CULTIVOIN VITRO2017
Dra.Ing.Ftal.MarcelaRuscitti
INFIVE(Instituto de FisiologíaVegetal)
UNLP– CONICET
marcelaruscitti@gmail.com
BIOTECNOLOGIA
CULTIVOIN VITRO DE TEJIDOS
MICROPROPAGACION
(principalaplicacióncomercial)
Biotecnología
Es la aplicación de organismos vivos para la
resolución de problemas de interés a la
comunidad.
Puedeser clasificadaen:
Biotecnologíaensaludhumana
Biotecnologíaanimal
Biotecnologíaindustrial
Biotecnologíavegetal
Biotecnologíaambiental
Biotecnologíavegetal
Permite producir
rápidamente
mas
nuevas
variedades de plantas con
características mejoradas,
rendimiento,
a condiciones
resistencia a
control de
mayor
tolerancia
adversas,
herbicidas,
plagas.
Cultivoinvitrode tejidosvegetales
¿Quéesel cultivodetejidosvegetales in vitro?
Pierik(1987)definecultivode tejidosvegetalesin vitro de
plantassuperiorescomo:
El cultivo enmedionutritivo,bajo condiciones
estériles,de plantas,semillas,embriones,
órganos,explantos,tejidos,célulasy
protoplastosde plantassuperiores.
Existen tres conceptos básicos que
fundamentan el cultivo in vitro de
células y tejidos vegetales:
- Totipotencialidad celular
- D es diferenciación /Rediferenciación
- Balance de reguladores del crecimiento
vegetal
Condicionesdeincubación
• Temperatura
• Luz
Calidad
Cantidad
Controldelfotoperíodo
El CTV requiere
una infraestructura
mínima
especializada y
condiciones
controladas de
cultivo
• Laboratorio: preparación de medios
-Area de preparaciónde medios
-Area de lavadoy esterilización
-Cuartoestéril
-Cámara de cultivo
-Area de rusticación
• Material vegetal: explantos
-Plantas madres seleccionadas
(preacondicionamiento)
-Explantos (elección, disección,
esterilización, etc.)
• Condiciones de cultivo
-Asepsia
-Recipientes
-Temperatura
-Luzy fotoperíodo
¿Cómo lograr uncultivo de tejidos vegetales?
Mediosdecultivo: tipos
Sólido
Embriogénesissomática
ETAPAS
• Inducción:formacióndemasas proembriónicas,conauxinas
• Histodiferenciación: embriones en estadío globular, de corazón, de
torpedo, sinauxinas
• Maduración: embrionesen estado cotiledonar, conABA,desecación
• Germinación
Embriogénesissomática
Calloembriogénico embriones Embriónenestado
globular
Embriónenestadode
corazón
Embriónenestadode
torpedo
Embriónenestado
cotiledonar
Induccióndela EmbriogénesisSomática
Embriogénesissomática
MICROPROPAGACIÓN
MICROPROPAGACIÓN
La micropropagación
constituye la principal
aplicación comercial
del cultivode tejidos
vegetales
• La micropropagación vegetal, o propagación clonal masiva
de plantas superiores, posibilita la obtención y cultivo de
plantas a gran escala.
• Se realiza bajo estrictas condiciones de esterilidad en un
medio sintético nutritivo y con control de temperatura, luz y
fotoperíodo.
• Iniciación
-Eleccióny fitoacondicionamientode la planta
madre
-Eleccióndelexplantoinicialy de la formulación
delmediode cultivo
-Desinfecciónsuperficialde los explantos
-
Establecimientodel cultivo in vitro
• Multiplicación
-Multiplicacióndelmaterial stock
• Enraizamiento
-Enraizamientode los brotes obtenidos in vitro
• Rusticación
-Pasaje de las plantas crecidas in vitro a las
condiciones de maceta oa campo
Etapas
de la micro
propagación
vegetal
FASE I: ESTABLECIMIENTODELCULTIVOEN
CONDICIONESDE ASEPSIA
• Lavado del material con agua corriente, eliminación de las partes
muertaseinfectadasdelaplanta.
• Introducción de la porción de planta en alcohol diluido al 80% durante
unossegundos.
• Sumergirla planta enunasolucióndehipoclorito desodiooCaconun
agentehumectantedurante10-
30minutos.
• Enjuague del material con agua estéril para eliminar la solución de
hipocloritodesodio.El enjuaguedebe tener lugarbajocondicionesde
asepsia, y suele realizarse en tres veces sucesivas de unos 2 minutos
cadauna.
• Protocolo tipo de esterilización superficial
de material vegetal:
- Etanol 70% ,entre 5 y 10 seg.
- Solución de hipoclorito de sodio (NaCIO)
de 5 a 20% ,entre 5 y 30 min.Este paso
puede ser reemplazado por el uso de
soluciones diluídas de bicloruro de mercurio
(HgCl2), entre el 0,01 y0,05%.
-Enjuagues con abundante H2O estéril
(4 ó 5 veces).
- En el caso del HgCl2,el material se debe
enjuagar sucesivas veces pues es difícil
de eliminar
.
Los explantos
deben ser
esterilizados
antes de ser
establecidos
en condiciones
de cultivo
Siembra encondicionesde esterilidad
Principalescausasde contaminación:
• Esteriliz
aciónsuperficial inadecuada
• Manipulación
• Introducciónde esporaspor Trips
Se detecta fácilmente a simple vista a lospocos
días.
Génerosde hongosmásfrecuentes:
• Aspergillus
• Candida
• Cladosporium
• Microsporium
Génerosde bacteriasmásfrecuentes:
• Agrobacterium
• Bacillus
• Enterobacter
• Pseudomonas
• Lactobacillus
FASE II: MULTIPLICACIÓNDE LOSBROTES
Costosde la micropropagación
• Capitalparalainstalacióndel laboratorio
• Costodelamanodeobra
• Costodelosmateriales
• Característicasdelcomportamientoinvitro delmaterial:
Facilidad de establecimiento, rejuvenecimiento, etc.
Tasa de multiplicación
Enraizamientoinvitro/exvitro
• Pérdidasqueocurrenencadaetapadelproceso:
contaminación
hiperhidricidad
% plantasqueno enraiz
an
% plantasqueno sobrevivenlaaclimatación
Micropropagación vspropagación vegetativa convencional
• Esposible propagar algunasespeciesquenose
propagan “in vivo”.
• Senecesitamuypocomaterial departida.
• Elcrecimientoesmayorpor rejuvenecimientoy
sanidad.
• Serequierepocaárea paraelcultivodel material.
• Seelimina elefectoestacional.
• Simultáneamente se “limpia” el material.
Otras aplicaciones …
Variaciónsomaclonal
Obtención de variantes
somaclonales de pasto
llorón, Eragrostis curvula a
partir del cultivo de
inflorescencias .
Resistencia a frío en paraíso
gigante
Resistencia a salinidad en
eucalipto
Alos 24meses de cultivo
invitro, engeneral, la
planta muere porla
cantidadde cambios
cromosómicos
producidos¡¡¡¡¡.
Mejora genética. OGM
En1983se informaronlosprimerosexperimentos
deexpresióndeun transgen(genintroducido porvía asexual)en
células vegetales y al año siguiente seobtuvieron las primeras
plantastransgénicas(tabacoy petunia).
Desdeentoncesseha
extendidolaaplicación
de estatecnologíaamás
de120especies.
Aplicacionesdelcultivode tejido
Mejoragenética.OGM
METODOS:
a) indirectos: transformación
mediada por Agrobacterium
tumefaciens: unvector
biológicoque participade la
transferencia (sólo para
dicotiledóneas)
b)directos: por distintos
mecanismosfísicosse introduce
el ADNenlacélula:
electroporaciónde protoplastos,
polietilenglicol, biolística
PLANT
ASTRANSGENICAS
Resistencia a herbicidas: se basa en la transferencia de genes de
resistencia presentes en bacterias o vegetales como la petunia. Ejemplos:
soja resistente a glifosato, colza resistente a glufosinato y algodón
resistentea glifosato, glufosinato y bromoxinil, tabaco.
Resistencia a plagas y enfermedades: resistencias a virus en tabaco,
patata, tomate, pimiento, calabacín, soja, papaya, alfalfa y albaricoquero,
resistenciaa insectos en maíz Bt, algodón, batata
Mejora de las propiedades nutritivas y organolépticas: en el tomate se
ha logrado mejorar la textura y la consistencia impidiendo el proceso de
maduración, al incorporar un gen que inhibe la formación de pectinasa,
enzimaquese activa en el curso delenvejecimientodelfruto.
TransgénicosenArgentina,: soja
maíz
algodón
1er árbol transgénico:
Populus nigra
transformadoconlosgenesde resistenciaa insectos.
Manipulacióngenética enel
sector forestal
Serealizaenal menos35países,yselimitan
esencialmente a lasespeciesPopulus, Pinus,
Liquidambar y Eucalyptus.
BIBLIOGRAFIARECOMENDADA
Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II
Editores:
GabrielaLevitus, VivianaEchenique,
Clara Rubinstein, Esteban Hopp
yLuisMroginski
EdicionesINTA
http://intainforma.inta.gov.ar/wp-content/uploads/2010/09/bio_WEB.pdf

pdf-cultivo-in-vitro-2018_compress (2) (1).pptx

  • 1.
    CULTIVOIN VITRO2017 Dra.Ing.Ftal.MarcelaRuscitti INFIVE(Instituto deFisiologíaVegetal) UNLP– CONICET marcelaruscitti@gmail.com
  • 2.
    BIOTECNOLOGIA CULTIVOIN VITRO DETEJIDOS MICROPROPAGACION (principalaplicacióncomercial)
  • 3.
    Biotecnología Es la aplicaciónde organismos vivos para la resolución de problemas de interés a la comunidad. Puedeser clasificadaen: Biotecnologíaensaludhumana Biotecnologíaanimal Biotecnologíaindustrial Biotecnologíavegetal Biotecnologíaambiental
  • 4.
    Biotecnologíavegetal Permite producir rápidamente mas nuevas variedades deplantas con características mejoradas, rendimiento, a condiciones resistencia a control de mayor tolerancia adversas, herbicidas, plagas.
  • 5.
  • 6.
    ¿Quéesel cultivodetejidosvegetales invitro? Pierik(1987)definecultivode tejidosvegetalesin vitro de plantassuperiorescomo: El cultivo enmedionutritivo,bajo condiciones estériles,de plantas,semillas,embriones, órganos,explantos,tejidos,célulasy protoplastosde plantassuperiores.
  • 7.
    Existen tres conceptosbásicos que fundamentan el cultivo in vitro de células y tejidos vegetales: - Totipotencialidad celular - D es diferenciación /Rediferenciación - Balance de reguladores del crecimiento vegetal
  • 8.
  • 9.
    El CTV requiere unainfraestructura mínima especializada y condiciones controladas de cultivo • Laboratorio: preparación de medios -Area de preparaciónde medios -Area de lavadoy esterilización -Cuartoestéril -Cámara de cultivo -Area de rusticación • Material vegetal: explantos -Plantas madres seleccionadas (preacondicionamiento) -Explantos (elección, disección, esterilización, etc.) • Condiciones de cultivo -Asepsia -Recipientes -Temperatura -Luzy fotoperíodo
  • 10.
    ¿Cómo lograr uncultivode tejidos vegetales?
  • 11.
  • 12.
    Embriogénesissomática ETAPAS • Inducción:formacióndemasas proembriónicas,conauxinas •Histodiferenciación: embriones en estadío globular, de corazón, de torpedo, sinauxinas • Maduración: embrionesen estado cotiledonar, conABA,desecación • Germinación
  • 13.
  • 14.
  • 15.
  • 16.
  • 17.
    MICROPROPAGACIÓN La micropropagación constituye laprincipal aplicación comercial del cultivode tejidos vegetales
  • 18.
    • La micropropagaciónvegetal, o propagación clonal masiva de plantas superiores, posibilita la obtención y cultivo de plantas a gran escala. • Se realiza bajo estrictas condiciones de esterilidad en un medio sintético nutritivo y con control de temperatura, luz y fotoperíodo.
  • 19.
    • Iniciación -Eleccióny fitoacondicionamientodela planta madre -Eleccióndelexplantoinicialy de la formulación delmediode cultivo -Desinfecciónsuperficialde los explantos - Establecimientodel cultivo in vitro • Multiplicación -Multiplicacióndelmaterial stock • Enraizamiento -Enraizamientode los brotes obtenidos in vitro • Rusticación -Pasaje de las plantas crecidas in vitro a las condiciones de maceta oa campo Etapas de la micro propagación vegetal
  • 20.
    FASE I: ESTABLECIMIENTODELCULTIVOEN CONDICIONESDEASEPSIA • Lavado del material con agua corriente, eliminación de las partes muertaseinfectadasdelaplanta. • Introducción de la porción de planta en alcohol diluido al 80% durante unossegundos. • Sumergirla planta enunasolucióndehipoclorito desodiooCaconun agentehumectantedurante10- 30minutos. • Enjuague del material con agua estéril para eliminar la solución de hipocloritodesodio.El enjuaguedebe tener lugarbajocondicionesde asepsia, y suele realizarse en tres veces sucesivas de unos 2 minutos cadauna.
  • 21.
    • Protocolo tipode esterilización superficial de material vegetal: - Etanol 70% ,entre 5 y 10 seg. - Solución de hipoclorito de sodio (NaCIO) de 5 a 20% ,entre 5 y 30 min.Este paso puede ser reemplazado por el uso de soluciones diluídas de bicloruro de mercurio (HgCl2), entre el 0,01 y0,05%. -Enjuagues con abundante H2O estéril (4 ó 5 veces). - En el caso del HgCl2,el material se debe enjuagar sucesivas veces pues es difícil de eliminar . Los explantos deben ser esterilizados antes de ser establecidos en condiciones de cultivo
  • 22.
  • 23.
    Principalescausasde contaminación: • Esteriliz aciónsuperficialinadecuada • Manipulación • Introducciónde esporaspor Trips Se detecta fácilmente a simple vista a lospocos días.
  • 24.
    Génerosde hongosmásfrecuentes: • Aspergillus •Candida • Cladosporium • Microsporium Génerosde bacteriasmásfrecuentes: • Agrobacterium • Bacillus • Enterobacter • Pseudomonas • Lactobacillus
  • 25.
  • 26.
    Costosde la micropropagación •Capitalparalainstalacióndel laboratorio • Costodelamanodeobra • Costodelosmateriales • Característicasdelcomportamientoinvitro delmaterial: Facilidad de establecimiento, rejuvenecimiento, etc. Tasa de multiplicación Enraizamientoinvitro/exvitro • Pérdidasqueocurrenencadaetapadelproceso: contaminación hiperhidricidad % plantasqueno enraiz an % plantasqueno sobrevivenlaaclimatación
  • 27.
    Micropropagación vspropagación vegetativaconvencional • Esposible propagar algunasespeciesquenose propagan “in vivo”. • Senecesitamuypocomaterial departida. • Elcrecimientoesmayorpor rejuvenecimientoy sanidad. • Serequierepocaárea paraelcultivodel material. • Seelimina elefectoestacional. • Simultáneamente se “limpia” el material.
  • 28.
  • 29.
    Variaciónsomaclonal Obtención de variantes somaclonalesde pasto llorón, Eragrostis curvula a partir del cultivo de inflorescencias . Resistencia a frío en paraíso gigante Resistencia a salinidad en eucalipto Alos 24meses de cultivo invitro, engeneral, la planta muere porla cantidadde cambios cromosómicos producidos¡¡¡¡¡.
  • 30.
    Mejora genética. OGM En1983seinformaronlosprimerosexperimentos deexpresióndeun transgen(genintroducido porvía asexual)en células vegetales y al año siguiente seobtuvieron las primeras plantastransgénicas(tabacoy petunia). Desdeentoncesseha extendidolaaplicación de estatecnologíaamás de120especies.
  • 31.
    Aplicacionesdelcultivode tejido Mejoragenética.OGM METODOS: a) indirectos:transformación mediada por Agrobacterium tumefaciens: unvector biológicoque participade la transferencia (sólo para dicotiledóneas) b)directos: por distintos mecanismosfísicosse introduce el ADNenlacélula: electroporaciónde protoplastos, polietilenglicol, biolística
  • 32.
    PLANT ASTRANSGENICAS Resistencia a herbicidas:se basa en la transferencia de genes de resistencia presentes en bacterias o vegetales como la petunia. Ejemplos: soja resistente a glifosato, colza resistente a glufosinato y algodón resistentea glifosato, glufosinato y bromoxinil, tabaco. Resistencia a plagas y enfermedades: resistencias a virus en tabaco, patata, tomate, pimiento, calabacín, soja, papaya, alfalfa y albaricoquero, resistenciaa insectos en maíz Bt, algodón, batata Mejora de las propiedades nutritivas y organolépticas: en el tomate se ha logrado mejorar la textura y la consistencia impidiendo el proceso de maduración, al incorporar un gen que inhibe la formación de pectinasa, enzimaquese activa en el curso delenvejecimientodelfruto. TransgénicosenArgentina,: soja maíz algodón
  • 33.
    1er árbol transgénico: Populusnigra transformadoconlosgenesde resistenciaa insectos. Manipulacióngenética enel sector forestal Serealizaenal menos35países,yselimitan esencialmente a lasespeciesPopulus, Pinus, Liquidambar y Eucalyptus.
  • 34.
    BIBLIOGRAFIARECOMENDADA Biotecnología y MejoramientoVegetal II Editores: GabrielaLevitus, VivianaEchenique, Clara Rubinstein, Esteban Hopp yLuisMroginski EdicionesINTA http://intainforma.inta.gov.ar/wp-content/uploads/2010/09/bio_WEB.pdf