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2009


              Edafología II
Manual de prácticas de laboratorio




                   Universidad de San Carlos de
                            Guatemala
                     Facultad de Agronomía


                        ING. AGR. CESAR MARTINEZ




                               1
Edafología II
                                                             2009
El suelo, como recurso importante en la dinámica nutricional vegetal, forma
parte del sistema de producción de cultivos agrícolas, aunado a esto la
capacidad que tenga el mismo de suministrar los nutrientes esenciales para
el crecimiento y desarrollo de las plantas constituyen una de las bases
para el éxito agronómico.
                                                                              Manual de
Este manual recopila, describe y somete a evaluación las principales
                                                                              prácticas de
propiedades químicas del suelo, con el objeto de promover el estudio e
interés por parte de estudiantes del área agronómica, contribuyendo así al
desarrollo de la capacidad para analizar e interpretar las distintas
                                                                              laboratorio
reacciones que ocurren en un suelo.




                                                                                  2
Í   NDICE


Contenido                                                                                                                                                Pg.



PACTICA No. 1.......................................................................................................................................... 3

                         Muestreo de Suelos ........................................................................................................ 4

PRACTICA No. 2 ......................................................................................................................................... 6

                         Elaboración de aboneras................................................................................................ 6

PRACTICA No. 3 ....................................................................................................................................... 14

       Determinación de la Capacidad de Intercambio Catiónico y
…………………de Bases Cambiables ..................................................................................................... 14

PRACTICA No. 4 ....................................................................................................................................... 23

         Evaluación de diferentes suelos usando pruebas Biológicas (macetas en
………………...invernadero) ..................................................................................................................... 23

PRACTICA No. 5 ....................................................................................................................................... 25

                       Determinación de la materia orgánica y nitrógeno total ............................................. 25

PRACTICA No. 6 ....................................................................................................................................... 32

                       Reacción del suelo (pH) .................................................................................................. 32

PRACTICA No. 7 ....................................................................................................................................... 37

                      Conductividad eléctrica (salinidad y sodicidad) ........................................................... 37

Evaluación ................................................................................................................................................. 42




                                                           Facultad de Agronomía
                                                      Subarea de Manejo de Suelo y Agua
                                                                  -FAUSAC-
                                                                    2009




                                                                                                                                  3
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA
FACULTAD DE AGRONOMIA
AREA TECNOLOGICA
SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA
LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II
INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ



                                         PRACTICA No. 1


                                MUESTREO DE SUELOS

I.     INTRODUCCION




P
        ara poder diagnosticar el estado de un suelo es necesario realizar un muestreo de este.
        El muestreo consiste en la técnica de obtener porciones de suelo de un área
        homogénea, para analizar sus características físicas y/o químicas. Los muestreos se
realizan con diferentes fines ya sean de fertilidad o de capacidad de uso de la tierra entre otros.

Para obtener resultados confiables de características físicas o químicas de un suelo es
importante realizar un adecuado muestreo, principalmente porque cuando se muestrea, el
volumen que se utiliza equivale aproximadamente al 0,0000005 % del peso medio de 1 ha (0-
20 cm), por lo tanto estas muestras deben ser representativas.

Es importante mencionar que deben tomarse las mayores precauciones para la obtención de
muestras para no contaminar las mismas, también es importante identificar las muestras.


II.    OBJETIVOS

Que el estudiante
• Conozca los principios del muestreo de suelos.
• Aplique las condiciones adecuadas al manejo de muestras tanto en el campo como en el
   laboratorio.
• Por medio de la aplicación practica del muestreo le de prioridad a esta técnica.




                                                                                 4
III.   FUNDAMENTO TEORICO                        muestras con fines de riego, toma de
                                                 muestras con problemas específicos
                                                 (salinidad, toxicidad, etc.).
        El muestro es el primer paso de una
análisis químico de suelo, y el más critico,     3.2   TOMA DE MUESTRAS CON FINES
ya que se constituye en la fuente de error       DE FERTILIDAD DE SUELOS
más común (Petersen and Calvin, 1986).
Ya en los albores de esta práctica, Cline        El objetivo principal del análisis químico de
(1944) expresó que el límite de exactitud        una muestra de suelo, es determinar la
está dado por el muestreo y no por el            capacidad de éste para suministrar los
análisis. Esto sucede porque a través de         nutrientes esenciales en las cantidades
pocas muestras (generalmente no más de 1         adecuadas para todo el ciclo del cultivo.
kg de suelo) se pretende representar la
                                                 Para que los resultados de los análisis
disponibilidad de nutrientes de miles de
                                                 químicos de suelos sean eficientes en la
toneladas de suelo. Tanto es así que 1 kg
                                                 solución de problemas nutricionales, éstos
de suelo significa el 0,0000005 % del peso
                                                 deber ser complementarios con una
medio de 1 ha (0-20 cm). Adicionalmente,
                                                 información sobre las características físicas
Si tomamos en cuenta que dentro de la            y químicas del suelo y un amplio historial
superficie que queremos representar existe       sobre los cultivos anteriores, se pueden
una gran variabilidad, la dificultad para        seguir los siguientes parámetros:
realizar un buen muestreo es aún mayor. La
                                                 •   Caracterización del paisaje: Se
variabilidad se ve incrementada cuando un
                                                     requiere de una detallada descripción
campo ingresa en un sistema de siembra
                                                     del paisaje correspondiente al área de
directa continua, por la acción residual de
                                                     muestreo. Esto es importante para
las líneas de fertilización, la acumulación de
                                                     relacionar      las         características
residuos, aplicación de fertilizantes en la
                                                     ambientales     con      los    resultados
superficie del suelo y el reciclado de
                                                     analíticos y de allí orientar medidas de
nutrientes hacia estratos superiores del
                                                     manejo del suelo.
suelo (Anghinoni et, al., 2003).

                                                 •   Toma de muestras suficientes, en
                                                     cantidad y calidad: Tanto la calidad
3.1  FINALIDAD DEL MUESTREO DE                       como la cantidad de muestras son
SUELOS                                               fundamentales para obtener datos
                                                     analíticos   de   características  y
                                                     propiedades químicas y físicas del
        El muestreo de suelos es muy                 suelo, que sirvan de apoyo al
importante, ya que nos genera información            diagnóstico.
analítica para manejarlo como tal. En la
actualidad se realizan muestreos de suelos       •   Objetivos del análisis: Se realizan
con diferentes finalidades, los más                  análisis químico-nutritivos del suelo
importantes son: Muestreo con fines de               para evaluar el régimen de elementos
clasificación de suelos, toma de muestras            nutritivos. Los análisis físicos del suelo
con fines de fertilidad de suelos, toma de           permiten evaluar otros factores de la




                                                                             1
fertilidad del suelo como los regímenes     •   Número de submuestras: Dependerá
    de aire y agua. Los datos de laboratorio        del tamaño del área de muestreo y de la
    y otra información adicional permiten           intensidad de uso, el mínimo puede ser
    orientar medidas de manejo del suelo            entre 15 – 20 submuestras por parcela
    y/o silviculturales.                            de muestreo.

•   Época de Muestreo: En suelos no             3.4  MANEJO DE MUESTRAS PREVIO AL
    sembrados anteriormente, el muestreo        LABORATORIO
    se puede realizar dos o tres meses
    antes de la siembra; en cultivos de ciclo   •   Secado: Las muestras que se piensen
    corto dos meses antes, y en cultivos            almacenar durante algún tiempo antes
    permanentes, anualmente, dos meses              de concluir los análisis, se deben secar
    antes de la fertilización.                      previamente para evitar cambios
                                                    químicos que se puedan producir al
•   El análisis de suelos será tan bueno
                                                    almacenarlas húmedas. Los valores que
    como la calidad de las muestras
                                                    pueden sufrir cambios durante el
    tomadas, pues la muestra enviada al
                                                    desecado son los que corresponden a
    laboratorio, de 0,5 a 1,0 kg, representa
                                                    pH, P, N, K, Mn, Cu y Zn disponibles.
    millones de kilogramos de suelo. Por
    este motivo, una torna de muestra           •   Para el secado, las muestras se
    cuidadosa asegura unos resultados de            extienden en una superficie plana sobre
    análisis correctos y de gran utilidad.          bandejas o papel limpio, en un lugar
                                                    bien ventilado, se debe evitar el secado
•   Frecuencia de muestreo: Cultivos
                                                    brusco utilizando altas temperaturas.
    anuales en rotación o un solo cultivo
    con período de barbecho, cada tres          •   Molido y tamizado: Ya sea que se
    años.     Cultivos   intensivos     con         utilicen con la humedad del campo o
    aplicaciones regulares de abonos                secadas al aire, las muestras se pueden
    químicos y orgánicos (hortalizas), cada         pasar por un tamiz de 2 mm; las
    dos años.                                       partículas de grava, rocas, raíces u
                                                    otras impurezas se deben eliminar, los
3.3  FACTORES A CONSIDERAR EN EL                    agregados del suelo o terrones que no
MUESTREO DE SUELOS                                  pasen por el tamiz, deben molerse con
                                                    rodillos de madera o con morteros y
•   Tamaño de la unidad de muestreo: El             luego tamizarse nuevamente, hasta que
    tamaño dependerá de la variabilidad del         pase toda la muestra.
    terreno y de la intensidad y tipo de uso
    de la parcela. En áreas muy uniformes,      •   Homogenización:      Se       debe
    con el mismo uso agrícola y vegetación,         homogenizar              mezclando
    el lote puede estar representado por 10         constantemente, por medio de una
    ha. En áreas de uso muy intensivo con           homogenizadora.
    fuertes aplicaciones de fertilizantes,
    abonos orgánicos y con riego (hortalizas    •   Partición: Cuando la muestra es
    y frutales) el lote no debe ser mayor de        grande, se debe partir o cuartear para
    dos hectáreas.                                  obtener las porciones de la muestra




                                                                          2
necesarias. Para esto, el suelo se              superficial del suelo (Horizonte Ap o Al).
   amontona y se va repartiendo en partes          Luego tomar submuestras del subsuelo
   iguales.                                        para cada horizonte del perfil hasta un
                                                   metro de profundidad aproximadamente,
3.5  PRECAUCIONES AL TOMAR                         según el espesor de cada horizonte.
MUESTRAS PARA ANÁLISIS DE SUELOS
                                                   Los depósitos de sales (costras) que
• Evitar muestrear suelos muy mojados.             aparecen en la superficie de suelos salinos
                                                   sódicos, deben muestrearse por aparte. Un
• Use bolsas plásticas nuevas y limpias, no        horizonte alterado por efectos de la acidez
de papel.                                          igualmente         debe        muestrearse
                                                   separadamente.
• No fumar durante la recolección de
muestras, para evitar contaminarlas con las        Es recomendable tomar una o varias
cenizas del cigarro, ricas en potasio.             muestras de perfiles adyacentes normales,
                                                   con el propósito de determinar en el análisis
• No tomar muestras en áreas recién
                                                   las propiedades del suelo que sean
fertilizadas, sitios próximos a viviendas,
                                                   responsables de los problemas.
galpones, corrales, cercas, caminos,
lugares pantanosos o erosionados, áreas
quemadas, lugares donde se amontonan
estiércol, fertilizantes, cal u otras sustancias   IV.      MATERIALES Y METODOS
que pueden contaminar la muestra.
                                                   4.1      MATERIALES
3.6  TOMA DE MUESTRAS EN SUELOS
PROBLEMA

        Las áreas de terreno con problemas          -    Barreno o pala
                                                    -    Balde o cubeta
específicos conducen a un muestreo de
                                                    -    Bolsas de plástico
suelos con fines de diagnosis. Como                 -    Machete
ejemplo de suelos problema podemos                  -    Etiquetas
mencionar: suelos ácidos, salinos, sódicos,         -    Lapiz graso de color oscuro.
salino-sódicos, rocosos compactados e
impermeables.

Se pueden tomar de 15 a 30 submuestras a
distancias, de dos o más metros entre si, en
cada área representativa. Esta primera
muestra debe corresponder a la capa




                                                                               3
4.2      METODOLOGIA                               3. FRECUENCIA DE MUESTREO

                                                       Principalmente se encuentra en
      1. DELIMITACIÓN DE LAS ÁREAS                 función de los recursos con que se
                                                   cuenta, principalmente del recurso
           Recorrer la finca y hacer un plano o
                                                   económico.
      croquis sencillo de las superficies más o
      menos homogéneas, en cuanto al tipo          - Para     cultivos   intensivos   se
      de suelo, color, relieve, textura,           recomienda: antes de cada siembra.
      densidad,      drenaje,    pedregosidad,
      cultivos o vegetación, apariencia física y   - Para      cultivos  perennes:     se
      clase de manejo recibido anteriormente,      recomienda después de la cosecha,
      donde ubique los detalles más                cada 3 o 4 años. También se toma en
      importantes de la finca como lo son          cuenta la zona de goteo es decir el
      partes altas o bajas, planas o               diámetro de copa o sombra de estos.
      inclinadas, coloración del suelo, si es
      arenoso o pesado, vegetación alta,           4. RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA
      media o baja, riesgo de inundación,
      áreas que no se han trabajado ni                 Para la toma de muestras se debe
      fertilizado, y áreas trabajadas y            limpiar la superficie del terreno y con
      fertilizadas. En todo caso se debe tomar     ayuda de la pala o el barreno, tomar
      de forma separada, muestras de áreas         una muestra homogénea siempre a la
      que producen diferente.                      misma profundidad, si se colecta con la
                                                   pala se cortan los extremos con el
                                                   machete y se deposita en el balde. }Las
      2. DEFINIR EL TIPO DE MUESTREO
                                                   submuestras deben ser tomadas entre
         Se define principalmente para             20 y 30 cm de profundidad,
      obtener representatividad del área, a        dependiendo de la longitud de raíces
      manera de cubrir los puntos específicos      del cultivo que se quiera sembrar o que
      de interés. Puede se zigzag, en              esta sembrado ya. Luego de tener todas
      cuadricula, diagonales o al azar.            las submuestras en el balde (de 15 a 20
                                                   por ha) se mezclan homogéneamente y
                                                   se toma 1 kg aproximadamente. Esta es
                                                   la muestra compuesta requerida para el
                                                   análisis.



 Cuadricula       Zig-zag        Diagonales

    La muestra compuesta es constituida
por muestras simples o submuestras. El
numero adecuado de submuestras por una
ha. es de 25. Si las áreas son homogéneas
pueden tomarse de 15 – 25 submuestras
por 4 a 6 ha.




                                                                         4
5. IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA               Muestreo de Suelos. Disponible en
                                                   línea
         Para identificar la muestra se debe       www.inta.gov.ar/cerroazul/actividad/mue
     colocar: el nombre del propietario,           streo_suelos.htm#Tabladecontenido
     nombre     de     la   finca,  ubicación
     geográfica, número de muestra y            3. GERDING, V.; SCHLATTER, J.E.
     parcela, superficie que representa y          1996.   MUESTREO DE SUELOS
     algunas informaciones complementarias         PARA EVALUAR SU FERTILIDAD,
     como lo son: pendiente del terreno,           CON ÉNFASIS EN EL RÉGIMEN DE
     riesgo de inundación, color del suelo,        ELEMENTOS NUTRITIVOS. Valdivia,
     tipo de vegetación, cultivo anterior,         UACH, Instituto de Silvicultura. 6 p.
     rendimiento obtenido, disponibilidad de
     residuos, tipo de fertilizante usado, si   4. GREZ, R.; PIEL, A.; AÑAZCO, R.
     encaló y forma y época de aplicación.         1993. LOS ANÁLISIS QUÍMICOS EN
                                                   LOS     ESTUDIOS        DE     SUELOS
     Aunque los datos básicos son: fecha de        FORESTALES. IN: Suelos Forestales,
     recolección, profundidad, nomenclatura        Boletín de la Sociedad Chilena de la
     propia, procedencia.                          Ciencia del Suelo 10: 190-195.
NOTA: La toma de muestras de suelo para
establecer correlación del suelo con una        5. SCHLATTER,    J.E.;     GREZ,    R.;
sola planta se limita a la toma de 3 a 5           GERDING, V. 1989. EL ANÁLISIS
submuestras alrededor del tronco de la             FOLIAR Y EL ANÁLISIS DE SUELOS,
planta a una distancia de 30 a 60 cm. del          MÉTODOS DE DIAGNÓSTICO EN EL
tronco, según el tipo de la planta. Esto           SECTOR FORESTAL.           Santiago,
representa la unidad de muestreo mínima            CONAF.    8 p.      (Chile Forestal,
para una planta aislada, pero si se juntan         Documento       Técnico,         36)
15 a 30 muestras, automáticamente sé esta
tomando     muestra     compuesta.      Este
muestreo se realiza para el caso de cítricos,
aguacates, cafetales, etc.



V.      BIBLIOGRAFIA

1. BUCARO CARLOS. Muestreo de
   suelos. Criterios básicos. Laboratorio
   de Suelos         -CIEFAP- UNPSJB.
   Patagonia Forestal - Año X No. 1- Abril
   2004. 4 p.

2. D. SOSA ALBERTO. Instituto nacional
   de tecnología agropecuaria, Estación
   Experimental Agropecuaria Cerro Azul.




                                                                         5
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA
 FACULTAD DE AGRONOMIA
 AREA TECNOLOGICA
 SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA
 LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II
 INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ


                                       PRACTICA No.2

                          ELABORACIÓN DE ABONERAS

I.     INTRODUCCION




L
        a agricultura es una ciencia que ha evolucionado a través del tiempo, obteniendo como
        respuesta la degradación del suelo, por el uso acelerado que se le ha dado a este.
        Por esta razón en estos tiempos para que un cultivo sea exitoso es necesario aplicar
fertilizantes químicos para cubrir las necesidades nutricionales de los mismos. Sin embargo
tomando en cuenta al porcentaje de población que se dedica a la agricultura en Guatemala,
podemos observar que en su mayoría, el acceso a fertilizantes químicos es limitado.

Una solución a este problema es el uso de abonos orgánicos, recuperando así algunos
servicios ecológicos tales como el reciclaje de nutrientes el cuál se realiza con la
descomposición de la materia vegetal y animal por medio de microorganismos benéficos
presentes en el suelo.

Por lo anteriormente descrito los abonos orgánicos, no solo ayudan económicamente a la
población, sino también trae consigo otros beneficios de tipo ecológico como la incorporación
de nutrientes en el suelo, así también la mejora de características físicas, químicas y biológicas
del suelo.


II.    OBJETIVOS

Que el estudiante:
• Conozca los materiales adecuados para la elaboración de aboneras, sus cualidades y
   características.
• Aprenda la metodología empleada en la elaboración de aboneras tipo compost.
• Lleve a cabo el cuidado y manejo de aboneras tipo compost.
• Conozca el papel que juega la relación Carbono-Nitrógeno, en el proceso de degradación
   de los materiales empleados.




                                                                                6
•   Mejora la actividad biológica del suelo:
III.      FUNDAMENTO TEORICO                            Actúa como soporte y alimento de los
                                                        microorganismos ya que viven a
3.1 COMPOSTAJE                                          expensas del humus y contribuyen a su
                                                        mineralización.
        El compostaje o “composting” es el          •   La población microbiana es un indicador
proceso biológico aeróbico, mediante el                 de la fertilidad del suelo.
cual los microorganismos actúan sobre la
materia rápidamente biodegradable (restos
de cosecha, excrementos de animales y               3.3 FACTORES QUE CONDICIONAN EL
residuos urbanos), permitiendo obtener              PROCESO DE COMPOSTAJE
"compost", abono excelente para la
agricultura.                                                Para que los microorganismos
Otra definición del compost o mantillo es: el       puedan vivir y desarrollar la actividad
resultado de un proceso de humificación de          descomponedora se necesitan unas
la materia orgánica, bajo condiciones               condiciones óptimas de temperatura,
controladas y en ausencia de suelo. El              humedad y oxigenación.
compost es un nutriente para el suelo que           Son muchos y muy complejos los factores
mejora la estructura y ayuda a reducir la           que intervienen en el proceso biológico del
erosión y ayuda a la absorción de agua y            compostaje, a demás influenciados por las
nutrientes por parte de las plantas.                condiciones ambientales, tipo de residuo a
                                                    tratar y el tipo de técnica de compostaje
                                                    empleada. Los factores más importantes
3.2 PROPIEDADES DEL COMPOST                         son:

•      Mejora las propiedades físicas del suelo:    •   Temperatura. Se consideran óptimas
       La materia orgánica favorece la                  las temperaturas del intervalo 35-55 ºC
       estabilidad de la estructura de los              para conseguir la eliminación de
       agregados del suelo agrícola, reduce la          patógenos, parásitos y semillas de
       densidad     aparente,     aumenta      la       malas hierbas. A temperaturas muy
       porosidad y permeabilidad, y aumenta             altas,     muchos       microorganismos
       su capacidad de retención de agua en el          interesantes para el proceso mueren y
       suelo. Se obtienen suelos más                    otros no actúan al estar esporados.
       esponjosos y con mayor retención de          •   Humedad. En el proceso de compostaje
       agua.                                            es importante que la humedad alcance
•      Mejora las propiedades químicas:                 unos niveles óptimos del 40-60 %. Si el
       Aumenta        el      contenido       en        contenido en humedad es mayor, el
       macronutrientes      N,     P,     K,    y       agua ocupará todos los poros y por lo
       micronutrientes,    la capacidad de              tanto el proceso se volvería anaeróbico,
       intercambio catiónico (C.I.C.) y es fuente       es decir se produciría una putrefacción
       y almacén de nutrientes para los                 de la materia orgánica. Si la humedad
       cultivos.                                        es excesivamente baja se disminuye la
                                                        actividad de los microorganismos y el




                                                                              7
proceso es más lento. El contenido de              pobres en carbono y ricos en nitrógeno
    humedad dependerá de las materias                  son los vegetales jóvenes, las
    primas empleadas. Para materiales                  deyecciones animales y los residuos de
    fibrosos o residuos forestales gruesos la          matadero.
    humedad máxima permisible es del 75-          •    Población microbiana. El compostaje
    85 % mientras que para material vegetal            es     un    proceso    aeróbico    de
    fresco, ésta oscila entre 50-60%.                  descomposición de la materia orgánica,
                                                       llevado a cabo por una amplia gama de
•   pH. Influye en el proceso debido a que             poblaciones de bacterias, hongos y
    los hongos toleran un margen de pH                 actinomicetes.
    entre 5-8, mientras que las bacterias
    tienen menor capacidad de tolerancia (
    pH= 6-7,5 ).

•   Oxígeno. El compostaje es un proceso
    aeróbico, por lo que la presencia de
    oxígeno es esencial. La concentración
    de oxígeno dependerá del tipo de
    material, textura, humedad, frecuencia
    de volteo y de la presencia o ausencia
    de aireación forzada.

•   Relación C/N equilibrada. El carbono y            Fig. 2.1 Ingresos y egresos en el proceso de
    el nitrógeno son los dos constituyentes                            Compostaje
    básicos de la materia orgánica. Por ello
    para obtener un compost de buena
    calidad es importante que exista una          3.4 LAS MATERIAS PRIMAS DEL
    relación equilibrada entre ambos              COMPOST
    elementos. Teóricamente una relación
    C/N de 25-35 es la adecuada, pero esta            Para la elaboración del compost se
    variará en función de las materias            puede emplear cualquier materia orgánica,
    primas que conforman el compost. Si la        con la condición de que no se encuentre
    relación C/N es muy elevada, disminuye        contaminada. Generalmente estas materias
    la actividad biológica. Una relación C/N      primas proceden de:
    muy baja no afecta al proceso de
    compostaje, perdiendo el exceso de            •    Restos de cosechas. Los restos
    nitrógeno en forma de amoniaco. Es                 vegetales jóvenes como hojas, frutos,
    importante     realizar    una      mezcla         tubérculos, etc son ricos en nitrógeno y
    adecuada de los distintos residuos con             pobres en carbono. Los restos vegetales
    diferentes relaciones C/N para obtener             más adultos como troncos, ramas,
    un compost equilibrado. Los materiales             tallos, etc son menos ricos en nitrógeno.
    orgánicos ricos en carbono y pobres en        •    Abonos verdes, siegas de césped,
    nitrógeno son la paja, el heno seco, las           malas hierbas, etc.
    hojas, las ramas, la turba y el serrín. Los




                                                                                 8
•   Las ramas de poda de los frutales. Es                  •   Algas. También pueden emplearse
    preciso    triturarlas   antes   de su                     numerosas especies de algas marinas,
    incorporación al compost, ya que con                       ricas en agentes antibacterianos y
    trozos    grandes      el    tiempo de                     antifúngicos y fertilizantes para la
    descomposición se alarga.                                  fabricación de compost.

•   Hojas. Pueden tardar de 6 meses a dos                  •   Los períodos de descomposición son
    años en descomponerse, por lo que se                       promedios,     bajo     condiciones    de
    recomienda mezclarlas en pequeñas                          temperatura ambiente entre 22 y 30
    cantidades con otros materiales.                           grados     centígrados      y    humedad
                                                               suficiente para posibilitar el crecimiento
•   Restos urbanos. Se refiere a todos                         microbiano.
    aquellos restos orgánicos procedentes
    de las cocinas como pueden ser restos
    de fruta y hortalizas, restos de animales
    de mataderos, etc.

•   Estiércol animal. Destaca el estiércol de
    vaca, aunque otros de gran interés son
    la gallinaza, conejina o sirle, estiércol de
    caballo, de oveja y los purines.



CUADRO 2.1. VELOCIDADES DE DESCOMPOSICIÓN DE VARIOS TIPOS DE MATERIA ORGÁNICA

Tipo de material                   Relación C/N                          Vel. de descomposición


Rastrojo de sorgo                  Alta (entre 30 y 100)                 Lenta (Entre 90 y 100 días)


Granza de arroz                    Muy alta (superior a 100)             Muy lenta (más de 180 días)


Aserrín de madera                  Muy alta (superior a 100)             Muy lenta (más de 180 días)


Vaina de frijol                    Baja (inferior a 30)                  Rápida (menos de 60 días)


Pulpa de café                      Baja (inferior a 30)                  Rápida (menos de 60 días)


Estiércol de ganado                Baja (inferior a 30)                  Rápida (menos de 60 días)


Excreta de gallina                 Baja (inferior a 30)                  Rápida (menos de 60 días)


Rastrojo de maíz                   Alta (entre 30 y 100)                 Lenta (entre 90 y 100 días)




                                                                                        9
CUADRO2.2 RELACIÓN CARBONO / NITRÓGENO DE ALGUNOS MATERIALES
                         PARA COMPOST

                         Material                 Relación
                                                  C/N
                         Pasto seco               80:1
                         Heno de legumbres        12-24:1
                         Paja                     75-150:1
                         Estiércol         vacuno 15-25:1
                         mezclado
                         Estiércol equino con 20-30:1
                         paja
                         Estiércol ovino          15-20:1
                         Algas marinas            19:1
                         Materia fecal humana     5-10:1
                         Cañas de maíz            60:1
                         Residuos vegetales       12:1
                         Estiércol de aves        10-15:1
                         Orina                    0,9:1
                         Hojas secas              20-60:1
                         Desechos alimentarios    15-20:1

                                                 de la materia orgánica todavía en
IV.   MATERIALES Y METODOS                       proceso,
                                              8. Palas para voltear la materia orgánica,
4.1 MATERIALES:                               9. Un machete para despedazar el
                                                 material vegetal en trozos de 5 a 10 cm.
                                                 de largo. Con esto se logra que penetre
1. Residuos orgánicos (Pulpa de café y
                                                 fácilmente la humedad y favorezca el
   Residuos de cosecha)
                                                 crecimiento de microorganismos, y la
2. Material    Vegetal    (gramíneas     y
                                                 materia se descomponga fácilmente,
   leguminosas)
3. Suelo orgánico (suelo común),              10. Deben buscarse tubos o postes de
4. Dos contenedores a los cuales                  bambú u otro material adecuado para
   llamaremos composteros,                        hacer respiraderos al centro de la
5. Cascarilla de arroz que absorbe el             abonera, los cuales deben quedar a
   exceso de humedad,                             medio metro de dist. entre uno y otro,
6. Estiércol como fuente de Nitrógeno
7. Cernidor con malla alámbrica adecuada,     11. Una cubeta o regadera para agregar
   que servirá para separar el producto ya        agua en cada capa.
   biodegradado (que será la composta),




                                                                        10
4.2 METODOLOGÍA                               V.      MANEJO
-   Primer paso: se cúbica el compostero
    tomando en cuenta el alto, ancho y        a. Manejo: Aunque no haya desechos
    largo de este y se pesan los materiales      vegetales que agregar, la abonera debe
    a utilizar.                                  airearse cada 8 días procurando que se
                                                 realice el mismo día, para permitir la
-   Segundo paso: Se coloca en el fondo          liberación de los gases producto de la
    del compostero una capa de cascarilla        descomposición, y para proporcionar
    de arroz. Este ayuda a la aireación y        oxígeno al sistema. Se airea, vaciando
    absorbe el exceso de humedad.                el contenido al otro contenedor,
                                                 revolviendo con la pala y si está muy
-   Tercer paso: Se coloca una capa de           seco el material se rocía con un poco de
    suelo orgánico, u originario de un           agua, sólo para mantener la humedad.
    bosque (que contenga alta cantidad de        Al hacer esto se colocan nuevamente
    microorganismos).                            los tubos o postes y se cubre la
                                                 abonera, tratando de no permitir el paso
-   Cuarto paso: Se coloca una capa de           de agua si acaso lloviera.
    estiércol, está como portadora de         b.   Temperatura y riego: Si se presenta
    microorganismos y fuente de Nitrógeno.         mal olor, agregar cal, (en el caso de las
                                                   aboneras con gallinaza no hacerlo). Los
-   Quinto paso: Se coloca una capa de
                                                   tubos que se colocan sirven como
    material vegetal, seco o fresco, que           respiradero y para tomar la temperatura
    pueden ser leguminosas o gramíneas.
                                                   y agregar agua en caso necesario.
    Las siguientes capas se intercalan
                                                   Antes de darle vuelta a la abonera es
    siempre con una de cáscarilla de arroz.        conveniente tomar la temperatura, para
                                                   lo cual se introduce un machete, una
Nota: Después de cada capa, humedecer
                                                   varilla o una manguera durante cinco
con agua.
                                                   minutos. Al sacar el machete puede
                                                   suceder lo siguiente:
-   Sexto paso: Se cubre con nylon o
    costales cuando ya esta terminada, esto   •    Si al sacarlo está caliente y húmedo,
    con la finalidad de proteger la abonera        significa que la abonera funciona bien y
    del agua directa y evitar la salida            solo se le debe dar vuelta para airearla.
    incontrolable de gases, sin embargo hay
    que recordar que el proceso es aeróbico   •    Si al sacarlo está caliente y seco es que
    y debe haber entrada de aire. Además           la abonera se está "quemando" y es
    colocar tubos PVC o cañas de bambú, a          necesario darle vuelta y agregarle agua.
    cada 50cm para airear a los
                                              •    Si al sacarlo está frío es que la abonera
    microorganismos. El primer volteo se
                                                   tiene humedad excesiva y no funciona
    hará a los 5 días de haberse elaborado
                                                   bien y debe hacerse otra. Puede
    la abonera.
                                                   emplearse el mismo material, pero debe
                                                   verificarse    que      se   sigan    las
                                                   instrucciones correspondientes.




                                                                          11
•   Los desechos vegetales o residuos            VI.      BIBLIOGRAFIA
    orgánicos se convertirán en composta
    entre los 45 y 60 días, dependiendo de             1. Apuntes sobre Compostaje. (En
    la naturaleza de los materiales. Esto                 línea) Consultado 2 Feb 2007.
    será, cuando el producto se observe                   Disponible en:
    homogéneo,        café     oscuro        y            www.eula.cl/contenido/compostaje3
    desmenuzado. Se recomienda cernir a                   .htm
    los dos meses esta composta. El
    producto del cernido, se puede utilizar, y         2. El composataje. (En línea)
    lo que queda en el cernidor se puede                  Consultado 2 Feb 2007. Disponible
    incorporar como materia orgánica a                    en:
    otro compostero. El tiempo que demora
                                                          www.infoagro.com/abonos/composta
    el proceso en una abonera depende de
                                                          je.asp
    las condiciones (humedad, temperatura,
    aireación, materiales proveedores de               3. CONAMA-RM. Manual de
    Carbono y fuente de Nitrógeno). Si las                compostaje casero, Sitio de la
    condiciones fueron ideales estará listo               Comisión Nacional del Medio
    en 45 días.                                           Ambiente, Región Metropolitana.
                                                          (En línea) Consultado 3 Feb 2007.
                                                          Disponible en:
                                                          www.conama.cl/rm/568/article-
                                                          1092.html




Fig. 2.2 Proceso de Aireación y volteo en la
        elaboración del compost.




                                                                            12
ANEXOS

Anexo1. Microorganismos benéficos importantes en el proceso de descomposición de la
Materia Orgánica, en el suelo.




                                                                    13
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA
FACULTAD DE AGRONOMIA
AREA TECNOLOGICA
SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA
LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II
INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ


                                      PRACTICA No.3

       DETERMINACIÓN DE LA CAPACIDAD DE INTERCAMBIO
             CATIÓNICO Y DE BASES CAMBIABLES


I.     INTRODUCCIÓN



L
     os suelos son poseedores de cargas que son dadas por el origen de las rocas, siendo
     estas cargas positivas y negativas.

     Estas cargas poseen la capacidad de ser intercambiadas pudiéndose definir como la
capacidad de la suma de todos los cationes de cambio que un mineral puede adsorber a un
determinado pH. Es equivalente a la medida del total de cargas negativas del mineral,
denominado Capacidad de intercambio catiónico –CIC-.

Esta capacidad es una de las principales propiedades químicas del suelo, que también se
define como una medida de la cantidad de cationes intercambiables que un suelo puede
adsorber por unidad de peso (base seca). Esta es expresada generalmente en mili
equivalentes por 100 gr. de suelo (meq/100gr. s.) o Centimoles por kilogramo de suelo (Cmol+
/Kg. suelo).

El intercambio catiónico es un proceso reversible por medio del cual las partículas sólidas del
suelo adsorben cationes de la fase acuosa y desadsorben cantidades equivalentes de otros
cationes estableciendo un equilibrio entre ambas fases. Esto se debe a las cargas negativas
presentes en los coloides del suelo (arcilla, humus) y en la superficie radicular que adsorben
cationes por atracción electrostática. Los cationes adsorbidos se resisten a ser lavados por el
agua pero son disponibles para las plantas o pueden ser intercambiados por otros cationes
presentes en solución (por acción de masas).

La capacidad de intercambio catiónico es una propiedad del suelo que tiene mucha importancia
practica en aspectos tales como fertilidad del suelo elaboración de programas de fertilización,
modificación del pH, propiedades físicas del suelo y en la calidad del agua que se percola a
través del suelo.




                                                                             14
De los cationes que intervienen en la CIC del suelo, algunos son de reacción ácida (H+, Al+), y
otros son de reacción básica (Ca++, Mg++, Na+ y K+), los cuales son de importancia para el
manejo del suelo, por lo que hace necesario conocer las concentraciones en las que se
encuentran, para determinar si son necesarias algunas medidas correctivas.



II.    OBJETIVOS

Que el estudiante:

1. Comprenda la importancia de la CIC en el estudio de la química del suelo.

2. Comprenda y desarrolle la metodología para la obtención de cationes básicos y la
    determinación de la Capacidad de Intercambio Catiónico.

3. Interprete los valores de CIC.

4. Interprete las concentraciones de cationes básicos y la CIC en el suelo.




                                                                               15
Existencia de bordes (superficies
III.   FUNDAMENTO TEORICO                             descompensadas).

       Es el más importante, y mejor
conocido. En el suelo son varios los
materiales que pueden cambiar cationes.
Los principales cambiadores son las arcillas
y la materia orgánica (los dos materiales
presentan propiedades coloidales).




                                                      Disociación de los OH de las capas
                                                      basales.
Las causas de la capacidad de cambio
de cationes de las arcillas son:

       Sustituciones atómicas dentro de la
       red.




                                                      Enlaces de Van der Waals.

                                               En las arcillas, además de en su superficie,
                                               los iones pueden entrar entre las láminas.




                                                                         16
2. No todos los sitios de intercambio
                                                 generan la misma fuerza para adsorber
                                                 los iones.

                                              Esto va a depender de las propiedades o
                                              características    del    catión,  de    la
                                              concentración del catión en solución, de la
                                              naturaleza del anión acompañante, del tipo
                                              de coloide y del pH del suelo.

                                              3.2  VALORES PROMEDIOS DE LA
Las causas de la capacidad de cambio          CAPACIDAD DE INTERCAMBIO
de materia orgánica son:                      CATIONICO

       Disociación de los OH.                 Para los coloides del suelo mas frecuentes
       Disociación de los COOH.               se tienen los siguientes valores de
                                              Capacidad     de   intercambio    catiónico
La CIC dependerá de:                          (expresados en meq/l00 gr. de suelo):

• Tipo de coloide arcillas y humus            CUADRO 3.1 VALORES PROMEDIOS CIC

• Porcentaje de cada uno de ellos presentes
                                                 COLOIDE                       CIC
en el suelo
                                                                       (meq/100 gr.)
• pH del suelo por su efecto en generar
cargas negativas
                                                       Humus             100 – 300
Los cationes que frecuentemente ocupan
las posiciones de cambio en los suelos son:
Ca++, Mg++, K+, Na+, H+,Al+++, Fe+++,                  Alófono                > 100
Fe++, NH4,+, Mn++, Cu++ y Zn++.
                                                     Vermiculita             80 - 100


3.1   FACTORES QUE INFLUYEN EN EL                  Montmorillonita           60 – 100
INTERCAMBIO CATIONICO
                                                         Illita              25 - 40
Entre los factores que afectan la capacidad
de     intercambio    catiónico    podemos
mencionar:                                              Clorita              10 - 40

1. No todos los iones son adsorbidos por
   la misma fuerza en el complejo de                   Caolinita              3 – 15
   cambio.
                                                 Óxidos e hidróxidos           0 -3




                                                                        17
Para diferentes clases texturales se tienen
los siguientes valores de CIC (expresados
en meq/100 gr. de suelo):

CUADRO 3.2 VALORES CIC SEGÚN
TEXTURA DEL SUELO


TEXTURA                       CIC

                         (meq/100 gr.)         El exceso de iones de amonios presentes
                                               en la muestra de suelos se lava con un
       Arenoso                1 –5             disolvente libre de electrolitos para evitar la
                                               remoción de iones cambiables. Dicho
                                               solvente es el alcohol etílico exento de
   Franco arcilloso          5 –10             ácidos orgánicos. El NH4+ adsorbido en la
                                               micela se reemplaza mediante el Na+, del
Franco y franco limoso       5 -15             cloruro de sodio (NaCl) que se le agrega a
                                               la muestra.

   Franco arcilloso         15 – 30


       Arcilloso              > 30


Una CIC mayor de 30 meq/100gr. de suelo
puede ser considerada como aceptable,
valores muy bajos indica que se hace           Luego el Amoniaco presente se destila por
necesario aplicar enmiendas al suelo como      medio del método Micro-Kjendahl. Durante
por ejemplo la incorporación de materia        el destilado la solución de NH4Cl se
orgánica.                                      alcaliniza con una base fuerte que es el
                                               hidróxido de sodio (NaOH) lo que permite
3.3   PRINCIPIO DEL METODO                     el arrastre de NH3+ en el vapor de agua.
ANALÍTICO


3.3.1 DETERMINACIÓN DE CIC
                                               Debido a la solubilidad del NH4+ en un
       A una muestra de suelo se le agrega     medio ácido este es fijado en una solución
una solución tampónizada de acetato de         diluida de ácido bórico (H3BO3) que
amonio (NH4COOH3) 1N a pH 7.0, en esta         contiene un indicador.
forma las cargas negativas de las partículas
del suelo se saturan con NH4+ produciendo
el desprendimiento de los cationes
intercambiables (acción de masas).




                                                                           18
Finalmente se valora el ion borato formando    Para la determinación de las bases
en la reacción mediante titilación con ácido   cambiables en el espectrofotómetro es
sulfúrico valorado (H2SO4) determinando en     necesario hacer diluciones para que las
esa forma la cantidad de amonio que            concentraciones se encuentren dentro de la
estaba presente en las cargas negativas de     curva de trabajo del elemento. Las
las partículas del suelo.                      diluciones se hacen a partir del primer
                                               extracto obtenido (el de Acetato de Amonio
                                               que arrastro todas las bases) con agua, con
                                               esta dilución se determina la concentración
La cantidad del borato de amonio (NH4+ +       de Na+ y K+, y a partir de esta ultima con
H2BO3) formado durante el destilado del        Oxido de Lantano para la determinación de
amonio (NH3+) es retrotitulada con ácido       la concentración de Ca ++ y Mg ++.
sulfúrico (H2BO3- + H+      H3BO3); por lo
tanto el volumen del H2SO4 gastado             3.4 BASES CAMBIABLES
multiplicado por la normalidad del mismo,
                                               De las bases cambiables de mayor
nos da los meq. de NH4+ que reaccionaron
                                               importancia en su determinación para el
con H3BO3; esto es equivalente a la CIC del
                                               análisis químico del suelo podemos
suelo.
                                               mencionar al Sodio, Potasio, Calcio y
                                               Magnesio.
3.3.2 DETERMINACIÓN DE BASES
CAMBIABLES                                     El Sodio no es un elemento indispensable
                                               para el crecimiento de las plantas, la
Las bases cambiables son determinadas          importancia de su estudio es que con una
mediante     el    Espectrofotómetro    de     concentraci6n alta, produce problemas de
Absorción Atómica, el cual esta basado en      Sodicidad, las cuales dan como resultado la
los principios del átomo. Un átomo al          dispersión de las partículas del suelo,
excitarse sus electrones pasan a un orbital    destruyendo su estructura, además la capa
superior y adquiere energía de absorción y     superior del suelo es impermeabilizada
cuando regresa emite energía.                  impidiendo el ingreso de aire, y causa
                                               toxicidad en la planta. Suelos con altas
El espectrofotómetro se divide en tres
                                               concentraciones de Sodio necesitan
partes:
                                               enmiendas como la aplicación de yeso.
•   Una lámpara revestida del elemento a
                                               El potasio es un elemento esencial para el
    estudiar
                                               crecimiento de las plantas porque
•   Una fuente de energía para ionizar las     constituye los tejidos estructurales de las
    moléculas y excitar los átomos la cual     mismas, incrementa la resistencia a estrés
    eleva la temperatura a 2,100° con la
                                 C.            hídrico, regulando la apertura de estomas e
    ayuda de acetileno y aire; y               incrementando la calidad de los frutos.

•   Un Detector de las señales de emisión      El calcio forma compuestos que son parte
    originadas por un microprocesador, que     de las paredes celulares, estimula el
    muestra los resultados.                    desarrollo de raíces y hojas.




                                                                         19
El Magnesio es un elemento esencial en la                 valorado.
molécula de la clorofila, es activador de
varios sistemas enzimáticos, ayuda en el        8.       Oxido de Lantano, 0.3%.
metabolismo de los fosfatos y participa en
los procesos de respiración celular .
                                                4.2      METODOLOGIA
La saturación de bases es la proporción
expresada en porcentaje de los Cationes
                                                      1. Pesar 20 gr .de suelo secado al aire
básicos adsorbidos o intercambiados en el
                                                         (corregir peso a base seca) y
suelo en relación a la cantidad total de
                                                         tamizada a menor de 2 mm.
cationes que el suelo puede adsorber. El
                                                         Introducirlos en un tubo de
porcentaje de saturaci6n de bases (%SB)
                                                         lixiviación.
sirve de criterio para corregir un suelo
ácido, para clasificaci6n de suelos y para            2. Agregar 30 ml. de NH4COOCH3, 1,0
conocer la disponibilidad de nutrientes                  N, lavar las paredes del tubo
básicos.                                                 permitiendo el saturado de la
                                                         muestra; después de 6 a 8 horas o
V.     MATERIALES Y METODOS                              mas aplicar una segunda porción de
                                                         30 ml. de NH4COOCH3, cuando
4.1    MATERIALES                                        esta se lixivie aplicar una tercera , (
                                                         total 90 ml.) Recoger el extracto en
1.     Acetato de Amonio (NH4COOH3), IN,                 un balón aforado de 100 ml.,
a pH 7.0 (Diluir 57 ml. de ácido acético                 llevarlo a volumen de 100 ml., tapar
hasta 1000 ml. en agua, y neutralizar la                 e identificar el matraz. Esta solución
solución con NH4OH concentrado basta que                 sirve para la determinación de las
el pH sea 7.0; diluir la solución basta                  bases intercambiables por medio
completar 1,000 ml.)                                     del espectrofotómetro de absorción
                                                         atómica.
2.     Alcohol Etílico, al 95%. .
                                                      3. Agregar tres porciones de 30 ml. de
3.     Cloruro de Sodio (NaCl) 10 %,
                                                         alcohol etílico, al 95%, permitiendo
       llevarlo a un pH 2.0 (Disolver l00 gr.
                                                         que    cada      porción  se     filtre
       de NaCI, grado reactivo, libre de
                                                         completamente. Recibir el filtrado
       amoniaco, en 750 ml. de agua
                                                         en un beacker de 100 ml. Esta
       caliente, añadir 4 o 5 gotas de HCI
                                                         solución se descarta.
       concentrado y completar a volumen
       de 1,000 ml.)                                  4. Aplicar tres porciones sucesivas de
                                                         30 ml. de NaCl, al 10%, filtrando
4.     Indicador mezclado. (Disolver 0.1 gr.
                                                         completamente cada porción antes
de rojo de metilo y 0.5 gr. de verde de
                                                         de la siguiente aplicación. Recoger
bromocresol en 250 ml. de etanol.)
                                                         el filtrado en un balón aforado de
5.     Hidróxido de sodio (NaOH), 1:1.                   250 ml. y llevarlo a un volumen de
                                                         100 ml. Esta solución sirve para
6.     Ácido bórico (H3BO3), a} 3%.                      determinar la CIC.

7.     Ácido sulfúrico (H2SO4). 0.01N.




                                                                              20
4.2.1 DETERMINACION DE LA CIC                   Esta dilución sirve para determinar
                                                la concentración de Na + y K+ .
  1. Tomar una alícuota de 10 mI. del           (relación 1:5)
     filtrado obtenido de cloruro de sodio
                                             2. Ca y Mg: de la dilución de Acetato
     (NaCl). Colocarlo en un tubo del
                                                de Amonio (NH4COOH3), tomar 2
     destilador Microkjeldahl.
                                                ml. de extracto y 18 de agua
  2. Añadir 10 a 15 ml. de NaOH 1:1.            destilada, de esta mezcla extraer 1
                                                ml. añadirlo a un Erlenmeyer de 50
  3. Iniciar la destilación, usando un          ml. agregar 24 ml. de oxido de
     Erlenmeyer de 50 ml., para recoger         lantano con la ayuda de una
     el destilado, que debe contener 50         probeta. Esta dilución sirve para
     ml. de H3BO3 y 6 a 8 gotas de              determinar la concentración de Ca ++
     colorante (rojo de metilo y verde de       y Mg ++ .
     bromocresol) . Destilar durante 4
     minutos recibiendo el destilado. El     3. Llevar los dos Erlenmeyer al
     H3BO3 tomara un color verde al fijar       espectrofotómetro de absorción
     el NH4+ condensado.                        atómica y leer las concentraciones
                                                de los elementos. El resultado lo da
  4. Titular con H2SO4 0.01 N, usando           en ppm del elemento en solución,
     una bureta. El punto final de la           por lo que es necesario convertir en
     titulación será indicado por el            ppm en solución a ppm en el suelo.
     cambio de la solución a un color           Para esto se utilizan las siguientes
     rosado.                                    formulas:

  5. Determinar la CIC, mediante la
     siguiente fórmula:
                                             4. Obtención de peso equivalente




4.2.2 DETERMINACION DE BASES
CAMBIABLES

                                             5. Determinar la saturación de bases
                                                mediante la siguiente fórmula:
  1. Na y K: del extracto obtenido de
     Acetato de Amonio (NH4COOH3),
     tomar una alícuota de 2 ml. con una
     pipeta volumétrica, y añadirlo a un
     Erlenmeyer de 50 ml. .Agregar 8 ml.
     de agua destilada, al Erlenmeyer
     con una pipeta graduada de 10 ml.




                                                                   21
Nota: las bases deben estar expresadas en
meq/100gr de suelo
                                                           V.      BIBLIOGRAFIA
      6. Interpretar los resultados.

      7. Sugerencia          de    presentación     de
         resultados.                                       1. Fassbender H., Bornemisza. E. Química
                                                              de suelos con énfasis en suelos de
     CUADRO 3.3 CUADRO DE RESULTADOS                          América Latina.        1994. Instituto
                                                              interamericano de cooperación para la
No.             Dato obtenido            Res por muestra
                                                              agricultura. San José Costa Rica.

 1      Gramos de suelo secado al aire                     2. HENRIQUEZ, Manuel, PEREZ, Juana,
                                                              GASCO, José M. et al. Determinación
 2      Peso suelo base seca                                  de la capacidad de intercambio
                                                              catiónico en arena y caolín usando
 3      ml. de H2SO4 0.01 N valorado
                                                              acetato de amonio, acetato de sodio y
        usados                                                cloruro de amonio. Bioagro. [online].
                                                              ene. 2005, vol.17, no.1 [citado 17 Enero
 4      CIC (meq / 100 gr. de suelo)                          2007], p.59-62. Disponible en la World
                                                              Wide                                Web:
 5      Ppm de Na+ en solución
                                                              <http://www.scielo.org.ve/scielo.php?scr
                                                              ipt=sci_arttext&pid=S1316-
                                                              33612005000100008&lng=es&nrm=iso>
 6      Ppm de Na+ en muestra
                                                              . ISSN 1316-3361.

 7      Ppm de K+ solución                                 3. Consultas electrónicas (en línea)
                                                              consultado el 17 de enero del año 2007
 8      Ppm de K+ en muestra                                  y    disponible   en   las   siguientes
                                                              direcciones:
 9      Ppm de Ca++ en solución
                                                                http://www.drcalderonlabs.com/Metodos
                                                                /Analisis_De_Suelos/MetodosQuimicos
10      Ppm de Ca++ en muestra
                                                                Suelos.htm

11      Ppm de Mg++ en solución                                 http://www.segemar.gov.ar/P_Oferta_R
                                                                egiones/Oferta/Arcillas/Usos%20y%20e
12      Ppm de Mg++ en muestra
                                                                specificaciones/Usos%20y%20especific
                                                                aciones.htm
13      % de Saturación de Bases




                                                                                     22
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 FACULTAD DE AGRONOMIA
 AREA TECNOLOGICA
 SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA
 LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II
 INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ


                                         PRACTICA No. 4

        EVALUACIÓN DE DIFERENTES SUELOS USANDO PRUEBAS
             BIOLÓGICAS (MACETAS EN INVERNADERO)
I.       INTRODUCCIÓN




L
       a prueba biológica es una técnica que consiste en establecer pequeñas parcelas
       (macetas) de campo, en lugar de una parcela convencional, para evaluar el estado del
       suelo mediante el crecimiento vegetativo parcial de un cultivo anual en un periodo
relativamente corto.

La comparación del crecimiento vegetativo entre los diferentes tipos de suelo analizados en el
laboratorio deberán indicar a que suelo o suelos responde mejor la planta o bien cual o cuales
son sus deficiencias, por lo tanto que caso sería limitante para la planta.

Es importante recordar que se debe considerar el peso seco para poder discutir los resultados
debido a que por el contenido de humedad de la planta es afectada por diversos factores que
no permitirán estandarizar el contenido de humedad en ellas.

II.      OBJETIVOS

Que el estudiante

•     Evalué y analice el desarrollo y crecimiento de las plantas de tomate y sorgo en diferentes
      tipos de suelo.

•     Realice curvas de crecimientos de cada cultivo en los diferentes tipos de suelo.

•     Determine las variables respuesta (altura, materia seca de la raíz y parte aérea) de cada
      cultivo en los diferentes tipos de suelo.

•     Determine los requerimientos de los cultivos.



•     Conozca la metodología para el establecimiento de una prueba biológica.




                                                                                 23
9. En tres macetas, sembrar 2 pilones de
III.   MATERIALES Y METODOS                      tomate por maceta

3.1    MATERIALES                             10. A los 5 días de haber germinado el
                                                  sorgo, ralear las plántulas débiles y
1. 6 macetas de 2 – 2.5 Kg.                       dejar 6 o 7 plántulas, buscando
                                                  uniformidad en las mismas.
2. 16 Kg. de suelo seco, tamizado y
   homogenizado                               11. La cosecha se debe realizar a los 35
                                                  días de haber sembrado.
3. Semillas de sorgo
                                              IV.    VARIABLES A MEDIR
4. Pilones de tomate
                                              Altura de Planta: Se medirá cada una de
5. Urea
                                              las plantas con una regla graduada, del
6. Bolsas de papel y plástico.                cuello de la planta, hasta el ápice y se
                                              obtendrá un promedio. Las mediciones se
3.2    METODOLOGÍA                            realizarán cada ocho días (el mismo día de
                                              laboratorio).
1. Obtener 16 kilogramos (35 lb.) de suelo
                                              Materia Seca: Esta será determinada al
   de un área homogénea.
                                              final de la investigación (35 días después
2. Secar el suelo a la sombra y tamizarlo     de la germinación), la cosecha se realizará
   a 2 mm de diámetro.                        utilizando una navaja haciendo el corte de
                                              cada planta desde la base y luego se
3. Homogenizar el suelo.                      colocarán en bolsas de papel previamente
                                              identificadas para luego secarlas en un
4. Colocar 2 – 2.5 Kg. de suelo en bolsas
                                              horno de convección forzada hasta que
   plásticas estando ya este seco y
                                              alcance un peso constante, luego se
   homogenizado.
                                              pesarán en una balanza analítica y se
5. Agregar la cantidad de N de acuerdo a      expresará en gramos por planta o por
   lo establecido para cada suelo.            unidad experimental (tres macetas por
                                              cultivo).
6. Llenar     las  macetas      previamente
   identificadas con el suelo de cada bolsa   Informe Final: Con los datos obtenidos
   de     acuerdo    a    lo    previamente   procederán a realizar el informe final por
   establecidos.                              grupo, apoyándose en la estadística,
                                              graficas, fotografías, etc. Para una mejor
7. Regar el suelo de cada maceta              interpretación de los resultados se deberán
   llevándolo un porcentaje de humedad a      relacionar las características químicas del
   Capacidad de Campo.                        suelo      analizado.     Este    contendrá:
                                              introducción, objetivos, marco teórico,
8. En tres macetas, sembrar 10 semillas
                                              metodología, resultados, discusión de
   de sorgo por maceta.
                                              resultados, conclusión, recomendaciones,
                                              bibliografía (IICA), anexos.




                                                                        24
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                                            PRACTICA No. 5

      DETERMINACIÓN DE LA MATERIA ORGÁNICA Y NITRÓGENO
                           TOTAL
I.       INTRODUCCIÓN



L     a materia orgánica es una parte activa muy importante del suelo, formada por compuestos de
      origen biológico, principalmente restos de animales y vegetales que se depositan en el, la mayor
      cantidad de materia orgánica presente en el suelo procede de las raíces y partes aéreas de las
plantas, hojas, ramas y tallos.

La materia orgánica está constituida principalmente por carbono (aproximadamente 58% en peso),
hidrógeno, oxígeno, nitrógeno, azufre, fósforo, y otros elementos que conforman sustancias orgánicas
como la lignina, celulosa, proteínas, aminoácidos, aceites, ceras y taninos.

La mayoría de suelos cultivados contienen de 1 a 5% de materia orgánica (en los primeros 25 cm. del
suelo), y aun esas pequeñas cantidades, pueden modificar significativamente las propiedades físicas,
químicas y biológicas del suelo.

El nitrógeno (N) es un elemento esencial para las plantas, se le encuentra a una concentración del 1 al
6%, sin embargo con frecuencia su disponibilidad en los suelos es deficiente, por lo cual deben aplicarse
anualmente millones de toneladas de fertilizantes que lo contienen, para obtener los rendimientos
necesarios para que el cultivo sea rentable.

Debido al efecto que tiene el nitrógeno sobre la producción agrícola, el costo que representa su
aplicación es alto, sin olvidar el peligro que representa al transformarse en un potencial contaminante del
medio ambiente, si no se maneja adecuadamente. Por lo que se hace necesario saber cuanto N
tenemos en el área a cultivar y así optimizar su uso al momento de ser aplicado, evitando costos
innecesarios y disminuyendo la contaminación.

II.      OBJETIVOS

Que el estudiante:

•     Comprenda la importancia de la materia orgánica en el suelo.
•     Conozca la importancia del nitrógeno en la production Agricola.
•     Conozca la metodología para la determinación del Nitrógeno total de una muestra de suelo
•     Desarrolle la metodología para la determinación de materia orgánica en una muestra de suelo.




                                                                                       25
a) Puede constituirse en hospedero de
III.      FUNDAMENTO TEORICO                          plagas y enfermedades, si no es
                                                      manejada adecuadamente.
3.1  IMPORTANCIA DE LA MATERIA
                                                      b) Puede liberar fitotoxinas (toxinas
ORGÁNICA EN EL SUELO
                                                      que afectan a las plantas), esto
                                                      depende del material que le de origen a
   La materia orgánica afecta muchas
                                                      la misma.
propiedades del suelo, en las que se
pueden mencionar:                                     c) Puede existir alelopatia (sustancias
                                                      que no dejan crecer a otras plantas).
       1. Propiedades Químicas: mejora la
          Capacidad de Intercambio Cationico
                                                    3.2  FACTORES QUE AFECTAN LA
          (por su aporte de cargas al complejo
                                                    DESCOMPOSICIÓN DE LA MATERIA
          del suelo), mejora la capacidad
          Buffer, es fuente de nutrientes como      ORGÁNICA
          el Nitrógeno, Fósforo, Azufre,
                                                         Entre los factores que afectan la
          Molibdeno y otros elementos
                                                      descomposición de la materia orgánica
          menores; mejora la disponibilidad de
                                                      tenemos:
          Fósforo y elementos menores en un
          amplio rango de pH debido a los             a) Relación         carbono/nitrógeno:
          quelatos (Compuestos orgánicos                 mientras más alta es esta relación la
          que envuelven a los elementos                  descomposición será más lenta, se
          metálicos).                                    recomienda una relación de 10:1
                                                         como la adecuada.
       2. Propiedades Físicas: mejora la
          estructura,     dándole     estabilidad     b) Temperatura: los procesos de
          estructural al suelo, baja la densidad         descomposición de la materia
          aparente facilitando las labores que           orgánica se dan en un rango de
          se desarrollaran en el mismo,                  temperatura de 15- 40°
                                                                              C.
          mejora la retención de agua, reduce
          la erosión, permite mayor infiltración      c) Humedad:     Es   necesario  que
          de agua y tiene una acción directa             siempre se obtenga una humedad a
          sobre la temperatura del suelo.                capacidad de campo.

       3. Propiedades biológicas: fomenta             d) pH:      este    tiene    que   ser
          la actividad microbiana, provee de             medianamente           ácido      a
          energía a los microorganismos para             medianamente alcalino (5 a 8),
          su desarrollo y multiplicación.                valores fuera de este rango afectan
                                                         la actividad microbiana.
La Materia Orgánica             tiene   algunas
desventajas como:




                                                                            26
3.3  DESCOMPOSICIÓN DE LA MATERIA               menos del 2% se considera como muy bajo,
ORGÁNICA                                        del 2 al 4% es bajo, del 4 al 6% el contenido
                                                es medio, y mayor del 6% de contenido de
       La materia orgánica bruta sigue un       materia Orgánica es alto.
ciclo mediante el cual se logra la completa
mineralización, hasta la formación de           3.5    EL NITRÓGENO EN EL SUELO
humus (fracción más o menos estable de la
materia orgánica).          El humus esta       Las principales formas de nitrógeno en el
                                                suelo son:
constituido por biomoléculas y sustancias
húmicas como los ácidos húmicos y ácidos        La orgánica, formada por residuos
fúlvicos, la diferencia entre una biomolécula   vegetales y animales en diversos estados
y una sustancia humica es que esta última       de descomposición, y la inorgánica, que
carece de estructura molecular específica.      incluye principalmente a nitritos, nitratos y
El proceso de descomposición se da              amonio.
gracias al trabajo que en forma natural
efectúan bacterias, hongos, lombrices y         El N es de importancia para la planta,
otros microorganismos.           Algunos se     porque es un constituyente importante de la
desarrollan en presencia de oxígeno             clorofila, aminoácidos, proteínas, hormonas,
(aeróbicos) y otros en ausencia del mismo       ácidos nucleicos y vitaminas.
(anaerobios).

La primera fase que se da en la
descomposición de la materia orgánica es        3.6   PRINCIPIO DEL METODO
la mineralización, que es la destrucción        ANALÍTICO
mecánica o física de los compuestos
orgánicos por acción de microorganismos y        MÉTODO DE WALKLEY-BLACK PARA LA
enzimas; y la segunda fase es la
                                                   DETERMINACIÓN DE LA MATERIA
humificación, la cual es la síntesis de la
                                                           ORGÁNICA
materia orgánica.
                                                        El método se basa en la oxidación
3.4    NIVELES DE MATERIA ORGÁNICA              de la materia orgánica (M.O.) por el
EN EL SUELO                                     dicromato de potasio (K2Cr2O7) y ácido
                                                sulfúrico (H2SO4).    Se considera que
       De forma general se mencionan los        únicamente el carbono orgánico del suelo
siguientes valores de interpretación del        entra en reacción, ésta puede ser
contenido de materia orgánica en el suelo       expresada de la manera siguiente:



       2K2Cr2O7 + 8H2SO4 + 3C = 3CO2 + 8H2O + 2K2SO4 + 2Cr2 (SO4 )3



      A medida que la M.O. es oxidada el        por lo tanto, la cantidad de dicromato
dicromato es reducido, de Cr6+ a, Cr6+ -3e,     consumida en la reacción es una medida




                                                                           27
indirecta de la cantidad de carbono             conocida de un agente reductor como el
orgánico oxidado. El exceso de dicromato        sulfato ferroso FeSO4 . 7H2O.
que no es usado en la reacción es
determinado por titulación con una cantidad     Dándose la siguiente reacción:



        K2Cr2O7 + 6FeSO4.7H2O + 7H2SO4 = K2SO4 + 3Fe2(SO4)3 + Cr2(SO4)3 + 14H2O



Para la determinación de la materia              2.    El peso equivalente del carbono
orgánica en una muestra de suelo es                      oxidado es 3.
necesario tener un testigo, en la titulación
del testigo hay un agente oxidante que es el     3.    Únicamente la materia orgánica es
dicromato de potasio (K2Cr2O7 ) y un                    oxidada.
reductor que es el sulfato ferrroso
                                                 4.    Este         procedimiento     oxida
(FeSO4.7H2O); mientras que en la muestra
                                                       únicamente alrededor del 77% total
de suelo hay un segundo reductor que es el             de materia orgánica presente (es
carbono orgánico (C.O.).                               decir, eficiencia del método).
Tanto en la muestra de suelo, como en el
                                                Basados en meq. de la solución de sulfato
testigo se usan las mismas cantidades de        ferroso usado (diferencia entre la muestra y
reactivos pero como en el suelo existe un       el testigo) por gramos de suelo en base
segundo reductor que es el C.O., parte de
                                                seca, tenemos:
el es usado en la oxidación de ésta. La
cantidad extra de sulfato ferroso usada en
la titulación del testigo es una medida
indirecta de la cantidad de C.O. que ha sido
oxidada por el dicromato de potasio. Los
meq. de C.O. oxidado es igual al producto
de la normalidad del sulfato ferroso por el
volumen          extra      de        sulfato
ferroso(FeSO4.7H2O) requerido en al
titulación del testigo, comparado con el
gasto de la solución que contiene la
muestra de suelo. Para convertir el C.O. a
meq. por gramos de suelo se divide el
resultado por el peso de la muestra de
suelo en base seca.

La conversión a porcentajes de C.O. y M.O.
está basada en las suposiciones siguientes:

 1.    La materia orgánica del         suelo
         contiene 58% de carbono.




                                                                          28
1. meq. Carbono oxidado * 0.003 = gr. De C.O. oxidado

          2. meq. Carbono oxidado * 0.003 * 1.724 = gr. M.O. oxidada

          3. meq. Carbono oxidado * 0.003 * 1.724 * 1.2987 = total gr. De M.O.

          4. meq. Carbono oxidado * 0.003 * 1.724 * 1.2987 * 100 = %M.O.

                        gr. De la muestra (base seca)



% C.O. = ml de FeSO2.7H2O Testigo - FeSO4.7H2O Muestra * N FeSO4.7H2O * 0.30

                       peso de suelo (base seca)                                   0.77



% Materia orgánica = % de C.O. * 1.724

                                                   Kjendahl, como en el digerido existe un
                                                   exceso de H2SO4 y NH4HSO4 este debe
3.7   PRINCIPIO DEL MÉTODO                         alcalinizarse con una base fuerte que es el
ANALÍTICO PARA LA DETERMINACIÓN DE                 NaOH 10N lo que permite la liberación del
NITRÓGENO TOTAL EN SUELOS                          NH3+ en el vapor de agua.

         El método Kjendalh se basa en la          El NH4+ es retenido en medio ácido en una
transformación de todas las formas de              solución diluida de ácido bórico (H3BO3,
nitrógeno a forma de NH4+, por medio de la         al 2%) que contiene un indicador.
utilización de H2SO4 concentrado y una
                                                   Finalmente se valora el borato de amonio
mezcla       catalizadora   de     K2SO4,
                                                   formado en la reacción mediante titulación
CuSO4.5H2O y selenio en una proporción
                                                   con ácido sulfúrico valorado.
de100:10:1 respectivamente, en el proceso
de digestión de la muestra.

Luego el NH3+ presente en el digerido, es
destilado por medio del método Micro


                          Las reacciones que se dan en este proceso son:

1. N.Org + N. Inorg. + H2SO4     NH4HSO4



2. NH4HSO4 + H2SO4 + 4NaOH            2Na2SO4 + NH4OH + 3H2O



3. NH4OH + calor       NH3(g) + H2O(v)




                                                                             29
4. NH3 + H3BO3          NH4 + H2BO3-



5. H2BO3- + H+          H3BO3

                                                4.1.3 NITROGENO TOTAL
IV.    MATERIALES Y METODOS                     1. Mezcla de        catalizadores, K2SO4,
                                                CuSO4.5H2O y        Selenio en relación
4.1    MATERIALES                               (100:10:1).

                                                2. Ácido sulfúrico       concentrado   (grado
4.1.2 MATERIA ORGANICA
                                                industrial).
1. Dicromato de potasio (K2Cr2O7) 1N            3. Ácido bórico (H3BO3), al 2%.
2. Ácido sulfúrico (H2SO4) grado industrial     4. Indicador mezclado.
3. Ácido fosfórico concentrado al 96%           Disolver 0.1 gr. de rojo de metilo y 0.1 gr.
grado reactivo.                                 de verde de bromocresol en 250 ml. De
4. Difenilamina sulfónica, al 16%.              etanol.

Difenilamina sulfónica: Pesar 0.5 gr. De        5. Hidróxido de Sodio (NaOH), 10N.
difenilamina, se disuelven en 20 ml. de         6. Ácido sulfúrico 0.01N valorado.
agua y se le agregan 90 ml. De
concentrado de H2SO4 (grado reactivo).
Este reactivo se debe preparar en agua fría
(baño maría) usando un beacker de 400 o         4.2    METODOLOGÍA
250 ml,     es recomendable medirlo en
probeta. Este indicador se guarda en un         4.2.1 MATERIA ORGANICA
frasco ámbar protegido de la luz.
                                                1. Tamizar el suelo en un tamiz de 0.5 mm
Sulfato ferroso hidratado: (FeSO4.7H2O)
                                                (60 mesh).
1N. Pesar 278 gr. De FeSO4.7H2O grado
reactivo, disolverlos en 400 ml. De agua,       2. Pesar con balanza analítica 0.1 a 0.25 gr.
añadir 15 ml. de            H2SO4 (grado        Si son suelos orgánicos, o de 0.5 gr. a 2 gr.
concentrado), esta solución se deja enfriar y   Si son    suelos minerales, dependiendo el
se afora a 1,000 ml. Este reactivo se debe      contenido de materia orgánica. Colocar el
valorizar diariamente titulando en función      suelo en un erlenmeyer de 500 ml.
de K2Cr2O7 1N.
                                                3. Preparar el testigo con todos los
                                                reactivos y pasos menos el suelo.




                                                                            30
4. A cada erlenmeyer agregar exactamente        2. Agregar 1.1 gr. de mezcla de
10 ml. de la solución de K2Cr2O7 1N,            catalizadores y 4 ml de H2SO4 concentrado
usando una pipeta volumétrica.       Agitar     (grado reactivo) dejar reposar.
cuidadosamente el erlenmeyer          para
dispersar el suelo en la solución en forma      3. Colocar y calentar en una unidad
vigorosa por lo menos durante un minuto         digestora a temperatura de 210°   C por 2
para lograr una oxidación completa de la        horas los vapores del ácido sulfúrico deben
muestra.                                        condensarse en el tercio inferior del cuello
                                                del tubo de digestión.
5. Agregar 20 ml. de H2SO4 concentrado
(grado industrial) haciendo uso de una          4. Completada esta etapa, dejar el frasco y
probeta inmediatamente después agitar el        agregar 15 ml. de agua destilada para evitar
erlenmeyer, este paso hacerlo en la             una reacción violenta.
campana de extracción de gases.                 5. Colocar el tubo en el destilador micro
6. Dejar reposar los erlenmeyers durante 30     Kjendhal y añadir 15ml de NaOH 10 N.
minutos.                                        6. Iniciar la destilación, usando para recoger
7. Agregar 200 ml. de agua, no                  el destilado un erlenmeyer de 150 ml, que
necesariamente destilada. 10 ml. de H3PO4       debe contener 50 ml., de H3BO3 con
y de 5 a 8 gotas del indicador difenilamina     indicador.      El tubo de descarga debe
sulfónica. Después de esto la solución          quedar sumergido en la solución de H3BO3.
toma un color azul oscuro.                      destilar durante 4 minutos.         El H3BO3
                                                tomará un color verde al fijar              el
8. Titular con FeSO4.7H2O agregando el          amoniaco condensado.
reactivo gota a gota con una micro bureta.
El punto final de la titulación será indicado   7. Titular con H2SO4 0.01 N valorado,
por un cambio en el color a verde brillante.    usando una bureta. El punto final de la
Si el gasto de sulfato ferroso es mayor de      titulación será indicado por el viraje de la
8ml hay que repetir la determinación            solución a un color rosado fuerte.
usando más suelo y si el gasto es menor de      8. Calcular el % de Nitrógeno Orgánico con
2 ml. la cantidad de suelo a usarse tendrá      la siguiente fórmula:
que ser menor.
                                                % N = 14 (V) * N
9. Determine el % de carbono orgánico y el
% de materia orgánica.                                   10 P

4.2.2 DETERMINACION DE NITRÓGENO                Donde:

TOTAL                                           V: Volumen Acido sulfúrico empleado en titular la
                                                muestra
1. Pesar 0.25 gr. de suelo tamizado con un
                                                N: Normalidad exacta del H2SO4
tamiz de 0.5mm (60 mesh), y colocarlo en
el tubo del destilador micro Kjeldhal seco.     P: Peso de la muestra en base seca.

                                                9. Calcular la relación Carbono/Nitrógeno.

                                                10. Interpretar los resultados.




                                                                                 31
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA
 FACULTAD DE AGRONOMIA
 AREA TECNOLOGICA
 SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA
 LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II
 INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ



                                         PRACTICA No. 6

                               REACCIÓN DEL SUELO (PH)


I.       INTRODUCCION




D
        entro de las características químicas del suelo, el pH determina la acidez o alcalinidad
        de un suelo, este parámetro es útil para definir el tipo de cultivo que sea adaptable a las
        condiciones donde se requiera establecerlo, además define la disponibilidad de
nutrientes en el suelo. La mayoría de suelos con buen desarrollo se encuentra en un pH de 5.5
a 6.5.

Es importante mencionar que los suelos extremos, es decir muy ácidos o muy básicos pueden
causar daños a los cultivos, como ejemplo en suelos muy ácidos existe insolubilidad de
elementos como el fósforo y calcio, también existe disminución de la actividad microbiana.

En el caso de suelos muy básicos se escasean varios nutrientes: Hierro, Manganeso, Zinc,
Cobre y Boro, esenciales para toda planta.

Para los suelos de Guatemala el rango de distribución de pH va de 4 a 8, por lo tanto estos
valores se utilizan para calibrar el potenciómetro.

Para medir el pH del suelo existen dos métodos ampliamente difundidos que son el método
analítico por medio del potenciómetro y el colorímetro o de campo, ambos de mucha utilidad.

II.      OBJETIVOS

Que el estudiante:

•     Conozca los factores que afectan el pH y la importancia de este en el suelo.

•     Practique la metodología para determinar el pH.

•     Interprete los resultados del pH del suelo.




                                                                                 32
Por lo tanto a partir de las definiciones de
III.    FUNDAMENTO TEORICO                       pH y pOH, se obtiene:

3.1     LA REACCIÓN DEL SUELO                                  pH + pOH = 14

                                                 Por lo que el logaritmo negativo de H+ es 7,
La reacción del suelo (pH) es una                o pH 7. Cuando la concentración de H+ es
indicación de la acidez o alcalinidad del        mayor (más ácido), tal como 10-4 moles por
suelo y es medida en unidades de pH. La          litro, el pH es 4, y a menor concentración de
escala va de 0 a 14 siendo un pH 7 el punto      H+, el pH es mayor (básico)
neutro. El pH de una disolución se define
como el logaritmo negativo de la                 3.2    IMPORTANCIA DEL PH DEL SUELO
concentración del ión hidrógeno H+ (en
mol/Litro).                                      Un suelo ácido, (pH menores de 6.5)
                                                 provoca una toxicidad de H, Fe y Mn; muy
                 pH= -log [H+]
                                                 ácidos (pH menores de 5.5) toxicidad de Al
                                                 para las plantas, mientras que para un
                                                 suelo básico (pH mayores de 7.5), se
El logaritmo negativo proporciona un             pueden tener problemas con la succión del
número positivo para el pH, el cuál de otra      agua por las raíces de la planta y toxicidad
manera, sería negativo debido al pequeño         de Na
valor de [H+]. El pH de una disolución es
una cantidad adimensional.                       Suelos fuertemente ácidos (pH 4-5)
                                                 generalmente tienen altas y tóxicas
Con el logaritmo negativo de la                  concentraciones de aluminio y manganeso.
concentración de iones hidróxido de una          Además afecta la disponibilidad de
disolución se puede obtener una escala de        nutrientes por ejemplo el P se vuelve
pOH, análoga a la del pH. Así pOH se             insoluble al formar compuestos con el Fe y
define como:                                     Al, los cuales son precipitados. Además hay
                                                 una deficiencia de Ca++, Mg++ y K+. Algunas
               pOH = -log [OH-]
                                                 plantas como Azaleas, té, rododendros,
Entonces al considerar la constante del          piña, arándanos y algunas especies
producto iónico del agua tenemos:                coníferas madereras toleran una acidez
                                                 fuerte y crecen bien. En comparación, la
                                                 alfalfa, frijoles, cebada y remolacha
                                                 azucarera solamente crecen bien en suelos
                [H+][OH-] = Kw =1.0 x 10-14
                                                 ligeramente ácidos a moderadamente
Al tomar el logaritmo negativo en ambos          alcalinos por su alta demanda de calcio o
lados, se obtiene:                               inhabilidad para tolerar aluminio soluble.

- (log [H+] + log [OH-]) = - log (1.0 x 10-14)   El pH influye en la actividad de los
                                                 microorganismos benéficos, ya que la
-log [H+] - log [OH-] = 14                       mayoría de bacterias fijadoras de nitrógeno
                                                 y descomponedoras de materia orgánica no
                                                 son muy activas en suelos fuertemente




                                                                            33
ácidos por lo       que   el   proceso    es    pH del suelo es más bajo en soluciones
obstaculizado.                                  salinas que en soluciones acuosas, esto se
                                                debe a que a medida que la concentración
Los suelos altos en calcio (áreas de baja       de sales se incrementa el H y Al son
pluviosidad) tienen pH con valores de 8.5,      desplazados a sus sitios de intercambio por
suelos con pH mayores de 10 se dan              las sales. Las sales pueden provenir de
cuando presentan alto sodio intercambiable.     fertilizantes, del agua de riego o de la
Las plantas en suelos con pH mayores de 9       descomposición de la materia orgánica.
usualmente tienen crecimiento reducido e
inclusive mueren.                               La relación suelo: agua en que se efectúa la
                                                medida del pH influye también en el valor
El mayor efecto de un pH alcalino es reducir    numérico de este. Las relaciones más
la solubilidad de todos los micronutrientes     comunes suelo: agua son 1:1, 1:2 y 1:5.
(excepto molibdeno), especialmente hierro,
zinc y manganeso. También el fosfato esta       Otro factor conocido como error de
algunas veces disponible para algunas           potencial en la unión líquido-sólido común a
plantas por su precipitación en la solución     todos los sistemas coloidales, se da cuando
del suelo por calcio o precipitación en         los electrodos se colocan en el fondo del
carbonatos de calcio sólido.                    sedimento de la suspensión de suelo,
                                                donde se obtienen generalmente un pH
La deficiencia de hierro, asociada con          inferior al obtenido en la solución
suelos arcillosos húmedos altos en              supernadante. Sin embargo el pH del
carbonatos, ha sido ampliamente conocida        sedimento puede ser mayor que el del
y referida como clorosis de hierro de caliza    supernadante en ciertos suelos.
inducida. Como el zinc, hierro, manganeso
y cobre tienen baja solubilidad a pH alto, la   Estas diferencias, se han explicado como
adición de fósforo generalmente disminuye       un efecto de la mayor concentración de
más la disponibilidad de aquellos metales a     iones H+ cerca de la partícula de suelo que
la superficie de la raíz o justamente dentro    a alguna distancia de ella. Este efecto es
de ella, precipitándolos como fosfatos          máximo      en    suelos    con     grandes
insolubles.    La mayoría de los problemas      capacidades de cambio, débiles enlaces de
causados por un ph alto se resuelven            los cationes cambiables y bajo contenido de
añadiendo fertilizantes especiales como         sales solubles.
quelatos solubles en agua, los cuales son
estables pero complejos solubles de metal.      3.4   PRINCIPIO DEL MÉTODO
                                                ANALÍTICO
3.3   FACTORES QUE AFECTAN AL PH
DEL SUELO                                       El pH o acidez activa del suelo se puede
                                                determinar por dos métodos, el del
Las sales del suelo incrementan la hidrólisis   potenciómetro que es el más usado en el
de Al y Fe, desplazando iones H de los          laboratorio y el más exacto, y el
coloides del suelo, provocando una              colorimétrico que es más usado en campo
disminución en el pH. El principal efecto de    pero no es tan exacto.
la concentración de sales sobre el pH del
suelo se debe al intercambio catiónico. El      El potenciómetro consta de un electrodo de
                                                vidrio para la medida de H+ desarrollándose




                                                                          34
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  • 1. 2009 Edafología II Manual de prácticas de laboratorio Universidad de San Carlos de Guatemala Facultad de Agronomía ING. AGR. CESAR MARTINEZ 1
  • 2. Edafología II 2009 El suelo, como recurso importante en la dinámica nutricional vegetal, forma parte del sistema de producción de cultivos agrícolas, aunado a esto la capacidad que tenga el mismo de suministrar los nutrientes esenciales para el crecimiento y desarrollo de las plantas constituyen una de las bases para el éxito agronómico. Manual de Este manual recopila, describe y somete a evaluación las principales prácticas de propiedades químicas del suelo, con el objeto de promover el estudio e interés por parte de estudiantes del área agronómica, contribuyendo así al desarrollo de la capacidad para analizar e interpretar las distintas laboratorio reacciones que ocurren en un suelo. 2
  • 3. Í NDICE Contenido Pg. PACTICA No. 1.......................................................................................................................................... 3 Muestreo de Suelos ........................................................................................................ 4 PRACTICA No. 2 ......................................................................................................................................... 6 Elaboración de aboneras................................................................................................ 6 PRACTICA No. 3 ....................................................................................................................................... 14 Determinación de la Capacidad de Intercambio Catiónico y …………………de Bases Cambiables ..................................................................................................... 14 PRACTICA No. 4 ....................................................................................................................................... 23 Evaluación de diferentes suelos usando pruebas Biológicas (macetas en ………………...invernadero) ..................................................................................................................... 23 PRACTICA No. 5 ....................................................................................................................................... 25 Determinación de la materia orgánica y nitrógeno total ............................................. 25 PRACTICA No. 6 ....................................................................................................................................... 32 Reacción del suelo (pH) .................................................................................................. 32 PRACTICA No. 7 ....................................................................................................................................... 37 Conductividad eléctrica (salinidad y sodicidad) ........................................................... 37 Evaluación ................................................................................................................................................. 42 Facultad de Agronomía Subarea de Manejo de Suelo y Agua -FAUSAC- 2009 3
  • 4. UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA FACULTAD DE AGRONOMIA AREA TECNOLOGICA SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ PRACTICA No. 1 MUESTREO DE SUELOS I. INTRODUCCION P ara poder diagnosticar el estado de un suelo es necesario realizar un muestreo de este. El muestreo consiste en la técnica de obtener porciones de suelo de un área homogénea, para analizar sus características físicas y/o químicas. Los muestreos se realizan con diferentes fines ya sean de fertilidad o de capacidad de uso de la tierra entre otros. Para obtener resultados confiables de características físicas o químicas de un suelo es importante realizar un adecuado muestreo, principalmente porque cuando se muestrea, el volumen que se utiliza equivale aproximadamente al 0,0000005 % del peso medio de 1 ha (0- 20 cm), por lo tanto estas muestras deben ser representativas. Es importante mencionar que deben tomarse las mayores precauciones para la obtención de muestras para no contaminar las mismas, también es importante identificar las muestras. II. OBJETIVOS Que el estudiante • Conozca los principios del muestreo de suelos. • Aplique las condiciones adecuadas al manejo de muestras tanto en el campo como en el laboratorio. • Por medio de la aplicación practica del muestreo le de prioridad a esta técnica. 4
  • 5. III. FUNDAMENTO TEORICO muestras con fines de riego, toma de muestras con problemas específicos (salinidad, toxicidad, etc.). El muestro es el primer paso de una análisis químico de suelo, y el más critico, 3.2 TOMA DE MUESTRAS CON FINES ya que se constituye en la fuente de error DE FERTILIDAD DE SUELOS más común (Petersen and Calvin, 1986). Ya en los albores de esta práctica, Cline El objetivo principal del análisis químico de (1944) expresó que el límite de exactitud una muestra de suelo, es determinar la está dado por el muestreo y no por el capacidad de éste para suministrar los análisis. Esto sucede porque a través de nutrientes esenciales en las cantidades pocas muestras (generalmente no más de 1 adecuadas para todo el ciclo del cultivo. kg de suelo) se pretende representar la Para que los resultados de los análisis disponibilidad de nutrientes de miles de químicos de suelos sean eficientes en la toneladas de suelo. Tanto es así que 1 kg solución de problemas nutricionales, éstos de suelo significa el 0,0000005 % del peso deber ser complementarios con una medio de 1 ha (0-20 cm). Adicionalmente, información sobre las características físicas Si tomamos en cuenta que dentro de la y químicas del suelo y un amplio historial superficie que queremos representar existe sobre los cultivos anteriores, se pueden una gran variabilidad, la dificultad para seguir los siguientes parámetros: realizar un buen muestreo es aún mayor. La • Caracterización del paisaje: Se variabilidad se ve incrementada cuando un requiere de una detallada descripción campo ingresa en un sistema de siembra del paisaje correspondiente al área de directa continua, por la acción residual de muestreo. Esto es importante para las líneas de fertilización, la acumulación de relacionar las características residuos, aplicación de fertilizantes en la ambientales con los resultados superficie del suelo y el reciclado de analíticos y de allí orientar medidas de nutrientes hacia estratos superiores del manejo del suelo. suelo (Anghinoni et, al., 2003). • Toma de muestras suficientes, en cantidad y calidad: Tanto la calidad 3.1 FINALIDAD DEL MUESTREO DE como la cantidad de muestras son SUELOS fundamentales para obtener datos analíticos de características y propiedades químicas y físicas del El muestreo de suelos es muy suelo, que sirvan de apoyo al importante, ya que nos genera información diagnóstico. analítica para manejarlo como tal. En la actualidad se realizan muestreos de suelos • Objetivos del análisis: Se realizan con diferentes finalidades, los más análisis químico-nutritivos del suelo importantes son: Muestreo con fines de para evaluar el régimen de elementos clasificación de suelos, toma de muestras nutritivos. Los análisis físicos del suelo con fines de fertilidad de suelos, toma de permiten evaluar otros factores de la 1
  • 6. fertilidad del suelo como los regímenes • Número de submuestras: Dependerá de aire y agua. Los datos de laboratorio del tamaño del área de muestreo y de la y otra información adicional permiten intensidad de uso, el mínimo puede ser orientar medidas de manejo del suelo entre 15 – 20 submuestras por parcela y/o silviculturales. de muestreo. • Época de Muestreo: En suelos no 3.4 MANEJO DE MUESTRAS PREVIO AL sembrados anteriormente, el muestreo LABORATORIO se puede realizar dos o tres meses antes de la siembra; en cultivos de ciclo • Secado: Las muestras que se piensen corto dos meses antes, y en cultivos almacenar durante algún tiempo antes permanentes, anualmente, dos meses de concluir los análisis, se deben secar antes de la fertilización. previamente para evitar cambios químicos que se puedan producir al • El análisis de suelos será tan bueno almacenarlas húmedas. Los valores que como la calidad de las muestras pueden sufrir cambios durante el tomadas, pues la muestra enviada al desecado son los que corresponden a laboratorio, de 0,5 a 1,0 kg, representa pH, P, N, K, Mn, Cu y Zn disponibles. millones de kilogramos de suelo. Por este motivo, una torna de muestra • Para el secado, las muestras se cuidadosa asegura unos resultados de extienden en una superficie plana sobre análisis correctos y de gran utilidad. bandejas o papel limpio, en un lugar bien ventilado, se debe evitar el secado • Frecuencia de muestreo: Cultivos brusco utilizando altas temperaturas. anuales en rotación o un solo cultivo con período de barbecho, cada tres • Molido y tamizado: Ya sea que se años. Cultivos intensivos con utilicen con la humedad del campo o aplicaciones regulares de abonos secadas al aire, las muestras se pueden químicos y orgánicos (hortalizas), cada pasar por un tamiz de 2 mm; las dos años. partículas de grava, rocas, raíces u otras impurezas se deben eliminar, los 3.3 FACTORES A CONSIDERAR EN EL agregados del suelo o terrones que no MUESTREO DE SUELOS pasen por el tamiz, deben molerse con rodillos de madera o con morteros y • Tamaño de la unidad de muestreo: El luego tamizarse nuevamente, hasta que tamaño dependerá de la variabilidad del pase toda la muestra. terreno y de la intensidad y tipo de uso de la parcela. En áreas muy uniformes, • Homogenización: Se debe con el mismo uso agrícola y vegetación, homogenizar mezclando el lote puede estar representado por 10 constantemente, por medio de una ha. En áreas de uso muy intensivo con homogenizadora. fuertes aplicaciones de fertilizantes, abonos orgánicos y con riego (hortalizas • Partición: Cuando la muestra es y frutales) el lote no debe ser mayor de grande, se debe partir o cuartear para dos hectáreas. obtener las porciones de la muestra 2
  • 7. necesarias. Para esto, el suelo se superficial del suelo (Horizonte Ap o Al). amontona y se va repartiendo en partes Luego tomar submuestras del subsuelo iguales. para cada horizonte del perfil hasta un metro de profundidad aproximadamente, 3.5 PRECAUCIONES AL TOMAR según el espesor de cada horizonte. MUESTRAS PARA ANÁLISIS DE SUELOS Los depósitos de sales (costras) que • Evitar muestrear suelos muy mojados. aparecen en la superficie de suelos salinos sódicos, deben muestrearse por aparte. Un • Use bolsas plásticas nuevas y limpias, no horizonte alterado por efectos de la acidez de papel. igualmente debe muestrearse separadamente. • No fumar durante la recolección de muestras, para evitar contaminarlas con las Es recomendable tomar una o varias cenizas del cigarro, ricas en potasio. muestras de perfiles adyacentes normales, con el propósito de determinar en el análisis • No tomar muestras en áreas recién las propiedades del suelo que sean fertilizadas, sitios próximos a viviendas, responsables de los problemas. galpones, corrales, cercas, caminos, lugares pantanosos o erosionados, áreas quemadas, lugares donde se amontonan estiércol, fertilizantes, cal u otras sustancias IV. MATERIALES Y METODOS que pueden contaminar la muestra. 4.1 MATERIALES 3.6 TOMA DE MUESTRAS EN SUELOS PROBLEMA Las áreas de terreno con problemas - Barreno o pala - Balde o cubeta específicos conducen a un muestreo de - Bolsas de plástico suelos con fines de diagnosis. Como - Machete ejemplo de suelos problema podemos - Etiquetas mencionar: suelos ácidos, salinos, sódicos, - Lapiz graso de color oscuro. salino-sódicos, rocosos compactados e impermeables. Se pueden tomar de 15 a 30 submuestras a distancias, de dos o más metros entre si, en cada área representativa. Esta primera muestra debe corresponder a la capa 3
  • 8. 4.2 METODOLOGIA 3. FRECUENCIA DE MUESTREO Principalmente se encuentra en 1. DELIMITACIÓN DE LAS ÁREAS función de los recursos con que se cuenta, principalmente del recurso Recorrer la finca y hacer un plano o económico. croquis sencillo de las superficies más o menos homogéneas, en cuanto al tipo - Para cultivos intensivos se de suelo, color, relieve, textura, recomienda: antes de cada siembra. densidad, drenaje, pedregosidad, cultivos o vegetación, apariencia física y - Para cultivos perennes: se clase de manejo recibido anteriormente, recomienda después de la cosecha, donde ubique los detalles más cada 3 o 4 años. También se toma en importantes de la finca como lo son cuenta la zona de goteo es decir el partes altas o bajas, planas o diámetro de copa o sombra de estos. inclinadas, coloración del suelo, si es arenoso o pesado, vegetación alta, 4. RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA media o baja, riesgo de inundación, áreas que no se han trabajado ni Para la toma de muestras se debe fertilizado, y áreas trabajadas y limpiar la superficie del terreno y con fertilizadas. En todo caso se debe tomar ayuda de la pala o el barreno, tomar de forma separada, muestras de áreas una muestra homogénea siempre a la que producen diferente. misma profundidad, si se colecta con la pala se cortan los extremos con el machete y se deposita en el balde. }Las 2. DEFINIR EL TIPO DE MUESTREO submuestras deben ser tomadas entre Se define principalmente para 20 y 30 cm de profundidad, obtener representatividad del área, a dependiendo de la longitud de raíces manera de cubrir los puntos específicos del cultivo que se quiera sembrar o que de interés. Puede se zigzag, en esta sembrado ya. Luego de tener todas cuadricula, diagonales o al azar. las submuestras en el balde (de 15 a 20 por ha) se mezclan homogéneamente y se toma 1 kg aproximadamente. Esta es la muestra compuesta requerida para el análisis. Cuadricula Zig-zag Diagonales La muestra compuesta es constituida por muestras simples o submuestras. El numero adecuado de submuestras por una ha. es de 25. Si las áreas son homogéneas pueden tomarse de 15 – 25 submuestras por 4 a 6 ha. 4
  • 9. 5. IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA Muestreo de Suelos. Disponible en línea Para identificar la muestra se debe www.inta.gov.ar/cerroazul/actividad/mue colocar: el nombre del propietario, streo_suelos.htm#Tabladecontenido nombre de la finca, ubicación geográfica, número de muestra y 3. GERDING, V.; SCHLATTER, J.E. parcela, superficie que representa y 1996. MUESTREO DE SUELOS algunas informaciones complementarias PARA EVALUAR SU FERTILIDAD, como lo son: pendiente del terreno, CON ÉNFASIS EN EL RÉGIMEN DE riesgo de inundación, color del suelo, ELEMENTOS NUTRITIVOS. Valdivia, tipo de vegetación, cultivo anterior, UACH, Instituto de Silvicultura. 6 p. rendimiento obtenido, disponibilidad de residuos, tipo de fertilizante usado, si 4. GREZ, R.; PIEL, A.; AÑAZCO, R. encaló y forma y época de aplicación. 1993. LOS ANÁLISIS QUÍMICOS EN LOS ESTUDIOS DE SUELOS Aunque los datos básicos son: fecha de FORESTALES. IN: Suelos Forestales, recolección, profundidad, nomenclatura Boletín de la Sociedad Chilena de la propia, procedencia. Ciencia del Suelo 10: 190-195. NOTA: La toma de muestras de suelo para establecer correlación del suelo con una 5. SCHLATTER, J.E.; GREZ, R.; sola planta se limita a la toma de 3 a 5 GERDING, V. 1989. EL ANÁLISIS submuestras alrededor del tronco de la FOLIAR Y EL ANÁLISIS DE SUELOS, planta a una distancia de 30 a 60 cm. del MÉTODOS DE DIAGNÓSTICO EN EL tronco, según el tipo de la planta. Esto SECTOR FORESTAL. Santiago, representa la unidad de muestreo mínima CONAF. 8 p. (Chile Forestal, para una planta aislada, pero si se juntan Documento Técnico, 36) 15 a 30 muestras, automáticamente sé esta tomando muestra compuesta. Este muestreo se realiza para el caso de cítricos, aguacates, cafetales, etc. V. BIBLIOGRAFIA 1. BUCARO CARLOS. Muestreo de suelos. Criterios básicos. Laboratorio de Suelos -CIEFAP- UNPSJB. Patagonia Forestal - Año X No. 1- Abril 2004. 4 p. 2. D. SOSA ALBERTO. Instituto nacional de tecnología agropecuaria, Estación Experimental Agropecuaria Cerro Azul. 5
  • 10. UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA FACULTAD DE AGRONOMIA AREA TECNOLOGICA SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ PRACTICA No.2 ELABORACIÓN DE ABONERAS I. INTRODUCCION L a agricultura es una ciencia que ha evolucionado a través del tiempo, obteniendo como respuesta la degradación del suelo, por el uso acelerado que se le ha dado a este. Por esta razón en estos tiempos para que un cultivo sea exitoso es necesario aplicar fertilizantes químicos para cubrir las necesidades nutricionales de los mismos. Sin embargo tomando en cuenta al porcentaje de población que se dedica a la agricultura en Guatemala, podemos observar que en su mayoría, el acceso a fertilizantes químicos es limitado. Una solución a este problema es el uso de abonos orgánicos, recuperando así algunos servicios ecológicos tales como el reciclaje de nutrientes el cuál se realiza con la descomposición de la materia vegetal y animal por medio de microorganismos benéficos presentes en el suelo. Por lo anteriormente descrito los abonos orgánicos, no solo ayudan económicamente a la población, sino también trae consigo otros beneficios de tipo ecológico como la incorporación de nutrientes en el suelo, así también la mejora de características físicas, químicas y biológicas del suelo. II. OBJETIVOS Que el estudiante: • Conozca los materiales adecuados para la elaboración de aboneras, sus cualidades y características. • Aprenda la metodología empleada en la elaboración de aboneras tipo compost. • Lleve a cabo el cuidado y manejo de aboneras tipo compost. • Conozca el papel que juega la relación Carbono-Nitrógeno, en el proceso de degradación de los materiales empleados. 6
  • 11. Mejora la actividad biológica del suelo: III. FUNDAMENTO TEORICO Actúa como soporte y alimento de los microorganismos ya que viven a 3.1 COMPOSTAJE expensas del humus y contribuyen a su mineralización. El compostaje o “composting” es el • La población microbiana es un indicador proceso biológico aeróbico, mediante el de la fertilidad del suelo. cual los microorganismos actúan sobre la materia rápidamente biodegradable (restos de cosecha, excrementos de animales y 3.3 FACTORES QUE CONDICIONAN EL residuos urbanos), permitiendo obtener PROCESO DE COMPOSTAJE "compost", abono excelente para la agricultura. Para que los microorganismos Otra definición del compost o mantillo es: el puedan vivir y desarrollar la actividad resultado de un proceso de humificación de descomponedora se necesitan unas la materia orgánica, bajo condiciones condiciones óptimas de temperatura, controladas y en ausencia de suelo. El humedad y oxigenación. compost es un nutriente para el suelo que Son muchos y muy complejos los factores mejora la estructura y ayuda a reducir la que intervienen en el proceso biológico del erosión y ayuda a la absorción de agua y compostaje, a demás influenciados por las nutrientes por parte de las plantas. condiciones ambientales, tipo de residuo a tratar y el tipo de técnica de compostaje empleada. Los factores más importantes 3.2 PROPIEDADES DEL COMPOST son: • Mejora las propiedades físicas del suelo: • Temperatura. Se consideran óptimas La materia orgánica favorece la las temperaturas del intervalo 35-55 ºC estabilidad de la estructura de los para conseguir la eliminación de agregados del suelo agrícola, reduce la patógenos, parásitos y semillas de densidad aparente, aumenta la malas hierbas. A temperaturas muy porosidad y permeabilidad, y aumenta altas, muchos microorganismos su capacidad de retención de agua en el interesantes para el proceso mueren y suelo. Se obtienen suelos más otros no actúan al estar esporados. esponjosos y con mayor retención de • Humedad. En el proceso de compostaje agua. es importante que la humedad alcance • Mejora las propiedades químicas: unos niveles óptimos del 40-60 %. Si el Aumenta el contenido en contenido en humedad es mayor, el macronutrientes N, P, K, y agua ocupará todos los poros y por lo micronutrientes, la capacidad de tanto el proceso se volvería anaeróbico, intercambio catiónico (C.I.C.) y es fuente es decir se produciría una putrefacción y almacén de nutrientes para los de la materia orgánica. Si la humedad cultivos. es excesivamente baja se disminuye la actividad de los microorganismos y el 7
  • 12. proceso es más lento. El contenido de pobres en carbono y ricos en nitrógeno humedad dependerá de las materias son los vegetales jóvenes, las primas empleadas. Para materiales deyecciones animales y los residuos de fibrosos o residuos forestales gruesos la matadero. humedad máxima permisible es del 75- • Población microbiana. El compostaje 85 % mientras que para material vegetal es un proceso aeróbico de fresco, ésta oscila entre 50-60%. descomposición de la materia orgánica, llevado a cabo por una amplia gama de • pH. Influye en el proceso debido a que poblaciones de bacterias, hongos y los hongos toleran un margen de pH actinomicetes. entre 5-8, mientras que las bacterias tienen menor capacidad de tolerancia ( pH= 6-7,5 ). • Oxígeno. El compostaje es un proceso aeróbico, por lo que la presencia de oxígeno es esencial. La concentración de oxígeno dependerá del tipo de material, textura, humedad, frecuencia de volteo y de la presencia o ausencia de aireación forzada. • Relación C/N equilibrada. El carbono y Fig. 2.1 Ingresos y egresos en el proceso de el nitrógeno son los dos constituyentes Compostaje básicos de la materia orgánica. Por ello para obtener un compost de buena calidad es importante que exista una 3.4 LAS MATERIAS PRIMAS DEL relación equilibrada entre ambos COMPOST elementos. Teóricamente una relación C/N de 25-35 es la adecuada, pero esta Para la elaboración del compost se variará en función de las materias puede emplear cualquier materia orgánica, primas que conforman el compost. Si la con la condición de que no se encuentre relación C/N es muy elevada, disminuye contaminada. Generalmente estas materias la actividad biológica. Una relación C/N primas proceden de: muy baja no afecta al proceso de compostaje, perdiendo el exceso de • Restos de cosechas. Los restos nitrógeno en forma de amoniaco. Es vegetales jóvenes como hojas, frutos, importante realizar una mezcla tubérculos, etc son ricos en nitrógeno y adecuada de los distintos residuos con pobres en carbono. Los restos vegetales diferentes relaciones C/N para obtener más adultos como troncos, ramas, un compost equilibrado. Los materiales tallos, etc son menos ricos en nitrógeno. orgánicos ricos en carbono y pobres en • Abonos verdes, siegas de césped, nitrógeno son la paja, el heno seco, las malas hierbas, etc. hojas, las ramas, la turba y el serrín. Los 8
  • 13. Las ramas de poda de los frutales. Es • Algas. También pueden emplearse preciso triturarlas antes de su numerosas especies de algas marinas, incorporación al compost, ya que con ricas en agentes antibacterianos y trozos grandes el tiempo de antifúngicos y fertilizantes para la descomposición se alarga. fabricación de compost. • Hojas. Pueden tardar de 6 meses a dos • Los períodos de descomposición son años en descomponerse, por lo que se promedios, bajo condiciones de recomienda mezclarlas en pequeñas temperatura ambiente entre 22 y 30 cantidades con otros materiales. grados centígrados y humedad suficiente para posibilitar el crecimiento • Restos urbanos. Se refiere a todos microbiano. aquellos restos orgánicos procedentes de las cocinas como pueden ser restos de fruta y hortalizas, restos de animales de mataderos, etc. • Estiércol animal. Destaca el estiércol de vaca, aunque otros de gran interés son la gallinaza, conejina o sirle, estiércol de caballo, de oveja y los purines. CUADRO 2.1. VELOCIDADES DE DESCOMPOSICIÓN DE VARIOS TIPOS DE MATERIA ORGÁNICA Tipo de material Relación C/N Vel. de descomposición Rastrojo de sorgo Alta (entre 30 y 100) Lenta (Entre 90 y 100 días) Granza de arroz Muy alta (superior a 100) Muy lenta (más de 180 días) Aserrín de madera Muy alta (superior a 100) Muy lenta (más de 180 días) Vaina de frijol Baja (inferior a 30) Rápida (menos de 60 días) Pulpa de café Baja (inferior a 30) Rápida (menos de 60 días) Estiércol de ganado Baja (inferior a 30) Rápida (menos de 60 días) Excreta de gallina Baja (inferior a 30) Rápida (menos de 60 días) Rastrojo de maíz Alta (entre 30 y 100) Lenta (entre 90 y 100 días) 9
  • 14. CUADRO2.2 RELACIÓN CARBONO / NITRÓGENO DE ALGUNOS MATERIALES PARA COMPOST Material Relación C/N Pasto seco 80:1 Heno de legumbres 12-24:1 Paja 75-150:1 Estiércol vacuno 15-25:1 mezclado Estiércol equino con 20-30:1 paja Estiércol ovino 15-20:1 Algas marinas 19:1 Materia fecal humana 5-10:1 Cañas de maíz 60:1 Residuos vegetales 12:1 Estiércol de aves 10-15:1 Orina 0,9:1 Hojas secas 20-60:1 Desechos alimentarios 15-20:1 de la materia orgánica todavía en IV. MATERIALES Y METODOS proceso, 8. Palas para voltear la materia orgánica, 4.1 MATERIALES: 9. Un machete para despedazar el material vegetal en trozos de 5 a 10 cm. de largo. Con esto se logra que penetre 1. Residuos orgánicos (Pulpa de café y fácilmente la humedad y favorezca el Residuos de cosecha) crecimiento de microorganismos, y la 2. Material Vegetal (gramíneas y materia se descomponga fácilmente, leguminosas) 3. Suelo orgánico (suelo común), 10. Deben buscarse tubos o postes de 4. Dos contenedores a los cuales bambú u otro material adecuado para llamaremos composteros, hacer respiraderos al centro de la 5. Cascarilla de arroz que absorbe el abonera, los cuales deben quedar a exceso de humedad, medio metro de dist. entre uno y otro, 6. Estiércol como fuente de Nitrógeno 7. Cernidor con malla alámbrica adecuada, 11. Una cubeta o regadera para agregar que servirá para separar el producto ya agua en cada capa. biodegradado (que será la composta), 10
  • 15. 4.2 METODOLOGÍA V. MANEJO - Primer paso: se cúbica el compostero tomando en cuenta el alto, ancho y a. Manejo: Aunque no haya desechos largo de este y se pesan los materiales vegetales que agregar, la abonera debe a utilizar. airearse cada 8 días procurando que se realice el mismo día, para permitir la - Segundo paso: Se coloca en el fondo liberación de los gases producto de la del compostero una capa de cascarilla descomposición, y para proporcionar de arroz. Este ayuda a la aireación y oxígeno al sistema. Se airea, vaciando absorbe el exceso de humedad. el contenido al otro contenedor, revolviendo con la pala y si está muy - Tercer paso: Se coloca una capa de seco el material se rocía con un poco de suelo orgánico, u originario de un agua, sólo para mantener la humedad. bosque (que contenga alta cantidad de Al hacer esto se colocan nuevamente microorganismos). los tubos o postes y se cubre la abonera, tratando de no permitir el paso - Cuarto paso: Se coloca una capa de de agua si acaso lloviera. estiércol, está como portadora de b. Temperatura y riego: Si se presenta microorganismos y fuente de Nitrógeno. mal olor, agregar cal, (en el caso de las aboneras con gallinaza no hacerlo). Los - Quinto paso: Se coloca una capa de tubos que se colocan sirven como material vegetal, seco o fresco, que respiradero y para tomar la temperatura pueden ser leguminosas o gramíneas. y agregar agua en caso necesario. Las siguientes capas se intercalan Antes de darle vuelta a la abonera es siempre con una de cáscarilla de arroz. conveniente tomar la temperatura, para lo cual se introduce un machete, una Nota: Después de cada capa, humedecer varilla o una manguera durante cinco con agua. minutos. Al sacar el machete puede suceder lo siguiente: - Sexto paso: Se cubre con nylon o costales cuando ya esta terminada, esto • Si al sacarlo está caliente y húmedo, con la finalidad de proteger la abonera significa que la abonera funciona bien y del agua directa y evitar la salida solo se le debe dar vuelta para airearla. incontrolable de gases, sin embargo hay que recordar que el proceso es aeróbico • Si al sacarlo está caliente y seco es que y debe haber entrada de aire. Además la abonera se está "quemando" y es colocar tubos PVC o cañas de bambú, a necesario darle vuelta y agregarle agua. cada 50cm para airear a los • Si al sacarlo está frío es que la abonera microorganismos. El primer volteo se tiene humedad excesiva y no funciona hará a los 5 días de haberse elaborado bien y debe hacerse otra. Puede la abonera. emplearse el mismo material, pero debe verificarse que se sigan las instrucciones correspondientes. 11
  • 16. Los desechos vegetales o residuos VI. BIBLIOGRAFIA orgánicos se convertirán en composta entre los 45 y 60 días, dependiendo de 1. Apuntes sobre Compostaje. (En la naturaleza de los materiales. Esto línea) Consultado 2 Feb 2007. será, cuando el producto se observe Disponible en: homogéneo, café oscuro y www.eula.cl/contenido/compostaje3 desmenuzado. Se recomienda cernir a .htm los dos meses esta composta. El producto del cernido, se puede utilizar, y 2. El composataje. (En línea) lo que queda en el cernidor se puede Consultado 2 Feb 2007. Disponible incorporar como materia orgánica a en: otro compostero. El tiempo que demora www.infoagro.com/abonos/composta el proceso en una abonera depende de je.asp las condiciones (humedad, temperatura, aireación, materiales proveedores de 3. CONAMA-RM. Manual de Carbono y fuente de Nitrógeno). Si las compostaje casero, Sitio de la condiciones fueron ideales estará listo Comisión Nacional del Medio en 45 días. Ambiente, Región Metropolitana. (En línea) Consultado 3 Feb 2007. Disponible en: www.conama.cl/rm/568/article- 1092.html Fig. 2.2 Proceso de Aireación y volteo en la elaboración del compost. 12
  • 17. ANEXOS Anexo1. Microorganismos benéficos importantes en el proceso de descomposición de la Materia Orgánica, en el suelo. 13
  • 18. UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA FACULTAD DE AGRONOMIA AREA TECNOLOGICA SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ PRACTICA No.3 DETERMINACIÓN DE LA CAPACIDAD DE INTERCAMBIO CATIÓNICO Y DE BASES CAMBIABLES I. INTRODUCCIÓN L os suelos son poseedores de cargas que son dadas por el origen de las rocas, siendo estas cargas positivas y negativas. Estas cargas poseen la capacidad de ser intercambiadas pudiéndose definir como la capacidad de la suma de todos los cationes de cambio que un mineral puede adsorber a un determinado pH. Es equivalente a la medida del total de cargas negativas del mineral, denominado Capacidad de intercambio catiónico –CIC-. Esta capacidad es una de las principales propiedades químicas del suelo, que también se define como una medida de la cantidad de cationes intercambiables que un suelo puede adsorber por unidad de peso (base seca). Esta es expresada generalmente en mili equivalentes por 100 gr. de suelo (meq/100gr. s.) o Centimoles por kilogramo de suelo (Cmol+ /Kg. suelo). El intercambio catiónico es un proceso reversible por medio del cual las partículas sólidas del suelo adsorben cationes de la fase acuosa y desadsorben cantidades equivalentes de otros cationes estableciendo un equilibrio entre ambas fases. Esto se debe a las cargas negativas presentes en los coloides del suelo (arcilla, humus) y en la superficie radicular que adsorben cationes por atracción electrostática. Los cationes adsorbidos se resisten a ser lavados por el agua pero son disponibles para las plantas o pueden ser intercambiados por otros cationes presentes en solución (por acción de masas). La capacidad de intercambio catiónico es una propiedad del suelo que tiene mucha importancia practica en aspectos tales como fertilidad del suelo elaboración de programas de fertilización, modificación del pH, propiedades físicas del suelo y en la calidad del agua que se percola a través del suelo. 14
  • 19. De los cationes que intervienen en la CIC del suelo, algunos son de reacción ácida (H+, Al+), y otros son de reacción básica (Ca++, Mg++, Na+ y K+), los cuales son de importancia para el manejo del suelo, por lo que hace necesario conocer las concentraciones en las que se encuentran, para determinar si son necesarias algunas medidas correctivas. II. OBJETIVOS Que el estudiante: 1. Comprenda la importancia de la CIC en el estudio de la química del suelo. 2. Comprenda y desarrolle la metodología para la obtención de cationes básicos y la determinación de la Capacidad de Intercambio Catiónico. 3. Interprete los valores de CIC. 4. Interprete las concentraciones de cationes básicos y la CIC en el suelo. 15
  • 20. Existencia de bordes (superficies III. FUNDAMENTO TEORICO descompensadas). Es el más importante, y mejor conocido. En el suelo son varios los materiales que pueden cambiar cationes. Los principales cambiadores son las arcillas y la materia orgánica (los dos materiales presentan propiedades coloidales). Disociación de los OH de las capas basales. Las causas de la capacidad de cambio de cationes de las arcillas son: Sustituciones atómicas dentro de la red. Enlaces de Van der Waals. En las arcillas, además de en su superficie, los iones pueden entrar entre las láminas. 16
  • 21. 2. No todos los sitios de intercambio generan la misma fuerza para adsorber los iones. Esto va a depender de las propiedades o características del catión, de la concentración del catión en solución, de la naturaleza del anión acompañante, del tipo de coloide y del pH del suelo. 3.2 VALORES PROMEDIOS DE LA Las causas de la capacidad de cambio CAPACIDAD DE INTERCAMBIO de materia orgánica son: CATIONICO Disociación de los OH. Para los coloides del suelo mas frecuentes Disociación de los COOH. se tienen los siguientes valores de Capacidad de intercambio catiónico La CIC dependerá de: (expresados en meq/l00 gr. de suelo): • Tipo de coloide arcillas y humus CUADRO 3.1 VALORES PROMEDIOS CIC • Porcentaje de cada uno de ellos presentes COLOIDE CIC en el suelo (meq/100 gr.) • pH del suelo por su efecto en generar cargas negativas Humus 100 – 300 Los cationes que frecuentemente ocupan las posiciones de cambio en los suelos son: Ca++, Mg++, K+, Na+, H+,Al+++, Fe+++, Alófono > 100 Fe++, NH4,+, Mn++, Cu++ y Zn++. Vermiculita 80 - 100 3.1 FACTORES QUE INFLUYEN EN EL Montmorillonita 60 – 100 INTERCAMBIO CATIONICO Illita 25 - 40 Entre los factores que afectan la capacidad de intercambio catiónico podemos mencionar: Clorita 10 - 40 1. No todos los iones son adsorbidos por la misma fuerza en el complejo de Caolinita 3 – 15 cambio. Óxidos e hidróxidos 0 -3 17
  • 22. Para diferentes clases texturales se tienen los siguientes valores de CIC (expresados en meq/100 gr. de suelo): CUADRO 3.2 VALORES CIC SEGÚN TEXTURA DEL SUELO TEXTURA CIC (meq/100 gr.) El exceso de iones de amonios presentes en la muestra de suelos se lava con un Arenoso 1 –5 disolvente libre de electrolitos para evitar la remoción de iones cambiables. Dicho solvente es el alcohol etílico exento de Franco arcilloso 5 –10 ácidos orgánicos. El NH4+ adsorbido en la micela se reemplaza mediante el Na+, del Franco y franco limoso 5 -15 cloruro de sodio (NaCl) que se le agrega a la muestra. Franco arcilloso 15 – 30 Arcilloso > 30 Una CIC mayor de 30 meq/100gr. de suelo puede ser considerada como aceptable, valores muy bajos indica que se hace Luego el Amoniaco presente se destila por necesario aplicar enmiendas al suelo como medio del método Micro-Kjendahl. Durante por ejemplo la incorporación de materia el destilado la solución de NH4Cl se orgánica. alcaliniza con una base fuerte que es el hidróxido de sodio (NaOH) lo que permite 3.3 PRINCIPIO DEL METODO el arrastre de NH3+ en el vapor de agua. ANALÍTICO 3.3.1 DETERMINACIÓN DE CIC Debido a la solubilidad del NH4+ en un A una muestra de suelo se le agrega medio ácido este es fijado en una solución una solución tampónizada de acetato de diluida de ácido bórico (H3BO3) que amonio (NH4COOH3) 1N a pH 7.0, en esta contiene un indicador. forma las cargas negativas de las partículas del suelo se saturan con NH4+ produciendo el desprendimiento de los cationes intercambiables (acción de masas). 18
  • 23. Finalmente se valora el ion borato formando Para la determinación de las bases en la reacción mediante titilación con ácido cambiables en el espectrofotómetro es sulfúrico valorado (H2SO4) determinando en necesario hacer diluciones para que las esa forma la cantidad de amonio que concentraciones se encuentren dentro de la estaba presente en las cargas negativas de curva de trabajo del elemento. Las las partículas del suelo. diluciones se hacen a partir del primer extracto obtenido (el de Acetato de Amonio que arrastro todas las bases) con agua, con esta dilución se determina la concentración La cantidad del borato de amonio (NH4+ + de Na+ y K+, y a partir de esta ultima con H2BO3) formado durante el destilado del Oxido de Lantano para la determinación de amonio (NH3+) es retrotitulada con ácido la concentración de Ca ++ y Mg ++. sulfúrico (H2BO3- + H+ H3BO3); por lo tanto el volumen del H2SO4 gastado 3.4 BASES CAMBIABLES multiplicado por la normalidad del mismo, De las bases cambiables de mayor nos da los meq. de NH4+ que reaccionaron importancia en su determinación para el con H3BO3; esto es equivalente a la CIC del análisis químico del suelo podemos suelo. mencionar al Sodio, Potasio, Calcio y Magnesio. 3.3.2 DETERMINACIÓN DE BASES CAMBIABLES El Sodio no es un elemento indispensable para el crecimiento de las plantas, la Las bases cambiables son determinadas importancia de su estudio es que con una mediante el Espectrofotómetro de concentraci6n alta, produce problemas de Absorción Atómica, el cual esta basado en Sodicidad, las cuales dan como resultado la los principios del átomo. Un átomo al dispersión de las partículas del suelo, excitarse sus electrones pasan a un orbital destruyendo su estructura, además la capa superior y adquiere energía de absorción y superior del suelo es impermeabilizada cuando regresa emite energía. impidiendo el ingreso de aire, y causa toxicidad en la planta. Suelos con altas El espectrofotómetro se divide en tres concentraciones de Sodio necesitan partes: enmiendas como la aplicación de yeso. • Una lámpara revestida del elemento a El potasio es un elemento esencial para el estudiar crecimiento de las plantas porque • Una fuente de energía para ionizar las constituye los tejidos estructurales de las moléculas y excitar los átomos la cual mismas, incrementa la resistencia a estrés eleva la temperatura a 2,100° con la C. hídrico, regulando la apertura de estomas e ayuda de acetileno y aire; y incrementando la calidad de los frutos. • Un Detector de las señales de emisión El calcio forma compuestos que son parte originadas por un microprocesador, que de las paredes celulares, estimula el muestra los resultados. desarrollo de raíces y hojas. 19
  • 24. El Magnesio es un elemento esencial en la valorado. molécula de la clorofila, es activador de varios sistemas enzimáticos, ayuda en el 8. Oxido de Lantano, 0.3%. metabolismo de los fosfatos y participa en los procesos de respiración celular . 4.2 METODOLOGIA La saturación de bases es la proporción expresada en porcentaje de los Cationes 1. Pesar 20 gr .de suelo secado al aire básicos adsorbidos o intercambiados en el (corregir peso a base seca) y suelo en relación a la cantidad total de tamizada a menor de 2 mm. cationes que el suelo puede adsorber. El Introducirlos en un tubo de porcentaje de saturaci6n de bases (%SB) lixiviación. sirve de criterio para corregir un suelo ácido, para clasificaci6n de suelos y para 2. Agregar 30 ml. de NH4COOCH3, 1,0 conocer la disponibilidad de nutrientes N, lavar las paredes del tubo básicos. permitiendo el saturado de la muestra; después de 6 a 8 horas o V. MATERIALES Y METODOS mas aplicar una segunda porción de 30 ml. de NH4COOCH3, cuando 4.1 MATERIALES esta se lixivie aplicar una tercera , ( total 90 ml.) Recoger el extracto en 1. Acetato de Amonio (NH4COOH3), IN, un balón aforado de 100 ml., a pH 7.0 (Diluir 57 ml. de ácido acético llevarlo a volumen de 100 ml., tapar hasta 1000 ml. en agua, y neutralizar la e identificar el matraz. Esta solución solución con NH4OH concentrado basta que sirve para la determinación de las el pH sea 7.0; diluir la solución basta bases intercambiables por medio completar 1,000 ml.) del espectrofotómetro de absorción atómica. 2. Alcohol Etílico, al 95%. . 3. Agregar tres porciones de 30 ml. de 3. Cloruro de Sodio (NaCl) 10 %, alcohol etílico, al 95%, permitiendo llevarlo a un pH 2.0 (Disolver l00 gr. que cada porción se filtre de NaCI, grado reactivo, libre de completamente. Recibir el filtrado amoniaco, en 750 ml. de agua en un beacker de 100 ml. Esta caliente, añadir 4 o 5 gotas de HCI solución se descarta. concentrado y completar a volumen de 1,000 ml.) 4. Aplicar tres porciones sucesivas de 30 ml. de NaCl, al 10%, filtrando 4. Indicador mezclado. (Disolver 0.1 gr. completamente cada porción antes de rojo de metilo y 0.5 gr. de verde de de la siguiente aplicación. Recoger bromocresol en 250 ml. de etanol.) el filtrado en un balón aforado de 5. Hidróxido de sodio (NaOH), 1:1. 250 ml. y llevarlo a un volumen de 100 ml. Esta solución sirve para 6. Ácido bórico (H3BO3), a} 3%. determinar la CIC. 7. Ácido sulfúrico (H2SO4). 0.01N. 20
  • 25. 4.2.1 DETERMINACION DE LA CIC Esta dilución sirve para determinar la concentración de Na + y K+ . 1. Tomar una alícuota de 10 mI. del (relación 1:5) filtrado obtenido de cloruro de sodio 2. Ca y Mg: de la dilución de Acetato (NaCl). Colocarlo en un tubo del de Amonio (NH4COOH3), tomar 2 destilador Microkjeldahl. ml. de extracto y 18 de agua 2. Añadir 10 a 15 ml. de NaOH 1:1. destilada, de esta mezcla extraer 1 ml. añadirlo a un Erlenmeyer de 50 3. Iniciar la destilación, usando un ml. agregar 24 ml. de oxido de Erlenmeyer de 50 ml., para recoger lantano con la ayuda de una el destilado, que debe contener 50 probeta. Esta dilución sirve para ml. de H3BO3 y 6 a 8 gotas de determinar la concentración de Ca ++ colorante (rojo de metilo y verde de y Mg ++ . bromocresol) . Destilar durante 4 minutos recibiendo el destilado. El 3. Llevar los dos Erlenmeyer al H3BO3 tomara un color verde al fijar espectrofotómetro de absorción el NH4+ condensado. atómica y leer las concentraciones de los elementos. El resultado lo da 4. Titular con H2SO4 0.01 N, usando en ppm del elemento en solución, una bureta. El punto final de la por lo que es necesario convertir en titulación será indicado por el ppm en solución a ppm en el suelo. cambio de la solución a un color Para esto se utilizan las siguientes rosado. formulas: 5. Determinar la CIC, mediante la siguiente fórmula: 4. Obtención de peso equivalente 4.2.2 DETERMINACION DE BASES CAMBIABLES 5. Determinar la saturación de bases mediante la siguiente fórmula: 1. Na y K: del extracto obtenido de Acetato de Amonio (NH4COOH3), tomar una alícuota de 2 ml. con una pipeta volumétrica, y añadirlo a un Erlenmeyer de 50 ml. .Agregar 8 ml. de agua destilada, al Erlenmeyer con una pipeta graduada de 10 ml. 21
  • 26. Nota: las bases deben estar expresadas en meq/100gr de suelo V. BIBLIOGRAFIA 6. Interpretar los resultados. 7. Sugerencia de presentación de resultados. 1. Fassbender H., Bornemisza. E. Química de suelos con énfasis en suelos de CUADRO 3.3 CUADRO DE RESULTADOS América Latina. 1994. Instituto interamericano de cooperación para la No. Dato obtenido Res por muestra agricultura. San José Costa Rica. 1 Gramos de suelo secado al aire 2. HENRIQUEZ, Manuel, PEREZ, Juana, GASCO, José M. et al. Determinación 2 Peso suelo base seca de la capacidad de intercambio catiónico en arena y caolín usando 3 ml. de H2SO4 0.01 N valorado acetato de amonio, acetato de sodio y usados cloruro de amonio. Bioagro. [online]. ene. 2005, vol.17, no.1 [citado 17 Enero 4 CIC (meq / 100 gr. de suelo) 2007], p.59-62. Disponible en la World Wide Web: 5 Ppm de Na+ en solución <http://www.scielo.org.ve/scielo.php?scr ipt=sci_arttext&pid=S1316- 33612005000100008&lng=es&nrm=iso> 6 Ppm de Na+ en muestra . ISSN 1316-3361. 7 Ppm de K+ solución 3. Consultas electrónicas (en línea) consultado el 17 de enero del año 2007 8 Ppm de K+ en muestra y disponible en las siguientes direcciones: 9 Ppm de Ca++ en solución http://www.drcalderonlabs.com/Metodos /Analisis_De_Suelos/MetodosQuimicos 10 Ppm de Ca++ en muestra Suelos.htm 11 Ppm de Mg++ en solución http://www.segemar.gov.ar/P_Oferta_R egiones/Oferta/Arcillas/Usos%20y%20e 12 Ppm de Mg++ en muestra specificaciones/Usos%20y%20especific aciones.htm 13 % de Saturación de Bases 22
  • 27. UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA FACULTAD DE AGRONOMIA AREA TECNOLOGICA SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ PRACTICA No. 4 EVALUACIÓN DE DIFERENTES SUELOS USANDO PRUEBAS BIOLÓGICAS (MACETAS EN INVERNADERO) I. INTRODUCCIÓN L a prueba biológica es una técnica que consiste en establecer pequeñas parcelas (macetas) de campo, en lugar de una parcela convencional, para evaluar el estado del suelo mediante el crecimiento vegetativo parcial de un cultivo anual en un periodo relativamente corto. La comparación del crecimiento vegetativo entre los diferentes tipos de suelo analizados en el laboratorio deberán indicar a que suelo o suelos responde mejor la planta o bien cual o cuales son sus deficiencias, por lo tanto que caso sería limitante para la planta. Es importante recordar que se debe considerar el peso seco para poder discutir los resultados debido a que por el contenido de humedad de la planta es afectada por diversos factores que no permitirán estandarizar el contenido de humedad en ellas. II. OBJETIVOS Que el estudiante • Evalué y analice el desarrollo y crecimiento de las plantas de tomate y sorgo en diferentes tipos de suelo. • Realice curvas de crecimientos de cada cultivo en los diferentes tipos de suelo. • Determine las variables respuesta (altura, materia seca de la raíz y parte aérea) de cada cultivo en los diferentes tipos de suelo. • Determine los requerimientos de los cultivos. • Conozca la metodología para el establecimiento de una prueba biológica. 23
  • 28. 9. En tres macetas, sembrar 2 pilones de III. MATERIALES Y METODOS tomate por maceta 3.1 MATERIALES 10. A los 5 días de haber germinado el sorgo, ralear las plántulas débiles y 1. 6 macetas de 2 – 2.5 Kg. dejar 6 o 7 plántulas, buscando uniformidad en las mismas. 2. 16 Kg. de suelo seco, tamizado y homogenizado 11. La cosecha se debe realizar a los 35 días de haber sembrado. 3. Semillas de sorgo IV. VARIABLES A MEDIR 4. Pilones de tomate Altura de Planta: Se medirá cada una de 5. Urea las plantas con una regla graduada, del 6. Bolsas de papel y plástico. cuello de la planta, hasta el ápice y se obtendrá un promedio. Las mediciones se 3.2 METODOLOGÍA realizarán cada ocho días (el mismo día de laboratorio). 1. Obtener 16 kilogramos (35 lb.) de suelo Materia Seca: Esta será determinada al de un área homogénea. final de la investigación (35 días después 2. Secar el suelo a la sombra y tamizarlo de la germinación), la cosecha se realizará a 2 mm de diámetro. utilizando una navaja haciendo el corte de cada planta desde la base y luego se 3. Homogenizar el suelo. colocarán en bolsas de papel previamente identificadas para luego secarlas en un 4. Colocar 2 – 2.5 Kg. de suelo en bolsas horno de convección forzada hasta que plásticas estando ya este seco y alcance un peso constante, luego se homogenizado. pesarán en una balanza analítica y se 5. Agregar la cantidad de N de acuerdo a expresará en gramos por planta o por lo establecido para cada suelo. unidad experimental (tres macetas por cultivo). 6. Llenar las macetas previamente identificadas con el suelo de cada bolsa Informe Final: Con los datos obtenidos de acuerdo a lo previamente procederán a realizar el informe final por establecidos. grupo, apoyándose en la estadística, graficas, fotografías, etc. Para una mejor 7. Regar el suelo de cada maceta interpretación de los resultados se deberán llevándolo un porcentaje de humedad a relacionar las características químicas del Capacidad de Campo. suelo analizado. Este contendrá: introducción, objetivos, marco teórico, 8. En tres macetas, sembrar 10 semillas metodología, resultados, discusión de de sorgo por maceta. resultados, conclusión, recomendaciones, bibliografía (IICA), anexos. 24
  • 29. UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA FACULTAD DE AGRONOMIA AREA TECNOLOGICA SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ PRACTICA No. 5 DETERMINACIÓN DE LA MATERIA ORGÁNICA Y NITRÓGENO TOTAL I. INTRODUCCIÓN L a materia orgánica es una parte activa muy importante del suelo, formada por compuestos de origen biológico, principalmente restos de animales y vegetales que se depositan en el, la mayor cantidad de materia orgánica presente en el suelo procede de las raíces y partes aéreas de las plantas, hojas, ramas y tallos. La materia orgánica está constituida principalmente por carbono (aproximadamente 58% en peso), hidrógeno, oxígeno, nitrógeno, azufre, fósforo, y otros elementos que conforman sustancias orgánicas como la lignina, celulosa, proteínas, aminoácidos, aceites, ceras y taninos. La mayoría de suelos cultivados contienen de 1 a 5% de materia orgánica (en los primeros 25 cm. del suelo), y aun esas pequeñas cantidades, pueden modificar significativamente las propiedades físicas, químicas y biológicas del suelo. El nitrógeno (N) es un elemento esencial para las plantas, se le encuentra a una concentración del 1 al 6%, sin embargo con frecuencia su disponibilidad en los suelos es deficiente, por lo cual deben aplicarse anualmente millones de toneladas de fertilizantes que lo contienen, para obtener los rendimientos necesarios para que el cultivo sea rentable. Debido al efecto que tiene el nitrógeno sobre la producción agrícola, el costo que representa su aplicación es alto, sin olvidar el peligro que representa al transformarse en un potencial contaminante del medio ambiente, si no se maneja adecuadamente. Por lo que se hace necesario saber cuanto N tenemos en el área a cultivar y así optimizar su uso al momento de ser aplicado, evitando costos innecesarios y disminuyendo la contaminación. II. OBJETIVOS Que el estudiante: • Comprenda la importancia de la materia orgánica en el suelo. • Conozca la importancia del nitrógeno en la production Agricola. • Conozca la metodología para la determinación del Nitrógeno total de una muestra de suelo • Desarrolle la metodología para la determinación de materia orgánica en una muestra de suelo. 25
  • 30. a) Puede constituirse en hospedero de III. FUNDAMENTO TEORICO plagas y enfermedades, si no es manejada adecuadamente. 3.1 IMPORTANCIA DE LA MATERIA b) Puede liberar fitotoxinas (toxinas ORGÁNICA EN EL SUELO que afectan a las plantas), esto depende del material que le de origen a La materia orgánica afecta muchas la misma. propiedades del suelo, en las que se pueden mencionar: c) Puede existir alelopatia (sustancias que no dejan crecer a otras plantas). 1. Propiedades Químicas: mejora la Capacidad de Intercambio Cationico 3.2 FACTORES QUE AFECTAN LA (por su aporte de cargas al complejo DESCOMPOSICIÓN DE LA MATERIA del suelo), mejora la capacidad Buffer, es fuente de nutrientes como ORGÁNICA el Nitrógeno, Fósforo, Azufre, Entre los factores que afectan la Molibdeno y otros elementos descomposición de la materia orgánica menores; mejora la disponibilidad de tenemos: Fósforo y elementos menores en un amplio rango de pH debido a los a) Relación carbono/nitrógeno: quelatos (Compuestos orgánicos mientras más alta es esta relación la que envuelven a los elementos descomposición será más lenta, se metálicos). recomienda una relación de 10:1 como la adecuada. 2. Propiedades Físicas: mejora la estructura, dándole estabilidad b) Temperatura: los procesos de estructural al suelo, baja la densidad descomposición de la materia aparente facilitando las labores que orgánica se dan en un rango de se desarrollaran en el mismo, temperatura de 15- 40° C. mejora la retención de agua, reduce la erosión, permite mayor infiltración c) Humedad: Es necesario que de agua y tiene una acción directa siempre se obtenga una humedad a sobre la temperatura del suelo. capacidad de campo. 3. Propiedades biológicas: fomenta d) pH: este tiene que ser la actividad microbiana, provee de medianamente ácido a energía a los microorganismos para medianamente alcalino (5 a 8), su desarrollo y multiplicación. valores fuera de este rango afectan la actividad microbiana. La Materia Orgánica tiene algunas desventajas como: 26
  • 31. 3.3 DESCOMPOSICIÓN DE LA MATERIA menos del 2% se considera como muy bajo, ORGÁNICA del 2 al 4% es bajo, del 4 al 6% el contenido es medio, y mayor del 6% de contenido de La materia orgánica bruta sigue un materia Orgánica es alto. ciclo mediante el cual se logra la completa mineralización, hasta la formación de 3.5 EL NITRÓGENO EN EL SUELO humus (fracción más o menos estable de la materia orgánica). El humus esta Las principales formas de nitrógeno en el suelo son: constituido por biomoléculas y sustancias húmicas como los ácidos húmicos y ácidos La orgánica, formada por residuos fúlvicos, la diferencia entre una biomolécula vegetales y animales en diversos estados y una sustancia humica es que esta última de descomposición, y la inorgánica, que carece de estructura molecular específica. incluye principalmente a nitritos, nitratos y El proceso de descomposición se da amonio. gracias al trabajo que en forma natural efectúan bacterias, hongos, lombrices y El N es de importancia para la planta, otros microorganismos. Algunos se porque es un constituyente importante de la desarrollan en presencia de oxígeno clorofila, aminoácidos, proteínas, hormonas, (aeróbicos) y otros en ausencia del mismo ácidos nucleicos y vitaminas. (anaerobios). La primera fase que se da en la descomposición de la materia orgánica es 3.6 PRINCIPIO DEL METODO la mineralización, que es la destrucción ANALÍTICO mecánica o física de los compuestos orgánicos por acción de microorganismos y MÉTODO DE WALKLEY-BLACK PARA LA enzimas; y la segunda fase es la DETERMINACIÓN DE LA MATERIA humificación, la cual es la síntesis de la ORGÁNICA materia orgánica. El método se basa en la oxidación 3.4 NIVELES DE MATERIA ORGÁNICA de la materia orgánica (M.O.) por el EN EL SUELO dicromato de potasio (K2Cr2O7) y ácido sulfúrico (H2SO4). Se considera que De forma general se mencionan los únicamente el carbono orgánico del suelo siguientes valores de interpretación del entra en reacción, ésta puede ser contenido de materia orgánica en el suelo expresada de la manera siguiente: 2K2Cr2O7 + 8H2SO4 + 3C = 3CO2 + 8H2O + 2K2SO4 + 2Cr2 (SO4 )3 A medida que la M.O. es oxidada el por lo tanto, la cantidad de dicromato dicromato es reducido, de Cr6+ a, Cr6+ -3e, consumida en la reacción es una medida 27
  • 32. indirecta de la cantidad de carbono conocida de un agente reductor como el orgánico oxidado. El exceso de dicromato sulfato ferroso FeSO4 . 7H2O. que no es usado en la reacción es determinado por titulación con una cantidad Dándose la siguiente reacción: K2Cr2O7 + 6FeSO4.7H2O + 7H2SO4 = K2SO4 + 3Fe2(SO4)3 + Cr2(SO4)3 + 14H2O Para la determinación de la materia 2. El peso equivalente del carbono orgánica en una muestra de suelo es oxidado es 3. necesario tener un testigo, en la titulación del testigo hay un agente oxidante que es el 3. Únicamente la materia orgánica es dicromato de potasio (K2Cr2O7 ) y un oxidada. reductor que es el sulfato ferrroso 4. Este procedimiento oxida (FeSO4.7H2O); mientras que en la muestra únicamente alrededor del 77% total de suelo hay un segundo reductor que es el de materia orgánica presente (es carbono orgánico (C.O.). decir, eficiencia del método). Tanto en la muestra de suelo, como en el Basados en meq. de la solución de sulfato testigo se usan las mismas cantidades de ferroso usado (diferencia entre la muestra y reactivos pero como en el suelo existe un el testigo) por gramos de suelo en base segundo reductor que es el C.O., parte de seca, tenemos: el es usado en la oxidación de ésta. La cantidad extra de sulfato ferroso usada en la titulación del testigo es una medida indirecta de la cantidad de C.O. que ha sido oxidada por el dicromato de potasio. Los meq. de C.O. oxidado es igual al producto de la normalidad del sulfato ferroso por el volumen extra de sulfato ferroso(FeSO4.7H2O) requerido en al titulación del testigo, comparado con el gasto de la solución que contiene la muestra de suelo. Para convertir el C.O. a meq. por gramos de suelo se divide el resultado por el peso de la muestra de suelo en base seca. La conversión a porcentajes de C.O. y M.O. está basada en las suposiciones siguientes: 1. La materia orgánica del suelo contiene 58% de carbono. 28
  • 33. 1. meq. Carbono oxidado * 0.003 = gr. De C.O. oxidado 2. meq. Carbono oxidado * 0.003 * 1.724 = gr. M.O. oxidada 3. meq. Carbono oxidado * 0.003 * 1.724 * 1.2987 = total gr. De M.O. 4. meq. Carbono oxidado * 0.003 * 1.724 * 1.2987 * 100 = %M.O. gr. De la muestra (base seca) % C.O. = ml de FeSO2.7H2O Testigo - FeSO4.7H2O Muestra * N FeSO4.7H2O * 0.30 peso de suelo (base seca) 0.77 % Materia orgánica = % de C.O. * 1.724 Kjendahl, como en el digerido existe un exceso de H2SO4 y NH4HSO4 este debe 3.7 PRINCIPIO DEL MÉTODO alcalinizarse con una base fuerte que es el ANALÍTICO PARA LA DETERMINACIÓN DE NaOH 10N lo que permite la liberación del NITRÓGENO TOTAL EN SUELOS NH3+ en el vapor de agua. El método Kjendalh se basa en la El NH4+ es retenido en medio ácido en una transformación de todas las formas de solución diluida de ácido bórico (H3BO3, nitrógeno a forma de NH4+, por medio de la al 2%) que contiene un indicador. utilización de H2SO4 concentrado y una Finalmente se valora el borato de amonio mezcla catalizadora de K2SO4, formado en la reacción mediante titulación CuSO4.5H2O y selenio en una proporción con ácido sulfúrico valorado. de100:10:1 respectivamente, en el proceso de digestión de la muestra. Luego el NH3+ presente en el digerido, es destilado por medio del método Micro Las reacciones que se dan en este proceso son: 1. N.Org + N. Inorg. + H2SO4 NH4HSO4 2. NH4HSO4 + H2SO4 + 4NaOH 2Na2SO4 + NH4OH + 3H2O 3. NH4OH + calor NH3(g) + H2O(v) 29
  • 34. 4. NH3 + H3BO3 NH4 + H2BO3- 5. H2BO3- + H+ H3BO3 4.1.3 NITROGENO TOTAL IV. MATERIALES Y METODOS 1. Mezcla de catalizadores, K2SO4, CuSO4.5H2O y Selenio en relación 4.1 MATERIALES (100:10:1). 2. Ácido sulfúrico concentrado (grado 4.1.2 MATERIA ORGANICA industrial). 1. Dicromato de potasio (K2Cr2O7) 1N 3. Ácido bórico (H3BO3), al 2%. 2. Ácido sulfúrico (H2SO4) grado industrial 4. Indicador mezclado. 3. Ácido fosfórico concentrado al 96% Disolver 0.1 gr. de rojo de metilo y 0.1 gr. grado reactivo. de verde de bromocresol en 250 ml. De 4. Difenilamina sulfónica, al 16%. etanol. Difenilamina sulfónica: Pesar 0.5 gr. De 5. Hidróxido de Sodio (NaOH), 10N. difenilamina, se disuelven en 20 ml. de 6. Ácido sulfúrico 0.01N valorado. agua y se le agregan 90 ml. De concentrado de H2SO4 (grado reactivo). Este reactivo se debe preparar en agua fría (baño maría) usando un beacker de 400 o 4.2 METODOLOGÍA 250 ml, es recomendable medirlo en probeta. Este indicador se guarda en un 4.2.1 MATERIA ORGANICA frasco ámbar protegido de la luz. 1. Tamizar el suelo en un tamiz de 0.5 mm Sulfato ferroso hidratado: (FeSO4.7H2O) (60 mesh). 1N. Pesar 278 gr. De FeSO4.7H2O grado reactivo, disolverlos en 400 ml. De agua, 2. Pesar con balanza analítica 0.1 a 0.25 gr. añadir 15 ml. de H2SO4 (grado Si son suelos orgánicos, o de 0.5 gr. a 2 gr. concentrado), esta solución se deja enfriar y Si son suelos minerales, dependiendo el se afora a 1,000 ml. Este reactivo se debe contenido de materia orgánica. Colocar el valorizar diariamente titulando en función suelo en un erlenmeyer de 500 ml. de K2Cr2O7 1N. 3. Preparar el testigo con todos los reactivos y pasos menos el suelo. 30
  • 35. 4. A cada erlenmeyer agregar exactamente 2. Agregar 1.1 gr. de mezcla de 10 ml. de la solución de K2Cr2O7 1N, catalizadores y 4 ml de H2SO4 concentrado usando una pipeta volumétrica. Agitar (grado reactivo) dejar reposar. cuidadosamente el erlenmeyer para dispersar el suelo en la solución en forma 3. Colocar y calentar en una unidad vigorosa por lo menos durante un minuto digestora a temperatura de 210° C por 2 para lograr una oxidación completa de la horas los vapores del ácido sulfúrico deben muestra. condensarse en el tercio inferior del cuello del tubo de digestión. 5. Agregar 20 ml. de H2SO4 concentrado (grado industrial) haciendo uso de una 4. Completada esta etapa, dejar el frasco y probeta inmediatamente después agitar el agregar 15 ml. de agua destilada para evitar erlenmeyer, este paso hacerlo en la una reacción violenta. campana de extracción de gases. 5. Colocar el tubo en el destilador micro 6. Dejar reposar los erlenmeyers durante 30 Kjendhal y añadir 15ml de NaOH 10 N. minutos. 6. Iniciar la destilación, usando para recoger 7. Agregar 200 ml. de agua, no el destilado un erlenmeyer de 150 ml, que necesariamente destilada. 10 ml. de H3PO4 debe contener 50 ml., de H3BO3 con y de 5 a 8 gotas del indicador difenilamina indicador. El tubo de descarga debe sulfónica. Después de esto la solución quedar sumergido en la solución de H3BO3. toma un color azul oscuro. destilar durante 4 minutos. El H3BO3 tomará un color verde al fijar el 8. Titular con FeSO4.7H2O agregando el amoniaco condensado. reactivo gota a gota con una micro bureta. El punto final de la titulación será indicado 7. Titular con H2SO4 0.01 N valorado, por un cambio en el color a verde brillante. usando una bureta. El punto final de la Si el gasto de sulfato ferroso es mayor de titulación será indicado por el viraje de la 8ml hay que repetir la determinación solución a un color rosado fuerte. usando más suelo y si el gasto es menor de 8. Calcular el % de Nitrógeno Orgánico con 2 ml. la cantidad de suelo a usarse tendrá la siguiente fórmula: que ser menor. % N = 14 (V) * N 9. Determine el % de carbono orgánico y el % de materia orgánica. 10 P 4.2.2 DETERMINACION DE NITRÓGENO Donde: TOTAL V: Volumen Acido sulfúrico empleado en titular la muestra 1. Pesar 0.25 gr. de suelo tamizado con un N: Normalidad exacta del H2SO4 tamiz de 0.5mm (60 mesh), y colocarlo en el tubo del destilador micro Kjeldhal seco. P: Peso de la muestra en base seca. 9. Calcular la relación Carbono/Nitrógeno. 10. Interpretar los resultados. 31
  • 36. UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DEGUATEMALA FACULTAD DE AGRONOMIA AREA TECNOLOGICA SUBAREA DE MANEJO DE SUELO Y AGUA LABORATORIO DE EDAFOLOGIA II INSTRUCTORES: ING. MSc. IVAN SANTOS, ING. CESAR MARTINEZ PRACTICA No. 6 REACCIÓN DEL SUELO (PH) I. INTRODUCCION D entro de las características químicas del suelo, el pH determina la acidez o alcalinidad de un suelo, este parámetro es útil para definir el tipo de cultivo que sea adaptable a las condiciones donde se requiera establecerlo, además define la disponibilidad de nutrientes en el suelo. La mayoría de suelos con buen desarrollo se encuentra en un pH de 5.5 a 6.5. Es importante mencionar que los suelos extremos, es decir muy ácidos o muy básicos pueden causar daños a los cultivos, como ejemplo en suelos muy ácidos existe insolubilidad de elementos como el fósforo y calcio, también existe disminución de la actividad microbiana. En el caso de suelos muy básicos se escasean varios nutrientes: Hierro, Manganeso, Zinc, Cobre y Boro, esenciales para toda planta. Para los suelos de Guatemala el rango de distribución de pH va de 4 a 8, por lo tanto estos valores se utilizan para calibrar el potenciómetro. Para medir el pH del suelo existen dos métodos ampliamente difundidos que son el método analítico por medio del potenciómetro y el colorímetro o de campo, ambos de mucha utilidad. II. OBJETIVOS Que el estudiante: • Conozca los factores que afectan el pH y la importancia de este en el suelo. • Practique la metodología para determinar el pH. • Interprete los resultados del pH del suelo. 32
  • 37. Por lo tanto a partir de las definiciones de III. FUNDAMENTO TEORICO pH y pOH, se obtiene: 3.1 LA REACCIÓN DEL SUELO pH + pOH = 14 Por lo que el logaritmo negativo de H+ es 7, La reacción del suelo (pH) es una o pH 7. Cuando la concentración de H+ es indicación de la acidez o alcalinidad del mayor (más ácido), tal como 10-4 moles por suelo y es medida en unidades de pH. La litro, el pH es 4, y a menor concentración de escala va de 0 a 14 siendo un pH 7 el punto H+, el pH es mayor (básico) neutro. El pH de una disolución se define como el logaritmo negativo de la 3.2 IMPORTANCIA DEL PH DEL SUELO concentración del ión hidrógeno H+ (en mol/Litro). Un suelo ácido, (pH menores de 6.5) provoca una toxicidad de H, Fe y Mn; muy pH= -log [H+] ácidos (pH menores de 5.5) toxicidad de Al para las plantas, mientras que para un suelo básico (pH mayores de 7.5), se El logaritmo negativo proporciona un pueden tener problemas con la succión del número positivo para el pH, el cuál de otra agua por las raíces de la planta y toxicidad manera, sería negativo debido al pequeño de Na valor de [H+]. El pH de una disolución es una cantidad adimensional. Suelos fuertemente ácidos (pH 4-5) generalmente tienen altas y tóxicas Con el logaritmo negativo de la concentraciones de aluminio y manganeso. concentración de iones hidróxido de una Además afecta la disponibilidad de disolución se puede obtener una escala de nutrientes por ejemplo el P se vuelve pOH, análoga a la del pH. Así pOH se insoluble al formar compuestos con el Fe y define como: Al, los cuales son precipitados. Además hay una deficiencia de Ca++, Mg++ y K+. Algunas pOH = -log [OH-] plantas como Azaleas, té, rododendros, Entonces al considerar la constante del piña, arándanos y algunas especies producto iónico del agua tenemos: coníferas madereras toleran una acidez fuerte y crecen bien. En comparación, la alfalfa, frijoles, cebada y remolacha azucarera solamente crecen bien en suelos [H+][OH-] = Kw =1.0 x 10-14 ligeramente ácidos a moderadamente Al tomar el logaritmo negativo en ambos alcalinos por su alta demanda de calcio o lados, se obtiene: inhabilidad para tolerar aluminio soluble. - (log [H+] + log [OH-]) = - log (1.0 x 10-14) El pH influye en la actividad de los microorganismos benéficos, ya que la -log [H+] - log [OH-] = 14 mayoría de bacterias fijadoras de nitrógeno y descomponedoras de materia orgánica no son muy activas en suelos fuertemente 33
  • 38. ácidos por lo que el proceso es pH del suelo es más bajo en soluciones obstaculizado. salinas que en soluciones acuosas, esto se debe a que a medida que la concentración Los suelos altos en calcio (áreas de baja de sales se incrementa el H y Al son pluviosidad) tienen pH con valores de 8.5, desplazados a sus sitios de intercambio por suelos con pH mayores de 10 se dan las sales. Las sales pueden provenir de cuando presentan alto sodio intercambiable. fertilizantes, del agua de riego o de la Las plantas en suelos con pH mayores de 9 descomposición de la materia orgánica. usualmente tienen crecimiento reducido e inclusive mueren. La relación suelo: agua en que se efectúa la medida del pH influye también en el valor El mayor efecto de un pH alcalino es reducir numérico de este. Las relaciones más la solubilidad de todos los micronutrientes comunes suelo: agua son 1:1, 1:2 y 1:5. (excepto molibdeno), especialmente hierro, zinc y manganeso. También el fosfato esta Otro factor conocido como error de algunas veces disponible para algunas potencial en la unión líquido-sólido común a plantas por su precipitación en la solución todos los sistemas coloidales, se da cuando del suelo por calcio o precipitación en los electrodos se colocan en el fondo del carbonatos de calcio sólido. sedimento de la suspensión de suelo, donde se obtienen generalmente un pH La deficiencia de hierro, asociada con inferior al obtenido en la solución suelos arcillosos húmedos altos en supernadante. Sin embargo el pH del carbonatos, ha sido ampliamente conocida sedimento puede ser mayor que el del y referida como clorosis de hierro de caliza supernadante en ciertos suelos. inducida. Como el zinc, hierro, manganeso y cobre tienen baja solubilidad a pH alto, la Estas diferencias, se han explicado como adición de fósforo generalmente disminuye un efecto de la mayor concentración de más la disponibilidad de aquellos metales a iones H+ cerca de la partícula de suelo que la superficie de la raíz o justamente dentro a alguna distancia de ella. Este efecto es de ella, precipitándolos como fosfatos máximo en suelos con grandes insolubles. La mayoría de los problemas capacidades de cambio, débiles enlaces de causados por un ph alto se resuelven los cationes cambiables y bajo contenido de añadiendo fertilizantes especiales como sales solubles. quelatos solubles en agua, los cuales son estables pero complejos solubles de metal. 3.4 PRINCIPIO DEL MÉTODO ANALÍTICO 3.3 FACTORES QUE AFECTAN AL PH DEL SUELO El pH o acidez activa del suelo se puede determinar por dos métodos, el del Las sales del suelo incrementan la hidrólisis potenciómetro que es el más usado en el de Al y Fe, desplazando iones H de los laboratorio y el más exacto, y el coloides del suelo, provocando una colorimétrico que es más usado en campo disminución en el pH. El principal efecto de pero no es tan exacto. la concentración de sales sobre el pH del suelo se debe al intercambio catiónico. El El potenciómetro consta de un electrodo de vidrio para la medida de H+ desarrollándose 34