Este documento presenta un proyecto de investigación sobre la creación de un banco de semillas certificadas en Colombia. El proyecto busca mejorar el nivel de vida de los campesinos mediante el suministro de semillas de alta calidad a bajos costos y capacitación en técnicas de cultivo. El documento incluye la introducción, planteamiento del problema, objetivos, metodología, marco conceptual y descripción del sitio donde se llevará a cabo el proyecto.

1. SEMIMACQ. COLEGIO VENECIA
DANIEL ALEJANDRO PEDREROS CIFUENTES
COLEGIO VENECIA I.E.D.
PROYECTO EMF
PROYECTOS, 1101 J.T.
BOGOTÁ D.C.
2014

2. SEMIMACQ. COLEGIO VENECIA
DANIEL ALEJANDRO PEDREROS CIFUENTES
Trabajo final
Profesor
Sergio Quintero
Administrador de empresas
COLEGIO VENECIA I.E.D.
PROYECTO EMF
PROYECTOS, 1101 J.T.
BOGOTÁ D.C.
2014

3. NOTA DE ACEPTACIÓN
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Presidente del Jurado
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Jurado
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Jurado

4. NTRODUCCIÓN
INTRODUCCIÓN
Este proyecto surgió a partir de la necesidad de los campesinos de la zona de
caney medio, municipio del meta,quienes tienen terrenos pequeños y de poca
productividad por falta de una semilla de calidad certificada a bajo costo que se
favoresca con sus suelos y brinde buena productividad.

5. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Este proyecto de investigación se inició en la Institución Educativa Venecia,
ubicada en la localidad Sexta (6) de Tunjuelito, Hoy en día la problemática que
refleja el campo y los que viven en él, El bajo uso de semilla certificada se
identifica como un determinante importante en la baja rentabilidad en los
diferentes cultivos. Existe un sólido esfuerzo en la producción de semilla
certificada, pero de bajo alcance para la población productora.
Viéndose afectados con los altos costos en los diferentes insumos que hacen de
sus producciones, algo frondoso que deje una excelente ganancia, y mejore la
calidad de vida de tantas personas que viven de trabajar con el campo. De
acuerdo con la poca información recibida por parte de unos campesinos, y viendo
sus diferentes inquietudes con respecto a las ganancias de sus cosechas se
evidencia una preocupación por los altos costos de la semillas certificadas y los
insumos para el cuidado y producción de sus cosechas; ha surgido la idea de un
banco de semillas que brinde crédito a intereses bajos, semillas de calidad y las
capacitaciones necesarias para cuidar sus cultivos, para quienes trabajan la
tierra quienes se podrán ver beneficiados con productos de alta calidad y así
mismo sus ganancias.

6. PREGUNTA PROBLEMA:
En consecuencia, surge el siguiente interrogante:
¿Cómo mejorar el nivel de vida de los cultivadores del campo Colombiano,
con semillas de calidad, que generen buenos productos e ingresos,
mediante un banco de semillas?
Además, del anterior interrogante, se generan otros, como:
1. ¿cómo identificar o establecer el perfil de los cultivadores del campo interesados en
obtener cosechas de óptima calidad a bajos costos?
 ¿cómo indagar sobre el manejo de las capacitaciones a los cultivadores para luego
ponerlos en práctica?
 ¿De qué manera se puede establecer la relación entre campesinos, semilla e
insumos?
 ¿cómo llevar a la práctica los créditos a bajos intereses, semillas de alta calidad en
nuestro campo Colombiano?

7. OBJETIVO GENERAL
Fortalecer la producción de semillas certificadas, que permita incrementar el
rendimiento y por lo tanto el mejor nivel de vida de los productores
.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS
.
Específicos
1.Fortalecer institucionalmente al banco de semillas SEMIMACQ con la producción
de semillas certificadas
1. Fortalecer las capacidades técnicas de los semilleristas , para la producción de
semilla certificada, mejorando la calidad y la sostenibilidad de los mismos,
mediante un manejo integrado del cultivo.
2. Prevenir las pérdidas económicas ocasionadas por el mal manejo de cosecha
y postcosecha de la producción de semillas.
3. Mejorar la comercialización de la semilla certificada.

8. 2. PROPÓSITO DEL PROYECTO
Abrir un banco de semillas certificada, en la finca la mesa, dando la oportunidad a
los campesinos del sector para sembrar semillas de calidad y así obtener cultivos
de gran productividad y acogida en el comercio.

9. METODOLOGÍA INVESTIGATIVA
ESTRATEGIA DE EJECUCIÓN
Estructura operativa
Para la ejecución del proyecto, se definirá un Coordinador y un Técnico
especialista en certificacion de semillas, que beneficien la productividad del
sector.
Los insumos, materiales, herramientas y otros utensilios necesarios para el
Proyecto, serán adquiridos de acuerdo a normas y procedimientos que
garanticen un trabajo de calidad y aprovechamiento para la región. Para el
desarrollo del proyecto es necesario tener en cueta unas estrategias tales
como:
 Retro alimentar con las instituciones relacionadas con la certificacion y
producción de semillas que pudan enriquecer nuestro proyecto,
beneficiando la comunidad del sector.
 Establecer un plan de capacitación en normas y certificación de semillas
con la comunidad interesada.
 Se establecen normas y reglamentos claros para el funcionamiento del
Banco de Semillas.
 Se establece un diagnóstico de las necesidades de producción de semilla
 Legalizar una o dos asociaciones de semilleristas a nivel nacional
 Capacitación a semilleristas, en la aplicación del reglamento general de la
Ley de Semillas.
 Aplicación del plan de mercadeo y comercialización
 Distribución de semillas certificadas, e intercambio con semillas de calidad
 Utilizar los incentivos desarrollados por el Gobierno Nacional Gestionar con
las instituciones financieras del sector (CFN y BNF) para que las mismas
consideren procedimientos que faciliten la obtención de créditos para
mejorar la producción de semilla.
 Difundir estos incentivos a los productores.
 Ejecución y seguimiento.

10. CONTEXTUALIZACIÓN:
Se ejecutara en el departamento del Meta, Caney Medio Municipio de Cumaral
Meta, finca la Mesa, en la ciudad de Bogotá-Colombia, se sistematizara el
proyecto “SEMIMACQ”. Validado por el profesor Sergio Quintero.

11. Descripción del predio
La finca la Mesa, tiene un terreno 2.6 hectareas, en un terreno total mente plano,
rodeado de fincas pequeñas que buscan tener gran productividad para sostener
sus familias, mediante cultivos pequeños de mango, maracuyá, limones,naranjas,
mandarinas, agraz y otros árboles frutales que se dan en la región.

12. MARCO TEÓRICO
MARCO LEGAL
6.2
Resolución 970 de 2010 del ICA
| | 04/23/2012
RESOLUCIÓN 970 DE 2010 publicada en el Diario Oficial No. 47.648 de 11 de
marzo de 2010 Por medio de la cual se establecen los requisitos para la
producción, acondicionamiento, importación, exportación, almacenamiento,
comercialización y/o uso de semillas para siembra en el país, su control y se
dictan otras disposiciones. RESOLUCIÓN 970 DE 2010 publicada en el Diario
Oficial No. 47.648 de 11 de marzo de 2010 Por medio de la cual se establecen los
requisitos para la producción, acondicionamiento, importación, exportación,
almacenamiento, comercialización y/o uso de semillas para siembra en el país, su
control y se dictan otras disposiciones.
Más información:
http://www.ica.gov.co/getattachment/03750a73-db84-4f33-9568-
6e0bad0a507d/200R970.aspx

13. MARCO CONCEPTUAL
La formación, dispersión y germinación de semillas, son eventos fundamentales
en el ciclo de vida de las plantas gimnospermas y angiospermas. La propagación
sexual de las plantas se da por medio de las semillas, las cuales tienen la función
de multiplicar y perpetuar la especie (Bradford y Nonogaky 2007). Las semillas
son estructuras complejas que consisten, en general, en: i) El embrión, que es el
producto de la fusión entre el óvulo con el núcleo espermático. ii) El endospermo
que provee de nutrientes al embrión para el desarrollo y el crecimiento de la
plántula. Algunas excepciones, por ejemplo, las flores de las labiadas producen
frutos indehiscentes llamados núculas, que internamente contienen a la semilla, la
cual nunca se libera ni se separa de la pared del ovario que la protege (Ryding
1995), estas semillas no presentan endospermo. iii) La testa de la semilla formada
externamente por los integumentos que representan los tejidos maternos del óvulo
(Finch-Savage y Leubner-Metzger 2006).
Para que la semilla cumpla con su objetivo, es necesario que el embrión se
transforme en una plántula que sea capaz de valerse por sí misma, mediante
mecanismos metabólicos y morfo genéticos, conocidos como proceso de
germinación. El proceso de germinación está constituido por varias fases: i)
Absorción de agua por la semilla o imbibición; ii) Activación del metabolismo y
proceso de respiración, síntesis de proteínas y movilización de sustancias de
reserva;

14. iii) Elongación del embrión y ruptura de la testa a través de la cual se observa
salida de la radícula.
El proceso de germinación está influenciado tanto por factores internos como
externos. Dentro de los factores internos están la viabilidad del embrión, la
cantidad y calidad del tejido de reserva y los diferentes tipos de dormancia.
Algunos de los factores externos que regulan el proceso son el grosor de la testa,
disponibilidad de agua, temperatura y tipos de luz. El estudio de la biología y
fisiología de las semillas es de vital importancia para el hombre, ya que la mayoría
de las especies cultivadas como los cereales son propagadas a partir de semillas
sexuales (Russo et ál. 2010).
Imbibición: es el proceso de absorción de agua por la semilla. Se da por las
Diferencias de potencial hídrico (mátrico) entre la semilla y la solución de
Imbibición.
Este proceso consta de tres fases: i) incremento rápido en la absorción de agua;
ii) fase de estabilización y movilización de nutrientes; iii) absorción de agua que
generalmente coincide con el proceso de germinación.
Movilización de nutrientes: durante el proceso de germinación, en cereales por

15. ejemplo, las reservas de nutrientes principalmente almidón y cuerpos proteicos
son convertidos en compuestos básicos como azúcares simples y aminoácidos
que son transportados y oxidados para suplir el crecimiento y la elongación del
embrión (Taiz y Zeiger 2006).
Viabilidad del embrión. Una de las primeras pruebas en el trabajo con semillas es
evaluar la viabilidad del embrión, una vez corroborada la capacidad de la semilla
para germinar es importante estudiar y evaluar algunos factores internos y
externos que afectan el proceso de germinación.
Dormancia exógena Hace referencia a las condiciones ambientales básicas que
determinan el proceso de germinación como disponibilidad de agua, luz y
temperatura (Fenner 2000). La absorción de agua por parte de la semilla está
directamente influenciada por la presencia de la testa y la permeabilidad que ésta
tenga al intercambio gaseoso (Bewley y Black 1994; Finch-Savage y Leubner-
Metzger 2006); algunas familias como Fabaceae, Malvaceae, Chenopodiaceae y
Liliaceae presentan problemas de permeabilidad del agua y son conocidas como
semillas duras (Coopeland y McDonald 1995). El efecto de la testa puede ser
mecánico, o químico debido a la presencia de inhibidores fenólicos, impidiendo el
flujo necesario de agua y oxígeno para la germinación.
La temperatura está frecuentemente asociada con el proceso de germinación por
afectar el porcentaje de germinación, la tasa diaria de germinación, la tasa de

16. absorción de agua, la velocidad de las reacciones enzimáticas y el transporte de
las sustancias de reserva (Probert 2010)
En referencia a los requerimientos de luz necesarios para el proceso de
germinación, las semillas se clasifican en tres grupos. El primer grupo corresponde
o involucra a las semillas fotoblásticas positivas, ellas germinan como respuesta a
la luz. En el segundo grupo están las fotoblásticas negativas, en él las semillas
sólo germinan en oscuridad. En el tercer grupo están las semillas insensibles a la
luz, germinan indistintamente bajo condiciones de luz u oscuridad (Takaki 2001).
Fase experimental
Las semillas a utilizar serán previamente colectadas teniendo en cuenta la
homogeneidad en cuanto a la procedencia y edad (Delouche et ál. 1971; Desai et
ál. 1997).

17. MARCO METODOLOGICO
El banco de semillas certifica y Controla la producción de semillas certificadas y
seleccionadas, supervisando los procesos de distribución, realizados con
métodos de mejoramiento convencionales y no convencionales, como los
Organismos Modificados Genéticamente, OMG, los cuales han sido alterados
deliberadamente por la introducción de material genético o la manipulación de su
genoma por técnicas de ingeniería genética para siembra.
La certificación consiste en verificar e inspeccionar las semillas para siembra,
desdesu origen, durante su proceso de prosuccion en campoo, beneficio y
acondicionamiento, hasta su almacenamiento y comercialización, conforme en
estrictas normas de calidad establecidas. Solo las semillas que cubren los
requisitos de alta calidad genética, fisiológica, física y fitosanitaria son certificadas
por el SNICS
Las semillas certificadas son una garantía de calidad para el productor.

18. Mango:
Origen: India
Periodo Vejetativo: A los 5 años después del ingerto, te obtendrá el fruto
Clima: Calido
Temp Maxima: 35°C
Temp Minima:16°
Vida útil; 30-40 Años
Suelo: PH 5-8 Tolerante a suelos pobres y a la sequia.
Principales plagas: Mosca sudamericana de la fruta, queresa y mosca
mediterránea de la fruta
Principales enfermedades: antracnosis, oídium

19. Los cítricos se originaron hace unos 20 millones de años en el sudeste asiático.
Desde entonces hasta ahora han sufrido numerosas modificaciones debidas a la
selección natural y a hibridaciones tanto naturales como producidas por el hombre.
La dispersión de los cítricos desde sus lugares de origen se debió
fundamentalmente a los grandes movimientos migratorios: conquistas de
Alejandro Magno, expansión del Islam, cruzadas, descubrimiento de América, etc
Mandarina
Origen: japon
Periodo Vejetativo:
Teperatura:
Rango 13-35?C, siendo la óptima 23-30?C. Por debajo de los 13?C no existe
crecimiento (Baradas, 1994). Rango 10-35?C. Es más resistente a bajas
temperaturas que el resto de los cítricos, aunque la ocurrencia de frío durante la
fructificación reducen la calidad del fruto (Benacchio, 1982).
Suelo:
Interpretación de los análisis de suelo
Determinaciones analíticas
Niveles
Muy bajo Bajo Normal Alto Muy alto
Reacción pH
<5.5 5.5-6.5 6.6-7.5 7-6-8.5 >8.5
CO3Ca total (%)
<2 2-10 11-20 21-40 >40
CO3Ca activo (%)
<1 1-4 5-9 10-15 >15
CE (dS(/m)
<0.20 0.20-0.40 0.41-0.70 0.71-1.20 >1.20
N total
<0.07 0.07-0.12 0.13-0.18 0.19-0.24 >0.24

20. Relación C/N
<6 6-8 8.1-10 10.1-12 >12
C.C.C. (meq/100 g) <5 5-10 11-20 21-30 >30
Ca (%) <25 25-45 46-75 76-90 >90
Mg (%) <5 5-10 11-20 21-25 >25
K (%) <2 2-4 5-8 9-12 >12
Na (%) <1 1-2 3-9 10-15 >15
Relación Ca/Mg (meq/100 g) <1 1-3 4-6 7-10 >10
Relación K/Mg (meq/100 g) <0.10 0.10-0.15 0.16-0.35 0.36-0.60 >0.60
C.C.C.: capacidad de cambio catiónico
Fuente: Legaz et al., 1995

21. Naranjas
Teperatura:
Se considera al naranjo una planta subtropical y tropical, sin embargo se
logra una mejor calidad bajo un clima subtropical ya que la variación entre
las temperaturas del día y la noche promueven la formación de ácidos,
mejorando su sabor. Las temperaturas frescas durante la noche, favorecen
el desarrollo del color naranja intenso de la cáscara. Esta especie puede
resistir temperaturas extremas de hasta –2°C y 50°C, sin daño aparente,
siempre que exista alta humedad ambiental y del suelo. Los umbrales
mínimo y máximo de desarrollo están en 12.8 y 35°C, respectivamente, en
tanto que el rango térmico óptimo se localiza entre los 23 y 32°C (Jackson
y Sauls, citados por Zapiain, 1999). Rango 13-35?C, siendo la óptima 23-
30?C. Por debajo de los 13?C no existe crecimiento (Baradas, 1994). Rango
10-35?C, siendo la óptima 25-31?C. Durante la fructificación, la
temperatura media no debería ser inferior a 18.4?C y la mínima no debería
bajar de 15?C. La falta de una estación fría con temperaturas inferiores a
13?C es la causa del color verde pálido de las naranjas cultivadas en los
trópicos. Oscilaciones térmicas diarias amplias le son favorables
(Benacchio, 1982). Requiere de un período de reposo (idelalmente de dos
meses) para que se produzca la floración, el cual puede ser provocado por
temperaturas de alrededor de 10°C durante el invierno en zonas
subtropicales (Doorenbos y Kassam, 1979). La temperatura base está
alrededor de 15°C. La etapa de floración requiere de 75 a 96 grados-día,
calculados con una temperatura base de 15°C. La presencia de heladas
durante el invierno, retrasa alrededor de 20 día el inicio de la floración
(Lomas y Burd, 1983). Para propósitos prácticos, los árboles detienen su
crecimiento por debajo de 12°C y por arriba de 37°C (Bain, citado poe
Yelenosky, 1985). El crecimiento apical en plántulas es máximo entre 25 y
31°C, mientras que el crecimiento de la raíz es mejor entre 25 y 26°C. La
inducción floral normalmente se produce después de un período de varias
semanas con temperaturas no aptas para el crecimiento. La temperatura y
la humedad del suelo afectan más al proceso de floración que el fotoperíodo
(Yelenosky, 1985). Temperaturas entre 30 y 34°C durante un período de
12 horas o más provocan la absición de frutos en sus primeras etapas de
desarrollo. Existe un incremento en la tasa de crecimiento del fruto a
temperaturas entre 10 y 30°C (Reuther, 1973). En naranja tipo valencia, la

22. acumulación de carbohidratos es más rápida a temperaturas entre 5 y 15°C
(Moss, 1969). La naranja tipo valencia puede fotosintetizar eficientemente
a 10°C, sin embargo, la acumulación de asimilados fotosintéticos es mayor
a 25°C que a 10°C (Guy et al, 1981). A temperaturas entre 20 y 35°, la
respiración nocturna en hojas de naranja es casi lineal con la temperatura y
un Q10 de cerca de 2 (Possingham y Kriedmann, citados por Yelenosky,
1985).
pH:
6-7, poco tolerante a la acidez (Benacchio, 1982). 5.5 a 8, con un óptimo
de 6.8.
Drenaje:
No tolera encharcamientos, por lo que prefiere suelos con muy buen
drenaje (Aragón, 1995, Benacchio, 1982).

23. AGUACATE
Origen :
Sur de México y América Central
Teperatura:
Rango 10 a 35°C, con un óptimo para fotosíntesis de 25 a 30°C. Sin
embargo, las exigencias de temperatura varían dependiendo de la raza,
para la raza mexicana la media óptima es de 20°C con una mínima invernal
no inferior a –4°C, para la raza guatemalteca la media óptima está entre 22
y 25°C, con una mínima invernal no inferior a –2°C y para la raza antillana
la media óptima oscila entre 24 y 26°C, con una mínima invernal no inferior
a 0°C (Benacchio, 1982; Ibar, 1983). Las temperaturas mínimas no
deberían llegar a –5°C (Aragón, 1995). La viabilidad de la semilla se afecta
a temperaturas sostenidas inferiores a 15°C (Juscafresa, 1983). La
variedad Hass es sensible a heladas y puede presentar daños visibles
cuando se expone a –2.2°C por cuatro o más horas. La presencia de
temperaturas por debajo de 10°C en plena floración puede afectar gran
parte de las flores polinizadas en las últimas horas al interferir con la
fertilización (INIFAP, 1996). La mínima letal para las razas mexicana,
guatemalteca y antillana son: -9°, -6° y –4°C, respectivamente (Morin,
1967).
Humedad Ambiental:
Requiere de una humedad ambiental relativamente alta, aún durante la
época de secas (Ibar, 1983). La humedad ambiental debe ser baja para
evitar enfermedades fungosas (Benacchio, 1982).
pH:
La raza mexicana desarrolla en un pH de entre 6 y 7.5, mientras que la
antillana y la guatemalteca lo hacen en un pH de entre 6 y 7. Crece en un
rango de pH de 4.8 a 7.5, siendo el óptimo para la raza mexicana 7 a 7.5 y
para las razas guatemalteca y antillana 6 a 7 (Benacchio, 1982). El
aguacate se desarrolla en una rango de pH de 4.3 a 8.3, siendo el óptimo
alrededor de 5.6 (FAO, 1994).

24. Textura de Suelo:
Prefiere suelos francos a franco-arcillo-limosos. Se puede cultivar bajo riego
en suelos relativamente pesados, en zonas con baja precipitación,
asegurando un buen drenaje (Benacchio, 1982). Se adapta a diversos tipos
de suelo, desde los arenosos y sueltos hasta los limosos y compactos, pero
las condiciones óptimas serían un suelo franco de consistencia media,
húmica y rica en materia orgánica (Ibar, 1983).

25. DURAZNO
Altitud:
1600 a 2700 m, aunque en ciertas áreas se cultiva a 1000 m (Benacchio,
1982
Origen :
China (Childers, 1978).
Teperatura:
Es una de las especies de clima templado más susceptibles al daño de las
heladas invernales. Las regiones donde las temperaturas mínimas de –28 a
–30°C son comunes, no son aptas para este cultivo. La lenta o insuficiente
acumulación de frío, que impide la rápida brotación del durazno, puede ser
una situación benéfica para el escape de heladas primaverales tardías
(Santibáñez, 1994). La temperatura base para la etapa de desarrollo del
fruto está entre 2.5 y 4.5°C (Muñoz et al., 1986). Aplicaciones de Ethephon
en otoño retrasan la floración en primavera e incrementan la resistencia de
los botones en dormancia al daño por heladas (Gianfagna et al., citados por
Santibáñez, 1994). Después de la polinización, temperaturas entre –1 y –
1.5°C pueden dañar el primordio de la semilla y, a temperaturas de entre –
3 y –4.5°C, más del 75% de los pequeños frutos pueden morir (Ryabova,
citado por Santibáñez, 1994). Requiere de 400 a 1000 horas frío (HF,
Westwood, 1978). Existen cultivares de bajo requerimiento de frío (<400
HF), de mediano requerimiento (400-650 HF) y alto requerimiento de frío
(>750 HF). Ejemplos de estos tres grupos son: Tetela (20 HF), Flordaprince
(150 HF) y Desert Gold (350 HF) para el primero, Criollo Bajío (500 HF),
Río Grande (450 HF) y Spring Time (650 HF) para el segundo grupo y,
Elberta (850 HF), Red Haven (850 HF) y Baby Gold (800 HF) para el tercer
grupo (Díaz, 1987). En cuanto a requerimientos de frío de genotipos
criollos mexicanos, los criollos de Zacatecas requieren de 250 a 650 HF, los
criollos de Aguascalientes de 250 a 450 HF, los de Guanajuato y Michoacán
de 150 a 450 HF, los de Morelos y Estado de México de 150 a 450 HF, los
de Puebla y Veracruz de 100 a 600 HF, los de Oaxaca de 250 a 450 HF y
los de Chiapas de 150 a 450 HF (Pérez, 1995). El durazno criollo cultivado
bajo condiciones de temporal en el estado de Zacatecas, México, requiere
en promedio 550 unidades frío (UF, Método de Richardson). Con base en

26. este parámetro (UF) y el cociente precipitación/evaporación (PE) el
rendimiento (R) de este durazno criollo puede ser estimado mediante la
ecuación: R = -11.34+0.038UF+0.02PE-0.000024UF2-0.0000085PE*UF-
0.000012PE2 (Rumayor et al, 1998). Warner (1998) reporta un
requerimiento de frío para el durazno de 300 a 1200 UF, con base en 69
colectas de esta especie. Temperaturas de 18°C en adelante durante el
período de reposo invernal, contribuyen a la desacumulación de frío,
retrasando así la terminación de dicho período y la brotación en primavera
(Erez et al., 1979). Las temperaturas óptimas durante el período estival
van de 22 a 26°C (Yuste, 1997b). Antes de entrar en dormancia, la madera
del árbol sufre daños a partir de los –17°, mientras que ya en dormancia la
madera se daña a –26°C (Ashworth et al., 1983). La temperatura base y el
requerimiento térmico para desarrollo de fruto, es decir, para la etapa fin
de floración-cosecha comercial, son 2.5 a 4.4°C y 1028 a 1432 grados-día,
respectivamente (Muñoz et al., 1986).
pH:
4.5 a 7.5, desarrollando mejor en el rango de 6.5 a 7.5. No tolera
alcalinidad (Benacchio, 1982). Desarrolla en un rango de pH de 4.5 a 8.3,
con un óptimo de 6.3 (FAO, 1994).
Humedad Ambiental:
Una humedad atmosférica alta disminuye los requerimientos de frío
(Benacchio, 1982).

27. GUANABANA
Origen :
Centroamérica (Benacchio, 1982).
Altitud:
0-500 m (Benacchio, 1982).
Teperatura:
El rango de temperatura es de 15 a 35°C, con un óptimo para fotosíntesis
de 25 a 30°C. La temperatura media óptima va de 25 a 28°C (Benacchio,
1982). El rango térmico para desarrollo es de 13 a 30°C, con un óptimo
alrededor de los 23°C (FAO, 1994).
Teperatura:
El rango de temperatura es de 15 a 35°C, con un óptimo para fotosíntesis
de 25 a 30°C. La temperatura media óptima va de 25 a 28°C (Benacchio,
1982). El rango térmico para desarrollo es de 13 a 30°C, con un óptimo
alrededor de los 23°C (FAO, 1994).
pH:
El rango óptimo se ubica entre 5.0 y 7.0 (Benacchio, 1982). Desarrolla en
un rango de pH de 4.3 a 8.0, siendo el óptimo alrededor de 6.0 (FAO,
1994).
Textura de Suelo:
Los mejores suelos para la guanábana son los de textura franca o franco-arcillosa
(Benacchio, 1982), aunque puede desarrollar en suelos con otro
tipo de textura.

28. Humedad Ambiental:
Prefiere una atmósfera relativamente seca (Benacchio, 1982).
GUAYABA
Origen :
Brasil (Menon, 1951)
Ciclo Vegetativo:
Perenne Bajo sistemas de producción forzada, el ciclo primer riego-cosecha
toma 210-290 días (Ruiz, 1991).
Altitud:
0-1600 m (Benacchio, 1982). El límite económico es 560-610 m (Shigeura,
1973). La altitud máxima para producción es 1650-1750 m (Ruiz, 1993).
Teperatura:
La media anual óptima es 23-28?C (Baraldi, 1975). Rango 15-35?C. Optima
para fotosíntesis 25-30?C (Benacchio, 1982). Arboles jóvenes pueden ser
destruidos a -2?C (Le Bourdelles y Estanove, 1967). Arboles jóvenes puden
ser destruidos a -1.7?C y árboles viejos a -3.3?C (Ruehle, 1959). La
temperatura máxima letal es 45?C (Baraldi, 1975). La temperatura umbral
mínima para desarrollo es 9.2?C para la brotación, 14.8?C para la etapa
brotación-botón floral, 10?C para la etapa botón floral-inicio de floración y
8.4?C para la etapa inicio de floración-inicio de cosecha (Ruiz et al, 1992).
pH:
4.5-8.2 (Taha et al, citados por Baraldi, 1975). El rango de pH para esta
especie es de 4.5 a 8.2, con un óptimo de 6.3 (FAO, 1994).
Drenaje:
Requiere suelos con drenaje de bueno a excelente (FAO, 1994).

29. KIWI
Origen :
Sureste de Asia (Covatta y Borscak, 1988). China (Yuste, 1997b).
Altitud:
1000 a 1600 m (en regiones tropicales).
Teperatura:
El kiwi es sensible a las bajas temperaturas y prefiere climas de inviernos
suaves y veranos templados y húmedos (Yuste, 1997b). En estado de
reposo vegetativo soporta temperaturas de hasta –15°C sin sufrir daños. El
requerimiento de horas frío (por debajo de 7°C) depende de las variedades,
pero en general oscila entre 400 y 600 horas frío. Por esta razón, su cultivo
sería riesgoso en zonas donde la temperatura media del mes más frío no
baje de 10°C (Covatta y Borscak, 1988). Temperaturas superiores a 40°C
son perjudiciales, sobre todo si se asocian con déficit hídrico, ambiental y
edáfico. También le son perjudiciales temperaturas por debajo de 0°C
(Covatta y Borscak, 1988). Heladas tardías y tempranas son perjudiciales
para brotes no lignificados (Covatta y Borscak, 1988). Rango 13-35?C,
siendo la óptima 23-30?C. Por debajo de los 13?C no existe crecimiento
(Baradas, 1994).
pH:
5.5 a 7.4, con un óptimo entre 6 y 6.5 (Covatta y Borscak, 1988).
Salinidad:
No tolera salinidad y el calcáreo activo debería ser inferior al 5% (Covatta y
Borscak, 1988).

30. LIMON
Origen :
China (González, 1984)
Distribuición:
Regiones tropicales y subtropicales.
Altitud:
500-1000 m (Benacchio, 1982). Hasta 1800 m en zonas subtropicales y
hasta 750 m en zonas tropicales (Doorenbos y Kassam, 1979).
Teperatura:
Rango 13-35?C, siendo la óptima 23-30?C. Por debajo de los 13?C no
existe crecimiento (Baradas, 1994). Rango 10-36?C. El óptimo para
crecimiento y desarrollo está entre 23 y 26?C. La temperatura límite para
actividad vegetativa es 12.8?C (Benacchio, 1982). Requiere de un período
de reposo (idelalmente de dos meses) para que se produzca la floración, el
cual puede ser provocado por temperaturas de alrededor de 10°C durante
el invierno en zonas subtropicales (Doorenbos y Kassam, 1979)
pH:
6-7, poco tolerante a la acidez (Benacchio, 1982). Su rango de pH va de
6.0 a 8.3, con un óptimo de 7.0 (FAO, 1994).
Textura de Suelo:
Prefiere suelos franco-arenosos, francos y franco-arcillosos, con alta
fertilidad (Benacchio, 1982). Desarrolla en suelos de textura media a
pesada (FAO, 1994).