2. Objetivos
Conozca los métodos de desinfección y esterilización usados en la
clínica dental.
Conozca cómo es el funcionamiento del autoclave.
Aprenda, comprenda y practique los procedimientos que deben
seguirse para desinfectar y/o esterilizar apropiadamente el instrumental
utilizado en la clínica dental.
Aprender y practicar el protocolo que debe ser seguido antes, durante
y después de la atención de pacientes en la clínica dental para realizar
un adecuado control del riesgo de infección en el tratamiento de
pacientes.
Comprenda la importancia del uso adecuado de Métodos de
protección de barrera durante el tratamiento de pacientes en la
clínica dental.
3. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
Joseph Lister: se percató de la presencia de microorganismos en el
medio ambiente si no son eliminados a la hora de realizar un proceso
quirúrgico, el ser humano queda expuesto infecciones.
Lister comenzó a utilizar el fenol como desinfectante y al proceso de
eliminación de microorganismos lo llamó desinfección.
Robert Koch comprobó que el proceso de desinfección no era tan
efectivo, quedaban algunos microorganismos, empezó a utilizar
aparatos donde ponía a hervir agua, y tapaba el recipiente
herméticamente generando vapor y aumentaba la presión. Logró
determinar que éste procedimiento al cual denominó esterilización a
presión, eliminaba toda forma de vida microbiana.
5. CICLO DE
ESTERILIZACIÓN
1er etapa: Tiempo de calentamiento: tiempo que tarda en llegar a la
temperatura y presión deseadas.
2da etapa: Tiempo de mantenimiento: tiempo en minutos que debe
permanecer el equipo a la temperatura y presión apropiadas.
3ra etapa: Tiempo de refrigeración: tiempo que tarda en enfriarse el
instrumental para poder ser utilizado.
Es necesario no olvidar nunca los requisitos indispensables para lograr
una esterilización adecuada; éstos son: el control de:
TEMPERATURA TIEMPO PRESIÓN
6. Las etapas que se deben seguir
con el instrumental son:
Pre descontaminación
Desinfección
Limpieza
Lavado
Esterilización
Almacenamiento
El tratamiento correcto para el instrumental utilizado en la
clínica dental es la esterilización, reservándose la desinfección
solo para los instrumentos que por razones técnicas no sea
posible esterilizar.
7. PRE DESCONTAMINACIÓN
Se eliminan las sustancias como sangre, saliva y minerales que
interfieren para que la solución desinfectante tenga contacto
directo con los microorganismos.
Para este fin se utiliza detergente descontaminante
enzimático.
8. DESINFECCIÓN
Todo instrumento está potencialmente contaminado, por lo que antes de
cualquier manipulación debemos: Desinfectarlo en glutaraldehído al 2%
durante 30 minutos. Con esto conseguimos destruir un gran porcentaje de
microorganismos.
Para este proceso el desinfectante ideal es el glutaraldehído, sin
embargo, si por alguna razón, carecemos de éste, también podemos
utilizar lo siguiente: Hipoclorito sódico entre el 0.1% y el 2 % (más
comúnmente utilizado el 0.5%) durante 30 minutos; con su claro
inconveniente de ser corrosivo para los metales, pierde actividad en
presencia de materia orgánica y se deteriora con rapidez
El tiempo de desinfección empieza a contar desde el momento que hemos
colocado los instrumentos dentro de la solución de glutaraldehído al 2%.
No deben introducirse otros instrumentos hasta que haya sido sacada de la
solución la primera carga.
9. LIMPIEZA
Después de su desinfección se debe limpiar el instrumental para retirar
residuos. Puede hacerse con cepillos y jabón.
Posteriormente, se lava con agua, se seca y se prepara para su esterilización.
LAVADO
10. ESTERILIZACIÓN
El sistema ideal el empleo de vapor de agua a
presión en un autoclave.
Los instrumentos deben estar totalmente limpios y secos.
El instrumental puede ser colocado en el interior del
autoclave en:
1. Cajas dentales abiertas.
2. Bolsas de papel termosoldable.
Cada paquete debe ser marcado con el contenido y la
fecha de esterilización.
11. ESTERILIZACIÓN
El instrumental metálico debe esterilizarse a 134 0C
durante 7 a 10 minutos a 2.1 bar.
Instrumental de plástico y turbinas deben esterilizarse a
121 0C durante 20 minutos a 1 bar.
12. ALMACENAMIENTO
Después de la esterilización, el material se debe almacenar,
preferentemente embolsado. En las bolsas (de papel termosoldable) el
instrumental se mantiene estéril durante 1 a 2 meses.
Controles que deben ser realizados para verificar la eficacia de los
métodos de esterilización
Controles físicos: registrar y verificar que la presión y la temperatura son
las adecuadas.
Controles químicos: se usan indicadores colorimétricos que viran a
determinadas temperaturas. (cinta testigo o indicadores que ya poseen las
bolsas fabricadas para la esterilización de instrumental)
Controles biológicos: son esporos bacterianos que son introducidos en
el autoclave durante un ciclo del funcionamiento habitual; si el
procedimiento fue el adecuado, no germinarán posteriormente).
14. PROCEDIMIENTO
DESINFECCIÓN
El instrumental ya ha sido desinfectado durante por lo menos 30 minutos en solución de
glutaraldehído al 2%.
Si el instrumental tiene una gran cantidad de tejido orgánico (ej: sangre), éste debe ser
eliminado con abundante agua previo a introducirlo en la solución de glutaraldehído,
además NUNCA debe dejar que los fluidos se sequen en el instrumental, ya que será
sumamente difícil de retirar.
15. PROCEDIMIENTO
LIMPIEZA Y LAVADO
Sacar el instrumental del glutaraldehído y con un cepillo y jabón, cepillar todas las
superficies del instrumental para retirar residuos (aunque éstos no se vean).
Lavar con abundante agua. Secar muy bien todo el instrumental.
16. PROCEDIMIENTO
ESTERILIZACIÓN
Empacar el instrumental en bolsas de papel termo soldable.
En cada bolsa debe marcar su nombre, y fecha de esterilización.
(cuando las bolsas no tienen papel transparente también se debe marcar
el contenido da cada una de ellas).
El instrumental metálico debe esterilizarse a 134 °C durante 7 a 10
minutos a 2.1 bar.
Instrumental de plástico y turbinas deben esterilizarse a 121°C durante 20
minutos a 1 bar.
ALMACENAMIENTO
Después de la esterilización, el material se almacena preferentemente
embolsado, en cajas
En bolsas se mantienen estériles durante 1 a 2 meses o más.
17. BIOSEGURIDAD
Utilice siempre guantes cuando utilice sustancias desinfectantes,
recuerde que la mayoría de éstas irritan los tejidos.
En caso de contacto accidental de sustancias químicas con la
mucosa ocular, lave con abundante agua fría y consulte a su
médico.
Utilice guantes de uso doméstico para trabajos de limpieza y
desinfección del instrumental o de las superficies y para la
manipulación de material contaminado.
al esterilizar “NUNCA DEJE EL AUTOCLAVE SIN SUPERVISIÓN”
18. PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA DE
MUESTRA CON GLUTARALDEHÍDO
Conectar la manguera del mechero a la llave del gas;
Revisar que la conexión esté correcta para evitar una fuga de gas;
Encender el mechero con ayuda del chispero;
Colocarse Guantes descartables;
Rotular la caja de Agar Nutritivo
Tomar un instrumento, de preferencia que haya sido utilizado con un
paciente y realizar la toma de muestra con hisopo estéril, rotando el mismo
por toda la superficie del instrumento
Con el hisopo cargado inocular una caja de Petri con agar Nutritivo.
Preparar la solución de Glutaraldehído.
19. PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA DE
MUESTRA CON GLUTARALDEHÍDO
PRIMERA
INOCULACIÓN
SEGUNDA
INOCULACIÓN
20. PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA DE
MUESTRA CON GLUTARALDEHÍDO
Lavar el instrumental con jabón de Cristalería.
Sumergirlo por 30 minutos en la solución de
Glutaraldehído (Pueden utilizar un recipiente grande por
mesa de trabajo)
Cuando pasen los 30 minutos, sacar el instrumental,
lavarlos con agua y secarlos con papel toalla.
Se vuelve a repetir el procedimiento del numeral
número 2, volviendo a inocular en agar nutritivo.
21. PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA DE
MUESTRA CON SOLUCIÓN ENZIMÁTICA
Rotular las cajas de Petri como aprendió en el curso de
Microbiología I.
Tomar un instrumento, de preferencia que haya sido
utilizado con un paciente y realizar la toma de muestra
con hisopo estéril, rotando el mismo por toda la
superficie del instrumento.
Con el hisopo cargado inocular una caja de Petri con
agar Nutritivo
22. PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA DE
MUESTRA CON GLUTARALDEHÍDO
PRIMERA
INOCULACIÓN
SEGUNDA
INOCULACIÓN
23. PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA DE
MUESTRA CON GLUTARALDEHÍDO
Lavar el instrumental con jabón de Cristalería.
Lavar el instrumental con Detergente enzimático.
Lavarlos con agua y secarlos con papel toalla.
Se vuelve a repetir el procedimiento del numeral número 2,
volviendo a inocular en agar nutritivo.
Se incuban las cajas de Petri por 24 horas y se realiza la
lectura al día siguiente.
Anotar resultados
24. PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA DE
MUESTRA CON GLUTARALDEHÍDO
TOMAR LA MUESTRA
DEL INSTRUMENTAL
CONTAMINADO
INOCULAR EN UNA
PARTE DE LA CAJA DE
PETRI
REALIZAR EL LAVADO
CON
GLUTARALDEHÍDO
SACAR EL
INSTRUMENTAL,
LAVARLO CON AGUA Y
SECARLOS
TOMAR LA MUESTRA
DEL INSTRUMENTAL
LIMPIO
INOCULAR EN LA
OTRAPARTE DE LA
CAJA DE PETRI
INCUBAR