Este documento describe la importancia de criar insectos y organismos benéficos para el control biológico de plagas en la agricultura. Explica que los predadores, parasitoides y patógenos juegan un papel clave en el control natural de plagas y que su cría y uso puede reducir la dependencia de plaguicidas químicos. También destaca varias especies de insectos benéficos como coccinélidos, chrysopidos y avispas parasitoides que son efectivos depredadores o parasitoides de plagas comunes en cultivos.

1. 0

2. CRIANZA DE INSECTOS Y ORGANISMOS BENÉFICOS
“Con patitas de algodón va paseando de flor en flor”
INTRODUCIÓN
En la actualidad el uso de agroquímicos esta difundido en nuestro país y Latinoamérica de una
manera exagerada, su uso viene ocasionando consecuencias negativas ampliamente conocidas a
nivel de la salud, el medio ambiente y la economía campesina (Gomero y Lizárraga 1995).
Por otro lado se dan alternativas integradas que ejecutan la introducción de técnicas y métodos
biológicos para combatir una serie de plagas y enfermedades; para lograr un equilibrio ecológico
sin contaminar el ecosistema de producción.
Por el uso de plaguicidas que se ha ido incrementando en los últimos años, se están
implementando criaderos de controladores biológicos, que conducidos adecuadamente generan un
importante beneficio económico, ecológico y social (Fuentes 1994).
Ante el crecimiento de la producción agrícola intensiva y sus respectivas tecnologías, se trae
como consecuencia desequilibrios en el ecosistema apareciendo nuevas plagas, por ello se debe
aplicar un modelo de manejo ecológico de plagas, en base al control biológico y otras medidas no
químicas; para ello es necesario contar con asistencia técnica especializada en agricultura
sustentable (Gomero y Lizarraga 1995).
1

3. CAPÍTULO I
GENERALIDADES
1.1. Enemigos naturales y control biológico
Frente al problema de control de plagas, el hombre busca diversas formas de manejo, llegando a
depender casi exclusivamente del control químico y en la enorme promoción de los plaguicidas,
dejando de lado otras alternativas y principalmente desconociendo la información del control
biológico y las ventajas que posee en el beneficio de una agricultura sana y próspera.
Un ejemplo impactante fue el ocurrido en los campos de algodón en el Valle de Cañete- Perú, a
mediados de los años 50, donde los agricultores del valle gastaron alrededor del 30% del costo
de producción en aproximadamente 40 aplicaciones de insecticidas órganoclorados por
campaña; el resultado fue el desequilibrio del ecosistema del valle.
Los diversos hábitos de alimentación que presentan los organismos vivos, en especial los que
requieren de insectos, ácaros o patógenos como dieta diaria, son los más solicitados por la
importancia que tienen (Herrera 1972)
Control biológico:
Control Biológico es la represión de las plagas mediante sus enemigos naturales; es decir
mediante la acción de predadores, parásitos y patógenos. El control biológico se considera
natural, cuando se refiere a la acción de los enemigos biológicos sin la intervención del hombre;
y se le denomina artificial o aplicadocuandoes manipulado por el hombre(Pacora 1979)
Características generales del control biológico:
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4. El control biológico tiene características propias que lo distinguen de otras formas de control de
plagas, particularmente del control químico:
Es permanente, aunque con fluctuaciones propias de las interacciones entre enemigo natural
y su hospedero, y los efectos de las variaciones físicas del medioambiente.
Los efectos represivos del control biológico son relativamente lentos en contraste con la
acción inmediata de los insecticidas.
La acción del control biológico se ejerce sobre grandes áreas, de acuerdo a las condiciones
climáticas y biológicas predominantes.
A estas tres características esenciales se agregan otras que pueden separarse en favorables y
desfavorables.
Características favorables:
Los parásitos y predadores buscan a sus hospederos y presas en los lugares donde éstos se
encuentran, incluyendo sus refugios.
Los enemigos naturales, a diferencia de los pesticidas, no dejan residuos tóxicos sobre las
plantas ni contaminan el medioambiente.
La acción de los enemigos naturales tiende a intensificarse cuando las progresiones de las
plagas son más altas.
Los enemigos biológicos no producen desequilibrios en el ecosistema agrícola.
Características desfavorables:
efecto represivo lento
Los enemigos naturales son influenciados por las condiciones climáticas y biológicas del
lugar.
No todas las plagas poseen enemigos naturales eficientes desde el punto de vista
Económico. Por ejemplo: La mosca sudamericana de la fruta, Anastrepha fraterculus, es
parasitada en forma natural por la avispa Opius trinidadensis, pero el grado de parasitismo
es insuficiente(Beingolea 1967)
Características deseables de un insecto benéfico:
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5. Un parásito eficiente, además de desarrollarse normalmente en las condiciones climáticas de la
nueva zona y sincronizar su ocurrencia estacional con la del hospedero, debe tener los siguientes
caracteres:
una gran capacidad de multiplicación.
ser relativamente específico que permita una rápida respuesta numérica a los incrementos de
la población del hospedero.
tener una gran movilidad y capacidad de búsqueda de su presa u hospedero.
estar libre de hiperparásitos.
Ejemplo: El coccinélido Rodolia cardinalis y la mosca Cryptochaetum iceryae pueden ilustrar
estas características. Ambas especies se alimentan prácticamente en forma específica de la
queresa blanca de los cítricos Iceryapurchasi y son capaces de encontrar colonias aisladas de
esta queresa (Herrera 1972).
1.2. Importancia de insectos benéficos (Controladores)
a. Importancia de los predadores en el control biológico:
Cuando se refiere a control biológico de plagas agrícolas en cultivos de interés económico se
se menciona a predadores que se encuentran en forma abundante en los agroecosistemas
cuando las condiciones les son favorables.
El hábito de predar se encuentra en 167 familias en 14 órdenes de un total de 224 familias de
15 órdenes que tienen el hábito entomófago(Núñez 1998)
La cuarta parte del orden Hymenoptera tiene el habito predador, incluye principalmente las
familias: Formicidae, Vespidae, Tenthredinidae, Braconidae, Chalcididae y Microgasteridae.
El orden Diptera es importante desde el punto de vista económico por los predadores que
contiene en la familia Dolichopodidae, cuyos adultos se alimentan de adultos de mosca
minadora, mosca blanca y pulgones alados. La familia Syrphidae, es un grupo predador de
pulgones, queresas y ninfas de mosca blanca.
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6. El orden Coleóptera destacan por sus hábitos predadores, especialmente la familia
Coccinellidae de amplia distribución mundial. También son de utilidad las familias Carabidae
y Cicindellidae de preferencia de hábitos nocturnos.
El orden Lepidóptera es un grupo caracterizado por su fitofagia; también presenta
predadores ocasionales y habituales. Los verdaderos predadores son encontrados en la familia
Lycaenidae, cuyas especies se alimentan de áfidos, cochinillas harinosas o de huevos de
queresas cerosas.
El orden Neuroptera, las familias de este orden son de hábitos predadores, especialmente
en el estadio larval. Desde el punto de vista económico las familias Chrysopidae y
Hemerobiidae son las de mayor importancia por su utilidad para el control de lepidopteros,
gusano defoliadores, minadores y perforadores, pseudocóccidos (piojos harinosos),
aleyródidos (moscas blancas), queresas y áfidos.
Las larvas de lafamilia Chrysopidae son conocidas como “leones de áfidos”, y ciertos adultos
son considerados los predadores más voraces que se alimentan de cuerpos blandos de
insectos y arácnidos, de huevos y larvas de lepidópteros. Chrysoperla externa (Hagen) y
Ceraeochrysa cincta Schneider, son dos especies peruanas predadoras, de amplia
distribución, presencia de adultos a través de todo el año, fácil crianza en cautiverio, potencial
para adaptarse en varios ambientes de cultivos y su resistencia a numerosos pesticidas(Núñez
1998).
Cuadro 1. Presas y cultivos donde se han hallado ocho especies deChrysopidaeperuanos.
PREDADOR PRESA CULTIVO
1. Ceraeochrysa cincta Aleurothrixus floccosus(Maskell) cítricos
Schneider Panonychus citri (McGregor) cítricos
Aphididae cítricos
Diaspididae, Coccidae
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7. Aleurodicus cocois (Curtis) frutales
A. dispersus Russell frutales
Bemisia tabaci Gennadius camote-algodón-tomate
Trialeurodes vaporariorum Westwood hortalizas
2 Ceraeochrysa sp Planococcus citri (Risso) cítricos-olivo-palto
Phenacoccus gossypii (Town-Cock) algodón
3. Chrysoperla externa HagenSpodoptera sp maíz
S. eridania (Guerin) alfalfa-papa
Palpita quadrastigmalis (Guerin) olivo
Heliothis zea (Boddie) maíz
Heliothis virescens (Fab) algodón
Laspeyresia pomonella (L) manzano
Phyllocnistis citrella Stainton cítricos
4. Chrysoperla assoralis
S. eridania (Guerin) alfalfa
Banks
5. Chrysopodes sp Phenacoccus gossypii (Town-Cock) algodón
Pseudococcus adenudum L. palto
Coccidae palto
6. Nodita cruentata Orthezia olivicola Beingolea olivo
Schneider
7. Plesiochrysa paessleri Spodoptera sp alfalfa-camote
Navas
Palpita quadrastigmalis (Guerin) papa-maíz-olivo
6

8. Heliothis virescens (Fab) algodón
Phyllocnistis citrella Stainton cítricos
8. Suarius figuralis Banks Pseudococcidae algodón
Aphididae algodón
Fuente:Seminario control biológico, Elizabeth Núñez Sacarías, Jefa del Departamento del
. PNCB-SENASA, Lima – Perú. 1998
b. Importancia de los parasitoides en el control biológico:
En el control biológico de insectos, los parasitoides tienen un impacto extremadamente
fuerte, son más aprovechados que los predadores y patógenos en el control de plagas.
Un parasitoide es un animal carnívoro cuya etapa inmadura vive parasíticamente dentro de o
sobre el cuerpo de otro animal, se alimenta de un solo hospedero y lo mata; el adulto vive
libre. Los parasitoides tienen un papel muy sobresaliente en el control biológico clásico, un
ejemplo importante es de Aphytis que controlan por completo las escamas armadas en
cítricos en seis continentes(Cave 1998).
Los parasitoides criados masivamente y comercializados son numerosos:
Trichogramma spp. (Hym : Trichogrammatidae) parasitoide de muchos lepidópteros.
Diglyphus begini(Hym: Eulophidae) parasitoide de minadores en invernaderos.
Diachasmimorpha longicaudata parasitoide de moscas de la fruta
Cephalonomia stephanoderis parasitoide contra la broca de café
Cotesia flavipes(Hym: braconidae)parasitoidede Diatraea spp.
En la ciencia del control biológico existen controversias para los parasitoides. Tres de éstas
son:
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9. 1. El desarrollo de razas o biotipos de parasitoides resistentes a plaguicidas.
2. El impacto de parasitoides liberados sobre la fauna nativa.
3. Métodos cuantitativos para la evaluación del impacto de los parasitoides en el control de
plagas.
Para los agricultores, los parasitoides son demasiado pequeños para observar, su acción e
impacto son difíciles de visualizar y demostrar.
No se debe ignorar el uso potencial de parasitoides como indicadores de la salud de los
agroecosistemas. Debemos dar mayor apoyo ecológico a los parasitoides, conservando y no
contaminando su micro hábitat con productos químicos, facilitando su sobrevivencia con la
siembra de flores o el mantenimiento de vegetación en floración(Cave 1998).
c. Importancia de los patógenos en el control biológico:
Durante la segunda guerra mundial se desarrollaron insecticidas químicos, lo que descarto el
interés de desarrollo de bioinsecticidas. En comparación con los insecticidas químicos, los
entomopatógenos presentaban un rango de hospederos muy estrecho, difíciles de producir,
costosa producción, actividad lenta, eficiencia variable, biodegradabilidad; en la actualidad
se consideran como características ventajosas.
Los patógenos que serán usados en el futuro serán aquellos que se encuentren en forma
natural o bien que puedan ser manipulados genéticamente, que poseen las mejores
características de insecticidas químicos y características patógenas.
Los entomopatógenos pertenecen a cinco grupos principales: nematodos, protozoarios,
hongos, bacterias, y virus(Ibarra 1998).
Los nematodos se desarrollaron significativamente en la década de los noventa a base de
nematodos rhabditicos, destinados al control de plagas de suelo; también se produjo
nematodos para el control de larvas de mosquitos en sus hábitats acuáticos. La habilidad de
algunos nematodos de buscar a su hospedero les confiere una cualidad única entre los
entomopatógenos, su rango de hospederos es más amplio que las bacterias y virus.
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10. Los protozoarios como insecticidas microbianos han disminuido en las últimas décadas,
debido a problemas que presentan para su desarrollo. La mayoría de protozoarios
considerados como potenciales bioinsecticidas son los microsporidios, estos son patógenos
de lenta acción y se producen en los hospederos vivos, por lo tanto su uso como
bioinsecticidas se restringe a situaciones donde otros patógenos o insecticidas químicos sean
inefectivos, ejemplo Nosema locustae para el control de saltamontes.
Los hongos, se utilizan como bioinsecticidas, se producen en medios de cultivo como
Beauveriabassiana y Metarhiziumanisopliae, tienen un rango de hospederos amplio e
infectan a través del exoesqueleto; atacan áfidos, chicharritas, además larvas de
lepidópteros, coleópteros e insectos masticadores. Presentan gran potencialidad en ambientes
protegidos, como invernaderos; Verticillium lecanii se utiliza en cultivos de invernadero de
Gran Bretaña. En las regiones tropicales y subtropicales, Brasil es el mayor productor de
hongos entomopatógenos; su producción se enfoca hacia la muscardina verde, Metarhizium
anisopliae, para el control de salivazos en caña y pasto.
La bacteria esporógena Bacillus thuringiensis (Bt) es un insecticida microbiano exitoso, con
más de 30 sub especies; su espectro de actividad se limita a tres patotipos activos contra:
Lepidópteros, Dípteros, y Coleópteros. La actividad insecticida son los cristales proteicos que
producen durante su esporulación. Estas proteínas son venenos estomacales altamente
específicos, debido a que no existe una actividad de contacto por parte de estas toxinas, no
son activas contra áfidos, escamas, mosquitas blancas o chicharritas.ejemplos:
Bacillus thurigensisKurstaki contra insectos Lepidópteros.
B. thurigiensis israelensis contra larvas de mosquitos y jejenes.
B. thurigensis tenebrionis contra algunos Coleópteros.
B.sphaericus , se usa en el control de larvas de mosquitos del genero Culex.
B. popilliae, se usa en el control de larvas de algunos escarabajos; no se produce fácilmente,
porque necesita del hospedero para su proliferación.
Existen una gran diversidad de virus patógenos de insectos; la mayoría de los que se han
desarrollado o se encuentran en proceso de desarrollo como insecticidas microbianos son los
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11. virus de la poliedrosis nuclear (VPN) y los virus de la granulosis(VG), pertenecientes a la
familia Baculoviridae. Todos los virus son parásitos obligados esto limita el interés
comercial para el desarrollo de virus como insecticidas microbianos, excepto aquellos que
atacan plagas de particular importancia o que presentan un rango de hospederos
amplio(Ibarra 1998).
1.3. Avances del control biológico actual
Control Biológico en Cajamarca.
En la Región de Cajamarca se cuenta con varios Laboratorios de Insectos Útiles y de
Entomopatógenos que producen especies para el control de plagas en cultivos de importancia
económica; el Programa Nacional de Control Biológico, propone a los agricultores una
alternativa para el control de plagas a bajos costos y con los beneficios conocidos de este
método como son:
Evitar la contaminación ambiental.
Evitar los residuos tóxicos en los productos de consumo
Durante las últimas campañas agrícolas se han realizado trabajos de diagnóstico, monitoreo y
evaluaciones sobre dinámica de poblaciones y grado de eficiencia de la fauna benéfica presente
en cultivos de maíz y papa. Así se registran especies nativas de coccinélidos, Telenomus sp,
Trichogrammaspp , grupos de macro y micro hymenopteros ytachínidos;y otras en proceso de
identificación.
Los centros de crianza son: Los laboratorios de la Estación Experimental Baños del Inca -
Cajamarca, San Pedro - San Pablo, Malcas – Cajabamba y el proyecto Pejeza (Cajamarca – La
Libertad) ; se están multiplicando principalmente las especies: (Vilar 1995).
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12. a. Trichogramma spp ( Hym: Trichogrammatidae)
b. Copidosomakoheleri( Hym: Encyrtidae)
Laboratorios de Entomopatógenos en Cajamarca
Ubicadas en la Estación Experimental Baños del Inca y en la Universidad Nacional de
Cajamarca, operan los laboratorios de Producción del hongo blanco Beauveria brongniarti y de
Baculovirus phthorimaea que son productos específicos para el control de larvas y adultos de
Premnotrypes spp (Gorgojo de los Andes) y Phthorimaea operculella (polilla de la papa)
respectivamente.
El SENASA – Cajamarca, cuenta con una capacidad instalada vía convenio con la Universidad
Nacional de Cajamarca, Estación Experimental Agraria – Baños del Inca, para producir 1 TM de
"Baculovirus" en polvo por mes, cantidad que es suficiente para atender la demanda de la
Dirección Sub Regional de Agricultura Cajamarca.
En el año 1995, se ha producido en el Laboratorio de SENASA – Cajamarca 1205 kilogramos
de "Baculovirus", promocionado su uso en el ámbito de Empresas Asociativas,Agricultores
individuales, entre otros(Vilar 1995).
Mosca de la fruta: control en marcha
El mango es uno de los frutales más importantes que se conducen en el valle Alto Jequetepeque,
en una superficie aproximada de 600 ha. con una producción de 9,000 Tn al año. Tambien
destaca la chirimoya con una superficie de 400 ha. La plaga que causa mayor daño a estos
frutales es la "Mosca de la Fruta" (Anastrepha spp.y Ceratitis capitata) teniendo como
hospederos de primera instancia al Guayabo, Chirimoya, Níspero, Pacae, Ciruela, Cítricos y
otros.
El SENASA Cajamarca a través del Programa de Control y Erradicación de "Moscas de la
Fruta", ha logrado determinar la presencia de dichas especies en niveles y poblaciones bastante
elevados del género Anastrepha, en cultivos de diferentes especies frutales que no presentan una
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13. floración uniforme, produciéndose maduraciones alternadas la cual da oportunidad a las hembras
de encontrar frutos donde ovipositar y ofrecer alimento suficiente para las larvas.
Las especies de Anastrepha que se han determinado en el valle son: Anastrepha fraterculus, A.
striata y A. distincta. Siendo las rutas de mayor infestación Puclush y Yaminchad (Provincia de
San Miguel y San Pablo).
Para determinar el nivel poblacional de "Moscas de la Fruta", se monitorea todo el valle de
Jequetepeque con la instalación de trampas tipo McPhail, se distribuyen teniendo en cuenta la
formación de frutos y con densidad de trampa cada tres hectáreas.
Las trampas son cargadas cada 7 días con cebos preparados basadas en proteína hidrolizada
como atrayente, Borax granulado como conservante y agua como disolvente en las siguientes
proporciones: por 1 litro de agua 20 ml de Proteína y 10 gr de Borax. Logrando encontrar un
nivel poblacional expresado en Mosca Trampa Día (M.T.D.) , el mismo que tiende a
incrementarse en los meses de verano (enero-marzo) época de producción de la mayoría de los
frutales tanto cultivados como nativos.
Paralelamente a esta actividad se realiza otros métodos que permiten interrumpir el ciclo
biológico de la plaga como: recojo y enterrado de frutos infestados semanalmente de diferentes
frutales hospederos, seguido de la aradura de suelo con la finalidad de exponer las pupas al sol y
a las aves, eliminación de frutales hospederos dentro de huertos organizados de mango, podas de
raleo con el objeto de dar mayor iluminación solar y ventilación a la plantación.
(http://www.senasa.gob.pe/0/sanidad_vegetal.aspx)
12

14. 1.4. Plagas en el País controladas por insectos benéficos
Control biológico en el Perú:
El control biológico en el Perú se inicia en el año 1904, y desde ese año a la actualidad se
intentaron de introducir 98 especies benéficas, de las cuales 29 se consideran implantadas; 5
sin información, 12 en proceso de adaptación y 52 no implantadas hasta la fecha.
De las 29 especies benéficas implantadas, 13 especies ejercieron control completo en 11
plagas, habiéndose calculado solo el beneficio obtenido de 10 especies benéficas que controlan
9 plagas.
Si bien el control biológico en el Perú inicia en 1904, alcanza su mayor desarrollo a partir de
1960 con la creación del Centro de Introducción y Cría de Insectos Útiles (CICIU), entidad que
trabajo en la investigación y aplicación del control biológico, hasta la creación del Programa
Nacional de Control biológico en el año 1995,organismo no estructurado de Servicio Nacional
de Sanidad Agraria (SENASA), que tiene como objeto intensificar la utilización del control
biológico en cultivos de importancia económica reduciendo la aplicación de agroquímicos para
la cual se capacita y se alquila equipo de calidad para trabajar en la producción de especies
benéficas(Care- Perú 1998)
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15. Cuadro 2. Relación de especies benéficas introducidas e implantadas en el país.
Especies benéficas Años
exóticas Plagas que controlan Procedencia intentados Responsable
Aphytis diaspidis (How)
Pinnaspis strachani Ferris y
(Hym:Aphelinidae) Rao (Hem: diaspididae) Ceylan 1904-1912 Towsend
Aphytis fuscipennis( How)
Pinnaspis strachani Ferris y
(Hym:Aphelinidae) Rao (Hem: diaspididae) Barbados 1904-1913 Towsend
Arhenophagus Pinnaspis strachani Ferris y
chionaspidisAuriv. Rao
(Hym:Encyrtidae) (Hem: diaspididae) Barbados 1904-1914 Towsend
Aspidiotiphagus citrinus Pinnaspis strachani Ferris y
(Crwf.) Rao
( Hym: Aphelinidae) (Hem: diaspididae) Hawai 1904-1915 Towsend
Prospaltella berlesei How
Pinnaspis strachani Ferris y
( Hym: Aphelinidae) Rao(Hem: diaspididae) Ceylan 1904-1916 Towsend
Aphelinus mali Eriosoma lanigerum
(Haldeman) (Hausm.)
(Hym:Aphelinidae) (Hem: aphididae) USA 1922 Wille-Solano
Rodalia cardinalis
Mulsant Icerya purchasi Msk
(Col: coccinellidae) (Hom: margarodidae) USA 1932 E.E.A.L.M
Metaphycus lounsbury
How Saissetia oleae Brn.
(Hym: Encyrtidae) (Hem: coccidae) USA 1936 E.E.A.L.M
Scutellista cyanea Motsch Saissetia oleae Brn.
(Hem: coccidae) USA 1936 E.E.A.L.M
Toxoptera spp
Hippodamia convergens
Guer (Hem: aphididae) USA 1937 E.E.A.L.M
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16. (Col: coccinellidae)
Blaesoxipha caridei Schistocerca piceifrons
Brethes peruviana Lynch A.
( Dip: Sarcophagidae) (Ort: locustidae) Argentina 1947 E.E.A.L.M
Aphytis lepidosaphes
Compere Lepidosaphes beckii Newm
(Hym:Aphelinidae) (Hem: diaspididae) USA 1957 Beingolea
Lindorus lophantae Selenaspidus articulatus
(Blaisd) Morgan
( Col: Coccinellidae) (Hem: diaspididae) Trinidad 1971 CICIU
Methapycus helvolus Selenaspidus articulatus
Comp. Morgan
(Hym: Encyrtidae) (Hem: diaspididae) USA 1961 CICIU
Aphytis holoxantus De
Bach. Chrysomphalus ficus L.
(Hym:Aphelinidae) (Hem: Diaspididae) USA 1963 CICIU
Coccophagus rusti
Compere Saissetia spp
(Hym:Aphelinidae) (Hem: coccidae) USA 1970 CICIU
Anagyrus saccharicola Saccharicoccus sacchari
Timb. Cock
(Hym: Encyrtidae) ( Hem: Pseudococcidae) Hawai 1970 CICIU
Rhyzobius pulchellus
Montrozier Aspidiotus spp
(Col: Coccinellidae) (Hem: diaspididae) Trinidad 1971 CICIU
Selenaspidus articulatus
Aphytis roseni De Bach Morgan
(Hym:Aphelinidae) (Hem: diaspididae) Uganda 1971 CICIU
Aphidius smithi Sher & Acyrthosiphon pisum
Rao (Harris) Chile 1973 CICIU
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17. (Hym:Aphelinidae) ( Hem:Aphididae)
Encyrtus lecaniorum
(Mayr) Saissetia oleae Bem.
(Hym:Encyrtidae) (Hem: coccidae) USA 1974 CICIU
Aleurothrixus floccosus
Cales noacki Howard (Maskell)
(Hym:Aphelinidae) (Hem: aleyrodidae) USA 1974-1975 CICIU
Trichogramma euproctidis
Ashmead Diatraea saccharalis(Fab.)
(Hym: trichogrammatidae) (Lep:Pyralidae) Trinidad 1975 CICIU
Pachycrepoideus
vindemmiae Ceratitis capitata Wied
(Dip: Tephritidae) Costa Rica 1978 CICIU-EEALM
Trichogramma brasiliensis Alabama argillacea
Ashmead (Hubner)
(Hym: trichogrammatidae) (Lep: noctudae) Brasil 1983 CICIU
Coccidophilus citricola Quadraspidiotus perniciosus
Brethes Cosmstock
(Col: coccinellidae) (Hem: diaspididae) Chile 1984-1985 CICIU
Pectinophora gossypiella
Trichogramma fuentesi Saunders
Torr(Hym:
trichogrammatidae) (Lep:gelechiidae) Mexico 1985 CICIU
Spalangia endius Wlk Musca domestica Linnaeus
( Hym: Pteromalidae) (Dip: muscidae) Chile 1986 CICIU
Ageniaspis citrícola Phyllocnistis citrella
(Hym: Encyrtidae) (Lep: gracillariidae) USA 1996-1997 CICIU
Fuente:Seminario Control biológico, Luís Valdivieso Jara, Director Técnico del PNCB-
SENASA, Lima – Perú. 1998
Cuadro 3. Especies benéficas introducidas al país en diferentes cultivos importantes.
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18. CULTIVOS/PLAGAS SUSCEPTIBLE ESPECIE BENÉFICA FAMILIA CARACTERÍSTICA
Alfalfa
Acyrthosiphon
pisum(H) N Aphidius smithi S & R Braconidae (1) (A) (PI)
Algodón
Alabama argillacea Trichogramma
(Hub) H brasiliensis Ashmead Trichogrammatidae (1) (A) (PI)
Heliothis virescens
Fabricius H T. pretiosum Riley Trichogrammatidae (2) (A) (PI)
Pectinophora Trichogrammatoidea
gossypiella Saunders H bactrae Nagaraja Trichogrammatidae (2) (A) (PI)
Café
Saissetia coffeae Scutellista cyanea
Walk H Motsch Pteromalidae (1) (A) (PI)
Metaphycus helvolus
S.coffeae W. N Comp. Encyrtidae (1) (A) (PI)
Coccophagus rusti
S.coffeae W. N Compere Aphelinidae (1) (A) (PI)
Caña de Azucar
Diatraea saccharalis Cotesia flavipes
F. L Cameron Braconidae (2) (A) (PI)
Sacchyaricoccus Anagyrus saccharicola
sacchari F. N Timb. Encyrtidae (1) (A) (PI)
Citricos
Aleurothrixus
floccosus Mask N Cales noacki Howard Aphelinidae (1) (A) (PI)
Rodalia cardinalis
Icerya purchasi Mask NyA (Mulsant) Coccinellidae (1) (A) (D)
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19. Selenaspidus
articulatus Morg A Aphytis roseni De Bach Aphelinidae (1) (A) (PE)
Chrysomphalus Aphytis holoxanthus De
aonidum LA Bach Aphelinidae (1) (A) (PE)
Phyllocnisti citrella
Station H-L Ageniaspis citricola Encyrtidae (2) (A) (PI)
Manzano
Eriosoma lanigerum Aphelinus mali
(Hausman) N.A (Haldeman) Aphelinidae (1) (A) (PI)
Trichogramma
Cydia pomonella L. H enbriophagum Hatig Trichogrammatidae (2) (A) (PI)
C. pomonella L. H T. dendrolini Matsumura Trichogrammatidae (2) (A) (PI)
Olivo
Hemiberlesia latanie
(Sign.) N.A Aphytis diaspidis How. Aphelinidae (1) (A) (PE)
H. latanie (S) N.A Aspidiotiphagus citrinus Aphelinidae (1) (A) (PI)
Saissetia coffeae Metaphycus helvolus
Walk N Comp. Encyrtidae (2) (A) (PI)
Coccophagus rusti
S.coffeae W. N Compere Aphelinidae (2) (A) (PI)
S.coffeae W. H Scutellista cyanea M. Pteromalidae (2) (A) (D)
Saissetia oleae N.A Metaphycus lounsburyii Encyrtidae (2) (A) (P)
S. oleae N M. helvolus (C) Encyrtidae (2) (A) (P)
Scutellista cyanea
S. oleae H Motsch Pteromalidae (2) (A) (D)
Coccophagus rusti
S. oleae N Compere Aphelinidae (2) (A) (P)
(1) Colectado del campo A=Estado adulto N=Estado ninfa PI=Parasitoide interno
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20. (2) Criado en laboratorio L=Estado larval H=Estado de huevo PE= Parasitoide externo
V=Viriones C=Conicidas
Fuente : Seminario control biológico, Luís Valdivieso Jara, Director Técnico del PNCB-
SENASA, Lima – Perú. 1998
Cuadro4. Principales plagas de cítricos y sus controladores biológicos en el Perú.
Estado Caract Contro
Plaga suceptible Especie benefica Orden/Familia . l
Aleurothrixus Cales noacki (1) (A)
floccosus Mask N Howard Hym:Aphelinidae (PI) C
Amitus spinifera (2) (A)
A. floccosus M. N Brethes Hym:Plategasteridae (PI) S
Aphis citricidus Lysiphlebus (2) (A)
(Kirkaldy) N-A testaceipes( c ) Hym:Braconidae (PI) S
Arigyrotaenia Trichogramma Hym:Trichogrammatoid (2) (A)
sphaleropa Meyfik H exiguum P&P ea (PI) P
Ceratitis capitata Biosteres (1) (A)
Weidman L longicaudatus Hym:Braconidae (PI) P
Metaphycus
Coccus hesperidum luteolus (1) (A)
L. N (Timberlake) Hym:Encyrtidae (PI) C
Metaphycus
Coccus viridis luteolus (1) (A)
(Green) N (Timberlake) Hym:Encyrtidae (PI) C
Aphytis
Chrysomphalus holoxanthus De (1) (A)
aonidum (L) N-A Bach Hym:Aphelinidae (PE) C
Icerya purchasi Rodalia cardinalis (1) (A-
Mask H-N-A (Mulsant) Col:Coccinellidae L) (P) C
A Hym:Aphelinidae P
Lepidosaphes Aphytis (1) (A)
19

21. beckii (Newman) lepidosaphescomp. (PE)
Ageniaspis
Phyllocnistis citricola (1) (A)
citrella Stainton H-Li Logvinoskaya Hym:Encyrtidae (PI) C
Pinnaspis Aphytis
aspidistrae mytilaspidis (Le (1) (A)
Signoret H-Li Baron) Hym:Aphelinidae (PE) P
Planococcus citri Leptomastidea (2) (A)
Risso) N-A abnormis (Girauld) Hym:Encyrtidae (PI) S
Planococcus citri (2) (A-
Risso) N-A Sympherobius sp Neu:Sympherobidae L) (P) S
Planococcus citri Coccidoxenoides (2) (A)
Risso) N-A peregrinus Hym:Encyrtidae (PI) S
Selenaspidus Aphytis roseni de (1) (A)
articulatus Morg. A Bach Hym:Aphelinidae (PE) C
Saissetia coffea Metaphycus (1) (A)
(Wolker) N-A helvolus Hym:Encyrtidae (PI) C
Toxoptera aurantii Aphidius colemani (2) (A)
Bay N-A (Vierecki) Hym:Braconidae (PI) P
N = Ninfa (1) exótico C=Completo
Li= Larva inicial (2) nativo S=Sustancial
A= Adulto (P) predador P=Parcial
PI= Parasitoide interno (PE) Parasitoide externo
H= Huevo
L= Larva
Fuente : Seminario control biológico, Luís Valdivieso Jara, Director Técnico del PNCB-
SENASA, Lima – Perú. 1998
20

22. CAPÍTULO II
INSECTOS COMO CONTROLADORES BIOLÓGICOS
2.1. Predadores:
Se caracterizan porque se alimentan de lasplagas, principalmente insectos, causan la muerte en
forma violenta y rápida. Son un grupo muy diverso de animales, incluyendo vertebrados como
batracios, reptiles, aves y murciélagos; e invertebrados como ácaros, arañas e insectos. Muchos
predadores se alimentan de insectos dañinos como de insectos benéficos. Los insectos
son los predadores invertebrados más importantes siguiendo las arañas y los ácaros
(http://www.agritacna.gob.pe/inprex.php?pagina=pagroindus)
Insectos Predadores
Los insectos predadores incluyen especies masticadoras como especies picadoras-chupadoras.
Los insectos masticadores se alimentan solo de presas; los insectos picadores chupadores
predadores se alimentan de los jugos de sus presas como de los jugos de las plantas que le
permiten la subsistencia del predador, pero por lo general éste requiere de los jugos animales
para reproducirse. En general los adultos predadores tienen el mismo régimen alimenticio que
los estados inmaduros, larvas o ninfas. La mayoría de los insectos predadores se encuentran
entre los ordenes: Coleópteros, Hemípteros y Neurópteros; Dípteros e Himenópteros en menor
grado (Beingolea 1990).
2.1.1. Neuropteros predadores
Los insectos del orden neuróptero son especialmente predadores y las dos familias más
importantes son Chrysopidae y Hemerobiidae.
21

23. a. Familia Chrysopidae
Los crisópidos adultos se caracterizan porque sus alas son reticuladasde color verde, sus
larvas son predadoras voraces deáfidos, arañitas rojas, cochinillas harinosas, huevos de
diversos insectos y larvas pequeñas. Dentro de esta familia se ubican: Chrysoperla
externa (Hagen) común en maíz yCeraeochrysa cincta Schneider en cítricos
b. Familias Hemerobiidae y Sympherobiidae
Los adultos tienen alas reticuladas de color bruno y son más pequeños que los crisópidos.
Sympherobius californicus Banks es predador de cochinillas harinosas y Hemerobius sp.
predata arañita roja y varios insectos pequeños (Núñez 1988).
Figura 1. Predadores crisópidos(SegúnNúñez 1988).
1-2 : Hemerobius sp (Hemerobiidae) (1: adulto; 2: larva)
3 : Chrysopa californica (Chrysopidae)
22

24. 4-7 : Chrysoperla externa (4: adulto 5: larva predando 6: huevos 7: cocón)
8 : Ceraeochrysa cincta(Chrysopidae), ciclo biológico.
2.1.2.Coleópteros Predadores
La mayoría de los coleópteros o escarabajos predadores pertenecen a las familias Carabidae,
Cicindellidae y Coccinellidae.
a. Familias Carabidae y Cicindellidae
Los carábidos y cicindélidos son escarabajos grandes a medianos, muy agresivos, voraces, y
zoófagos; caminan rápidamente en el suelo y por lo general no suben a las plantas. Durante
la roturación del suelo estos escarabajos se presentan en gran número devorando larvas y
pupas de insectos que quedan al descubierto. El uso de insecticidas ha reducido las
poblaciones de estospredadores. En la costa central del Perú encontramos: Calosoma
abreviatum Chand y Anisotarsus spp (Carábidos) de hábitos nocturnos, Megacephala sp, y
Cicindela sp. (Cicindélidos). Hylithus es un género de carábido registradoen la sierra
(Erwin1990).
23

25. Figura 2. Coleópteros predadores(Según Erwin 1990).
1-2 : Megacephala sp (Cicindelidae) (1: adulto, 2: larva en su túnel subterráneo)
3 : Calosoma sp (Carabidae)
4-5 : Calosomaabreviatum (Carabidae) (4: adulto predatando una oruga; 5: larva
predatando una oruga).
6 : Harpalus sp (Carabidae)
7 : Cicindela sp (Cicindelidae).
b. Familia Coccinellidae
Los coccinélidos son escarabajos predadores de áfídos, cochinillas harinosas y queresas.
Unas pocas especies de los géneros Epilachna y Psylobora son fitófagas o micófagas.
Son insectos predadores más comunes; se les conoce comúnmente como "vaquitas de San
José", "mariquitas" y otros nombres. La especie más común es Hippodamia convergens
Guer. especie que ha sido introducida en el país. Entre otras especies están
Cyclonedasanguínea L., Coleomegilla maculata D.E., Eriopis connexa Germ., Pullas sp.,
Scymnus ocellatus Sharp (Romero et. al. 1974).
Neda ostrina, Coccinellina sp., Coccinella sp., son especies de preferencia en la sierra;
Brachyacantha bistripustulata y varias especies de Azya en la seja de selva son predadoras
de queresas coccidas (Carrasco 1962).
Microweisia sp. es predador de arañitas rojas del algodonero, Zagreushexasticta predata
cochinillas harinosas y Orthezia (Pacora 1980).
Lindoruslonphanthae predata al piojo blanco de los cítricos. Rhizobius pulchellus es un
eficiente predador de queresas diaspididas (Beingolea 1990).
La acción de los coccinélidos es relativamente lenta, y en general no se les puede catalogar
entre los más eficientes enemigos naturales, a excepción de Rodolia cardinalis, este es
predador de la queresa algodonosa de los cítricos (Palomino y Dale 1988).
24

26. Figura 3. Escarabajos coccinéllidos
1-5 : Hippodamia convergens, predador de pulgones (1: adulto; 2: huevos; 3: larva; 4: pupa; 5:
adulto y larva )
6-7 : Scymnus sp., predador de pulgones (6: adulto; 7: larva ) (Según Ojeda 1971)
8 : Cycloneda sanguinea, predador de pulgones.
9 : Coleomegilla maculata, predador de pulgones.
10-11 : Zagreus hexasticta, predador de cochinillas harinosas y queresa móvil (10: adulto; 11:
larva) (Según Pacora1980)
12-13 Azya sp., predador de queresas (12: adulto; 13: larva)
14-15 Lindoruslophanthae, predador de piojo blanco (14: adulto; 15: larva) (Según Marín
1983).
16-17 Rodoliacardinalis, predador de la cochinilla algodonosa de los cítricos (16: adulto; 17:
larva).
25

27. 2.1.3. Hemípteros Predadores
Entre los hemípteros existen especies importantes predadoras distribuidas en diversas
familias.
a. Familia Miridae
Son chinches pequeños y ovales; muchas son especies fitófagas otros son predadoras,
especialmente de huevos de Lepidópteros. Los géneros predadores más comunes son:
Rhinacloa,Hyalochloria, Campylomma, Ceratocapsus, Spanogonicus y Hyaliodes presentes
en los campos de algodón.
Los chiches Rhinacloa forticornis, R. aricana y R. subpallidicornis) constituyen el principal
agente regulador de las poblaciones de Heliothis.Hyalochloria denticomis es unimportante
predador de huevos del gusano de la hoja del algodonero (Anomis texana). Ceratocapsus
dispersus predata huevos y larvas pequeñas de Bucculatrix y del gusano rosado(Encalada
y Viñas 1990)
b. Familia Anthocoridae
Son chinches pequeñas que viven entre las flores y terminales de las plantas. Muchas
especies son predadoras. Orius insidiosus (Say) y Paratriphleps laeviusculus Champ, son
eficientes predadores de huevos de Heliothis y otros lepidópteros (Cueva et. al.1974)
c. Familia Nabidae
Son chinches delgados, frecuentes en gramíneas y plantas herbáceas, se alimentan de
larvitas y otros insectos pequeños. Nabis punctipennis Blanch, y N. capsiformis Germar se
presentan en la costa del país(Ojeda 1971)
d. Familia Neididae
Son chinches muy delgados con patas largas. En la costa se presenta Aknysus spinosus Dist.
predador de huevos y larvas pequeñas.
26

28. e. Familia Reduviidae
Son chinches carnívoros y hematófagos; algunas son predadores de insectos. Zelus spp. son
comunes en plantaciones de maíz donde hay larvas de lepidópteros. Rasahus hamatuses
menos común y su picadura al hombre es muy dolorosa.
f. Familia Lygaeidae
Son chinches mayormente fitófagos pero algunas especies son predadoras; entre ellas
destaca Geocoris punctipes Say y G. borealis destruyen huevos y larvas pequeñas de
lepidópteros.
g. Familia Pentatomidae
Llamados también “chinches escudo”, la mayor parte se alimentan del jugo de las plantas
pero algunas especies son predadoras de larvas de lepidópteros y otros insectos. En el
algodonero se presentan las especies: Euchistus convergens (H.S.), E. incies, Piezodorus
guildini Westw., Podisusnigrispinus, P. sordidus y Edessa sp. pero su eficiencia no parece
importante.
27

29. Figura 4. Hemípteros predadores de huevos y larvas
1-2 : Zelus sp (Reduviidae) (1: adulto; 2: ninfa)
3 : Ceratocapusdispersus (Miridae) (Según Encalada y Viñas1990)
4-5 : Nabis sp. (Nabidae)(4: Adulto; 5: ninfa)
6-7 : Hyalochloriadenticornis (Miridae) (8: adulto; 9: ninfa) (Según Beingolea 1990)
8-9 : Rhinacloaforticornis (Miridae) (8: adulto; 9: ninfa) (Según Herrera1965)
10-11 : Paratriphlepslaeviusculus (Anthocoridae) (10: adulto; 11 ninfas)
12-13 : Geocoris sp (Lygaeidae) (12: adulto; 13: ninfa)
14 : Podisus sp (Pentatomidae)
15-16 : Oriusinsidiosus (Anthocoridae)(15:adulto;16:ninfa)
28

30. 2.2. Parasitoides:
Se caracterizan porque una parte de su ciclo de vida lo realiza a expensas de un hospedero.
Pueden ser endoparasitoides (internos) o sea la hembra deposita sus huevos dentro del
hospedero o ectoparasitoides (externos), si los huevos son depositados sobre los
hospederos(http://www.agritacna.gob.pe/inprex.php?pagina=pagroindus)
Insectos Parasitoides:
Los parasitoides adultos se alimentan del néctar de las flores, del polen, exudaciones de plantas
o de los fluidos del cuerpo del hospedero herido por la punción del ovipositor, algunos
microhimenópteros parasitoides de queresas producen apreciable mortalidad de los hospederos
como consecuencia del proceso de alimentación, es común en las avispitas de la familia
Aphelinidae. Los parasitoides de las plagas pertenecen casi exclusivamente a las órdenes de los
Himenópteros o avispas y Dípteros o moscas.
2.2.1.Himenópteros parásitos
Las avispas constituyen el grupo más numeroso de parásitos de plagas. Las superfamilias
Ichneumonoidea y Chalcidoidea abarcan el mayor número de especies. En menor importancia
figuran las superfamilias Proctotrupoidea, Bethyloidea, Cynipoidea, Chrysidoidea, Scolioidea
y Sphecoidea(Whu 1985).
a. Familia Braconidae
Son en su mayoría pequeñas avispas que parasitan principalmente lepidópteros y
coleópteros; en menor grado dípteros, homópteros y otros grupos; actúan como ecto o
endoparásitos, parásitos huevo-larvales, huevo-pupales o larvales. Los bracónidos son de
ciclo de vida corta.
Entre las especies importantes tenemos: Ragas gossyppi Mués, y Meteorus molinensis
Porter, parásitos del gusano de hoja del algodonero. Lysiphlebus testaceipes Cressan,
Aphidius colemani Viereck, A. matricariae Haliday, Diaeretiellarapae (Me. Intosh) y Praon
sp. parásitos de pulgones o áfidos ( Redolfi y Ortiz 1980).
29

31. Apanteles gelechiidivoris Marsh y otras especies del mismo género parasitan a las polillas
de la papa ( Redolfi y Vargas 1983).
Apanteles flavipes es una especie introducida contra el barreno de la caña,Orgilus sp.
parasita al gusano perforador de plantas tiernas de maíz; Chelonus sp. parasita al pegador de
las hojas del fríjol(Cueva et. al.1980).
45
Figura 5. Parasitoides de la Familia Braconidae (Según Redolfi y Ortiz 1980)
1 Aphidius sp
2 Larva de Trioxys en cuerpo de pulgón
3 Lysiphlebus parasitando
4 Apanteles sp
5 Leurinion primum, parasitoide del gusano perforador de la hoja del algodonero
b. Familia Trichogrammatidae:
Son avispitas muy pequeñas que parasitan huevos de lepidópteros y homópteros. El género
Trichogramma es mundialmente conocido, estas avispitas se crían en el Perú desde hace
30

32. muchos años. Las primeras referencias nacionales mencionan a Trichogramma minutum
pero en realidad esta especie no existe en América del Sur sino en América del Norte donde
parásita huevos de lepidópteros en árboles frutales y forestales.
En el Perú se cría comúnmente Trichogramma fasciatum Perkins contra el barreno de la
caña de azúcar y la especie T. brasiliensis contra Heliothis y otros lepidópteros del
algodonero(Pollack 1975).
El año 1976 se introdujeron al país las especies T. euproctidis contra huevos del gusano de
brotes del olivo; T. japonicum, T. australicum y T. chilotraea contra huevos del cañero; T.
robustus y Trichogrammatoidea armígera contra Heliothis(Whu 1985).
Figura 6. Parasitoides de huevos
1 : Trichogramma brasiliensis (Trichogrammatidae), parasitoide de huevos de
Heliothis sp. (1: ciclo de vida).
2 : Telenomus remus (Scelionidade), paraitoide de huevos de cogollero y otros noctuidos
3 : Tetrastichus sp. ( Eulophidae), parasitoide de huevos de escarabajos
31

33. Figura 7. Parasitoides de la polilla de la papa(Según Redolfi y Ortiz 1980)
1 : Apanteles gelechiidivoris (Braconidae)
2 : Chelonus phthorimaeae (Braconidae)
3 : Dibrachys cavus (Pteromalidae), parasitoide polífago: ataca lepidopteros, dípteros,
coleópteros.
4 : Copidosoma koehleri (Encyrtidae).
Figura 8. Parasitoides de moscas blancas
1 : Eretmocerus haldemani (aphelinidae)
2 : Eretmocerusserius (aphelinidae)
32

34. 3-6 : Encarsia sp (aphelinidae) (3: pupas de mosca blanca enegrecidas por parasitismo; 4: larva
del parasitoide; 5: larva de parasitoide en cuerpo de pupa de mosca blanca; 6: adulto).
7 : Amitus sp (Platygasteridae)
2.2.2. Dípteros parásitos
Las moscas parásitas atacan larvas de lepidópteros y en menor grado larvas y adultos de
coleópteros, ninfas y adultos de hemípteros. No poseen ovipositor alargado, la mayoría de sus
hospederos son insectos que no están protegidos en túneles o minas, salvo algunas
excepciones.
Las moscas parásitas son en su mayor parte larvípara u ovo-larvíparas, pero también hay
algunas especies que son ovíparas. Las larvitas de las moscas suelen permanecer inactivas por
un tiempo dentro del cuerpo del hospedero hasta que el hospedero ha alcanzado cierto
desarrollo, luego la larva del parasitoide crece en forma rápida. Las moscas adultas se
alimentan del néctar de las plantas y de diversos detritos.
La mayoría de las especies de moscas parásitas pertenecen a la familia Tachinidae. También
se encuentran algunas especies parásitas en las familias Sarcophagidae, Cecidomyiidae,
Phoridae y otras.
a. Familia Tachinidae
Son moscas de tamaño mediano a grande con cerdas bien desarrolladas. La actividad de los
adultos es influenciada por las condiciones ambientales pero en general son buenos
voladores; parasitan larvas de lepidópteros y coleópteros, ninfas y adultos de hemípteros, y
otros insectos.
Los hábitos de oviposición son muy variados por ejemplo Las hembras de Winthemia
reliqua y de otras especies son parásitos comunes del cogollero y otrosnoctuidos, y colocan
los huevos en los segmentos torácicos del hospedero(Vergara y Cisneros 1990).
Archytas marmoratus parasitoide de las mismas plagas, deposita sus larvas sobre las hojas
en donde quedan a la expectativa del paso de sus hospederos.
33

35. Rhamphinina discalis T.T., parásito de los gusanos blancos del suelo depositan suspequeñas
larvas en el suelo donde penetran hasta alcanzar a sushospederos.
Paratheresia claripalpis Wulp, parásito del barreno de la caña del azúcar, deposita sus
larvas sobre el tallo y de allí se movilizan en busca del hospedero en las galerías de la caña
(Risco 1963).
Gonia peruviana, parasitoide de gusanos de tierra o gusanos cortadores, deposita sobre las
hojas huevos microscópicos que son ingeridos por las larvas junto con su alimento.
b. Familia Sarcophagidae
Son moscas pequeñas a medianas de hábitos desde saprófagos hasta parásitos de animales
superiores. Las especies parásitas de plagas son en su mayoría larvíparas y atacan
especialmente a orthópteros y en menor grado a lepidópteros, moscas, chinches y avispas.
Sarcophaga chrysostoma W. ataca a los huevos de la langosta migratoria sudamericana en
Jaén y Blaesoxipha carideiBrethes es un parasitoide importante de la misma langosta en
Ayacucho (Beingolea 1990)
c. Familia Bombyliidae
Son moscas que tienen el aspecto de abejorros, cuerpo robusto cubierto densamente de
pelos. Las larvas pueden ser parasitoides o predadoras. Las formas parásitas atacan a las
larvas de avispas, moscas, escarabajos y lepidópteros.
Otras familias de moscas que incluyen especies parásitas de plagas son:
Cecidomyiidae, Phoridae, Pyrgotidae, Drosophilidae y Cryptochaetidae, a ésta última
familia pertenece Cryptochaetum iceryae (Will.) eficiente parásito de la queresa algodonosa
de los cítricos.
34

36. Figura 9. Moscas parasitoides (Según Vergara 1985.).
1 : Winthemia sp (Tachinidae) parasitoide de noctuidos
2 : Gonia peruviana (Tachinidae) parasitoide de gusanos de tierra o cortadores
3-7 : Paratheresia claripalpis (Tachinidae) parasitoide del barreno de la caña de azúcar (3:
adulto; 4: larva parasitada; 5: larva del parasitoide dentro de la larva del barrerno; 6: larva
del parasitoide; 7: pupario)
8-9 : Winthemia reliqua (Tachinidae) parasitoide el cogollero del maíz (8: huevos del parasitoide
sobre los segmentos toráxicos del cogollero; 9: larva del parasitoide abandonando el
cuerpo del cogollero)
10 : Ramphinina discalis (Tachinidae) parasitoide de gusanos blancos o aradores)
11 : Acaulona peruviana (Tachinidae) parasitoide del arrebiatado
35

37. 2.3. Hiperparasitoides y parasitoides de predadores
Los parasitoides y los predadores de las plagas tienen a su vez sus propios enemigos naturales.
El parasitoide de un parasitoide se llama hiperparásito ohiperparasitoide. De allí que cuando
se introducen enemigos naturales de una plaga a una nueva región hay que tener cuidado de no
introducir hiperparasitoides.
Antes de liberar parasitoides en el campo se requiere criarlos en el laboratorio por dos o tres
generaciones asegurándose que todos los enemigos naturales que emergen sean iguales.
La mosca nativa Paratheresia claripalpis parasitoide del barreno de la caña de azúcar, es
parasitada por Trichopria cubensis Fouts (Diapriidae), Aulatopria tucumana Brths
(Diapriidae), Thysanus dipterophagus Gir (Thysanidae), Melittobia sp. (Eulophidae) y
Conostigmus sp. (Ceraphronidae) que afecta sus poblaciones significativamente.
Las pupas de Anagyrus pseudococci, Leptomastidea sp. y Aenasius maíz parasitoides de la
cochinilla harinosa del algodonero son parasitados por Achrysophagus sp. (Encyrtidae) y
Thysanus sp. (Thysanidae)
Por otro lado, los huevos de crisópidos predadores de áfidos y otros insectos son parasitados
por la avispita Telenomus chrysopae Ashmead (Scelionidae) y las pupas por la avispita
Arachnophaga sp (Eupelmidae).
Las larvas de los coccinélidos, importantes predadores de áfidos, son parasitadas por avispitas
del género Pachyneuron (Pteromalidae) y tanto pupas como adultos por la avispa Perilitus
coccinellae (Schrank) (Braconidae)(Coquis y Salazar 1975).
36

38. CAPÍTULO III
OTROS ORGANISMOS BENÉFICOS COMO CONTROLADORES BIOLÓGICOS
3.1. Arañas
Arañas predadoras
Las arañas de la Clase Arachnida, Orden Araneida constituyen predadores generales. Algunas
especies cazan sus presas directamente, mientras que otras lo hacen por medio de sus telarañas.
Es posible que las telarañas atrapen un mayor número de insectos benéficos debido a su mayor
movilidad, y que los cazadores directos destruyen más insectos fitófagos, por ser más lentos.
3.1.1. Familias que no tejen telaraña (en campo) están:
a. Familia Thomisidae o arañas-cangrejo.
b. Familia Oxyopidae
c. Familia Salticidae o arañas saltadoras.
3.1.2. Familias que tejen telaraña están:
a. Famllia Theridiidae con telas asimétricas
b. Familia Argiopidae con telas simétricas.
Las arañas más frecuentes en los terminales y hojas del algodonero en la costa central son
Theridion calcynatum Holmberg y Theridula gonygaster (Simón) (Theridiidae), Leucauge sp.
(Argiopidae), Oxyopes gracilis Keyserling y Misumenopsvariegatus Keys. (Thomisidae). Las
arañas más frecuentes en botones, flores y bellotas son: Steatoda andina Keys. (Theridiidae);
Gasteracantha raimondii Taczanowski (Argiopidae); Lycosa sp. (Lycosidae); Clubiona sp.
(Clubionidae); Anyphaena sp. (Anyphaenidae); Metaphidippus sp. y Phiale sp.
(Salticidae)(Aguilar 1988).
37

39. Figura 10. Principales Familias de arañas predadoras
1 : Anyphaenidae / 2 : Gnaphosidae / 3-4 : Salticidae o araña saltadora / 5 :
Clubionidae
6 : Lycosidae o araña lobo / 7 : Oxyopidae / 8 : Thomisidae o araña cangrejo
9 : Tetragnathidae / 10 : Therdiidae / 11 : Araneidae / 12 : Linyphiidae
3.2. Ácaros predadores
Los ácaros predatores son pequeños, muy móviles que se alimentan de huevos, larvas y adultos
de trípidos y otros insectos pequeños, pero sobre todo son predadores de las arañitas rojas y
otros ácaros fitófagos. También hay ácaros parásitos de larvas e insectos adultos grandes. Son
importantes los géneros Typhlodromus y Amblyseius de la familia Phytoseidae que abarca
muchas especies benéficas.
El acaro Pyemotes ventricosus (Newport) predata diversas queresas diaspididas. También son
importantes especies de las familias Trombidiidae, Cheyletidae, Bdellidae, Cunaxidae,
Tydeidae, Stigmaeidae y Anystidae(CIP1992)
38

40. 3.3. Nematodos
Algunos nematodos son parásitos obligados de insectos y otros invertebrados. Algunos producen
esterilización o muerte del hospedero; requieren de una película líquida para poder desplazarse
en el suelo o en la parte aérea. Estos ingresan por las aberturas naturales del cuerpo del insecto;
en general son muy susceptibles a la desecación aunque algunas especies presentan un estado
especial más resistente que las formas activas. Las especies más conocidas pertenecen a las
familias: Steinernematidae, Heterorhabditidae y Mermitidae que suelen matar rápidamente a sus
hospederos, esto se debe a que los nematodos están asociados con bacterias que causan
infecciones en los insectos.
Neoplectana carpocapsae, parásita gorgojos, orugas noctuidas, algunas moscas, la polilla
de la manzana y diversos insectos de vida subterránea; Heterorhabditis parásita larvas de
lepidópteros; Heterotylenchus parásita moscas y escarabajos; Mermis spp. y otros
mermítidos parasitan langostas, Howardula benigna, parásita adultos de diabróticas y
Deladenus parásita gorgojos y otros insectos(Van Diesche et. al. 2007).
3.4. Protozoarios
Los protozoarios patógenos de insectos tienen limitada importancia práctica por que su
desarrollo es relativamente lento, es difícil su multiplicación y no siempre presentan alta
patogenicidad. Las especies que tienen alguna importancia están dentro del Orden de los
Microsporidios que infectan especialmente langostas, moscas y lepidópteros, y entre ellas
destaca el género Nosema. La especie N. locustae parásita langostas y grillos mormones.
Las enfermedades por microsporidios son crónicas,los insectos mueren gradualmente y en
algunos casos la enfermedad se transmite transovarialmente. La incidencia de estas
enfermedades ha sido detectada especialmente entre lepidópteros de importancia forestal. Otros
géneros de cierta importancia entre los microsporidios son Thelohania y Plistophora(Van
Diesche et. al. 2007).
39

41. 3.5. Hongos:
Actualmente se reconocen 100 géneros y 750 especies de hongos entomopatógenos que infectan
artrópodos habitantes de las plantas, el suelo y el agua. Solo alrededor de 25 especies tienen
importancia como controladores naturales de plagas , dentro de estos tenemos a los géneros:
Beauveria
Metarhizium
Paecilomyces
Fusarium
Vericillium
Nomuraea
Enthomophtora
Zoopthora
Aschersonia
Se considera que la influencia de las condiciones climáticas, especialmente la humedad es
importante en estas enfermedades y puede considerarse como un factor limitante.
Mecanismos de acción del hongo:(Helen 2005.)
1. adhesión al tegumento
2. germinación de las conidias
3. Penetración por la cutícula
4. Multiplicación en el hemocele
5. Producción de toxinas
6. Muerte del insecto
7. Colonización
8. Emergencia del micelio
9. Esporulación del hongo
10. Diseminación
Los hongos ingresan al cuerpo del insecto a través de la cutícula, de los hongos que pueden
encontrarse en un insecto muerto, deben diferenciarse los hongos saprófagos que invaden el
40

42. cuerpo del insecto después que éste ha muerto, y los hongos entomófagos que infectan a los
insectos vivos provocándoles micosis.
Entre los hongos más importantes esta el orden de los Entomophthorales que son patógenos de
insectos. La rápida propagación de la enfermedad se debe a la formación y dispersión de
conidias entre los segmentos del cuerpo del insecto. El género principal Entomophthora infecta
a ortópteros, lepidópteros, hemípteros, homópteros y otros.
En la costa central, en otoño y primavera, con una humedad que oscila entre 80 y 100% se
presentan en áfidos enfermedades por efecto de un hongo del género Entomophthora(Beingolea
1985).
Dentro de los Ascomicetos destaca el género Cordyceps por su gran tamaño y la forma notoria
en que emerge del cuerpo del insecto. Las especies de Sphaerostilbe(de fructificación rojiza);
Nectria(de fructificación rosada); Podonectria (de fructificación blanca); Myriangium, entre
otras infectan a las queresas diaspididas. Las especies de Aschersonia y Aegerita atacan a
moscas blancas.
Entre los Deuteromicetos se encuentran los hongos que causan las llamadas "muscardinas" en
las que el hongo cubre totalmente el cuerpo del insecto en estado larval, pupal o adulto. El
género Beauveria causa las muscardinas blancas; se le ha registrado en diversos insectos como
el arrebiatado del algodonero, el barreno del café, el cogollero del maíz, y el gorgojo de los
Andes. En la costa y selva del Perú se presenta B.bassiana y en la sierra B. brogniartii.
Otros géneros de este grupo son Metarhizium, Spicaria, Acrostalagmus, Cladosporium y
Stemphylium.
Vertícillium lecanii infecta al pulgón Aphis gossypii y moscas blanca.
41

43. Figura 11.Ciclo biológico de los entomopatógenos
3.6. Bacterias:
Los insectos normalmente contienen un gran número de bacterias: saprofitas, parasitas; y
simbióticas.
Ocasionalmente se presentan bacterias patógenas que son capaces de ocasionar enfermedades
especialmente en larvas que se vuelven lentas, dejan de aumentarse y expulsan una sustancia
liquida por la boca y el ano. Al morir se vuelven oscuras y negras, blandas, con los tejidos
internos transformados en una masa viscosa, contenida dentro de la piel(Wightman 1991).
Las bacterias esporógenas, resisten a las condiciones adversas, son las más favorables. Las
bacterias no esporógenas, aunque pueden ser muy patógenos, son muy susceptibles a la
desecación.
Un primer caso extraordinario de utilización exitosa de las bacterias fue la introducción del
Bacillus popilliae y B. lentimorbus contra el escarabajo japonés Popillia japónica en los Estados
Unidos. Estos gérmenes causan la"enfermedad lechosa" de las larvas subterráneas del
escarabajo, se llenan de bacilos esporulados que pueden mantenerse infectivos por más de cinco
años.
42

44. Ningún patógeno ha recibido tanta atención como el Bacillus thuringiensis Berliner. Después de
haberse perfeccionado los métodos de su cultivo masal y haberse desarrollado diversas razas
biológicas La orientación en su uso, está más relacionada con el uso de los insecticidas que con
el desarrollo de la enfermedad. En realidad el efecto de la bacteria se debe a uno o dos
cristales(endotoxinas) que se forman dentro de las esporas y que resultan tóxicos particularmente
para las larvas de lepidópteros.
Para ser infectadas, las orugasdeben ingerir las bacterias junto con su alimento, en este sentido
guardaalgunas características con los insecticidas de ingestión. Una vez aplicado,su eficiencia es
mayor en los primeros días y es gradualmente reducidadespués de los siete días
(Sarmiento y Razuri 1978).
Se ha perfeccionado la calidad tóxica del B. thuringiensis habiéndose identificado razas de
mayor toxicidadpara ciertos grupos de insectos:
B.t. var. aizawai para la polilla de lacera en colmenas.
B.t. var israelensis, para zancudos y mosquitos.
B.t. var. kurstaki y B.t., var morrisoni para las larvas de lepidópteros.
B.t. var. tenebrionis para coleópteros.
Una manera de utilizar las endotoxinas de B. thuringiensis es inducir, por medio de la ingeniería
genética, que la planta produzca su propia toxina y de esta manera quede protegida contra las
plagas. Hay dudas sobre esta tecnología pues se han registrado casos de desarrollo de resistencia
a las endo-toxinas como resultado del uso frecuente de B. thuringiensis(Wightman 1991).
43

45. 3.7. Virus:
Ciertos insectos (larvas de lepidópteros y larvas de himenópteros fitófagos) son ocasionalmente
atacados en forma intensa por los virus. Las larvas infectadas se vuelven lentas, dejan de
alimentarse y se paralizan. En la mayoría de los casos, el integumento se vuelve blando y de
color marrón o negro, los tejidos internos se deshacen, quedando la larva como una bolsa de
líquido. Las larvas quedan con la cabeza hacia abajo permaneciendo sujetas por las patas
posteriores, el cuerpo se vuelve blando y entra en putrefacción. En otros casos la larva se vuelve
simplemente opaca.
Las infecciones virósicas pueden ser introducidas accidentalmente en los laboratorios, con larvas
aparentemente sanas recolectadas en el campo, y causar grandes mortalidades en el laboratorio.
Al contrario, un virus que resulta muy efectivo en el laboratorio puede no dar buenos resultados
en el campo. Los virus pueden estar latente y ser transmitido por varias generaciones antes de
que se desarrolle una enfermedad favorecida posiblemente por condiciones climatológicas,
alimenticias, fisiológicas o de otra naturaleza.
Los virus que atacan a los insectos pertenecen a siete familias: baculovirus, reovirus, poxivirus,
iridovirus, parvovirus, rhabdovirus y picornavirus (Faulkner y Boucias 1985).
Los baculovirus son los más comunes y se dividen en dos grupos principales: Virus de la
poliedrosis nuclear y virus de la granulosisque son las enfermedades más comunes y mortíferas
por lo que han sido motivo para su utilización en el campo(Tañada 1959).
Los insectos atacados por virus de la poliedrosis:
Presentan en sus células cuerpos flexibles de forma poliédrica irregular de hasta 15 u. Los virus
son ingeridos e inician la infección en las células epiteliales del intestino medio en donde se
multiplican y pasan al hemocele y otros tejidos. Los virus permanecen infectivos por períodos
variables según las condiciones de almacenamiento; generalmente no más de dos años sin
refrigeración
44

46. Se han obtenido buenos resultados en el control de la oruga de la alfalfa de California Colias
philodice eurytheme; el gusano de la col Pieris spp y Anticarsia en soya. Se comercializa en los
Estados Unidos, un virus contra el perforador de las bellotas del algodonero y mazorca del maíz,
Heliothisvirescens y H. zea(Lewis y Rollinson 1978).
Los insectos atacados por granulosis:
Presentan en sus células cuerpos granulosos de 0.2 y 0.5 u, especialmente visibles en el
citoplasma de las células del cuerpo graso de las larvas de lepidópteros.Los virus pueden ser
multiplicados en el laboratorio criando el hospedero e infectándolo. En un individuo se
multiplica de 1,000 a 10,000 veces la cantidad de virus requerida para la infección. Se han
registrado casos de éxito con virus de granulosis en el gusano de la col Pieris brasicae, y
algunas otras orugas(CIP 1992).
45

47. CAPÍTULO IV
CENTROS DE CRIANZA DE INSECTOS BENÉFICOS
4.1. Lugares de crianza en el Perú
En los siguientes cuadros resume los principales lugares de crianza de especies benéficas de
insectos y organismos benéficos en todo el País.
Cuadro5. Relación de convenios de producción y promoción de control biológico de la
SDCB-Lima
CONVENIO SITUACION DEL CONVENIO
FECHA DE FECHA DE
INSTITUCION Y/O EMPRESA UBICACIÓN SITUACION
INICIO TERMINO
TUMBES
SENASA-TUMBES
Instituto Superior Tecnologico"24de Julio" Junio del Vigente
1
2011
PIURA
SENASA PIURA
2 Asociación del Chira. –Mallares 01/02/2011 Vigente
Limones Piuranos S.A.C 30/04/2010 En trámite
3
renovación
4 Ecoacuicola S.A.C 15/03/2010 Concluyo
5 Sociedad Agrícola Saturno S.A 15/02/2009 15/02/2010 Concluyo
ANCASH
SENASA-ANCASH
6 ISTE Virgen de Guadalupe-Nepeña Nepeña
7 Asociación de Productores de Casma Casma 19/02/2010 Concluyo
8 ISTE " Agustín Haya La Torre" – SIHUAS Sihuas 27/01/2010 Concluyo
9 ISTP "San Pedro " Corongo 07/01/2010 Concluyo
10 ISTP "Chacas" Chacas 12/05/2012 Vigente
Instituto Superior Narciso Villanueva Pallasca 17/08/2010
11
Manzo Concluyo
LA LIBERTAD
SENASA-LA LIBERTAD
BIOPERÚ S.A.C Viru 21/09/2007 21/09/2009 En trámite de
12
renovación
Laredo
Agricola Vallesol SAC ( EX EMPRESA 28/10/2009 28/10/2010 Vigente
13
AGRÍCOLA BARRAZA S.A.)
14 Bioinsumos Agricolas SAC (BIOINSA) Trujillo 16/11/2011 Vigente
15 PE Chavimochic Viru 13/09/2007 13/09/2009 En tramite
46

48. renovación
Sol del Valle Agrícola SAC Casa 15/12/2008 15/12/2009 En trámite
16
grande renovación
17 Agrícola BPM Viru 04/07/2008 04/07/2010 Concluyo
18 Bioseguridad de Cultivos SAC Trujillo 28/01/2011 Vigente
Laboratorio de Agentes de Biocontrol Trujillo 10/03/2009 10/03/2010 En trámite
19
Agrícola S.A.C renovación
30/03/2009 30/03/2010 En trámite
20
Sociedad Agrícola Viru S.A renovación
21 AGROBIOL V & R SAC 22/04/2011 Vigente
22 EPYCAB SRL 12/04/2011 Vigente
Corporación Peruana de Manejos Trujillo 31/03/2009 31/03/2010 En trámite
23
Biológicos SAC ( ex K & M BIOL SAC) renovación
Solagro SAC. Larco 03/04/2008 03/04/2010 En trámite
24
renovación
BIOCONTROL. Abanto Machuca Jesús Viru 05/12/2008 05/12/2009 En trámite
25
renovación
Universidad Privada Antenor Orrego Laredo 04/09/2006 04/09/2008 Renovación
26
(UPAO)
27 Municipalidad Distrital de Cao
Empresa Agrícola Sintuco (Se fusiono a Chocope 01/092009 01/09/2010 Vencido
un solo convenio con grupo gloria,
28
quedando no vigentes los convenios con
casa grande y cartavio)
Fuente: Sub Dirección de Control Biológico SENASA – Lima, 2011
Cuadro 6.Relación de Convenios de Producción y Promoción de Control Biológico de la
SDCB-Lima
LAMBAYEQUE FECHA DE FECHA DE
UBICACIÓN SITUACION
INICIO TERMINO
SENASA- LAMBAYEQUE
29 Procesadora S.A.C Mochumi 30/05/2008 30/05/2009 Concluyo
30 Agrícola San Juan SA Chongoyape 08/03/2009 08/03/2010 Vigente
31 Agro MIP SAC 23/06/2009 23/06/2010 Vigente
INIA-EE Vista Florida 18/09/2007 18/09/2008 Culminado
(En
32 revisión)
Pampas de 2010 Vigente
33 Agrícola Cerro Prieto SAC Mucupe
34 Lab. Biotec y CIP-UNPRG 12/11/2008 12/112009 Vigente
35 ONG NED RED RURAL INKAHUASI 15/07/2010 Vigente
36 Proyecto Especial Olmos Tinajones 31/08/2010 Vigente
47

49. PSI – Asociación de Productores de palto 30/06/2010 Vigente
37
(APALA) - Pítipo
FAG – UNPRG – AGRORURAL – INST 30/10/2010 Vigente
38
YATRAYHUASI
LIMA CALLAO
SENASA LIMA CALLAO
Agrícola Poseidon S. A Lima - 24/08/2010 Vigente
39
Pucusana
40 Fundo Santa Patricia S. A. Huaral 21/12/2010 31/12/2011 Vigente
Ecocontrol SRL Lima - 08/09/2008 08/09/2009 Vencido
41
Vitarte
Fundo Santa Rosita SAC Huaura - 03/09/2008 03/09/2009 Vencido
42 Irrig. Sta
Rosa
Agroindustrial Paramonga S. A. A. – Barranca - 10/09/2010 31/05/2011 Vigente
43
AIPSAA Paramonga
Eco Benéficos EIRL Lima - 20/02/2010 20/02/2011 Vigente
44
Breña
45 PBA Lima - 20/01/2010 20/01/2011 Vigente
Agrocontrol Asociados SAC Huaura - 15/06/2010 15/06/2011 Vigente
46 Irrig. Sta
Rosa
Agropecuaria Pamajosa SAC Huaura - 05/03/2010 05/03/2011 Vigente
47 Irrig. Sta
Rosa
Fruits & Life SAC Huaura - 21/12/2009 21/12/2010 Vigente
48 Irrig. Sta
Rosa
Vivero Arona San Luis de 06/10/2009 06/10/2010 Vigente
49
Cañete
Instituto Superior Tecnológico Huando - Huaral - 02/02/2010 02/02/2011 Vigente
50
ISTH. Huando
Universidad Católica Sede Sapientiae – Huacho 09/02/2009 09/02/2011 Vigente
51
UCSS
Promotora de Obras Sociales y de Cañete - 11/02/2009 11/02/2011 Vigente
52
Instrucción Popular - PROSIP. San Vicente
Asociación de Productores Fruticultores Canta - 09/03/2009 09/03/2011 Vigente
53
del Valle Collo - APFCV Arahuay.
Centro de Educación Técnico Productivo Huaura - 11/05/2009 11/05/2011 Vigente
54
CETPRO - Sayan Sayan
Asociación de productores de Palto y 12/01/2010 12/01/2012 Vigente
55 Cultivos afines "Santa Rosalia" -
APROPAL – SR
Municipalidad Distrital Santa Rosa de Canta - 06/07/2009 06/07/2011 Vigente
56
Quives Yangas
57 Universidad Nacional Mayor de San Lima. 21/12/2009 21/12/2011 Vigente
48

50. Marcos – UNMSM
58 PROHVILLA (Pantanos de Villa) 18/03/2009 18/03/2011 Vigente
59 Patronato de Parque de las leyendas Lima. 15/07/2009 15/07/2011 Vigente
Asesoría y Entrenamiento en Control Lima 30/12/2010 Vigente
60
Biológico SRL - AECB SRL
ICA
SENASA – ICA
61 AGROKASA Ica 31/07/2010 En tramite
EURO S.A Ica 30/10/2009 Por
62
renovasrse
BIOAGRO Ica 30/04/2009 Por
63
renovasrse
64 COEXA S.A Ica 2010 En tramite
COBISA EIRL marzo. Vigente
65
2011
Complejo Agroindustrial Beta S. A Chincha 30/08/2009 Por
66
Alta renovarse
67 AGRÍCOLA ALAMEIN Ica 30/04/2010 En tramite
68 Proagro EIRL Ica 30/04/2009 En tramite
Rosas Ingenieros Asociados E. I. R. L Chincha 30/04/2010 En tramite
69
Alta
ROJAS INSECTARIO E. I. R. L Chincha 30/01/2010 En tramite
70
Alta
71 Cia. AgroInd. Lanchas – CALSA 31/08/2009 En tramite
GAP DEL PERU S. R. L – GAPERU Ica En tramite
Instituto S. Nazca 30/10/2009 Por
72
renovarse
El Rosario 30/04/2009 Por
73
renovarse
74 OLIPERU S.A.C Ica En tramite
AREQUIPA
SENASA AREQUIPA
75 EPSA Las Avispas Camana 28/02/2011 Vigente
Valle de 28/02/2001 Vigente
76
Virgen de Chapi CORIRE Majes
Bella 28/02/2011 Vigente
77
CIPROBIDA Unión
Cocachacra 14/01/2011 Vigente
78 Valle de
El Canto - Cocachacra Valle de Tambo Tambo
79 APROSAD 28/02/2011 Vigente
INAGROP Irrigación 14/01/2011 Vigente
80
Majes
81 NOVAGRI Arenal 30/08/2010 Concluyo
Fuente: Sub Dirección de Control Biológico SENASA – Lima, 2011
49

51. Cuadro 7. Relación de convenios de producción y promoción de control biológico de la
SDCB-Lima
CAJAMARCA FECHA DE FECHA DE
UBICACIÓN SITUACION
INICIO TERMINO
SENASA CAJAMARCA
Proyecto Especial Jequetepeque - Zaña – 31/12/2010 Vigente
82
PEJEZA
HUÁNUCO
SENASA HUÁNUCO
83 Lab. Muni. De Molino 22/07/2009
Universidad Nacional Hermilio Valdizan 10/08/2009
84
– Huánuco
JUNÍN
SENASA JUNÍN
Vencido se
85
Estación INIA Sta Ana –Hyo Renovara en 2010
SAN MARTÍN
SENASA SAN MARTÍN
Estación experimental " el Porvenir" – 03/03/2011 Vigente
86
INIA
87 Palmas del Espino Vencido
88 Proyecto Especial Alto Mayo Moyobamba 31/05/2010 Concluyo
89 Universidad Nacional de San Martin Tarapoto 31/01/2009 Concluyo
Asoc. De Prod. Agrop. Defensores de la Tarapoto 30/11/2010 Vigente
90
ecología y MA
AMAZONAS
0
HUANCAVELICA
SENASA HUANCAVELICA
Acobamba No registra Vencido no se ha
91
renovado
Colcabamba No registra Vencido no se ha
92
renovado
AYACUCHO
SENASA AYACUCHO
Asociación Regional de Productores 31/07/2011 Convenio en
93
Orgánicos de Ayacucho (ARPOA) tramite
Instituto Superior Tecnológico Publico 31/072011 Convenio en
94
de Churcampa tramite
CUZCO
SENASA CUZCO
Municipalidad Distrital de Maranura Se entregó los
95 oficios
correspondientes
50

52. y borradores de
convenio
Se entregó los
oficios
Cooperativa Agraria Cafetalera Santa
96 correspondientes
Ana
y borradores de
convenio
Se entregó los
oficios
Facultad de Agronomía Tropical –
97 correspondientes
UNSAAC
y borradores de
convenio
APURIMAC
SENASA APURIMAC
98 UTEA Apurímac 15/04/2009 15/04/2010 Vigente
99 Municipalidad Santa María de Chicmo 06/08/2011 Vigente
PUNO
SENASA PUNO
Instituto Superior Tecnológico Publico 04/01/2010 En tramite
100
de Cabanillas
Universidad Nacional del Altiplano – En trámite
101
UNA
102 Municipalidad Distrital de Yanuahuaya 06/05/2010 En tramite
103 MADRE DE DIOS
SENASA MADRE DE DIOS
Asociación de Productores may-10 Vigente
104 Agropecuarios defensores de la Ecología
y medio Ambiente APADEMA
105 Proyecto Especial Alto Mayo PEAM nov-10 Vigente
UCAYALI
SENASA UCAYALI
106 SEMPERU SELVA may-12 Vigente
Instituto Superior Tecnológico 28/04/2012 Vigente
107
"MASISEA" "
108 BOSQUES AMAZÓNICOS S. A. C. Pucallpa 10/02/2011 Vigente
Servicios y Negocios Amazónicos S. A – Pucallpa 28/02/2011 En trámite
109
SERNASA
110 ECOTRAD S. A. C Pucallpa 11/02/2011 En trámite
LORETO
SENASA LORETO
PASCO
SENASA PASCO
TACNA
SENASA TACNA
111 Empresa Conservation of Enviromental Tacna 07/09/2010 Vencido
51

53. Group COEG S.C.R.L
Instituto Superior Tecnológico Partucular Tacna 21/10/2010 Vigente
112 " Centro de Formación Agrícola Tacna"
ISTP- CFAT
113 Carlos Mostacero Neira Tacna 12/10/2010 Vigente
Universidad Nacional Jorgue Basadre Tacna 15/02/2010 Vencido
114
Grohmann-INPREX
MOQUEGUA
SENASA MOQUEGUA
Laboratorio de Control Biológico "El Valle de Ilo-
115 Algarrobal" - Valle de Ilo Provincia de En tramite de
Ilo 31/12/2008 renovación
Fuente: Sub Dirección de Control Biológico SENASA – Lima, 2011
Convenios de promoción
Convenios de producción
microorganismos
Convenio producción de insectos
Convenio producción insectos y
microorganismos
(1) Convenio de Producción (Con
materiales)
(2) Convenio de Producción (Sin
materiales)
4.2. Formas y métodos de reproducción:
Crianzas realizadas en la Sub dirección de Control biológico (SDCB) SENASA–Lima:
Insectos benéficos:
Crianza de Trichogrammaspp en la Sub Direccion de Control Biologico Lima -
PerúSegún (WHU 2009)
a. Crianza de Sitotroga cerealella Oliver
1. Substrato:
Como substrato para la crianza de S. cerealellase emplea trigo blando o semi-duro,
cebada o sorgo.
52

54. 2. Tratamiento al substrato:
El substrato se somete a dos tipos de tratamientos:
- Químico con fumigante:
Se realiza en un cuarto de fumigación o en baldes plásticos con tapa hermética, la
fumigación dura 4 a 5 días, luego airear el substrato durante 3 o 4 días antes de usarlo.
- Hidrotérmico (agua caliente):
Poner agua al fuego en un recipiente grande y cuando el agua este hirviendo se
sumerge durante 3 minutos el trigo colocado en una malla, procurando que se
humedezca completamente
Figura 12. Tratamiento de substrato con veneno. (Fuente SDCB)
3. Secado al medio ambiente:
Después del tratamiento hidrotérmico, el trigo debe secarse bien antes de colocarlo en las
bandejas para la infestación; porque de lo contrario se corre el riesgo de que le aparezcan
hongos.
4. Tratamiento a los huevecillos:
Los huevecillos de S. cerealella que van a servir para la infestación, deben someterse a
un tratamiento de desinfección, que consiste en preparar una solución con un acaricida,
53

55. sumergirlosdurante 1 o 2 minutos, se cuelany se hace secar sobre papel toalla. Luego
pasan por un tamiz hasta quedar como polvillo.
Figura 13. Huevecillos de S. cerealella después de tratamiento. (Fuente SDCB)
5. Infestación:
Para la infestación se emplea como mínimo 1 gramo de huevecillos por kilogramo de
substrato. Esta se puede hacer por capas, colocando una capa de substrato y sobre ella
una parte de los huevecillos y así sucesivamente por 2 ó 3 capas. También se puede
colocar todo el substrato en la bandeja y encima se esparcen todos los huevecillos y con
los dedos se procura que estos penetren en el substrato. El tiempo de infestación al trigo
dura de 25 a 30 días.
Figura 14. Forma de infestacióncon huevos de S. cerealella al trigo tratado. (Fuente Lab.
C.B - La unión Piura)
54

56. 6. Armado de gabinetes:
Cuando las polillas empiezan a emerger se procede a colocar el trigo en los bastidores
que van dentro de los gabinetes de crianza, a razón de 1.5 kg. de trigo por bastidor, en
donde se mantendrá por espacio de 40 días produciendo S. cerealella.
Figura 15.Armado de gabinetes para crianza de S. cerealella.( Fuente: SDCB- SENASA
- Lima)
Figura 16. Bastidores metálicos que se colocan dentro de los gabinetes y que contendrán
el trigo infestado con la polilla S. cerealella. (Fuente: Lab. De C.B- La unión-
Piura).
55

57. 7. Cambio de frascos de recuperación de polillas:
Diariamente se procederá al cambio de frascos de recuperación de polillas y se tendrá
cuidado de observar la presencia de polillas muertas, lo cual será un indicio de la
presencia del ácaro Pyemotes ventricosus
Figura 17.Frascos con polillas adultas de S. cerealella de los que sacan de los gabinetes
de producción para obtener sus huevos. (Fuente: Lab. de C.B- La unión -
Piura).
8. Colado de huevos:
Consiste en recuperar los huevecillos de las polillas de los frascos, mediante un tamizado
sobre una bandeja y luego limpiarlos cuidadosamente para que queden libres de
impurezas. Debe realizarse diariamente para obtener huevecillos frescos, los cuales son
destinados a la parasitación. Cuando los huevecillos están maduros de un color
anaranjado serán utilizados para la infestación de trigo.
56

58. Figura 18. Proceso de colado de huevos de polilla S. cerealella. Fuente: Lab. De C.B- La
Unión - Piura).
9. Marcado de cartulina:
La cartulina donde son pegados los huevecillos de S. cerealella para su parasitación se
marca en pulgadas cuadradas, esto se hace para facilitar la venta y distribución del
material; habiéndose calculado que por cada pulgada cuadrada vamos a obtener un
aproximado de 3,000 huevecillos pegados y una emergencia de 2,800 avispitas de
Trichogramma.
10. Pegado de huevecillos:
Para el pegado de los huevecillos se emplea goma líquida transparente diluida en agua en
la proporción de 1:1. Se distribuye con una esponja sobre la cartulina. Luego, con la
ayuda de un tamiz se esparcen los huevecillos sobre toda el área engomada, se sacude la
cartulina para retirar el exceso de huevecillos; se deja secar por espacio de 15 a 20
minutos antes de proceder a colocarlos en los frascos de parasitación.
11. Conservación en refrigeración:
Los huevos de S. cerealella se pueden conservar en refrigeración a una temperatura de
8°C por un lapso de 8 a 10 días; pasado ese tiempo se debe tener en cuenta que a mayor
tiempo de refrigeración menor será su viabilidad. Los huevos destinados para la crianza
de crisopas deben ser congelados a 0° C a los 7 días de estar en refrigeración.
57

59. b. Crianza del parasitoideTrichogrammaspp.
1. Parasitación:
Se coloca en un frasco una cantidad de huevos parasitados y se espera la emergencia de
las avispas, cuando se observa un 30% de emergencia de adultos se colocan los huevos
frescos de S. cerealella que han sido pegados en una cartulina marcada por pulgadas
cuadradas, en la proporción de 4 a5 pulgadas cuadradas de huevos sin parasitar por cada
pulgada cuadrada de huevos parasitados.
Figura 19.Huevos de la polillaS. cerealella
Figura 20. Vista de la emergencia de Trichogrammasppde un huevo de S. cerealella
parasitado
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60. 2. Tiempo de parasitación:
El tiempo que dura la parasitación es de 4 a 5 días en verano y de 6 a 7 días en invierno.
Figura 21.Frascos con cartulina de huevos deS. cerealellaen sus fases de parasitación.
3. Deslarvado:
Transcurrido el tiempo de parasitación y cuando ya las avispas están muertas se procede
a retirar del frasco las cartulinas con los huevos recientemente parasitados y se colocan
en una rejilla sobre una bandeja con agua, esto se hace con la finalidad de que las larvas
de los huevos que no fueron parasitados caigan al agua y que en la cartulina sólo queden
los huevos parasitados por Trichogramma.
4. Conservación en refrigeración:
Los huevos parasitados se pueden conservar en refrigeración hasta por 15 días a una
temperatura de 7 a8 °C, al cabo de los cuales empieza a disminuir la emergencia de las
avispitas.
Crianza de predadores en la Sub Direccion de Control Biologico Lima -Perú
Según (WHU 2009)
c. Crianza masiva de crisopas.Según (WHU 2010).
1. Unidad de crianza de larvas:
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