Monografia de crianza de insectos y organismos beneficos
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Monografia de crianza de insectos y organismos beneficos Document Transcript

  • 1. 0
  • 2. CRIANZA DE INSECTOS Y ORGANISMOS BENÉFICOS “Con patitas de algodón va paseando de flor en flor”INTRODUCIÓNEn la actualidad el uso de agroquímicos esta difundido en nuestro país y Latinoamérica de unamanera exagerada, su uso viene ocasionando consecuencias negativas ampliamente conocidas anivel de la salud, el medio ambiente y la economía campesina (Gomero y Lizárraga 1995).Por otro lado se dan alternativas integradas que ejecutan la introducción de técnicas y métodosbiológicos para combatir una serie de plagas y enfermedades; para lograr un equilibrio ecológicosin contaminar el ecosistema de producción.Por el uso de plaguicidas que se ha ido incrementando en los últimos años, se estánimplementando criaderos de controladores biológicos, que conducidos adecuadamente generan unimportante beneficio económico, ecológico y social (Fuentes 1994).Ante el crecimiento de la producción agrícola intensiva y sus respectivas tecnologías, se traecomo consecuencia desequilibrios en el ecosistema apareciendo nuevas plagas, por ello se debeaplicar un modelo de manejo ecológico de plagas, en base al control biológico y otras medidas noquímicas; para ello es necesario contar con asistencia técnica especializada en agriculturasustentable (Gomero y Lizarraga 1995). 1
  • 3. CAPÍTULO IGENERALIDADES1.1. Enemigos naturales y control biológico Frente al problema de control de plagas, el hombre busca diversas formas de manejo, llegando a depender casi exclusivamente del control químico y en la enorme promoción de los plaguicidas, dejando de lado otras alternativas y principalmente desconociendo la información del control biológico y las ventajas que posee en el beneficio de una agricultura sana y próspera. Un ejemplo impactante fue el ocurrido en los campos de algodón en el Valle de Cañete- Perú, a mediados de los años 50, donde los agricultores del valle gastaron alrededor del 30% del costo de producción en aproximadamente 40 aplicaciones de insecticidas órganoclorados por campaña; el resultado fue el desequilibrio del ecosistema del valle. Los diversos hábitos de alimentación que presentan los organismos vivos, en especial los que requieren de insectos, ácaros o patógenos como dieta diaria, son los más solicitados por la importancia que tienen (Herrera 1972) Control biológico: Control Biológico es la represión de las plagas mediante sus enemigos naturales; es decir mediante la acción de predadores, parásitos y patógenos. El control biológico se considera natural, cuando se refiere a la acción de los enemigos biológicos sin la intervención del hombre; y se le denomina artificial o aplicadocuandoes manipulado por el hombre(Pacora 1979) Características generales del control biológico: 2
  • 4. El control biológico tiene características propias que lo distinguen de otras formas de control de plagas, particularmente del control químico: Es permanente, aunque con fluctuaciones propias de las interacciones entre enemigo natural y su hospedero, y los efectos de las variaciones físicas del medioambiente. Los efectos represivos del control biológico son relativamente lentos en contraste con la acción inmediata de los insecticidas. La acción del control biológico se ejerce sobre grandes áreas, de acuerdo a las condiciones climáticas y biológicas predominantes. A estas tres características esenciales se agregan otras que pueden separarse en favorables y desfavorables. Características favorables: Los parásitos y predadores buscan a sus hospederos y presas en los lugares donde éstos se encuentran, incluyendo sus refugios. Los enemigos naturales, a diferencia de los pesticidas, no dejan residuos tóxicos sobre las plantas ni contaminan el medioambiente. La acción de los enemigos naturales tiende a intensificarse cuando las progresiones de las plagas son más altas. Los enemigos biológicos no producen desequilibrios en el ecosistema agrícola. Características desfavorables: efecto represivo lento Los enemigos naturales son influenciados por las condiciones climáticas y biológicas del lugar. No todas las plagas poseen enemigos naturales eficientes desde el punto de vista Económico. Por ejemplo: La mosca sudamericana de la fruta, Anastrepha fraterculus, es parasitada en forma natural por la avispa Opius trinidadensis, pero el grado de parasitismo es insuficiente(Beingolea 1967)Características deseables de un insecto benéfico: 3
  • 5. Un parásito eficiente, además de desarrollarse normalmente en las condiciones climáticas de lanueva zona y sincronizar su ocurrencia estacional con la del hospedero, debe tener los siguientescaracteres: una gran capacidad de multiplicación. ser relativamente específico que permita una rápida respuesta numérica a los incrementos de la población del hospedero. tener una gran movilidad y capacidad de búsqueda de su presa u hospedero. estar libre de hiperparásitos. Ejemplo: El coccinélido Rodolia cardinalis y la mosca Cryptochaetum iceryae pueden ilustrar estas características. Ambas especies se alimentan prácticamente en forma específica de la queresa blanca de los cítricos Iceryapurchasi y son capaces de encontrar colonias aisladas de esta queresa (Herrera 1972).1.2. Importancia de insectos benéficos (Controladores)a. Importancia de los predadores en el control biológico: Cuando se refiere a control biológico de plagas agrícolas en cultivos de interés económico se se menciona a predadores que se encuentran en forma abundante en los agroecosistemas cuando las condiciones les son favorables. El hábito de predar se encuentra en 167 familias en 14 órdenes de un total de 224 familias de 15 órdenes que tienen el hábito entomófago(Núñez 1998) La cuarta parte del orden Hymenoptera tiene el habito predador, incluye principalmente las familias: Formicidae, Vespidae, Tenthredinidae, Braconidae, Chalcididae y Microgasteridae. El orden Diptera es importante desde el punto de vista económico por los predadores que contiene en la familia Dolichopodidae, cuyos adultos se alimentan de adultos de mosca minadora, mosca blanca y pulgones alados. La familia Syrphidae, es un grupo predador de pulgones, queresas y ninfas de mosca blanca. 4
  • 6. El orden Coleóptera destacan por sus hábitos predadores, especialmente la familia Coccinellidae de amplia distribución mundial. También son de utilidad las familias Carabidae y Cicindellidae de preferencia de hábitos nocturnos. El orden Lepidóptera es un grupo caracterizado por su fitofagia; también presenta predadores ocasionales y habituales. Los verdaderos predadores son encontrados en la familia Lycaenidae, cuyas especies se alimentan de áfidos, cochinillas harinosas o de huevos de queresas cerosas. El orden Neuroptera, las familias de este orden son de hábitos predadores, especialmente en el estadio larval. Desde el punto de vista económico las familias Chrysopidae y Hemerobiidae son las de mayor importancia por su utilidad para el control de lepidopteros, gusano defoliadores, minadores y perforadores, pseudocóccidos (piojos harinosos), aleyródidos (moscas blancas), queresas y áfidos. Las larvas de lafamilia Chrysopidae son conocidas como “leones de áfidos”, y ciertos adultos son considerados los predadores más voraces que se alimentan de cuerpos blandos de insectos y arácnidos, de huevos y larvas de lepidópteros. Chrysoperla externa (Hagen) y Ceraeochrysa cincta Schneider, son dos especies peruanas predadoras, de amplia distribución, presencia de adultos a través de todo el año, fácil crianza en cautiverio, potencial para adaptarse en varios ambientes de cultivos y su resistencia a numerosos pesticidas(Núñez 1998). Cuadro 1. Presas y cultivos donde se han hallado ocho especies deChrysopidaeperuanos. PREDADOR PRESA CULTIVO1. Ceraeochrysa cincta Aleurothrixus floccosus(Maskell) cítricos Schneider Panonychus citri (McGregor) cítricos Aphididae cítricos Diaspididae, Coccidae 5
  • 7. Aleurodicus cocois (Curtis) frutales A. dispersus Russell frutales Bemisia tabaci Gennadius camote-algodón-tomate Trialeurodes vaporariorum Westwood hortalizas2 Ceraeochrysa sp Planococcus citri (Risso) cítricos-olivo-palto Phenacoccus gossypii (Town-Cock) algodón3. Chrysoperla externa HagenSpodoptera sp maíz S. eridania (Guerin) alfalfa-papa Palpita quadrastigmalis (Guerin) olivo Heliothis zea (Boddie) maíz Heliothis virescens (Fab) algodón Laspeyresia pomonella (L) manzano Phyllocnistis citrella Stainton cítricos4. Chrysoperla assoralis S. eridania (Guerin) alfalfaBanks5. Chrysopodes sp Phenacoccus gossypii (Town-Cock) algodón Pseudococcus adenudum L. palto Coccidae palto6. Nodita cruentata Orthezia olivicola Beingolea olivoSchneider7. Plesiochrysa paessleri Spodoptera sp alfalfa-camoteNavas Palpita quadrastigmalis (Guerin) papa-maíz-olivo 6
  • 8. Heliothis virescens (Fab) algodón Phyllocnistis citrella Stainton cítricos8. Suarius figuralis Banks Pseudococcidae algodón Aphididae algodónFuente:Seminario control biológico, Elizabeth Núñez Sacarías, Jefa del Departamento del. PNCB-SENASA, Lima – Perú. 1998 b. Importancia de los parasitoides en el control biológico: En el control biológico de insectos, los parasitoides tienen un impacto extremadamente fuerte, son más aprovechados que los predadores y patógenos en el control de plagas. Un parasitoide es un animal carnívoro cuya etapa inmadura vive parasíticamente dentro de o sobre el cuerpo de otro animal, se alimenta de un solo hospedero y lo mata; el adulto vive libre. Los parasitoides tienen un papel muy sobresaliente en el control biológico clásico, un ejemplo importante es de Aphytis que controlan por completo las escamas armadas en cítricos en seis continentes(Cave 1998). Los parasitoides criados masivamente y comercializados son numerosos: Trichogramma spp. (Hym : Trichogrammatidae) parasitoide de muchos lepidópteros. Diglyphus begini(Hym: Eulophidae) parasitoide de minadores en invernaderos. Diachasmimorpha longicaudata parasitoide de moscas de la fruta Cephalonomia stephanoderis parasitoide contra la broca de café Cotesia flavipes(Hym: braconidae)parasitoidede Diatraea spp. En la ciencia del control biológico existen controversias para los parasitoides. Tres de éstas son: 7
  • 9. 1. El desarrollo de razas o biotipos de parasitoides resistentes a plaguicidas.2. El impacto de parasitoides liberados sobre la fauna nativa.3. Métodos cuantitativos para la evaluación del impacto de los parasitoides en el control de plagas.Para los agricultores, los parasitoides son demasiado pequeños para observar, su acción eimpacto son difíciles de visualizar y demostrar. No se debe ignorar el uso potencial de parasitoides como indicadores de la salud de los agroecosistemas. Debemos dar mayor apoyo ecológico a los parasitoides, conservando y no contaminando su micro hábitat con productos químicos, facilitando su sobrevivencia con la siembra de flores o el mantenimiento de vegetación en floración(Cave 1998).c. Importancia de los patógenos en el control biológico: Durante la segunda guerra mundial se desarrollaron insecticidas químicos, lo que descarto el interés de desarrollo de bioinsecticidas. En comparación con los insecticidas químicos, los entomopatógenos presentaban un rango de hospederos muy estrecho, difíciles de producir, costosa producción, actividad lenta, eficiencia variable, biodegradabilidad; en la actualidad se consideran como características ventajosas. Los patógenos que serán usados en el futuro serán aquellos que se encuentren en forma natural o bien que puedan ser manipulados genéticamente, que poseen las mejores características de insecticidas químicos y características patógenas. Los entomopatógenos pertenecen a cinco grupos principales: nematodos, protozoarios, hongos, bacterias, y virus(Ibarra 1998). Los nematodos se desarrollaron significativamente en la década de los noventa a base de nematodos rhabditicos, destinados al control de plagas de suelo; también se produjo nematodos para el control de larvas de mosquitos en sus hábitats acuáticos. La habilidad de algunos nematodos de buscar a su hospedero les confiere una cualidad única entre los entomopatógenos, su rango de hospederos es más amplio que las bacterias y virus. 8
  • 10. Los protozoarios como insecticidas microbianos han disminuido en las últimas décadas,debido a problemas que presentan para su desarrollo. La mayoría de protozoariosconsiderados como potenciales bioinsecticidas son los microsporidios, estos son patógenosde lenta acción y se producen en los hospederos vivos, por lo tanto su uso comobioinsecticidas se restringe a situaciones donde otros patógenos o insecticidas químicos seaninefectivos, ejemplo Nosema locustae para el control de saltamontes.Los hongos, se utilizan como bioinsecticidas, se producen en medios de cultivo comoBeauveriabassiana y Metarhiziumanisopliae, tienen un rango de hospederos amplio einfectan a través del exoesqueleto; atacan áfidos, chicharritas, además larvas delepidópteros, coleópteros e insectos masticadores. Presentan gran potencialidad en ambientesprotegidos, como invernaderos; Verticillium lecanii se utiliza en cultivos de invernadero deGran Bretaña. En las regiones tropicales y subtropicales, Brasil es el mayor productor dehongos entomopatógenos; su producción se enfoca hacia la muscardina verde, Metarhiziumanisopliae, para el control de salivazos en caña y pasto.La bacteria esporógena Bacillus thuringiensis (Bt) es un insecticida microbiano exitoso, conmás de 30 sub especies; su espectro de actividad se limita a tres patotipos activos contra:Lepidópteros, Dípteros, y Coleópteros. La actividad insecticida son los cristales proteicos queproducen durante su esporulación. Estas proteínas son venenos estomacales altamenteespecíficos, debido a que no existe una actividad de contacto por parte de estas toxinas, noson activas contra áfidos, escamas, mosquitas blancas o chicharritas.ejemplos:Bacillus thurigensisKurstaki contra insectos Lepidópteros.B. thurigiensis israelensis contra larvas de mosquitos y jejenes.B. thurigensis tenebrionis contra algunos Coleópteros.B.sphaericus , se usa en el control de larvas de mosquitos del genero Culex.B. popilliae, se usa en el control de larvas de algunos escarabajos; no se produce fácilmente,porque necesita del hospedero para su proliferación.Existen una gran diversidad de virus patógenos de insectos; la mayoría de los que se handesarrollado o se encuentran en proceso de desarrollo como insecticidas microbianos son los 9
  • 11. virus de la poliedrosis nuclear (VPN) y los virus de la granulosis(VG), pertenecientes a la familia Baculoviridae. Todos los virus son parásitos obligados esto limita el interés comercial para el desarrollo de virus como insecticidas microbianos, excepto aquellos que atacan plagas de particular importancia o que presentan un rango de hospederos amplio(Ibarra 1998).1.3. Avances del control biológico actual Control Biológico en Cajamarca. En la Región de Cajamarca se cuenta con varios Laboratorios de Insectos Útiles y de Entomopatógenos que producen especies para el control de plagas en cultivos de importancia económica; el Programa Nacional de Control Biológico, propone a los agricultores una alternativa para el control de plagas a bajos costos y con los beneficios conocidos de este método como son: Evitar la contaminación ambiental. Evitar los residuos tóxicos en los productos de consumo Durante las últimas campañas agrícolas se han realizado trabajos de diagnóstico, monitoreo y evaluaciones sobre dinámica de poblaciones y grado de eficiencia de la fauna benéfica presente en cultivos de maíz y papa. Así se registran especies nativas de coccinélidos, Telenomus sp, Trichogrammaspp , grupos de macro y micro hymenopteros ytachínidos;y otras en proceso de identificación. Los centros de crianza son: Los laboratorios de la Estación Experimental Baños del Inca - Cajamarca, San Pedro - San Pablo, Malcas – Cajabamba y el proyecto Pejeza (Cajamarca – La Libertad) ; se están multiplicando principalmente las especies: (Vilar 1995). 10
  • 12. a. Trichogramma spp ( Hym: Trichogrammatidae)b. Copidosomakoheleri( Hym: Encyrtidae)Laboratorios de Entomopatógenos en CajamarcaUbicadas en la Estación Experimental Baños del Inca y en la Universidad Nacional deCajamarca, operan los laboratorios de Producción del hongo blanco Beauveria brongniarti y deBaculovirus phthorimaea que son productos específicos para el control de larvas y adultos dePremnotrypes spp (Gorgojo de los Andes) y Phthorimaea operculella (polilla de la papa)respectivamente.El SENASA – Cajamarca, cuenta con una capacidad instalada vía convenio con la UniversidadNacional de Cajamarca, Estación Experimental Agraria – Baños del Inca, para producir 1 TM de"Baculovirus" en polvo por mes, cantidad que es suficiente para atender la demanda de laDirección Sub Regional de Agricultura Cajamarca.En el año 1995, se ha producido en el Laboratorio de SENASA – Cajamarca 1205 kilogramosde "Baculovirus", promocionado su uso en el ámbito de Empresas Asociativas,Agricultoresindividuales, entre otros(Vilar 1995).Mosca de la fruta: control en marchaEl mango es uno de los frutales más importantes que se conducen en el valle Alto Jequetepeque,en una superficie aproximada de 600 ha. con una producción de 9,000 Tn al año. Tambiendestaca la chirimoya con una superficie de 400 ha. La plaga que causa mayor daño a estosfrutales es la "Mosca de la Fruta" (Anastrepha spp.y Ceratitis capitata) teniendo comohospederos de primera instancia al Guayabo, Chirimoya, Níspero, Pacae, Ciruela, Cítricos yotros.El SENASA Cajamarca a través del Programa de Control y Erradicación de "Moscas de laFruta", ha logrado determinar la presencia de dichas especies en niveles y poblaciones bastanteelevados del género Anastrepha, en cultivos de diferentes especies frutales que no presentan una 11
  • 13. floración uniforme, produciéndose maduraciones alternadas la cual da oportunidad a las hembrasde encontrar frutos donde ovipositar y ofrecer alimento suficiente para las larvas.Las especies de Anastrepha que se han determinado en el valle son: Anastrepha fraterculus, A.striata y A. distincta. Siendo las rutas de mayor infestación Puclush y Yaminchad (Provincia deSan Miguel y San Pablo).Para determinar el nivel poblacional de "Moscas de la Fruta", se monitorea todo el valle deJequetepeque con la instalación de trampas tipo McPhail, se distribuyen teniendo en cuenta laformación de frutos y con densidad de trampa cada tres hectáreas.Las trampas son cargadas cada 7 días con cebos preparados basadas en proteína hidrolizadacomo atrayente, Borax granulado como conservante y agua como disolvente en las siguientesproporciones: por 1 litro de agua 20 ml de Proteína y 10 gr de Borax. Logrando encontrar unnivel poblacional expresado en Mosca Trampa Día (M.T.D.) , el mismo que tiende aincrementarse en los meses de verano (enero-marzo) época de producción de la mayoría de losfrutales tanto cultivados como nativos.Paralelamente a esta actividad se realiza otros métodos que permiten interrumpir el ciclobiológico de la plaga como: recojo y enterrado de frutos infestados semanalmente de diferentesfrutales hospederos, seguido de la aradura de suelo con la finalidad de exponer las pupas al sol ya las aves, eliminación de frutales hospederos dentro de huertos organizados de mango, podas deraleo con el objeto de dar mayor iluminación solar y ventilación a la plantación.(http://www.senasa.gob.pe/0/sanidad_vegetal.aspx) 12
  • 14. 1.4. Plagas en el País controladas por insectos benéficos Control biológico en el Perú: El control biológico en el Perú se inicia en el año 1904, y desde ese año a la actualidad se intentaron de introducir 98 especies benéficas, de las cuales 29 se consideran implantadas; 5 sin información, 12 en proceso de adaptación y 52 no implantadas hasta la fecha. De las 29 especies benéficas implantadas, 13 especies ejercieron control completo en 11 plagas, habiéndose calculado solo el beneficio obtenido de 10 especies benéficas que controlan 9 plagas. Si bien el control biológico en el Perú inicia en 1904, alcanza su mayor desarrollo a partir de 1960 con la creación del Centro de Introducción y Cría de Insectos Útiles (CICIU), entidad que trabajo en la investigación y aplicación del control biológico, hasta la creación del Programa Nacional de Control biológico en el año 1995,organismo no estructurado de Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA), que tiene como objeto intensificar la utilización del control biológico en cultivos de importancia económica reduciendo la aplicación de agroquímicos para la cual se capacita y se alquila equipo de calidad para trabajar en la producción de especies benéficas(Care- Perú 1998) 13
  • 15. Cuadro 2. Relación de especies benéficas introducidas e implantadas en el país.Especies benéficas Añosexóticas Plagas que controlan Procedencia intentados ResponsableAphytis diaspidis (How) Pinnaspis strachani Ferris y(Hym:Aphelinidae) Rao (Hem: diaspididae) Ceylan 1904-1912 TowsendAphytis fuscipennis( How) Pinnaspis strachani Ferris y(Hym:Aphelinidae) Rao (Hem: diaspididae) Barbados 1904-1913 TowsendArhenophagus Pinnaspis strachani Ferris ychionaspidisAuriv. Rao(Hym:Encyrtidae) (Hem: diaspididae) Barbados 1904-1914 TowsendAspidiotiphagus citrinus Pinnaspis strachani Ferris y(Crwf.) Rao( Hym: Aphelinidae) (Hem: diaspididae) Hawai 1904-1915 TowsendProspaltella berlesei How Pinnaspis strachani Ferris y( Hym: Aphelinidae) Rao(Hem: diaspididae) Ceylan 1904-1916 TowsendAphelinus mali Eriosoma lanigerum(Haldeman) (Hausm.)(Hym:Aphelinidae) (Hem: aphididae) USA 1922 Wille-SolanoRodalia cardinalisMulsant Icerya purchasi Msk(Col: coccinellidae) (Hom: margarodidae) USA 1932 E.E.A.L.MMetaphycus lounsburyHow Saissetia oleae Brn.(Hym: Encyrtidae) (Hem: coccidae) USA 1936 E.E.A.L.MScutellista cyanea Motsch Saissetia oleae Brn. (Hem: coccidae) USA 1936 E.E.A.L.M Toxoptera sppHippodamia convergensGuer (Hem: aphididae) USA 1937 E.E.A.L.M 14
  • 16. (Col: coccinellidae)Blaesoxipha caridei Schistocerca piceifronsBrethes peruviana Lynch A.( Dip: Sarcophagidae) (Ort: locustidae) Argentina 1947 E.E.A.L.MAphytis lepidosaphesCompere Lepidosaphes beckii Newm(Hym:Aphelinidae) (Hem: diaspididae) USA 1957 BeingoleaLindorus lophantae Selenaspidus articulatus(Blaisd) Morgan( Col: Coccinellidae) (Hem: diaspididae) Trinidad 1971 CICIUMethapycus helvolus Selenaspidus articulatusComp. Morgan(Hym: Encyrtidae) (Hem: diaspididae) USA 1961 CICIUAphytis holoxantus DeBach. Chrysomphalus ficus L.(Hym:Aphelinidae) (Hem: Diaspididae) USA 1963 CICIUCoccophagus rustiCompere Saissetia spp(Hym:Aphelinidae) (Hem: coccidae) USA 1970 CICIUAnagyrus saccharicola Saccharicoccus sacchariTimb. Cock(Hym: Encyrtidae) ( Hem: Pseudococcidae) Hawai 1970 CICIURhyzobius pulchellusMontrozier Aspidiotus spp(Col: Coccinellidae) (Hem: diaspididae) Trinidad 1971 CICIU Selenaspidus articulatusAphytis roseni De Bach Morgan(Hym:Aphelinidae) (Hem: diaspididae) Uganda 1971 CICIUAphidius smithi Sher & Acyrthosiphon pisumRao (Harris) Chile 1973 CICIU 15
  • 17. (Hym:Aphelinidae) ( Hem:Aphididae)Encyrtus lecaniorum(Mayr) Saissetia oleae Bem.(Hym:Encyrtidae) (Hem: coccidae) USA 1974 CICIU Aleurothrixus floccosusCales noacki Howard (Maskell)(Hym:Aphelinidae) (Hem: aleyrodidae) USA 1974-1975 CICIUTrichogramma euproctidisAshmead Diatraea saccharalis(Fab.)(Hym: trichogrammatidae) (Lep:Pyralidae) Trinidad 1975 CICIUPachycrepoideusvindemmiae Ceratitis capitata Wied (Dip: Tephritidae) Costa Rica 1978 CICIU-EEALMTrichogramma brasiliensis Alabama argillaceaAshmead (Hubner)(Hym: trichogrammatidae) (Lep: noctudae) Brasil 1983 CICIUCoccidophilus citricola Quadraspidiotus perniciosusBrethes Cosmstock(Col: coccinellidae) (Hem: diaspididae) Chile 1984-1985 CICIU Pectinophora gossypiella Trichogramma fuentesi SaundersTorr(Hym:trichogrammatidae) (Lep:gelechiidae) Mexico 1985 CICIUSpalangia endius Wlk Musca domestica Linnaeus( Hym: Pteromalidae) (Dip: muscidae) Chile 1986 CICIUAgeniaspis citrícola Phyllocnistis citrella(Hym: Encyrtidae) (Lep: gracillariidae) USA 1996-1997 CICIU Fuente:Seminario Control biológico, Luís Valdivieso Jara, Director Técnico del PNCB- SENASA, Lima – Perú. 1998 Cuadro 3. Especies benéficas introducidas al país en diferentes cultivos importantes. 16
  • 18. CULTIVOS/PLAGAS SUSCEPTIBLE ESPECIE BENÉFICA FAMILIA CARACTERÍSTICA AlfalfaAcyrthosiphonpisum(H) N Aphidius smithi S & R Braconidae (1) (A) (PI) AlgodónAlabama argillacea Trichogramma(Hub) H brasiliensis Ashmead Trichogrammatidae (1) (A) (PI)Heliothis virescensFabricius H T. pretiosum Riley Trichogrammatidae (2) (A) (PI)Pectinophora Trichogrammatoideagossypiella Saunders H bactrae Nagaraja Trichogrammatidae (2) (A) (PI) CaféSaissetia coffeae Scutellista cyaneaWalk H Motsch Pteromalidae (1) (A) (PI) Metaphycus helvolusS.coffeae W. N Comp. Encyrtidae (1) (A) (PI) Coccophagus rustiS.coffeae W. N Compere Aphelinidae (1) (A) (PI) Caña de AzucarDiatraea saccharalis Cotesia flavipesF. L Cameron Braconidae (2) (A) (PI)Sacchyaricoccus Anagyrus saccharicolasacchari F. N Timb. Encyrtidae (1) (A) (PI) CitricosAleurothrixusfloccosus Mask N Cales noacki Howard Aphelinidae (1) (A) (PI) Rodalia cardinalisIcerya purchasi Mask NyA (Mulsant) Coccinellidae (1) (A) (D) 17
  • 19. Selenaspidusarticulatus Morg A Aphytis roseni De Bach Aphelinidae (1) (A) (PE)Chrysomphalus Aphytis holoxanthus Deaonidum LA Bach Aphelinidae (1) (A) (PE)Phyllocnisti citrellaStation H-L Ageniaspis citricola Encyrtidae (2) (A) (PI) ManzanoEriosoma lanigerum Aphelinus mali(Hausman) N.A (Haldeman) Aphelinidae (1) (A) (PI) TrichogrammaCydia pomonella L. H enbriophagum Hatig Trichogrammatidae (2) (A) (PI)C. pomonella L. H T. dendrolini Matsumura Trichogrammatidae (2) (A) (PI) OlivoHemiberlesia latanie(Sign.) N.A Aphytis diaspidis How. Aphelinidae (1) (A) (PE)H. latanie (S) N.A Aspidiotiphagus citrinus Aphelinidae (1) (A) (PI)Saissetia coffeae Metaphycus helvolusWalk N Comp. Encyrtidae (2) (A) (PI) Coccophagus rustiS.coffeae W. N Compere Aphelinidae (2) (A) (PI)S.coffeae W. H Scutellista cyanea M. Pteromalidae (2) (A) (D)Saissetia oleae N.A Metaphycus lounsburyii Encyrtidae (2) (A) (P)S. oleae N M. helvolus (C) Encyrtidae (2) (A) (P) Scutellista cyaneaS. oleae H Motsch Pteromalidae (2) (A) (D) Coccophagus rustiS. oleae N Compere Aphelinidae (2) (A) (P) (1) Colectado del campo A=Estado adulto N=Estado ninfa PI=Parasitoide interno 18
  • 20. (2) Criado en laboratorio L=Estado larval H=Estado de huevo PE= Parasitoide externo V=Viriones C=ConicidasFuente : Seminario control biológico, Luís Valdivieso Jara, Director Técnico del PNCB- SENASA, Lima – Perú. 1998 Cuadro4. Principales plagas de cítricos y sus controladores biológicos en el Perú. Estado Caract Contro Plaga suceptible Especie benefica Orden/Familia . l Aleurothrixus Cales noacki (1) (A) floccosus Mask N Howard Hym:Aphelinidae (PI) C Amitus spinifera (2) (A) A. floccosus M. N Brethes Hym:Plategasteridae (PI) S Aphis citricidus Lysiphlebus (2) (A) (Kirkaldy) N-A testaceipes( c ) Hym:Braconidae (PI) S Arigyrotaenia Trichogramma Hym:Trichogrammatoid (2) (A)sphaleropa Meyfik H exiguum P&P ea (PI) P Ceratitis capitata Biosteres (1) (A) Weidman L longicaudatus Hym:Braconidae (PI) P MetaphycusCoccus hesperidum luteolus (1) (A) L. N (Timberlake) Hym:Encyrtidae (PI) C Metaphycus Coccus viridis luteolus (1) (A) (Green) N (Timberlake) Hym:Encyrtidae (PI) C Aphytis Chrysomphalus holoxanthus De (1) (A) aonidum (L) N-A Bach Hym:Aphelinidae (PE) C Icerya purchasi Rodalia cardinalis (1) (A- Mask H-N-A (Mulsant) Col:Coccinellidae L) (P) C A Hym:Aphelinidae P Lepidosaphes Aphytis (1) (A) 19
  • 21. beckii (Newman) lepidosaphescomp. (PE) Ageniaspis Phyllocnistis citricola (1) (A) citrella Stainton H-Li Logvinoskaya Hym:Encyrtidae (PI) C Pinnaspis Aphytis aspidistrae mytilaspidis (Le (1) (A) Signoret H-Li Baron) Hym:Aphelinidae (PE) P Planococcus citri Leptomastidea (2) (A) Risso) N-A abnormis (Girauld) Hym:Encyrtidae (PI) S Planococcus citri (2) (A- Risso) N-A Sympherobius sp Neu:Sympherobidae L) (P) S Planococcus citri Coccidoxenoides (2) (A) Risso) N-A peregrinus Hym:Encyrtidae (PI) S Selenaspidus Aphytis roseni de (1) (A) articulatus Morg. A Bach Hym:Aphelinidae (PE) C Saissetia coffea Metaphycus (1) (A) (Wolker) N-A helvolus Hym:Encyrtidae (PI) CToxoptera aurantii Aphidius colemani (2) (A) Bay N-A (Vierecki) Hym:Braconidae (PI) P N = Ninfa (1) exótico C=Completo Li= Larva inicial (2) nativo S=Sustancial A= Adulto (P) predador P=Parcial PI= Parasitoide interno (PE) Parasitoide externo H= Huevo L= LarvaFuente : Seminario control biológico, Luís Valdivieso Jara, Director Técnico del PNCB- SENASA, Lima – Perú. 1998 20
  • 22. CAPÍTULO II INSECTOS COMO CONTROLADORES BIOLÓGICOS2.1. Predadores: Se caracterizan porque se alimentan de lasplagas, principalmente insectos, causan la muerte en forma violenta y rápida. Son un grupo muy diverso de animales, incluyendo vertebrados como batracios, reptiles, aves y murciélagos; e invertebrados como ácaros, arañas e insectos. Muchos predadores se alimentan de insectos dañinos como de insectos benéficos. Los insectos son los predadores invertebrados más importantes siguiendo las arañas y los ácaros (http://www.agritacna.gob.pe/inprex.php?pagina=pagroindus) Insectos Predadores Los insectos predadores incluyen especies masticadoras como especies picadoras-chupadoras. Los insectos masticadores se alimentan solo de presas; los insectos picadores chupadores predadores se alimentan de los jugos de sus presas como de los jugos de las plantas que le permiten la subsistencia del predador, pero por lo general éste requiere de los jugos animales para reproducirse. En general los adultos predadores tienen el mismo régimen alimenticio que los estados inmaduros, larvas o ninfas. La mayoría de los insectos predadores se encuentran entre los ordenes: Coleópteros, Hemípteros y Neurópteros; Dípteros e Himenópteros en menor grado (Beingolea 1990). 2.1.1. Neuropteros predadores Los insectos del orden neuróptero son especialmente predadores y las dos familias más importantes son Chrysopidae y Hemerobiidae. 21
  • 23. a. Familia Chrysopidae Los crisópidos adultos se caracterizan porque sus alas son reticuladasde color verde, sus larvas son predadoras voraces deáfidos, arañitas rojas, cochinillas harinosas, huevos de diversos insectos y larvas pequeñas. Dentro de esta familia se ubican: Chrysoperla externa (Hagen) común en maíz yCeraeochrysa cincta Schneider en cítricos b. Familias Hemerobiidae y Sympherobiidae Los adultos tienen alas reticuladas de color bruno y son más pequeños que los crisópidos. Sympherobius californicus Banks es predador de cochinillas harinosas y Hemerobius sp. predata arañita roja y varios insectos pequeños (Núñez 1988). Figura 1. Predadores crisópidos(SegúnNúñez 1988).1-2 : Hemerobius sp (Hemerobiidae) (1: adulto; 2: larva)3 : Chrysopa californica (Chrysopidae) 22
  • 24. 4-7 : Chrysoperla externa (4: adulto 5: larva predando 6: huevos 7: cocón)8 : Ceraeochrysa cincta(Chrysopidae), ciclo biológico. 2.1.2.Coleópteros Predadores La mayoría de los coleópteros o escarabajos predadores pertenecen a las familias Carabidae, Cicindellidae y Coccinellidae. a. Familias Carabidae y Cicindellidae Los carábidos y cicindélidos son escarabajos grandes a medianos, muy agresivos, voraces, y zoófagos; caminan rápidamente en el suelo y por lo general no suben a las plantas. Durante la roturación del suelo estos escarabajos se presentan en gran número devorando larvas y pupas de insectos que quedan al descubierto. El uso de insecticidas ha reducido las poblaciones de estospredadores. En la costa central del Perú encontramos: Calosoma abreviatum Chand y Anisotarsus spp (Carábidos) de hábitos nocturnos, Megacephala sp, y Cicindela sp. (Cicindélidos). Hylithus es un género de carábido registradoen la sierra (Erwin1990). 23
  • 25. Figura 2. Coleópteros predadores(Según Erwin 1990).1-2 : Megacephala sp (Cicindelidae) (1: adulto, 2: larva en su túnel subterráneo)3 : Calosoma sp (Carabidae)4-5 : Calosomaabreviatum (Carabidae) (4: adulto predatando una oruga; 5: larva predatando una oruga).6 : Harpalus sp (Carabidae)7 : Cicindela sp (Cicindelidae). b. Familia Coccinellidae Los coccinélidos son escarabajos predadores de áfídos, cochinillas harinosas y queresas. Unas pocas especies de los géneros Epilachna y Psylobora son fitófagas o micófagas. Son insectos predadores más comunes; se les conoce comúnmente como "vaquitas de San José", "mariquitas" y otros nombres. La especie más común es Hippodamia convergens Guer. especie que ha sido introducida en el país. Entre otras especies están Cyclonedasanguínea L., Coleomegilla maculata D.E., Eriopis connexa Germ., Pullas sp., Scymnus ocellatus Sharp (Romero et. al. 1974). Neda ostrina, Coccinellina sp., Coccinella sp., son especies de preferencia en la sierra; Brachyacantha bistripustulata y varias especies de Azya en la seja de selva son predadoras de queresas coccidas (Carrasco 1962). Microweisia sp. es predador de arañitas rojas del algodonero, Zagreushexasticta predata cochinillas harinosas y Orthezia (Pacora 1980). Lindoruslonphanthae predata al piojo blanco de los cítricos. Rhizobius pulchellus es un eficiente predador de queresas diaspididas (Beingolea 1990). La acción de los coccinélidos es relativamente lenta, y en general no se les puede catalogar entre los más eficientes enemigos naturales, a excepción de Rodolia cardinalis, este es predador de la queresa algodonosa de los cítricos (Palomino y Dale 1988). 24
  • 26. Figura 3. Escarabajos coccinéllidos1-5 : Hippodamia convergens, predador de pulgones (1: adulto; 2: huevos; 3: larva; 4: pupa; 5: adulto y larva )6-7 : Scymnus sp., predador de pulgones (6: adulto; 7: larva ) (Según Ojeda 1971)8 : Cycloneda sanguinea, predador de pulgones.9 : Coleomegilla maculata, predador de pulgones.10-11 : Zagreus hexasticta, predador de cochinillas harinosas y queresa móvil (10: adulto; 11: larva) (Según Pacora1980)12-13 Azya sp., predador de queresas (12: adulto; 13: larva)14-15 Lindoruslophanthae, predador de piojo blanco (14: adulto; 15: larva) (Según Marín 1983).16-17 Rodoliacardinalis, predador de la cochinilla algodonosa de los cítricos (16: adulto; 17: larva). 25
  • 27. 2.1.3. Hemípteros Predadores Entre los hemípteros existen especies importantes predadoras distribuidas en diversas familias. a. Familia Miridae Son chinches pequeños y ovales; muchas son especies fitófagas otros son predadoras, especialmente de huevos de Lepidópteros. Los géneros predadores más comunes son: Rhinacloa,Hyalochloria, Campylomma, Ceratocapsus, Spanogonicus y Hyaliodes presentes en los campos de algodón. Los chiches Rhinacloa forticornis, R. aricana y R. subpallidicornis) constituyen el principal agente regulador de las poblaciones de Heliothis.Hyalochloria denticomis es unimportante predador de huevos del gusano de la hoja del algodonero (Anomis texana). Ceratocapsus dispersus predata huevos y larvas pequeñas de Bucculatrix y del gusano rosado(Encalada y Viñas 1990) b. Familia Anthocoridae Son chinches pequeñas que viven entre las flores y terminales de las plantas. Muchas especies son predadoras. Orius insidiosus (Say) y Paratriphleps laeviusculus Champ, son eficientes predadores de huevos de Heliothis y otros lepidópteros (Cueva et. al.1974) c. Familia Nabidae Son chinches delgados, frecuentes en gramíneas y plantas herbáceas, se alimentan de larvitas y otros insectos pequeños. Nabis punctipennis Blanch, y N. capsiformis Germar se presentan en la costa del país(Ojeda 1971) d. Familia Neididae Son chinches muy delgados con patas largas. En la costa se presenta Aknysus spinosus Dist. predador de huevos y larvas pequeñas. 26
  • 28. e. Familia Reduviidae Son chinches carnívoros y hematófagos; algunas son predadores de insectos. Zelus spp. son comunes en plantaciones de maíz donde hay larvas de lepidópteros. Rasahus hamatuses menos común y su picadura al hombre es muy dolorosa.f. Familia Lygaeidae Son chinches mayormente fitófagos pero algunas especies son predadoras; entre ellas destaca Geocoris punctipes Say y G. borealis destruyen huevos y larvas pequeñas de lepidópteros.g. Familia Pentatomidae Llamados también “chinches escudo”, la mayor parte se alimentan del jugo de las plantas pero algunas especies son predadoras de larvas de lepidópteros y otros insectos. En el algodonero se presentan las especies: Euchistus convergens (H.S.), E. incies, Piezodorus guildini Westw., Podisusnigrispinus, P. sordidus y Edessa sp. pero su eficiencia no parece importante. 27
  • 29. Figura 4. Hemípteros predadores de huevos y larvas1-2 : Zelus sp (Reduviidae) (1: adulto; 2: ninfa)3 : Ceratocapusdispersus (Miridae) (Según Encalada y Viñas1990)4-5 : Nabis sp. (Nabidae)(4: Adulto; 5: ninfa)6-7 : Hyalochloriadenticornis (Miridae) (8: adulto; 9: ninfa) (Según Beingolea 1990)8-9 : Rhinacloaforticornis (Miridae) (8: adulto; 9: ninfa) (Según Herrera1965)10-11 : Paratriphlepslaeviusculus (Anthocoridae) (10: adulto; 11 ninfas)12-13 : Geocoris sp (Lygaeidae) (12: adulto; 13: ninfa)14 : Podisus sp (Pentatomidae)15-16 : Oriusinsidiosus (Anthocoridae)(15:adulto;16:ninfa) 28
  • 30. 2.2. Parasitoides: Se caracterizan porque una parte de su ciclo de vida lo realiza a expensas de un hospedero. Pueden ser endoparasitoides (internos) o sea la hembra deposita sus huevos dentro del hospedero o ectoparasitoides (externos), si los huevos son depositados sobre los hospederos(http://www.agritacna.gob.pe/inprex.php?pagina=pagroindus) Insectos Parasitoides: Los parasitoides adultos se alimentan del néctar de las flores, del polen, exudaciones de plantas o de los fluidos del cuerpo del hospedero herido por la punción del ovipositor, algunos microhimenópteros parasitoides de queresas producen apreciable mortalidad de los hospederos como consecuencia del proceso de alimentación, es común en las avispitas de la familia Aphelinidae. Los parasitoides de las plagas pertenecen casi exclusivamente a las órdenes de los Himenópteros o avispas y Dípteros o moscas. 2.2.1.Himenópteros parásitos Las avispas constituyen el grupo más numeroso de parásitos de plagas. Las superfamilias Ichneumonoidea y Chalcidoidea abarcan el mayor número de especies. En menor importancia figuran las superfamilias Proctotrupoidea, Bethyloidea, Cynipoidea, Chrysidoidea, Scolioidea y Sphecoidea(Whu 1985). a. Familia Braconidae Son en su mayoría pequeñas avispas que parasitan principalmente lepidópteros y coleópteros; en menor grado dípteros, homópteros y otros grupos; actúan como ecto o endoparásitos, parásitos huevo-larvales, huevo-pupales o larvales. Los bracónidos son de ciclo de vida corta. Entre las especies importantes tenemos: Ragas gossyppi Mués, y Meteorus molinensis Porter, parásitos del gusano de hoja del algodonero. Lysiphlebus testaceipes Cressan, Aphidius colemani Viereck, A. matricariae Haliday, Diaeretiellarapae (Me. Intosh) y Praon sp. parásitos de pulgones o áfidos ( Redolfi y Ortiz 1980). 29
  • 31. Apanteles gelechiidivoris Marsh y otras especies del mismo género parasitan a las polillas de la papa ( Redolfi y Vargas 1983). Apanteles flavipes es una especie introducida contra el barreno de la caña,Orgilus sp. parasita al gusano perforador de plantas tiernas de maíz; Chelonus sp. parasita al pegador de las hojas del fríjol(Cueva et. al.1980).45 Figura 5. Parasitoides de la Familia Braconidae (Según Redolfi y Ortiz 1980)1 Aphidius sp2 Larva de Trioxys en cuerpo de pulgón3 Lysiphlebus parasitando4 Apanteles sp5 Leurinion primum, parasitoide del gusano perforador de la hoja del algodonero b. Familia Trichogrammatidae: Son avispitas muy pequeñas que parasitan huevos de lepidópteros y homópteros. El género Trichogramma es mundialmente conocido, estas avispitas se crían en el Perú desde hace 30
  • 32. muchos años. Las primeras referencias nacionales mencionan a Trichogramma minutum pero en realidad esta especie no existe en América del Sur sino en América del Norte donde parásita huevos de lepidópteros en árboles frutales y forestales. En el Perú se cría comúnmente Trichogramma fasciatum Perkins contra el barreno de la caña de azúcar y la especie T. brasiliensis contra Heliothis y otros lepidópteros del algodonero(Pollack 1975). El año 1976 se introdujeron al país las especies T. euproctidis contra huevos del gusano de brotes del olivo; T. japonicum, T. australicum y T. chilotraea contra huevos del cañero; T. robustus y Trichogrammatoidea armígera contra Heliothis(Whu 1985). Figura 6. Parasitoides de huevos1 : Trichogramma brasiliensis (Trichogrammatidae), parasitoide de huevos de Heliothis sp. (1: ciclo de vida).2 : Telenomus remus (Scelionidade), paraitoide de huevos de cogollero y otros noctuidos3 : Tetrastichus sp. ( Eulophidae), parasitoide de huevos de escarabajos 31
  • 33. Figura 7. Parasitoides de la polilla de la papa(Según Redolfi y Ortiz 1980)1 : Apanteles gelechiidivoris (Braconidae)2 : Chelonus phthorimaeae (Braconidae)3 : Dibrachys cavus (Pteromalidae), parasitoide polífago: ataca lepidopteros, dípteros, coleópteros.4 : Copidosoma koehleri (Encyrtidae). Figura 8. Parasitoides de moscas blancas1 : Eretmocerus haldemani (aphelinidae)2 : Eretmocerusserius (aphelinidae) 32
  • 34. 3-6 : Encarsia sp (aphelinidae) (3: pupas de mosca blanca enegrecidas por parasitismo; 4: larva del parasitoide; 5: larva de parasitoide en cuerpo de pupa de mosca blanca; 6: adulto).7 : Amitus sp (Platygasteridae) 2.2.2. Dípteros parásitos Las moscas parásitas atacan larvas de lepidópteros y en menor grado larvas y adultos de coleópteros, ninfas y adultos de hemípteros. No poseen ovipositor alargado, la mayoría de sus hospederos son insectos que no están protegidos en túneles o minas, salvo algunas excepciones. Las moscas parásitas son en su mayor parte larvípara u ovo-larvíparas, pero también hay algunas especies que son ovíparas. Las larvitas de las moscas suelen permanecer inactivas por un tiempo dentro del cuerpo del hospedero hasta que el hospedero ha alcanzado cierto desarrollo, luego la larva del parasitoide crece en forma rápida. Las moscas adultas se alimentan del néctar de las plantas y de diversos detritos. La mayoría de las especies de moscas parásitas pertenecen a la familia Tachinidae. También se encuentran algunas especies parásitas en las familias Sarcophagidae, Cecidomyiidae, Phoridae y otras. a. Familia Tachinidae Son moscas de tamaño mediano a grande con cerdas bien desarrolladas. La actividad de los adultos es influenciada por las condiciones ambientales pero en general son buenos voladores; parasitan larvas de lepidópteros y coleópteros, ninfas y adultos de hemípteros, y otros insectos. Los hábitos de oviposición son muy variados por ejemplo Las hembras de Winthemia reliqua y de otras especies son parásitos comunes del cogollero y otrosnoctuidos, y colocan los huevos en los segmentos torácicos del hospedero(Vergara y Cisneros 1990). Archytas marmoratus parasitoide de las mismas plagas, deposita sus larvas sobre las hojas en donde quedan a la expectativa del paso de sus hospederos. 33
  • 35. Rhamphinina discalis T.T., parásito de los gusanos blancos del suelo depositan suspequeñas larvas en el suelo donde penetran hasta alcanzar a sushospederos. Paratheresia claripalpis Wulp, parásito del barreno de la caña del azúcar, deposita sus larvas sobre el tallo y de allí se movilizan en busca del hospedero en las galerías de la caña (Risco 1963). Gonia peruviana, parasitoide de gusanos de tierra o gusanos cortadores, deposita sobre las hojas huevos microscópicos que son ingeridos por las larvas junto con su alimento.b. Familia Sarcophagidae Son moscas pequeñas a medianas de hábitos desde saprófagos hasta parásitos de animales superiores. Las especies parásitas de plagas son en su mayoría larvíparas y atacan especialmente a orthópteros y en menor grado a lepidópteros, moscas, chinches y avispas. Sarcophaga chrysostoma W. ataca a los huevos de la langosta migratoria sudamericana en Jaén y Blaesoxipha carideiBrethes es un parasitoide importante de la misma langosta en Ayacucho (Beingolea 1990)c. Familia Bombyliidae Son moscas que tienen el aspecto de abejorros, cuerpo robusto cubierto densamente de pelos. Las larvas pueden ser parasitoides o predadoras. Las formas parásitas atacan a las larvas de avispas, moscas, escarabajos y lepidópteros. Otras familias de moscas que incluyen especies parásitas de plagas son: Cecidomyiidae, Phoridae, Pyrgotidae, Drosophilidae y Cryptochaetidae, a ésta última familia pertenece Cryptochaetum iceryae (Will.) eficiente parásito de la queresa algodonosa de los cítricos. 34
  • 36. Figura 9. Moscas parasitoides (Según Vergara 1985.).1 : Winthemia sp (Tachinidae) parasitoide de noctuidos2 : Gonia peruviana (Tachinidae) parasitoide de gusanos de tierra o cortadores3-7 : Paratheresia claripalpis (Tachinidae) parasitoide del barreno de la caña de azúcar (3: adulto; 4: larva parasitada; 5: larva del parasitoide dentro de la larva del barrerno; 6: larva del parasitoide; 7: pupario)8-9 : Winthemia reliqua (Tachinidae) parasitoide el cogollero del maíz (8: huevos del parasitoide sobre los segmentos toráxicos del cogollero; 9: larva del parasitoide abandonando el cuerpo del cogollero)10 : Ramphinina discalis (Tachinidae) parasitoide de gusanos blancos o aradores)11 : Acaulona peruviana (Tachinidae) parasitoide del arrebiatado 35
  • 37. 2.3. Hiperparasitoides y parasitoides de predadores Los parasitoides y los predadores de las plagas tienen a su vez sus propios enemigos naturales. El parasitoide de un parasitoide se llama hiperparásito ohiperparasitoide. De allí que cuando se introducen enemigos naturales de una plaga a una nueva región hay que tener cuidado de no introducir hiperparasitoides. Antes de liberar parasitoides en el campo se requiere criarlos en el laboratorio por dos o tres generaciones asegurándose que todos los enemigos naturales que emergen sean iguales. La mosca nativa Paratheresia claripalpis parasitoide del barreno de la caña de azúcar, es parasitada por Trichopria cubensis Fouts (Diapriidae), Aulatopria tucumana Brths (Diapriidae), Thysanus dipterophagus Gir (Thysanidae), Melittobia sp. (Eulophidae) y Conostigmus sp. (Ceraphronidae) que afecta sus poblaciones significativamente. Las pupas de Anagyrus pseudococci, Leptomastidea sp. y Aenasius maíz parasitoides de la cochinilla harinosa del algodonero son parasitados por Achrysophagus sp. (Encyrtidae) y Thysanus sp. (Thysanidae) Por otro lado, los huevos de crisópidos predadores de áfidos y otros insectos son parasitados por la avispita Telenomus chrysopae Ashmead (Scelionidae) y las pupas por la avispita Arachnophaga sp (Eupelmidae). Las larvas de los coccinélidos, importantes predadores de áfidos, son parasitadas por avispitas del género Pachyneuron (Pteromalidae) y tanto pupas como adultos por la avispa Perilitus coccinellae (Schrank) (Braconidae)(Coquis y Salazar 1975). 36
  • 38. CAPÍTULO III OTROS ORGANISMOS BENÉFICOS COMO CONTROLADORES BIOLÓGICOS3.1. Arañas Arañas predadoras Las arañas de la Clase Arachnida, Orden Araneida constituyen predadores generales. Algunas especies cazan sus presas directamente, mientras que otras lo hacen por medio de sus telarañas. Es posible que las telarañas atrapen un mayor número de insectos benéficos debido a su mayor movilidad, y que los cazadores directos destruyen más insectos fitófagos, por ser más lentos. 3.1.1. Familias que no tejen telaraña (en campo) están: a. Familia Thomisidae o arañas-cangrejo. b. Familia Oxyopidae c. Familia Salticidae o arañas saltadoras. 3.1.2. Familias que tejen telaraña están: a. Famllia Theridiidae con telas asimétricas b. Familia Argiopidae con telas simétricas. Las arañas más frecuentes en los terminales y hojas del algodonero en la costa central son Theridion calcynatum Holmberg y Theridula gonygaster (Simón) (Theridiidae), Leucauge sp. (Argiopidae), Oxyopes gracilis Keyserling y Misumenopsvariegatus Keys. (Thomisidae). Las arañas más frecuentes en botones, flores y bellotas son: Steatoda andina Keys. (Theridiidae); Gasteracantha raimondii Taczanowski (Argiopidae); Lycosa sp. (Lycosidae); Clubiona sp. (Clubionidae); Anyphaena sp. (Anyphaenidae); Metaphidippus sp. y Phiale sp. (Salticidae)(Aguilar 1988). 37
  • 39. Figura 10. Principales Familias de arañas predadoras 1 : Anyphaenidae / 2 : Gnaphosidae / 3-4 : Salticidae o araña saltadora / 5 : Clubionidae 6 : Lycosidae o araña lobo / 7 : Oxyopidae / 8 : Thomisidae o araña cangrejo 9 : Tetragnathidae / 10 : Therdiidae / 11 : Araneidae / 12 : Linyphiidae3.2. Ácaros predadores Los ácaros predatores son pequeños, muy móviles que se alimentan de huevos, larvas y adultos de trípidos y otros insectos pequeños, pero sobre todo son predadores de las arañitas rojas y otros ácaros fitófagos. También hay ácaros parásitos de larvas e insectos adultos grandes. Son importantes los géneros Typhlodromus y Amblyseius de la familia Phytoseidae que abarca muchas especies benéficas. El acaro Pyemotes ventricosus (Newport) predata diversas queresas diaspididas. También son importantes especies de las familias Trombidiidae, Cheyletidae, Bdellidae, Cunaxidae, Tydeidae, Stigmaeidae y Anystidae(CIP1992) 38
  • 40. 3.3. Nematodos Algunos nematodos son parásitos obligados de insectos y otros invertebrados. Algunos producen esterilización o muerte del hospedero; requieren de una película líquida para poder desplazarse en el suelo o en la parte aérea. Estos ingresan por las aberturas naturales del cuerpo del insecto; en general son muy susceptibles a la desecación aunque algunas especies presentan un estado especial más resistente que las formas activas. Las especies más conocidas pertenecen a las familias: Steinernematidae, Heterorhabditidae y Mermitidae que suelen matar rápidamente a sus hospederos, esto se debe a que los nematodos están asociados con bacterias que causan infecciones en los insectos. Neoplectana carpocapsae, parásita gorgojos, orugas noctuidas, algunas moscas, la polilla de la manzana y diversos insectos de vida subterránea; Heterorhabditis parásita larvas de lepidópteros; Heterotylenchus parásita moscas y escarabajos; Mermis spp. y otros mermítidos parasitan langostas, Howardula benigna, parásita adultos de diabróticas y Deladenus parásita gorgojos y otros insectos(Van Diesche et. al. 2007).3.4. Protozoarios Los protozoarios patógenos de insectos tienen limitada importancia práctica por que su desarrollo es relativamente lento, es difícil su multiplicación y no siempre presentan alta patogenicidad. Las especies que tienen alguna importancia están dentro del Orden de los Microsporidios que infectan especialmente langostas, moscas y lepidópteros, y entre ellas destaca el género Nosema. La especie N. locustae parásita langostas y grillos mormones. Las enfermedades por microsporidios son crónicas,los insectos mueren gradualmente y en algunos casos la enfermedad se transmite transovarialmente. La incidencia de estas enfermedades ha sido detectada especialmente entre lepidópteros de importancia forestal. Otros géneros de cierta importancia entre los microsporidios son Thelohania y Plistophora(Van Diesche et. al. 2007). 39
  • 41. 3.5. Hongos: Actualmente se reconocen 100 géneros y 750 especies de hongos entomopatógenos que infectan artrópodos habitantes de las plantas, el suelo y el agua. Solo alrededor de 25 especies tienen importancia como controladores naturales de plagas , dentro de estos tenemos a los géneros: Beauveria Metarhizium Paecilomyces Fusarium Vericillium Nomuraea Enthomophtora Zoopthora Aschersonia Se considera que la influencia de las condiciones climáticas, especialmente la humedad es importante en estas enfermedades y puede considerarse como un factor limitante. Mecanismos de acción del hongo:(Helen 2005.) 1. adhesión al tegumento 2. germinación de las conidias 3. Penetración por la cutícula 4. Multiplicación en el hemocele 5. Producción de toxinas 6. Muerte del insecto 7. Colonización 8. Emergencia del micelio 9. Esporulación del hongo 10. Diseminación Los hongos ingresan al cuerpo del insecto a través de la cutícula, de los hongos que pueden encontrarse en un insecto muerto, deben diferenciarse los hongos saprófagos que invaden el 40
  • 42. cuerpo del insecto después que éste ha muerto, y los hongos entomófagos que infectan a losinsectos vivos provocándoles micosis.Entre los hongos más importantes esta el orden de los Entomophthorales que son patógenos deinsectos. La rápida propagación de la enfermedad se debe a la formación y dispersión deconidias entre los segmentos del cuerpo del insecto. El género principal Entomophthora infectaa ortópteros, lepidópteros, hemípteros, homópteros y otros.En la costa central, en otoño y primavera, con una humedad que oscila entre 80 y 100% sepresentan en áfidos enfermedades por efecto de un hongo del género Entomophthora(Beingolea1985).Dentro de los Ascomicetos destaca el género Cordyceps por su gran tamaño y la forma notoriaen que emerge del cuerpo del insecto. Las especies de Sphaerostilbe(de fructificación rojiza);Nectria(de fructificación rosada); Podonectria (de fructificación blanca); Myriangium, entreotras infectan a las queresas diaspididas. Las especies de Aschersonia y Aegerita atacan amoscas blancas.Entre los Deuteromicetos se encuentran los hongos que causan las llamadas "muscardinas" enlas que el hongo cubre totalmente el cuerpo del insecto en estado larval, pupal o adulto. Elgénero Beauveria causa las muscardinas blancas; se le ha registrado en diversos insectos comoel arrebiatado del algodonero, el barreno del café, el cogollero del maíz, y el gorgojo de losAndes. En la costa y selva del Perú se presenta B.bassiana y en la sierra B. brogniartii.Otros géneros de este grupo son Metarhizium, Spicaria, Acrostalagmus, Cladosporium yStemphylium.Vertícillium lecanii infecta al pulgón Aphis gossypii y moscas blanca. 41
  • 43. Figura 11.Ciclo biológico de los entomopatógenos3.6. Bacterias: Los insectos normalmente contienen un gran número de bacterias: saprofitas, parasitas; y simbióticas. Ocasionalmente se presentan bacterias patógenas que son capaces de ocasionar enfermedades especialmente en larvas que se vuelven lentas, dejan de aumentarse y expulsan una sustancia liquida por la boca y el ano. Al morir se vuelven oscuras y negras, blandas, con los tejidos internos transformados en una masa viscosa, contenida dentro de la piel(Wightman 1991). Las bacterias esporógenas, resisten a las condiciones adversas, son las más favorables. Las bacterias no esporógenas, aunque pueden ser muy patógenos, son muy susceptibles a la desecación. Un primer caso extraordinario de utilización exitosa de las bacterias fue la introducción del Bacillus popilliae y B. lentimorbus contra el escarabajo japonés Popillia japónica en los Estados Unidos. Estos gérmenes causan la"enfermedad lechosa" de las larvas subterráneas del escarabajo, se llenan de bacilos esporulados que pueden mantenerse infectivos por más de cinco años. 42
  • 44. Ningún patógeno ha recibido tanta atención como el Bacillus thuringiensis Berliner. Después dehaberse perfeccionado los métodos de su cultivo masal y haberse desarrollado diversas razasbiológicas La orientación en su uso, está más relacionada con el uso de los insecticidas que conel desarrollo de la enfermedad. En realidad el efecto de la bacteria se debe a uno o doscristales(endotoxinas) que se forman dentro de las esporas y que resultan tóxicos particularmentepara las larvas de lepidópteros.Para ser infectadas, las orugasdeben ingerir las bacterias junto con su alimento, en este sentidoguardaalgunas características con los insecticidas de ingestión. Una vez aplicado,su eficiencia esmayor en los primeros días y es gradualmente reducidadespués de los siete días(Sarmiento y Razuri 1978).Se ha perfeccionado la calidad tóxica del B. thuringiensis habiéndose identificado razas demayor toxicidadpara ciertos grupos de insectos: B.t. var. aizawai para la polilla de lacera en colmenas. B.t. var israelensis, para zancudos y mosquitos. B.t. var. kurstaki y B.t., var morrisoni para las larvas de lepidópteros. B.t. var. tenebrionis para coleópteros.Una manera de utilizar las endotoxinas de B. thuringiensis es inducir, por medio de la ingenieríagenética, que la planta produzca su propia toxina y de esta manera quede protegida contra lasplagas. Hay dudas sobre esta tecnología pues se han registrado casos de desarrollo de resistenciaa las endo-toxinas como resultado del uso frecuente de B. thuringiensis(Wightman 1991). 43
  • 45. 3.7. Virus: Ciertos insectos (larvas de lepidópteros y larvas de himenópteros fitófagos) son ocasionalmente atacados en forma intensa por los virus. Las larvas infectadas se vuelven lentas, dejan de alimentarse y se paralizan. En la mayoría de los casos, el integumento se vuelve blando y de color marrón o negro, los tejidos internos se deshacen, quedando la larva como una bolsa de líquido. Las larvas quedan con la cabeza hacia abajo permaneciendo sujetas por las patas posteriores, el cuerpo se vuelve blando y entra en putrefacción. En otros casos la larva se vuelve simplemente opaca. Las infecciones virósicas pueden ser introducidas accidentalmente en los laboratorios, con larvas aparentemente sanas recolectadas en el campo, y causar grandes mortalidades en el laboratorio. Al contrario, un virus que resulta muy efectivo en el laboratorio puede no dar buenos resultados en el campo. Los virus pueden estar latente y ser transmitido por varias generaciones antes de que se desarrolle una enfermedad favorecida posiblemente por condiciones climatológicas, alimenticias, fisiológicas o de otra naturaleza. Los virus que atacan a los insectos pertenecen a siete familias: baculovirus, reovirus, poxivirus, iridovirus, parvovirus, rhabdovirus y picornavirus (Faulkner y Boucias 1985). Los baculovirus son los más comunes y se dividen en dos grupos principales: Virus de la poliedrosis nuclear y virus de la granulosisque son las enfermedades más comunes y mortíferas por lo que han sido motivo para su utilización en el campo(Tañada 1959). Los insectos atacados por virus de la poliedrosis: Presentan en sus células cuerpos flexibles de forma poliédrica irregular de hasta 15 u. Los virus son ingeridos e inician la infección en las células epiteliales del intestino medio en donde se multiplican y pasan al hemocele y otros tejidos. Los virus permanecen infectivos por períodos variables según las condiciones de almacenamiento; generalmente no más de dos años sin refrigeración 44
  • 46. Se han obtenido buenos resultados en el control de la oruga de la alfalfa de California Coliasphilodice eurytheme; el gusano de la col Pieris spp y Anticarsia en soya. Se comercializa en losEstados Unidos, un virus contra el perforador de las bellotas del algodonero y mazorca del maíz,Heliothisvirescens y H. zea(Lewis y Rollinson 1978).Los insectos atacados por granulosis:Presentan en sus células cuerpos granulosos de 0.2 y 0.5 u, especialmente visibles en elcitoplasma de las células del cuerpo graso de las larvas de lepidópteros.Los virus pueden sermultiplicados en el laboratorio criando el hospedero e infectándolo. En un individuo semultiplica de 1,000 a 10,000 veces la cantidad de virus requerida para la infección. Se hanregistrado casos de éxito con virus de granulosis en el gusano de la col Pieris brasicae, yalgunas otras orugas(CIP 1992). 45
  • 47. CAPÍTULO IV CENTROS DE CRIANZA DE INSECTOS BENÉFICOS4.1. Lugares de crianza en el PerúEn los siguientes cuadros resume los principales lugares de crianza de especies benéficas deinsectos y organismos benéficos en todo el País.Cuadro5. Relación de convenios de producción y promoción de control biológico de la SDCB-Lima CONVENIO SITUACION DEL CONVENIO FECHA DE FECHA DE INSTITUCION Y/O EMPRESA UBICACIÓN SITUACION INICIO TERMINO TUMBES SENASA-TUMBES Instituto Superior Tecnologico"24de Julio" Junio del Vigente 1 2011 PIURA SENASA PIURA 2 Asociación del Chira. –Mallares 01/02/2011 Vigente Limones Piuranos S.A.C 30/04/2010 En trámite 3 renovación 4 Ecoacuicola S.A.C 15/03/2010 Concluyo 5 Sociedad Agrícola Saturno S.A 15/02/2009 15/02/2010 Concluyo ANCASH SENASA-ANCASH 6 ISTE Virgen de Guadalupe-Nepeña Nepeña 7 Asociación de Productores de Casma Casma 19/02/2010 Concluyo 8 ISTE " Agustín Haya La Torre" – SIHUAS Sihuas 27/01/2010 Concluyo 9 ISTP "San Pedro " Corongo 07/01/2010 Concluyo10 ISTP "Chacas" Chacas 12/05/2012 Vigente Instituto Superior Narciso Villanueva Pallasca 17/08/201011 Manzo Concluyo LA LIBERTAD SENASA-LA LIBERTAD BIOPERÚ S.A.C Viru 21/09/2007 21/09/2009 En trámite de12 renovación Laredo Agricola Vallesol SAC ( EX EMPRESA 28/10/2009 28/10/2010 Vigente13 AGRÍCOLA BARRAZA S.A.)14 Bioinsumos Agricolas SAC (BIOINSA) Trujillo 16/11/2011 Vigente15 PE Chavimochic Viru 13/09/2007 13/09/2009 En tramite 46
  • 48. renovación Sol del Valle Agrícola SAC Casa 15/12/2008 15/12/2009 En trámite16 grande renovación17 Agrícola BPM Viru 04/07/2008 04/07/2010 Concluyo18 Bioseguridad de Cultivos SAC Trujillo 28/01/2011 Vigente Laboratorio de Agentes de Biocontrol Trujillo 10/03/2009 10/03/2010 En trámite19 Agrícola S.A.C renovación 30/03/2009 30/03/2010 En trámite20 Sociedad Agrícola Viru S.A renovación21 AGROBIOL V & R SAC 22/04/2011 Vigente22 EPYCAB SRL 12/04/2011 Vigente Corporación Peruana de Manejos Trujillo 31/03/2009 31/03/2010 En trámite23 Biológicos SAC ( ex K & M BIOL SAC) renovación Solagro SAC. Larco 03/04/2008 03/04/2010 En trámite24 renovación BIOCONTROL. Abanto Machuca Jesús Viru 05/12/2008 05/12/2009 En trámite25 renovación Universidad Privada Antenor Orrego Laredo 04/09/2006 04/09/2008 Renovación26 (UPAO)27 Municipalidad Distrital de Cao Empresa Agrícola Sintuco (Se fusiono a Chocope 01/092009 01/09/2010 Vencido un solo convenio con grupo gloria,28 quedando no vigentes los convenios con casa grande y cartavio) Fuente: Sub Dirección de Control Biológico SENASA – Lima, 2011Cuadro 6.Relación de Convenios de Producción y Promoción de Control Biológico de la SDCB-Lima LAMBAYEQUE FECHA DE FECHA DE UBICACIÓN SITUACION INICIO TERMINO SENASA- LAMBAYEQUE 29 Procesadora S.A.C Mochumi 30/05/2008 30/05/2009 Concluyo 30 Agrícola San Juan SA Chongoyape 08/03/2009 08/03/2010 Vigente 31 Agro MIP SAC 23/06/2009 23/06/2010 Vigente INIA-EE Vista Florida 18/09/2007 18/09/2008 Culminado (En 32 revisión) Pampas de 2010 Vigente 33 Agrícola Cerro Prieto SAC Mucupe 34 Lab. Biotec y CIP-UNPRG 12/11/2008 12/112009 Vigente 35 ONG NED RED RURAL INKAHUASI 15/07/2010 Vigente 36 Proyecto Especial Olmos Tinajones 31/08/2010 Vigente 47
  • 49. PSI – Asociación de Productores de palto 30/06/2010 Vigente37 (APALA) - Pítipo FAG – UNPRG – AGRORURAL – INST 30/10/2010 Vigente38 YATRAYHUASI LIMA CALLAO SENASA LIMA CALLAO Agrícola Poseidon S. A Lima - 24/08/2010 Vigente39 Pucusana40 Fundo Santa Patricia S. A. Huaral 21/12/2010 31/12/2011 Vigente Ecocontrol SRL Lima - 08/09/2008 08/09/2009 Vencido41 Vitarte Fundo Santa Rosita SAC Huaura - 03/09/2008 03/09/2009 Vencido42 Irrig. Sta Rosa Agroindustrial Paramonga S. A. A. – Barranca - 10/09/2010 31/05/2011 Vigente43 AIPSAA Paramonga Eco Benéficos EIRL Lima - 20/02/2010 20/02/2011 Vigente44 Breña45 PBA Lima - 20/01/2010 20/01/2011 Vigente Agrocontrol Asociados SAC Huaura - 15/06/2010 15/06/2011 Vigente46 Irrig. Sta Rosa Agropecuaria Pamajosa SAC Huaura - 05/03/2010 05/03/2011 Vigente47 Irrig. Sta Rosa Fruits & Life SAC Huaura - 21/12/2009 21/12/2010 Vigente48 Irrig. Sta Rosa Vivero Arona San Luis de 06/10/2009 06/10/2010 Vigente49 Cañete Instituto Superior Tecnológico Huando - Huaral - 02/02/2010 02/02/2011 Vigente50 ISTH. Huando Universidad Católica Sede Sapientiae – Huacho 09/02/2009 09/02/2011 Vigente51 UCSS Promotora de Obras Sociales y de Cañete - 11/02/2009 11/02/2011 Vigente52 Instrucción Popular - PROSIP. San Vicente Asociación de Productores Fruticultores Canta - 09/03/2009 09/03/2011 Vigente53 del Valle Collo - APFCV Arahuay. Centro de Educación Técnico Productivo Huaura - 11/05/2009 11/05/2011 Vigente54 CETPRO - Sayan Sayan Asociación de productores de Palto y 12/01/2010 12/01/2012 Vigente55 Cultivos afines "Santa Rosalia" - APROPAL – SR Municipalidad Distrital Santa Rosa de Canta - 06/07/2009 06/07/2011 Vigente56 Quives Yangas57 Universidad Nacional Mayor de San Lima. 21/12/2009 21/12/2011 Vigente 48
  • 50. Marcos – UNMSM58 PROHVILLA (Pantanos de Villa) 18/03/2009 18/03/2011 Vigente59 Patronato de Parque de las leyendas Lima. 15/07/2009 15/07/2011 Vigente Asesoría y Entrenamiento en Control Lima 30/12/2010 Vigente60 Biológico SRL - AECB SRL ICA SENASA – ICA61 AGROKASA Ica 31/07/2010 En tramite EURO S.A Ica 30/10/2009 Por62 renovasrse BIOAGRO Ica 30/04/2009 Por63 renovasrse64 COEXA S.A Ica 2010 En tramite COBISA EIRL marzo. Vigente65 2011 Complejo Agroindustrial Beta S. A Chincha 30/08/2009 Por66 Alta renovarse67 AGRÍCOLA ALAMEIN Ica 30/04/2010 En tramite68 Proagro EIRL Ica 30/04/2009 En tramite Rosas Ingenieros Asociados E. I. R. L Chincha 30/04/2010 En tramite69 Alta ROJAS INSECTARIO E. I. R. L Chincha 30/01/2010 En tramite70 Alta71 Cia. AgroInd. Lanchas – CALSA 31/08/2009 En tramite GAP DEL PERU S. R. L – GAPERU Ica En tramite Instituto S. Nazca 30/10/2009 Por72 renovarse El Rosario 30/04/2009 Por73 renovarse74 OLIPERU S.A.C Ica En tramite AREQUIPA SENASA AREQUIPA75 EPSA Las Avispas Camana 28/02/2011 Vigente Valle de 28/02/2001 Vigente76 Virgen de Chapi CORIRE Majes Bella 28/02/2011 Vigente77 CIPROBIDA Unión Cocachacra 14/01/2011 Vigente78 Valle de El Canto - Cocachacra Valle de Tambo Tambo79 APROSAD 28/02/2011 Vigente INAGROP Irrigación 14/01/2011 Vigente80 Majes81 NOVAGRI Arenal 30/08/2010 Concluyo Fuente: Sub Dirección de Control Biológico SENASA – Lima, 2011 49
  • 51. Cuadro 7. Relación de convenios de producción y promoción de control biológico de la SDCB-Lima CAJAMARCA FECHA DE FECHA DE UBICACIÓN SITUACION INICIO TERMINO SENASA CAJAMARCA Proyecto Especial Jequetepeque - Zaña – 31/12/2010 Vigente 82 PEJEZA HUÁNUCO SENASA HUÁNUCO 83 Lab. Muni. De Molino 22/07/2009 Universidad Nacional Hermilio Valdizan 10/08/2009 84 – Huánuco JUNÍN SENASA JUNÍN Vencido se 85 Estación INIA Sta Ana –Hyo Renovara en 2010 SAN MARTÍN SENASA SAN MARTÍN Estación experimental " el Porvenir" – 03/03/2011 Vigente 86 INIA 87 Palmas del Espino Vencido 88 Proyecto Especial Alto Mayo Moyobamba 31/05/2010 Concluyo 89 Universidad Nacional de San Martin Tarapoto 31/01/2009 Concluyo Asoc. De Prod. Agrop. Defensores de la Tarapoto 30/11/2010 Vigente 90 ecología y MA AMAZONAS 0 HUANCAVELICA SENASA HUANCAVELICA Acobamba No registra Vencido no se ha 91 renovado Colcabamba No registra Vencido no se ha 92 renovado AYACUCHO SENASA AYACUCHO Asociación Regional de Productores 31/07/2011 Convenio en 93 Orgánicos de Ayacucho (ARPOA) tramite Instituto Superior Tecnológico Publico 31/072011 Convenio en 94 de Churcampa tramite CUZCO SENASA CUZCO Municipalidad Distrital de Maranura Se entregó los 95 oficios correspondientes 50
  • 52. y borradores de convenio Se entregó los oficios Cooperativa Agraria Cafetalera Santa96 correspondientes Ana y borradores de convenio Se entregó los oficios Facultad de Agronomía Tropical –97 correspondientes UNSAAC y borradores de convenio APURIMAC SENASA APURIMAC98 UTEA Apurímac 15/04/2009 15/04/2010 Vigente99 Municipalidad Santa María de Chicmo 06/08/2011 Vigente PUNO SENASA PUNO Instituto Superior Tecnológico Publico 04/01/2010 En tramite100 de Cabanillas Universidad Nacional del Altiplano – En trámite101 UNA102 Municipalidad Distrital de Yanuahuaya 06/05/2010 En tramite103 MADRE DE DIOS SENASA MADRE DE DIOS Asociación de Productores may-10 Vigente104 Agropecuarios defensores de la Ecología y medio Ambiente APADEMA105 Proyecto Especial Alto Mayo PEAM nov-10 Vigente UCAYALI SENASA UCAYALI106 SEMPERU SELVA may-12 Vigente Instituto Superior Tecnológico 28/04/2012 Vigente107 "MASISEA" "108 BOSQUES AMAZÓNICOS S. A. C. Pucallpa 10/02/2011 Vigente Servicios y Negocios Amazónicos S. A – Pucallpa 28/02/2011 En trámite109 SERNASA110 ECOTRAD S. A. C Pucallpa 11/02/2011 En trámite LORETO SENASA LORETO PASCO SENASA PASCO TACNA SENASA TACNA111 Empresa Conservation of Enviromental Tacna 07/09/2010 Vencido 51
  • 53. Group COEG S.C.R.L Instituto Superior Tecnológico Partucular Tacna 21/10/2010 Vigente112 " Centro de Formación Agrícola Tacna" ISTP- CFAT113 Carlos Mostacero Neira Tacna 12/10/2010 Vigente Universidad Nacional Jorgue Basadre Tacna 15/02/2010 Vencido114 Grohmann-INPREX MOQUEGUA SENASA MOQUEGUA Laboratorio de Control Biológico "El Valle de Ilo-115 Algarrobal" - Valle de Ilo Provincia de En tramite de Ilo 31/12/2008 renovaciónFuente: Sub Dirección de Control Biológico SENASA – Lima, 2011 Convenios de promociónConvenios de producciónmicroorganismosConvenio producción de insectosConvenio producción insectos ymicroorganismos(1) Convenio de Producción (Conmateriales)(2) Convenio de Producción (Sinmateriales)4.2. Formas y métodos de reproducción: Crianzas realizadas en la Sub dirección de Control biológico (SDCB) SENASA–Lima: Insectos benéficos: Crianza de Trichogrammaspp en la Sub Direccion de Control Biologico Lima - PerúSegún (WHU 2009) a. Crianza de Sitotroga cerealella Oliver 1. Substrato: Como substrato para la crianza de S. cerealellase emplea trigo blando o semi-duro, cebada o sorgo. 52
  • 54. 2. Tratamiento al substrato: El substrato se somete a dos tipos de tratamientos: - Químico con fumigante: Se realiza en un cuarto de fumigación o en baldes plásticos con tapa hermética, la fumigación dura 4 a 5 días, luego airear el substrato durante 3 o 4 días antes de usarlo. - Hidrotérmico (agua caliente): Poner agua al fuego en un recipiente grande y cuando el agua este hirviendo se sumerge durante 3 minutos el trigo colocado en una malla, procurando que se humedezca completamente Figura 12. Tratamiento de substrato con veneno. (Fuente SDCB)3. Secado al medio ambiente: Después del tratamiento hidrotérmico, el trigo debe secarse bien antes de colocarlo en las bandejas para la infestación; porque de lo contrario se corre el riesgo de que le aparezcan hongos.4. Tratamiento a los huevecillos: Los huevecillos de S. cerealella que van a servir para la infestación, deben someterse a un tratamiento de desinfección, que consiste en preparar una solución con un acaricida, 53
  • 55. sumergirlosdurante 1 o 2 minutos, se cuelany se hace secar sobre papel toalla. Luego pasan por un tamiz hasta quedar como polvillo. Figura 13. Huevecillos de S. cerealella después de tratamiento. (Fuente SDCB)5. Infestación: Para la infestación se emplea como mínimo 1 gramo de huevecillos por kilogramo de substrato. Esta se puede hacer por capas, colocando una capa de substrato y sobre ella una parte de los huevecillos y así sucesivamente por 2 ó 3 capas. También se puede colocar todo el substrato en la bandeja y encima se esparcen todos los huevecillos y con los dedos se procura que estos penetren en el substrato. El tiempo de infestación al trigo dura de 25 a 30 días. Figura 14. Forma de infestacióncon huevos de S. cerealella al trigo tratado. (Fuente Lab. C.B - La unión Piura) 54
  • 56. 6. Armado de gabinetes: Cuando las polillas empiezan a emerger se procede a colocar el trigo en los bastidores que van dentro de los gabinetes de crianza, a razón de 1.5 kg. de trigo por bastidor, en donde se mantendrá por espacio de 40 días produciendo S. cerealella. Figura 15.Armado de gabinetes para crianza de S. cerealella.( Fuente: SDCB- SENASA - Lima) Figura 16. Bastidores metálicos que se colocan dentro de los gabinetes y que contendrán el trigo infestado con la polilla S. cerealella. (Fuente: Lab. De C.B- La unión- Piura). 55
  • 57. 7. Cambio de frascos de recuperación de polillas: Diariamente se procederá al cambio de frascos de recuperación de polillas y se tendrá cuidado de observar la presencia de polillas muertas, lo cual será un indicio de la presencia del ácaro Pyemotes ventricosus Figura 17.Frascos con polillas adultas de S. cerealella de los que sacan de los gabinetes de producción para obtener sus huevos. (Fuente: Lab. de C.B- La unión - Piura).8. Colado de huevos: Consiste en recuperar los huevecillos de las polillas de los frascos, mediante un tamizado sobre una bandeja y luego limpiarlos cuidadosamente para que queden libres de impurezas. Debe realizarse diariamente para obtener huevecillos frescos, los cuales son destinados a la parasitación. Cuando los huevecillos están maduros de un color anaranjado serán utilizados para la infestación de trigo. 56
  • 58. Figura 18. Proceso de colado de huevos de polilla S. cerealella. Fuente: Lab. De C.B- La Unión - Piura).9. Marcado de cartulina: La cartulina donde son pegados los huevecillos de S. cerealella para su parasitación se marca en pulgadas cuadradas, esto se hace para facilitar la venta y distribución del material; habiéndose calculado que por cada pulgada cuadrada vamos a obtener un aproximado de 3,000 huevecillos pegados y una emergencia de 2,800 avispitas de Trichogramma.10. Pegado de huevecillos: Para el pegado de los huevecillos se emplea goma líquida transparente diluida en agua en la proporción de 1:1. Se distribuye con una esponja sobre la cartulina. Luego, con la ayuda de un tamiz se esparcen los huevecillos sobre toda el área engomada, se sacude la cartulina para retirar el exceso de huevecillos; se deja secar por espacio de 15 a 20 minutos antes de proceder a colocarlos en los frascos de parasitación.11. Conservación en refrigeración: Los huevos de S. cerealella se pueden conservar en refrigeración a una temperatura de 8°C por un lapso de 8 a 10 días; pasado ese tiempo se debe tener en cuenta que a mayor tiempo de refrigeración menor será su viabilidad. Los huevos destinados para la crianza de crisopas deben ser congelados a 0° C a los 7 días de estar en refrigeración. 57
  • 59. b. Crianza del parasitoideTrichogrammaspp. 1. Parasitación: Se coloca en un frasco una cantidad de huevos parasitados y se espera la emergencia de las avispas, cuando se observa un 30% de emergencia de adultos se colocan los huevos frescos de S. cerealella que han sido pegados en una cartulina marcada por pulgadas cuadradas, en la proporción de 4 a5 pulgadas cuadradas de huevos sin parasitar por cada pulgada cuadrada de huevos parasitados. Figura 19.Huevos de la polillaS. cerealella Figura 20. Vista de la emergencia de Trichogrammasppde un huevo de S. cerealella parasitado 58
  • 60. 2. Tiempo de parasitación: El tiempo que dura la parasitación es de 4 a 5 días en verano y de 6 a 7 días en invierno. Figura 21.Frascos con cartulina de huevos deS. cerealellaen sus fases de parasitación. 3. Deslarvado: Transcurrido el tiempo de parasitación y cuando ya las avispas están muertas se procede a retirar del frasco las cartulinas con los huevos recientemente parasitados y se colocan en una rejilla sobre una bandeja con agua, esto se hace con la finalidad de que las larvas de los huevos que no fueron parasitados caigan al agua y que en la cartulina sólo queden los huevos parasitados por Trichogramma. 4. Conservación en refrigeración: Los huevos parasitados se pueden conservar en refrigeración hasta por 15 días a una temperatura de 7 a8 °C, al cabo de los cuales empieza a disminuir la emergencia de las avispitas. Crianza de predadores en la Sub Direccion de Control Biologico Lima -Perú Según (WHU 2009)c. Crianza masiva de crisopas.Según (WHU 2010). 1. Unidad de crianza de larvas: 59
  • 61. Se emplea tapers de plástico rectangulares N° 5 a los cuales se le corta la tapa en el centro en forma de rectángulo dejando 3 cmde borde y se reemplaza con un pedazo de organza pegado con terokal para ventilar el recipiente. Como sustrato para la crianza de larvas se utiliza cartón corrugado o cartulina. El cartón se coloca en capas en forma paralela una con respecto a la otra, dentro del taper.Colocar los 1000 huevos de crisopas mezclados con 5 gramos de huevos congelados de S. cerealella, tapar y colocar fecha de instalación. Después de 7 días de emergidas las larvitas se procederá a agregarles nuevo alimento, La frecuencia y cantidad de alimento dependerá del consumo de estas. Cuando las larvitas están en el tercer estadio se procede a retirar el alimento consumido para cambiarlo. Transcurridos unos 15 a 20 días empezarán a empupar, para retirar los cocones se deben humedecer los cartones y dejarlo por unos minutos para aflojar la goma del cartón, luego es fácil separar una de las capas del cartón dejando expuestos los cocones, los cuales se pueden retirar. Figura 22. Instalación de crianza de crisopas en tapers y cartones con huevos deS. cerealella2. Alimentación de las larvas: El alimento de las larvas consiste en huevos de S. cerealella congelados por un mínimo de 24 horas, se les proporciona esparciéndolos entre las capas de cartón. El alimento se les proporciona cada 1 ó 2 días hasta que lleguen a empupar. 60
  • 62. Figura 23. Crisopas alimentándose con huevos deS. cerealella3. Obtención de adultos: Una vez formados los cocones se procede a retirarlos de los cartones y a colocarlos en unas bandejitas; los cocones van a los cubos de oviposicion donde emergen los adultos,se aparean y posteriormente van a colocar sus huevos. Durante esta etapa se les debe proporcionar alimento y agua. Figura 24. Cocones cosechados deChrysoperlaexterna 61
  • 63. 4. Unidades de oviposición: Para la oviposición se pueden utilizar baldes de plástico transparente de un galón de capacidad o cubos de madera. Oviposición en cubos: En este caso se utilizan cubos de 80 cm de lado, consistentes en armazones de madera cubiertas en 3 de sus lados por una malla de tela que impide la salida de las crisopas. La parte superior del cubo queda libre para colocar papel el cual se sujeta con un bastidor; en este papel colocarán sus huevos. En otro de los lados del cubo se coloca una manga de tela por donde se efectua la labor de alimentación de los adultos, así como de la limpieza de la unidad. En estos cubos se colocan alrededor de 800 crisopas, y el cambio de papel cosechando los huevos se debe hacer diario. Se retira el papel kraft conteniendo los huevos de las crisopas, se separan para el empleo de reciclaje, y otros son conservados en refrigeración hasta por 7 días a 8°C.Figura 25. Cubos de madera donde emergen, copulan y ovipositan las crisopas adultas 62
  • 64. 5. Alimentación de los adultos: El alimento de los adultos consiste en mezclar 1/2 cucharadita de polen, 5 cucharadas de miel de abejas, 5 cucharadas de agua y 10 cucharadas de levadura de cerveza en polvo para formar una pasta ligeramente espesa, también se les suministra agua en un algodón o esponja colocada sobre la tapa. El alimento y el agua se les deben suministrar diariamente. Figura 26. Alimentación de crisopas con dieta en reglas de plásticod. Crianza deOrius insidiosusSegún (WHU 2009). 1. Recojo de posturas: Se utiliza taper rectangular No 5, aquí se colocan huevos de Sitotrogacerealella, papel cortado y esquejes de camote (tallo con hojas), se colocan un numero de 500 individuos adultos de Oriusinsidiosus, la finalidad de colocar esquejes es brindar agua a los insectos adultos y para que las hembras ovipositen sus huevos en los tallos; el papel cortado tiene por finalidad absorver la humedad. El alimento se cambia interdiario los días lunes, miércoles y viernes. 63
  • 65. Figura 27. Esquejes de camote en donde oviposita Oriusinsidiosus para el recojo de posturas2. Instalación: Dentro de un taper rectangular No 5 se colocan aproximadamente 14 esquejes de camote, 1500 huevos de Oriusinsidiosus obtenidos del recojo de las posturas, además papel cortado y aprox 5g de huevos de presa ( 3g de Scerealella y 2g de Ephestiacuniella ), luego con papel kraft se sella el taper. Figura 28. Esquejes de camote para proporcionar agua aOriusinsidiosus 64
  • 66. 3. Cambio de papel: Después de 7 días se realiza el cambio de tapa con la finalidad de proporcionar alimento y H2O a los insectos. Encontramos ninfas del 2-3 estadio. Figura 29. Cambio de papel kraft para proporcionar alimento y agua aOriusinsidiosus4. Cosecha para reciclaje Los insectos en estadio ninfal 2 y 3 pasan a ventas inmediatamente y la otra proporción van a reciclaje, es decir seguirán en los tapers creciendopara seguir el proceso de reproducción. Figura 30.Adultos deOriusinsidiosusque van a ventas y reciclaje El costo de 1000 individuos es de S/. 37.50 65
  • 67. Desde la oviposición hasta la eclosión son 4 días, de ninfa a adulto 9 días y de huevo a adulto 15 días. Crianza de la especie Galleriamelonella para la producción de nemátodos entomopatógenos en la Sub Direccion de Control Biológico Lima -Perú Según (WHU 2009)e. Crianza de Galleriamelonella: 1. Recuperación de posturas: Sobre la tapa del taper se coloca un pedazo de papel kraft de forma circular donde las polillas adultas van ovipositando sus huevos a través de la tela con rejilla que posee dicha tapa, estas posturas se cosechan dejando un día(lunes-miércoles-viernes), por un periodo de 10 días. Figura 31. Huevos deGalleria melonellasobre papel Kraft 2. Instalación: Los huevos que fueron retirados de los tapers son colocados en un nuevo taper mas pequeño que el anterior dentro y sobre la dieta que se ha preparado para las polillas, luego este envase se sella con papel kraft pegándolo a manera de tapa para evitar el escape de larvas. 3. Cambio de tapa: 66
  • 68. Las larvas van emergiendo, al cabo de 7 días, se cambia la tapa con la finalidad de incrementar el oxigeno en el recipiente; para identificar el cambio de tapa las larvitas deben de tener aprox. 1cm de longitud. Hay que tener en cuenta en sacar los papeles donde estaban los huevos impregnados.4. Cambio de tapers: Después de 7 días que se ha cambiado la tapa se realiza el cambio de tapers, que consiste en separar en dos partes el sustrato del primer taper, cada mitad se coloca en dos nuevos tapers anchos y grandes, las tapas deben estar agujereadas en donde se colocamallas para una adecuada aeración, además se le agrega a cada taper nuevo una porción de dieta recién preparada en una cantidad que compense para el crecimiento larval.5. Desarrollolarval: Las larvas van desarrollándose por un periodo de 7 días más, para nuevamente separarlos en tapers diferentes y sustratos con dieta nueva. Después de 14 días del cambio de tapers, se hace la última división de los tapers, no olvidar que por cada taper viejo se obtendrá 2 nuevos con sus respectivas larvas. Figura 32. Larvas de G.melonellaantes de empupar6. Recuperación de pupas: Finalmente cuando los insectos han completado su estado larval se coloca dentro del taper además de dieta trozos de papel la cual es un medio para que las larvas suban a la parte superior del taper y puedan empupar, luego estas pupas son recogidas y colocadas en otro taper en donde van a salir los adultos y así seguir su ciclo biológico. 67
  • 69. Figura 33.Pupas de G.melonellaen la parte superior del envase Figura 34. Pasos para la obtención de G. melonellaLa dieta para las larvas de G.melonellaconsta de los siguientes ingredientes yproporciones:Parte sólida:- comida para perro…….... 2- afrecho……….……..….. 4Parte líquida:- miel de abeja………….…2 68
  • 70. Otros organismos benéficos:Según (WHU 2010).a. Hongos: El insecto muerto con posible agente entomopatógeno procedente de campo es llevado al laboratorio, es colocado en una cámara húmeda para la esporulación del hongo, colocándolo en una incubadora a una temperatura de 24 a 27ºC por un tiempo de 8 a 10 días. Una vez que el hongo ha crecido se procede a identificarlo haciendo uso del microscopio con ayuda libros y folletos que poseen claves taxonómicas. Aislamos el hongo en medio PDA (papa-dextrosa-agar) para un crecimiento puro, una vez que ha completadosu desarrollo lo conservamos en envases pequeños o en tubos de ensayo con medio de cultivo ya sea para la producción masiva del entomopatógeno o para su respectiva venta a instituciones, productores o laboratorios interesados. Producción en masa: De la muestra conservada se extrae un diminuto pedazo de medio conteniendo al hongo, este se coloca en un matraz que contiene solo PD (papa y dextrosa), se deja en agitación sobre un instrumento llamado “shaker” por un periodo de 3 a 4 días. de esta solución se preparara la producción en masa de hongos entomopatógenos. El sustrato a utilizar en la producción del hongo es el arroz previamente esterilizado en autoclave por 40 minutos a una temperatura de 121ºC y con una presión de 15lb.; para un kilogramo de arroz se necesita 30ml. de medio preparado y 500ml de agua destilada. Cuando ya están mezclados son llevados a los anaqueles en los estantes dentro de bolsas plásticas para la germinación del hongo por un periodo de 2 días con una temperatura que oscila entre 25 a 27ºC. Transcurrido los 2 días estas bolsas plásticas se abren y el contenido esexpandido en tinas de plástico o sobre bolsas gruesas dejándolas allí por un periodo de 5 a 8 días, en esta fase la concentración de esporas se incrementa; por últimoel preparado va a la sala de cosecha y empaquetado donde se tamiza el sustrato solo para obtener esporas, se muele el sustrato para su venta, y se pesa para su posterior empaquetamiento. El precio actual es de s/. 13.00 por 800g. 69
  • 71. Parámetros de calidad: - Concentración de esporas ≥ 109conidias /ml - Porcentaje de germinación ( viabilidad del hongo) ≥ 90% - Pureza: 90-100 % Especies en alta producción: - Beauveriabassiana, para la “broca” - Lecanicilliumlecanii, para mosca blanca - Metarhiziumanisopliae, para gorgojo negro del plátano - Isariafumosorosea, para otras moscas blancas Especies en baja producción: - Pochoniachlamidosporia, para huevos de nematodos - Isariafarinosa, para mosca blanca - Hirsutellathompsoni, para ácaros - Beauveriabrogniartii, para gorgojo de los andes Figura 35. Secuencia de producción de entomopatógenosb. Nematodos: Para criar nematodos es necesario contar con un hospedero, se utiliza larvasdel lepidóptero del géneroGalleria que viene a ser una plaga de las colmenas de las abejas. Se espolvorea las larvas con una solución de nemátodosque se preparacon agua destilada y aproximadamente 20 nematodos (lo que hay en un cuadrante de Siracusa). La inoculación del nemátodo es en el estadio III (estado libre donde busca a sus presas), estos nematodos ingresan a las larvas por la boca, por el ano o por los 70
  • 72. espiráculos,después de 48 horas de su ingreso matan a las larvas a través de la bacteriaque vive dentro de su cuerpo en simbiosis .Se cosechan los nemátodos de las larvas muertas,para esto se colocan en una cámarahúmeda, no es más que un taper rectángulo con una malla por dentro y agua, la cual va aproporcionar humedad a estos organismos y poder activarlos, así podercosecharlos, losnematodos cosechados son colados en una pequeña esponja fina donde luego es selladacon plástico transparente, esta esponja siempre hay que mantenerla húmeda paraconservar en estado vivo a los nemátodos.El nemátodo es el Heterorhabditisspp y la bacteria simbiótica es del géneroPhotorhabdus.Figura 36. Larvas de G.melonellamuertas, en cámara húmeda para la obtención del nematodo Heterorhabditisspp. 71
  • 73. Figura 37. Conservación del nematodo Heterorhabditisspp en esponjas húmedas.c. Virus: Los dos virus utilizados principalmente en la SDCB – SENASA - Lima son de la familia Baculoviridae con los géneros: VPN (Virus poliedrosis nuclear), ataca a muchos ordenes de insectos VG (Virus de la granulosis), ataca solamente a lepidópteros Para la producción de virus se utiliza larvas de la polilla de la papa (Phthorimaeaoperculella) o larvas de lepidóptero Dionejunoenfermastraídas de campo, se hace con estas una solución utilizando 0.2g larvas de polillas, 1 litro de agua destilada y de 0.3 - 0.5 ml de un dispersante. En esta solución se vierten discos de huevos de polilla de la papa por un minuto, se colocan los huevos sobre la papa (amarilla, huayro, peruanita), la papa también tiene que ser inhibida en la misma solución por un lapso de 2 minutos utilizando una malla que se usa para tapar botellas de champagne u otra parecida.Dejar secar estas papas a la sombra luego hay que acomodarlas en bandejas con tapas ventiladas en un lugar oscuro y a una temperatura de 25– 27°C, luego de 15 días retiramos las papas de las bandejas, cortamos las papas cuidadosamente con un cuchillo,luego sacamos las larvas de la papa utilizando pequeñas pinzas estas larvas serán utilizadas para preparar el virus en grandes cantidades. Producto en masa: 72
  • 74. El producto a producir se llama “Polivirin” (Baculovirusphthorimaea); que necesita lo siguiente:- 0.4 a 0.5 g de larvas enfermas (molidas)- 1 lt. de agua destilada- 1 kg de silicato de magnesio- 1ml de dispersante adherente Estos compuestos se mezclan en un recipiente hasta que quede una masa homogénea, luego dejamos secar al medio ambiente, una vez que está seco se procede a molerlo para luego empaquetarlo. Es recomendable utilizarloen polvocuando se usa como semilla vegetativa y para papa en campo como solución viral. Recomendaciones:- 5 kg de talco viral se usa para 1 t de papa- 3 cucharadas de talco viral se usa para 1@- 125g de talco viral se usa para 25 Kg de tubérculos Figura 38. Larvas del lepidóptero D.juno utilizadas en la producción de Baculovirus. 73
  • 75. 4.3. Características de ambientes de Reproducción de enemigos naturales a. Para la crianza insectos benéficos.Según (Batra 1994). A continuación se presenta la unidad mínima para la iniciación de crianzas y producción masiva de insectos benéficos. 1. Local: 1.1.Tipo variado: utilizado principalmente para parasitoides y predadores, con una superficie de 9m2, para trabajar con 5 especies benéficas de insectos. Requiere de una fuente de luz (fluorescente de 40 w de luz blanca), un caño para el agua de preferencia ubicada afuera para evitar excesiva humedad e inundaciones. Las especies que pueden criarse en conjunto son: Metaphycushelvolus,Coccidexenoides peregrinus, Aphytis roseni,Aphidiussmithi y Leptomastideaabnormis. 1.2.Tipo especifico: destinada a la crianza masiva de la avispita de Trichogramma 74
  • 76. 1.3.Tipo mixto: Puede ser un local de dos plantas, la primera destinada para la crianza de varias especies de insectos y la segunda solo para Trichogramma. Es Importante tener cerca un invernadero o vivero de plantas hospederas de las especies plaga, con el fin de tener material fresco y poder liberar lo enemigos naturales.2. Mobiliario: 2.1.Jaula de manga: cajas de madera, vidrio y tul. Para obtener enemigos naturales a partir de material vegetal del campo. Sirve para criar parásitos introducidos y para aislar todo material indeseable 2.2.Jaula de cría: específicamente para criar especies del género Aphytis 2.3.Caballetes de madera: Sirve como base para las jaulas de manga, para una buena comodidad de trabajo. 75
  • 77. 2.4.Bandejas de madera: Tiene tres usos como depósito de frutos para crecimiento de hospederos, brotar tubérculos de papa, recipiente de trigo infestado.2.5.Vitrinas: sirve para acondicionar frascos, bandejas, equipo e instrumental de laboratorio.2.6.Mesa de trabajo: útil para examinar muestras de campo y otros trabajos. 76
  • 78. 2.7.Basurero metálico: aparte de receptor de desecho sirve para quemar restos infestados de insectos y ácaros extraños a la crianza. 2.8.Soporte metálico para bandejas: sirve para almacenar bandejas de madera en forma vertical.3. Equipos, materiales e instrumentos fundamentales: 3.1.Cámara negra: Es el más apropiado para el brotamiento de la papa, lugar donde se efectué la infestación de frutos de la calabaza Citrullus o de tubérculos de papa. 77
  • 79. Puede variar de tamaño desde un pequeño frasco de 4 litros hasta el tamaño de una habitación.3.2.Frascos: tiene diferentes usos de los cuales podemos citar: frascos de oviposición de Trichogramma, para aislar insectos recién introducidos, para transportar últimos estadios de insectos, entren otros.3.3.Acordeones de cartón o cartulina: se usa para recibir la oviposición de huevos hospederos de Trichogramma, traslado de avispitas de un lugar a otro.3.4.Cajas entomológicas: para realizar colección de insectos 78
  • 80. 3.5.Jaulas de envió: Para Trichogramma spp, las pupas se levan en cajas con cartulinas que llevan pegados huevos de Sitotroga parasitados. Para Sympherobius sp los adultos son llevados en vasos duros descartables y las pupas pegadas en cartulina dentro de vasos descartables. 3.6.Tubo aspirador o “cazabichos”: útiles para capturar insectos pequeños. 3.7.Tocuyo: para cubrirlos diferentes frascos de crianza o frascos para liberación4. Equipo adicional: 4.1.Lipa 10x: necesaria para hacer identificaciones de insectos pequeños. 79
  • 81. 4.2.Estereoscopio: fundamental para las disecciones a nivel macroscópico y evaluaciones de insectos.4.3.Microscopio plano: útil para montajes de insectos en láminas y determinaciones taxonómicas.4.4.Refrigerador: preservar cualquier material biológico ya sea plaga o parasito.4.5.Estufa: importante en la elevación de temperatura en invierno para los gabinetes de crianza.4.6.Olla de aluminio: para hervir materiales infectados con organismos no deseados. 80
  • 82. 4.7.Cilindro de cartón: para conservar granos. 4.8.Asperjador de mano: para tratamiento de ácaros y otros artrópodos indeseables. 4.9.Cartulina perforada en pulgadas cuadradas: para pegar huevos de Sitotroga con fines de ser parasitado por Trichogramma5. Insumos para la crianza: 5.1.Tubérculos de papa: utilizadas en la mayoría de crianza de queresas , puede ser de la variedad (amarilla, peruanita o huayro) 81
  • 83. 5.2.Citrillus silvestre: tiene unamplio rango de plagas insectiles como queresas, debe tener una duración larga para mantener a los insectos plaga. 5.3.Trigo: debe ser un trigo de grano blando, para la entrada de la polilla S. cerealella. 5.4.Plantones de cítricos: para el mantenimiento de plagas comunes 5.5.Plantas de alternanthera: como hospederas de especies de queresas, es una maleza de crecimiento rápido. 5.6.Miel de abeja: Forma parte de la dieta de predatores y parasitoides.A continuación se muestra un modulo mínimo para la crianza de Trichogramma spp, con capacidad para 40 gabinetes, Según (Valdivieso 1996). 82
  • 84. Donde: A. Sala de parasitación: 1 : mesa de pegado 2 : estereoscopio 3 – 6 : mesa de trabajo 4 – 5 : taburete 7 : balanza 8 : refrigeradora 9 : estante de parasitación B. Almacén: 1 – 2 : estantería 3 – 4 : cilindro C. Sala de cría de S. cerealella: 1 – 2 : gabinete de producción 3 : escalera de tres pasos 4 : coche de colección de frascos 5 : estante de producción 6 : cajas de infestación D. Sala de colado: 1 : lavadero 2 : mesa de colado 3 : estractor E. Sala de tratamiento: 1 : zaranda para el secado 2 : cocina 3 : lavaderob. Para la crianza de entomopatógenos:Según (SDCB 2011) Para la obtención de entomopatógenos se tiene con un laboratorio especializado en donde se identifica y realiza la producción de organismos benéficos, este laboratorio consta de las siguientes partes: 83
  • 85. 1. Oficinas: - Oficina de comando: cuenta con cámaras de seguridad en diferentes puntos del laboratorio. - Oficina de recepción y reuniones: para atender las diferentes visitas y consultas.2. Esclusas: - Consta de un ambiente previo de limpieza para las personas que van a visitar o a realizar trabajos en distintos ambientes. 84
  • 86. - Consta de un ambiente de recepción de objetos personales, además se tiene ropa de laboratorio para las personas que trabajan y los visitantes.3. Laboratorio central:Es el laboratorio donde se identifica y reproduce hongos entomopatógenos Este laboratorio consta de los siguientes equipos: - Refrigeradora - microscopio 85
  • 87. - Estereoscopio - balanza- estufa esterilizadora - incubadora- cámara de flujo laminar horizontal - cámara de flujo laminar vertical 86
  • 88. - mesa de trabajo4. Sala de preparación de medios:En esta sala se preparan todos los medios que necesitan los agentes entomopatógenos para desarrollarse, así como por ejemplo la elaboración de medios a base de PDA (papa-dextrosa-agar) y otros según sea el hongo a producir. Esta sala de preparación de medios cuentaprincipalmente con los siguientes equipos: - autoclaves eléctricas - estufas esterilizadoras 87
  • 89. - autoclave de frontera - destilador- cocina - horno microondas 88
  • 90. - licuadora - balanza- gavetas - lavaderos 89
  • 91. 5. Sala de siembra y enfriamiento:En esta sala se realiza la producción en masa de los hongos entomopatógenos con la ayuda de medios de cultivo PD (papa-dextrosa) y sustrato (arroz); para luego dejar reposar para su respectivo enfriamiento. Esta sala costa básicamente de: - mesa de trabajo (grande) - cámara de siembra - estante - aire acondicionado6. Sala de germinación y esporulación:Luego de la sala de siembra y enfriamiento pasan a esta sala en donde el hongo se propaga rápidamente en el sustrato (arroz) en condiciones óptimas (humedad, temperatura y luz) para cosechar grandes cantidades del producto final. Consta de: - deshumificador - estantes - bandejas plásticas o plástico transparente 90
  • 92. - bolsas de polipropileno7. Sala de cosecha:En esta sala con la ayuda de tamizador se tendrá esporas puras, la cual servirá para la reproducción en masa del hongo y para la venta directa. Esta sala consta de: - tamizador - balanza - mesa - bolsas de polipropileno para envasado8. Sala de empaque y almacén:En esta sala se realiza la molida del sustrato con el hongo, en donde se convertirá en polvo para un fácil empaquetado y sellado. Esta sala consta de: - Molino - sellador de pedal - cajas 91
  • 93. - bolsas - cintas de embalaje 9. Sala de Nematodos y Virus: Es una sala especial en donde se crían principalmente virus de la familia Baculoviridae y el nemátodo Heterorhabditis sp . Posee casi los mismos equipos y componentes que el laboratorio central (mesa de trabajo, lavaderos, gavetas, equipos, etc.), con la diferencia que en lugar de refrigeradora posee un ultra congeladora para virus; que puede conservar muestras hasta los – 40 °C.Ultracongeladora CAPÍTULO V FACTORES QUE INFLUYEN EN LA EFICIENCIA Y ESTABLECIMIENTO DE ENEMIGOS NATURALESPara insectos beneficos en general:(SegúnCatillo2003)1. Factores climáticos: El clima usualmente es favorable para el cultivo y plagas. Para muchos enemigos naturales altas temperaturas y/o humedad limitan su distribución o suprimen su abundancia. 92
  • 94. La población del parasitoide Praon exsoletum (Nees) está restringida a periodos de veranos calurosos, las altas temperaturas son limitantes para la sobrevivencia y oviposición de los adultos. Cryptolaemusmontrouzieri Mulsant predador muy efectivo durante el periodo de crecimiento del cultivo, pero es incapaz de mantener su población durante las condiciones de invierno contra Planococcuscitri (Risso). El parasitoide de la escama purpura ((Aphytislepidosaphes (Compere)) es limitado en su eficiencia en el sur de California por el frio invierno y el caluroso verano, aunque ocasiona una mortalidad suficiente de su hospedero Lipidosophisbeckii (Newman)2. Asincronía de los ciclos de vida: La asincronía en los ciclos de vida entre los enemigos naturales y sus hospederos constituye una limitación principal, a veces esta asincronía resulta de la respuesta diferencial al clima. Los estados de los ciclos de vida de los enemigos naturales y hospederos deben ocurrir al mismo tiempo. Un caso de asincronía en los ciclos de vida concierne al parasitoide Metaphycushelvolus (Compere) y su hospedero, la escama negra, Saissetiaoleae (Oliv.), en cítricos y olivo en el centro y norte de California., pero muy efectivo en el control en la costa sur de California.3. Alimento de adultos: Enemigos naturales adultos requieren de alimento para la supervivencia y reproducción., cuando falta en el agroecosistema, las poblaciones de enemigos naturales sufren de esta escasez. La limitación de alimentos para los adultos en la abundancia de enemigos naturales ha sido explorada por Hagen et al(1970), aplicaron alimentos artificiales a campos de algodón y alfalfa con la finalidad de mantener poblaciones de predadores tales como Chrysopacarnea Stephens e Hippodamiaconvergens Guerin.4. Disponibilidad de hospederos: Particularmente para parasitoides, la identidad, naturaleza, condición y microdistribución de hospederos son frecuentemente muy importantes. En Europa el parasitoide Cotesiaglomeratus (L.) esta principalmente asociado con el hospedero Pieris brassicae (L.) y cuando ataca a P. rapae frecuentemente es encapsulado internamente. 93
  • 95. El parasitoide de pupas Nasoniavitripennis (Walker) exhibe una fecundidad mas alta y una mayor capacidad de incremento numérico cuando ataca y se desarrolla sobre variantes de su hospedero Muscadomestica L., de florida que de Nueva York. Se presume que esto sea debido a resultados de diferencias en el valor nutritivo de estos variantes. La microdistribución del hospedero puede interferir con la eficiencia del enemigo. Las infestaciones en hoja y tallo por Eriosomalanigerum (Hausman) en manzano, son bien controlados por el parasitoide Aphelinusmali (Haldeman), mientras que las infestaciones en las raíces subterráneas y troncos no son controladas.5. Hospederos alternantes: Enemigos naturales efectivos fracasan al establecerse para el control de las plagas, debido a que el agroecosistema careció de hospederos alternantes necesarios. Esto ocurre cuando el hospedero principal no está disponible durante algunos periodos del año.6. Competencia entre enemigos naturales: Es un factor que frecuentemente afecta a los enemigos naturales en los agroecosistemas. Cuando más de una especie de enemigo natural ataca al mismo hospedero, existe la posibilidad de ocurrencia de competencia interespecifica entre ellos. Tal competencia puede llevar al desplazamiento del área de un enemigo inferior por otro superior. Tal es el caso de Aphytismelinis De Bach cuando desplazo a A. lingnanensis restringiendo su eficiencia al área costera de California para un control de la escama roja Prospaltella perniciosa Tower.7. Hormigas: Ciertas especies de hormigas pueden encontrase en asociación con poblaciones que producen secreciones cerosas (áfidos, pseudococcidos, queresas de cuerpo blando), alimentándose de secreciones dulces. Estas hormigas protegen a los productores de secreciones azucaras de sus enemigos naturales, y es allí donde estas hemípteras se incrementan a niveles perjudiciales. Se tiene por ejemplo a Planococcuscitri , Saissetiaoleae y Aonidiellacitrina en cítricos al sur de california, siendo la hormiga Linepithemahumile (Mayr) la más frecuente.8. Hiperparasitoides: 94
  • 96. Los Hiperparasitoides constituyen factores de mortalidad que pueden reducir la eficiencia de los parasitoides primarios en la supresión de la plaga. La eficiencia de Diarietiellarapae, sobre Brevicoryne brassicae L., es inhibida por el ataque de hiperparasitoides. En el sur de california, Methaphycuslounsburyi (Howard), su eficiencia es reducida por el hiperparasito Quayleawhittieri (Girault).9. Pesticidas: El uso de DDT para el control de Cydiapomonella en el noreste de USA a mediados de los 40 condujo a la exterminación del parasitoide Aphelinusmali, trayendo como consecuencia el incremento de Eriosomalanigerum.10. Otras influencias: La forma u oportunidad de ciertas `practicas culturales usadas para el cultivo de plantas, frecuentemente interfiere con los enemigos naturales. El polvo interfiere en la acción de los parasitoides con relación a la escama de los cítricos. Refugios artificiales cerca a campos de tabaco proveen sitios de anidamiento para las avispas Polistes predadores de las larvas de Heliothis y otras larvas de LepidópteraPara el parasitoide Trichogramma spp(Según Fuentes1994). 1. Calidad del material biológico para las liberaciones A medida que los laboratorios especializados de crianza se popularizan, se corre el riesgo de que la calidad del material se vea afectada más por una mentalidad comerciante que por una de servicio. Importante tener en cuenta factores de calidad, para ser posible control de plaga en campo: - Lotes de huevos parasitados no menos de un 85%. - Proporción sexual (predominio de la hembra sobre el macho). - Lotes limpios de residuos de insectos - Buena capacidad parasitaria y de búsqueda. - Que tenga la fecha de parasitación y emergencia 2. Época de las liberaciones Las liberaciones al momento de las oviposiciones de la plaga cuando sean visibles sus huevos o por daños frescos que presenta el cultivo. 95
  • 97. Las liberaciones serán elevadas de Trichogramma mientras más baja sea la concentración de los huevos de la plaga, por que la actuación del parasitoide natural es reducida y también se reduce la capacidad de búsqueda de Trichogramma inducidos. Las condiciones ambientales influyen directamente en la efectividad del parasitoide por las características propias del insecto. 3. Distribución en el campo Diferentes formas de liberaciones aéreas y terrestres. Para condiciones de Cuba las liberaciones se realizan en estado adulto, ya que liberaciones de huevos parasitados corren riesgo de ser depredados por hormigas y otros, la distribución del parasitoide quede lo más uniforme posible, se logra si liberamos siempre a favor del aire. 4. Especificidad a la plaga que se quiere controlar Un Trichogramma que no tenga selectividad por la plaga a controlar, es un fracaso al utilizarlo, se dispersaría a zonas aledañas en busca de alimento. 5. Coeficiente hidrotérmico Índice que expresa la relación entre la cantidad de precipitación y las temperaturasPara el parasitoide Trichogramma spp(Según Marengo2003). 1. Deterioro genético: Se da por la multiplicación durante muchas generaciones de una especie de Trichogramma, los que pueden presentar: individuos atrofiados, más pequeños y baja capacidad de vuelo; se recomienda cambiar los núcleos cada 6 meses. 2. Pérdida de capacidad de búsqueda: No acostumbrarse a la crianza de un solo hospedero ( Sitotroga cerealella ), por eso la Sub Dirección de Control Biológico SENASA-Lima también cría como especies hospederas a Galleriamellonela , EphestiaKuehniella , Dionejuno principalmente y a diferentes especies de Trichogramma, con la finalidad de que no se acostumbren solo a parasitar a S. cerealella. 3. Superparasitismo: De un solo huevo de S. cerealella emergen dos individuos de Trichogramma, siendo lo ideal que emerja uno solo, se debe trabajar con la proporción adecuada 1 : 4, esto es 1 pulgada 96
  • 98. parasitada para 4 pulgadas de huevos frescos que van a ser parasitadas, si se baja la proporción en consecuencia un huevo es parasitado 2 o más veces y como consecuencia salen dos individuos de Trichogramma, o no sale debido a que el huevo se seca.4. Ratio sexual: La proporción ideal de machos y hembras es 1: 1, o que haya mayor proporción de hembras en relación a los machos ya que las hembras son las que parasitan. Una forma de evitar el incremento de los machos es efectuando la parasitación cuando se observe un 30% de emergencia de las avispas, porque según ensayos efectuados, cuando una hembra de Trichogramma es copulada más de 4 veces tiende a producir descendencia de machos en la siguiente generación.5. Mezcla de especies: En un laboratorio que se multiplica más de una especie de Trichogramma, no ocurre un cruzamiento entre especies sino un desplazamiento de una especie por otra, las especies más invasoras son T. pretiosum le sigue T. pintoi; se recomienda mantener separadas las especies.6. Alteraciones reproductivas: A veces se presentan alteraciones por la bacteria del género Wolbachia, ocasiona muerte de embriones generalmente machos; las hembras afectadas se reproducen asexualmente a partir de óvulos no fecundados produciendo hembras como descendencia. CAPÍTULO VICONCLUSIONES  El control biológico forma parte de un programa Nacional de Manejo integrado para disminuir las poblaciones de plagas insectiles en diferentes puntos de nuestro país, agricultores y empresas lo requieren dentro de su plan de producción de cultivos. 97
  • 99.  Se tiene que conocer que significa “control biológico”, que beneficios poseen los insectos benéficos que lo integran, cuáles son sus nombres Científicos y vulgares, como actúan y como viven; para tener claro la naturaleza del enemigo natural y su relación con las plagas a controlar.  Tener en cuenta la importancia natural de otros grupos de enemigos naturales como son las arañas en los campos de cultivo y la introducción de entomopatógenos como otra fuente principal que abarca el complejo tema del control biológico de plagas.  Se ha determinado las características de control de un insecto benéfico y entomopatógenos con sus limitaciones; además saber la producción en masa de estos organismos dentro de un laboratorio o centro especializado conociendo el beneficio de ambos.  En el Perú se está produciendo y promoviendo proyectos de crianza de insectos benéficos y entomopatógenos en entidades públicas y privadas con el apoyo y convenio con la Sub Dirección de Control Biológico –Senasa – Lima (Ex CICIU).  Las principales instituciones de crianza son: Sub dirección de Control Biológico Senasa –Lima, en nuestra región tenemos el proyecto JEPEZA (Proyecto especial Jequetepeque-Zaña). En la libertad en asociación y convenio con el ex CICIU destaca Agrícola Vallesol, Bioinsumos Agrícolas SAC, Bioseguridad de Cultivos SAC, AGROBIOL V & R SAC, EPYCAB SRL. En Lambayeque cuenta también con el apoyo y convenio de Senasa Lima las instituciones: Agrícola San Juan SA, Agro MIP SAC, Agrícola Cerro Prieto SAC, entre otras.  Las principales enemigos naturales que se producen en La Sub Dirección de Control biológico son: Trichogrammaspp, Chrysoperlaspp, Orius insidiosus, Sympherobius barberi, con sus respectivos hospederos. Además hongos, nemátodos, virus descritos anteriormente.La Sub dirección de Control Biológico Senasa – Lima es líder en ventas de controladoresbiológicos por lo tanto se pone a disposición del público para pedidos de cualquier tipo de enemigo natural en función al cultivo, con precios al alcance y productos de calidad. 98
  • 100. RESUMENGracias a la existencia de enemigos naturales existe un equilibrio biológico en la naturaleza de los artrópodos, por esta facultad de algunos insectos y otros organismos se habla de un control biológico donde estos bichos son los principales actores para que exista un equilibrio dentro de nichos ecológicos.El control biológico se desarrolla progresivamente como alternativa al incremento del uso deagroquímicos, incluyendo una parte llamada plaguicidas destinada a la agricultura en el control 99
  • 101. de plagas y enfermedades, este control biológico es parte de un complejo necesario que abarcaun control integral que se está dando actualmente a nivel nacional para combatir, reprimir osuprimir plagas y enfermedades. Este control biológico comprende principalmente la crianza deinsectos benéficos en el uso contra plagas en los diferentes cultivos ya sea de exportación comolos tradicionales que se cultivan al ancho y largo de nuestro país.Identificamos una serie de insectos benéficos tanto predadores como parasitoides y otrosartrópodos que complementan el campo de control biológico, además encontramos otrosorganismos llamados entomopatógenos que destruyen muchas plagas, entre ellos ubicamos:ácaros, nematodos, hongos, bacterias, y virus, los cuales se identifican y desarrollan a nivelnacional teniendo al organismo principal SENASA-Perú.Actualmente existen centro de crianza de insectos benéficos y otros organismos, como sedeprincipal describimos a la sub Dirección de Control Biológico – Senasa - Lima, la cual cuentacon varios laboratorios para la crianza de enemigos naturales que abarcan crianza de insectosy crianza de entomopatógenos, además de la crianza de hospederos principalmente lepidópterosy otros; lo cual está al servicio de empresas , instituciones, ONGs, agricultores, y otros interesadospara la producción del enemigo natural que estos requieran.Los enemigos naturales son un don de la naturaleza para el beneficio común de nuestraagricultura, pero también a este beneficio se le pone dificultades las cuales son factores queafectan la eficiencia de los enemigos naturales en su establecimiento de crianza; por ello esnecesario conocer bien los ciclos biológicos del organismo benéfico como de su hospedero paraque sincronicen una relación especifica trófica además también conocer los factoresambientales en un agroecosistema en la liberación de insectos porque estos definiránprincipalmente la sobrevivencia de insectos benéficos y uncontrol adecuado y permanente.Palabra clave“Crianza de insectos y organismos benéficos” ABSTRACTThanks to the existence of natural enemies there is a biological balance in the nature of thearthropods, because this ability of some insects and other organisms are talking about a biological 100
  • 102. control where these bugs are the main actors to have a balance in ecological niches.Biological control is developed progressively increasing use of agrochemicals, including a partcalled for agricultural pesticides in controlling pests and diseases, this biological control isnecessary in a complex that includes a comprehensive control that is currently taking nationallevel to combat, repress or suppress pests and diseases. This biological control mainly comprisesthe rearing of beneficial insects in use against pests in different crops for export either astraditional grown to the length and breadth of our country.Identified a number of beneficial insect predators and parasitoids both and other arthropods thatcomplement the field of biological control, as well as other organisms are calledentomopathogenic destroying many pests, among them are located: mites, nematodes, fungi,bacteria, and viruses, which identify and develop a national level taking the lead agencySENASA-Peru.There are currently breeding center for beneficial insects and other organisms, as describedheadquarters to the sub address Biological Control - SENASA - Lima, which has severallaboratories for breeding natural enemy insects covering raising and breeding ofentomopathogenic addition to raising mainly lepidopteran hosts and others which servesbusinesses, institutions, NGOs, farmers and other stakeholders to produce the natural enemy thatthese require.Natural enemies are a gift of nature for the common benefit of our agriculture, but this benefit isput difficulties which are factors affecting the efficiency of natural enemies in the establishmentof breeding, so it is necessary to know life cycles of beneficial organism and its host tosynchronize a specific relationship also well known trophic environmental factors in anagroecosystem in insect release mainly because they define the survival of beneficial insects andadequate control and ongoing.Keyword "Raising insects and beneficial 101
  • 103. REFERENCIA BIBLIOGRÁFICAAGUILAR (1987). Revista peruana de entomología. Artículo científico Vol.28.Lima-Perú.109p.AGUILAR (1988).Las arañas como controladoras de plagas insectiles en la agricultura peruana.Rev. Peruana de Entomol. 31: 1-8.AGUILAR (1989). Revista peruana de entomología. Artículo científico Vol.31. Lima-Perú. 158 p. 102
  • 104. AGUILAR y GUEROVICH (1978).Arañas del campo cultivado. V: Frecuencia de araneidos enalgodonales de Mala, Asia y Chuca. Rev. Peruana de Ent. 21 (1): 42-47.AYQUIPA y SIRLOPU (1978).Crianza masiva de Diatraea saccharalis Fabr. en dieta artificial parapropagación de su parásito Paratheresia claripalpis Wulp. Rev. Peruana de Ent. 21 (1): 55-56.BARTRA (1994).Manual de crianza de algunos insectos benéficos a la agricultura peruana. Folleto.Lima – Perú. 56p.BEINGOLEA (1967).Control Biológico de las Plagas de los cítricos en el Perú. Rev. Peruana deEntomol. Agrie. 10 (1): 67-81.BEINGOLEA (1985).La langosta Schistocerca interrita en la costa norte del Perú durante 1983.Rev. Peruana de Entomol. 28(1): 35-40.BEINGOLEA (1990). Sinopsis sobre el control biológico de plagas insectiles en el Perú, 1909-1990.Rev. Peruana de Entomol. 33: 105-112.CABRERA (1994).El hongo Beauveriabassiana en el control de algunas plagas agrícolas. Rev.Peruana de Entomol. 37: 107 - 110.CASTILLO (2003).Manual para el curso de crianza de insectos benéficos. Folleto. UNALM. Lima–Perú. 35p.CARE- PERÚ (1998).II seminario taller internacional “Aportes del control biológico en laagricultura sostenible” y I congreso latinoamericano de la sección regional neotropical de laorganización internacional de lucha biológica. Libro. Lima- Perú.167p.CARRASCO (1962).a Coccinellidos predatores de la regióndel Cusco. Rev. Peruana de Entomol.Agrie. 5 (1): 91-93.CAVE (1998).Aportes del Control Biológico en la Agricultura Sostenible. Resumenes II SeminarioTaller Internacional.167p.CIP - CENTRO INTERNACIONAL DE LA PAPA (1992).Control Biológico de la polilla de la papa conBaculovirus ptthorimaea. Boletín de Capacitación. CIP-2. Lima, Perú 26 pp. 103
  • 105. COQUIS y SALAZAR (1975). Biología y Morfología de Phenacoccus gossypii Townsend &Cockerel! 1898 (Homop: Pseudococcidae) Rev. Peruana de Entomol. 18 (1): 34-45.CUEVA (1980).Diatraea saccharalis (Fab.) y sus factores bióticos demortalidad natural durante elperiodo vegetativo de la caña de azúcar. Rev. Peruana de Entomol. 23: 77-81CUEVA, AYQUIPA y MESCUA (1980).Estudios sobre Apanteles flavipes (Cameron) introducidopara controlar DiatraeaSaccharalis (F.) en el Perú. Rev. Peruana de Entomol. 23: 73-76.CUEVA, OJEDA y KORYTKOWSKI (1974).Ciclo Biológico, morfología y comportamiento deParatripmeps laeviusculus Ch. (Hemip: Anthocoridae) Rev. Peruana de Entomol. 17 (1): 32-39.ENCALADA y VIÑAS (1990).Ceratocapsus dispersas (Hemíptera, Mirídae) en Piura: Biología ycapacidad predatora eninsectario. Rev. Peruana de Entomol. 32(1): 1-8.ERWIN (1990).Natural History of the Carabid Beetles al the BIOLAT Biological Station, RioManu, Pakitza, Perú. Rev. Peruana de Entomol.33:1-85.FAULKNER y BOUCIAS (1985).Genetic improvement of insect pathogens: Emphasis on the use ofBaculoviruses. En. Biological Control in Agricultural IPM Systems. Editado por Marjorie A. Hoyy Donald C. Herzog. Academic Press Inc.: 263-281FLANDERS (1955).Principles and practices of biological control utilizing entomophagous insects.Texto mimeografiado. 157 p.FLANDERS (1968).The validity of Trichogramma praetiosum. Ann. On the Entomol. Soc. ofAmerica. 61 (5). 1122-1124.FUENTES (1994). Producción y uso de Trichogramma como regulador de plagas. Libro. Lima –Perú. 193p.GOMERO y LIZÁRRAGA (1995). Aportes del control biológico en la agricultura sostenible. Libro.RAAA. Lima - Perú. 465p.HELEN (2005). TheEcology of Fungal Entomopathogens. 199P. 104
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  • 110. “CRIANZA DE INSECTOS Y ORGANISMOS BENÉFICOS” TRABAJO MONOGRÁFICOPresentado por: Vasquez Regalado Anali.Docente: Hernades Torres Alex Miguel. Curso: Métodos y Técnicas de Estudio. Siclo: I Cajamarca - Perú 2012 DEDICATORIA 109
  • 111. A mis padres, quienes son los seres más preciados que Dios me dado en mi vida ellos son larazón de mi existir, luchan constantemente por el bienestar de mi hogar es por eso mesiento orgullosa al tener el amor de ellos, los quiero mucho y lo llevo siempre en mi corazón:Mi Padre un hombre valiente que se enfrenta ante las dificultades de la vida.Mi madre la mujer tan dulce y tierna, la mujer más linda que hay en la tierra la quesiempre me brinda su amor incondicional.A mis hermanos, amigos y a todos aquellos que me apoyan en los momentos dificilaes.EL AUTOR AGRADECIMIENTOEspecial agradecimiento a todas las aquellas personas que me brindan su ayuda ycomparten su conocimiento para conmigo especialmente a mi estimado maestro.DR: ALEX 110
  • 112. MIGUEL HERNANDES TORRES, un docente admirable por sus conocimientos y susmotivaciones para emprender un futuro mejor; ami sincera amiga Yovani quien siempreesta en mis monentos difíciles y me brinda su amistad incondicionalmente.EL AUTORÍNDICECONTENIDO PÁGINADEDICATORIA iAGRADECIMIENTO ii 111
  • 113. RESUMEN iiiABSTRACT ivINTRODUCCIÓN 1CAPÍTULO I. GENERALIDADES…………..………………………………….……….… ….... 2 1.1. Enemigos naturales y Control biológico……………………….…….……2 1.2. Importancia de insectos benéficos (controladores)………………….….… 4 1.3. Avances del Control Biológico actual……………………………….…….. 10 1.4. Plagas en el país controladas por insectos benéficos…………………….. 13 II. INSECTOS COMO CONTROLADORES BIOLÓGICOS…………………. 21 2.1. Predadores………………………………….………………………………….. 21 Insectos Predadores………………………………………..…..…………...…. 21 2.1.1. Neurópteros Predadores…………………………………………….….… 21 a. FamiliaChrysopidae………………………………………….…….……...…..21 b. Familias Hemerobiidae y Sympherobidae………………………………....…22 2.1.2. Coleopteros Predadores…………………………………………….……......23 a. Familias Carabidae y Cicindellidae…………………………………………...23 b. Familia Coccinellidae ………………………………………………………….24 2.1.3. HemípterosPredadores………….…………………………...…………...…..26 a. Familia Miridae………………………………………………………………....26 b. Familia Anthocoridae……………………………………………………...… 26 c. Familia Nabidae………………………………………………………………..26 d. Familia Neididae ………………………………………………………………26 e. Familia Reduviidae…………………………………………………………….27 f. Familia Lygaeidae……………………………………………………………...27 g. Familia Pentatomidae……………………………………………………….....27 112
  • 114. 2.2. Parasitoides ………………………………………………………………………....29 Insectos Parasitoides:…………………………………………………………….....29 2.2.1. Himenópteros parásitos…………………………………………………….....29 a.Familia Braconidae………………………………………………………...…..29 b. Familia Trichogrammatidae……………………………………………..…….302.2.2. Dípteros parásitos………………………………………………………………...33 a. Familia Tachinidae………………………………………………………..…...33 b. Familia Sarcophagidae……………………………………………………...….34 c. Familia Bombyliidae…………………………………………………………....34 2. 3. Hiperparasitoides y parasitoides de predadores……………………………...36III OTROS ORGANISMOS BENÉFICOS COMO CONTROLADORES BIOLÓGICOS…………………………………………………………….…..…..373.1. Arañas…………………………………………………………………………..…... 37 Arañas depredadoras………………………………………………………...…..…37 3.1.1. Familias que no tejen telaraña (en campo) esán:……………………...……37 a. Familia Thomisidae o arañas –cangrejo………………………………….…37 b. Familia Oxyopidae………………………………………………………....…37 c. Familia Salticidae o arañas satadoras…………………………….................37 3.1.2. Familias que tegen telaraña están:………………………………………......37 a. Famllia Theridiidae con telas asimétricas ………………………………..….37 b. Familia Argiopidae con telas simétricas……………………………….…..…373. 2. Ácaros predadores…………………………………………………………...…….383. 3. Nematodos……………………………………………………………………….....393. 4. Protozoarios…………………………………………………………………...…...393. 5. Hongos……………………………………………………………………………...40 113
  • 115. 3. 6. Bacterias…………………………………………………………………………....42 3. 7. Virus………………………………………………………………………………..44IV: CENTROS DE CRIANZA DE INSECTOS BENÉFICOS………………….…….464.1. Lugares de crianza en el Perú………………………………………………………464.2.Formas y métodos de reproducción…………………………..……………………..524.3.Características de ambientes de reproducción de enemigos naturales…………..74V. FACTORES QUE INFLUYEN EN LA EFICIENCIA Y ESTABLECIMIENTO .DE ENEMIGOS NATURALES……………………………………………………….93VI. CONCLUSIONES……………………………….…………………………………….. 98RESUMEN…………………………………………………………………………………..100ABSTRACT…………………………………………………………………………………101REFERENCIA BIBLIOGRÁFICA……..……...……………...……………………….103 114