgar, índice y corazón y se
aplica desplazándola sobre la ubicación de útero
y ovarios.
4. Colocar la sonda contra la pared recto para
mostrar útero y ovarios
5. Se suele encontrar el corte transversal
longitudinal de la vejiga urinaria, cuerpo del
uterio y trompas de falopio
6. Posterior a la realización del examen se debe
retirar el transductor y el brazo lentamente.
la ecografía se realiza parecido a la exploración del sistema reproductor por vía rectal:

10. 1. Posicionar la sonda sobre el
cuerpo del utero para empezar el
recorrido
2. Mover la sonda los cuernos uterinos haciendo barridos
laterales a la vez que avanzamos hacia la parte anterior del
cuerno
3. Una vez sobrepasada la bifurcación de los cuernos
abordarlos con la sonda por delante y con movimientos de
barridos lateral.
4. Una vez localizado el ovario moverse sobre el con
diferentes inclinaciones. Según su posición relativa de la
sonda sobre el ovario veremos una u otra perspectiva de
las estructuras

11. Diagnóstico Precoz de Gestación • en la vaca, se puede realizar en forma práctica
y rutinaria a partir del día 25 post-servicio.
• En la yegua, el diagnóstico precoz se puede
realizar a partir del día 9 post-servicio
En esta etapa, el embrión mide aproximadamente 1
cm, y se encuentra en uno de los cortes más amplios
de cuerno gestante, dentro de un líquido oscuro y
límpido, pudiendo identificar los latidos cardíacos. Pero después del día 40, ya se pueden
diferenciar estructuras como la cabeza, grupa,
miembros y cordón umbilical

12. Sexado
• El Sexado Fetal puede realizarse a partir de los 55 días post servicio, tanto en
vacas como en yeguas, y consiste en detectar la ubicación del Tubérculo Genital
(estructura bilobulada como dos barras paralelas brillantes con forma de coma).
En el macho, migra desde su ubicación original
entre los miembros posteriores hacia delante,
hasta ubicarse inmediatamente por detrás de la
inserción del cordón umbilical, y dará origen al
pene.
En la hembra, en cambio, migra hacia
atrás, ubicándose por debajo del inicio de
la cola, originando el clítoris. Hembra 67
días

13. Ovarios
Los ovarios son fáciles de explorar en la vaca, y debemos reconocer en ellos las
estructuras funcionales: Folículos y Cuerpo Lúteo.
Los Folículos son visibles como
cavidades negras o anecogénicas, con
un borde muy fino, y a veces de
contorno irregular por la compresión de
otras estructuras del ovario
El Cuerpo Lúteo se identifica a partir de 2
o 3 días después de la ovulación, y crece 1-
2mm por día, hasta su máximo tamaño 7 a
12 días post-ovulación.
Ovario de vaca
con 2 Folículos
y 1 Cuerpo
Lúteo y pieza
anatómica

14. Volumen.
Bovinos: 5-100 cm3
Equinos: 50-150cm3
Cerdos: 100-300cm3
(1/4 de litro)
R. menores: 0,5 -2cm
Evaluación macroscópica
del semen:
Color.
Buena calidad:
• blanco lechoso o
cremoso
Mala calidad:
• rosado
• amarronado
• verdoso
• ‘azulado
Olor.
sui-géneris:
• olor a leche
fresca, dulzón
Subgeneris:
• olor a orina,
esmegma, fétido
Densidad.
Varía desde un
semen: acuoso,
lechoso,
lechoso-cremoso,
cremoso.
Relacionado con la
concentración.
pH. • normal entre 6.2 y 6.8.
• > 7 baja fertilidad y 8 esteril
TEMA 2: EVALUACIÓN SEMINAL

15. Concentración
espermática.
Evaluación microscópica del semen:
• Utilización de un hemocitómetro con
la cámara de Neubauer.
• Dilución de semen 1/200.
• 0.5 μl de semen + ABD hasta 101 μl.
• Homogenizar la solución y descartar
las primeras gotas.
• Llenar por capilaridad las dos
cámaras, dejar reposar.
Se expresa como el numero de espermatozoides por ml.
La concentracion varia en cada
especie, tienen su rango:

16. Motilidad
masal es definida como el movimiento en remolinos del total de
espermatozoides de la muestra (un todo)
Normalmente la movilidad masal se valora de forma subjetiva en una escala de 0 a 5, con una puntuación de 5 cuando se
observan oleadas o remolinos con movimiento rápido y vigoroso, y de 0 cuando no se observa movimiento en ondas
se debe observar
presencia de ondas y
remolinos:
colocar una gota de 10 μl de semen en una
lámina portaobje-tos previamente temperada a
37°C.
Observar al microscopio con un
aumento de 10X.

17. Motilidad individual
o progresiva. Evalúa la capacidad de los espermatozoides para
moverse en forma rectilínea progresiva. Se expresa en %
 MB = >80-100% de células móviles
 B = 60-79%
 R = 40-59%
 M = <40%
La movilidad puede
clasificarse como:
Se coloca 0.20 ul de semen
en un porta objeto
atemperado a 38°C y se
cubre con un cubre objetos.
Los espermatozoides deben
normalmente moverse de
modo, rápido y recto a través
del campo.
Se lleva al microscopio
para su valoración de
la muestra 100X
se recomienda diluir la
muestra de semen 1 a 100
en una solución isotónica de
citrato de sodio al 2.9% o
cloruro de sodio al 0.9%.

18. Morfología
los espermatozoides muertos a
parecen de color rosado al to
mar
el colorante y los vivos traslú
cidos.
Permite determinar si la muestra tiene un número
normal de espermatozoides con morfología normal.
Se tiñe una muestra del semen para observar las
anormalidades espermáticas con la tinción Eosina
Nigrosina