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Universidad Nacional Autónoma de México
           Facultad de Ciencias

        Practicas de Biología de Animales 3

     Aparato reproductor femenino en Aves
 Fecundación en M. aurantiaca (almeja chocolata)
 Elena Coria Ortega, Jovana Jasso Martínez, Marco A.
Ruvalcaba Knoth, Nadieznha Medina Cantú, Alejandra
                Velázquez Mondragón

                    13/11/2012
INTRODUCCIÓN
ORIGEN




Aparecieron en el Mesozoico a partir de los dinosaurios carnívoros
•Huevo heteropolar
•Cuidado parental
•Plumas
•Pigostilo
•Sacos aéreos
•Anillo esclerótico
Fecundación interna : Macho
aprieta su cloaca con la de la
hembra y expulsa un chorro de
semen




                                 Presentan un huevo telolécito (gran
                                 tamaño y gran cantidad de vitelo en polo
                                 vegetal).
APARATO UROGENITAL

MACHOS

Formado por:

testículos, las vías deferentes (integradas
entre otros por el epidídimo y conductos
deferentes) y el órgano copulador .
HEMBRAS

En el ave adulta
solamente el ovario y
el oviducto izquierdos
son funcionales.


El ovario en forma de
racimo de uvas y el
oviducto         está
formado por 6 partes
OBJETIVOS
General:

• Conocer la anatomía del órgano reproductor femenino de las
Aves y correlacionar la estructura y microestructura con la función.

Específicos:

•Identificar la estructura del aparato reproductor en el grupo de
aves.
•Realizar preparaciones histológicas del órgano reproductor
obtenido.
•Conocer el procesamiento del material histológico (inclusión en
parafina, cortes, tinción y preparaciones fijas) para obtener
preparaciones histológicas del órgano reproductor.
METODOLOGIA
Aparato reproductor femenino en Aves
Fig. 1 Gallina dormida con
                              Fig.2 Desplumado, para         Fig.3 Disección de la gallina
cloroformo al 10%
                              poder realizar el corte.




 FIJACION


Los frotis fueron
fijados en alcohol
                             Fig. 5 Frotis de la sangre    Fig.4 Extracción de aparato
metílico.
                             fresca del organismo         reproductor (no se obtuvo
                                                          oviducto)
FIJACION DEL
    TEJIDO




 HISTOQUINETE


 INCLUSION
Fig. 6 Aparato de inclusión.




                   Fig. 7 Bloque de parafina (tejido
                   incluido).




                                                       Fig.8 Bloque de parafina
CORTE


          Fig. 9 Micrótomo con el   Fig. 10 Corte del Bloque
              bloque incluido.




Fig. 13            Fig. 12
                                    Fig. 11 Tinción del frotis
TINCION
    Y
FIJACION




           Fig. 15   Fig. 14
XILOL




          TREN DE TINCION

  XILOL
TINCION Y MONTAJE DE FROTIS
           • 2-3 minutos
Metanol    • Cubrir todo el frotis

            • 10 gotas aproximadamente (Cubrir todo el frotis)
  May-
Grünwald
            • 3 minutos



Enjuague
           • Con agua destilada


           • 10 gotas aproximadamente (Cubrir todo el frotis)
Giemsa     • 2 minutos


Enjuague
           • Con agua destilada y secar
Fig. 16 Reactivos




                             Fig. 18 Frotis montado
Fig. 17 Tinción del frotis
Diagrama de los diferentes tipos celulares que se
        pueden observar en un frotis.
RESULTADOS
Observación al microscopio de
los frotis
CORTES HISTOLOGICOS




                                  TC


                                  N

                                  C

                                  ESP


                                        Fig. 3 Ovocito previtelogénico de gallina.
                                        40x.

                                          (N)Núcleo
Fig. 21 Ovocito Previtelogénico
de gallina en crecimiento. 40x.           (C) Citoplasma
                                          (EPS) Epitelio simple plano
                                          (TC)Tejido conjuntivo
O




Fig. 2 – Ovocitos de gallina. 40x.
METODOLOGIA
Fecundación en M. aurantiaca (almeja
             chocolata)
1: Se abrió la concha de la almeja con   2. A partir de cortes al cuerpo de la
ayuda de un desarmador.
                                         almeja se identificaron las gónadas.




           SEXADO
                                            OBSERVACION DE LA MUESTRA
                                                 AL MICROSCÓPIO
En un portaobjetos escavado se
colocan las muestras de gónada
(asegurando la presencia de
gametos femeninos y masculinos)
y se añadió una gota de agua de
mar. Se observó al microscopio.
En este caso no pudimos
identificar  el    evento    de
fecundación.
Ovocitos 40X.
Espermatozoides 40X.
DISCUSION Y CONCLUSIONES

-Importancia de la Histología como disciplina, y herramienta para los
biólogos por la combinación de observación de estructuras
microscópicas y la función de los órganos, en este caso los aparatos
reproductores.
-El cuidado que se debe tener al hacer preparaciones.
-Estadios juveniles en los organismos utilizados para este tipo de
prácticas.
-Problématica en la práctica de fecundación: más hembras que
machos

Gracias a estas prácticas podemos familiarizarnos con todo un
proceso que se lleva a cabo para el estudio histológico de los
organismos y de cómo se lleva a cabo en los diferentes grupos de
vertebrados el proceso de desarrollo y el evento de la reproducción.
REFERENCIAS


RODRÍGUEZ, F. 2003. Bases de la producción animal.
Primera edición. Ed. Universidad de Sevilla. Sevilla.

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Aparato reproductor femenino en Aves

  • 1. Universidad Nacional Autónoma de México Facultad de Ciencias Practicas de Biología de Animales 3 Aparato reproductor femenino en Aves Fecundación en M. aurantiaca (almeja chocolata) Elena Coria Ortega, Jovana Jasso Martínez, Marco A. Ruvalcaba Knoth, Nadieznha Medina Cantú, Alejandra Velázquez Mondragón 13/11/2012
  • 3. ORIGEN Aparecieron en el Mesozoico a partir de los dinosaurios carnívoros
  • 5. Fecundación interna : Macho aprieta su cloaca con la de la hembra y expulsa un chorro de semen Presentan un huevo telolécito (gran tamaño y gran cantidad de vitelo en polo vegetal).
  • 6. APARATO UROGENITAL MACHOS Formado por: testículos, las vías deferentes (integradas entre otros por el epidídimo y conductos deferentes) y el órgano copulador .
  • 7. HEMBRAS En el ave adulta solamente el ovario y el oviducto izquierdos son funcionales. El ovario en forma de racimo de uvas y el oviducto está formado por 6 partes
  • 8. OBJETIVOS General: • Conocer la anatomía del órgano reproductor femenino de las Aves y correlacionar la estructura y microestructura con la función. Específicos: •Identificar la estructura del aparato reproductor en el grupo de aves. •Realizar preparaciones histológicas del órgano reproductor obtenido. •Conocer el procesamiento del material histológico (inclusión en parafina, cortes, tinción y preparaciones fijas) para obtener preparaciones histológicas del órgano reproductor.
  • 10. Fig. 1 Gallina dormida con Fig.2 Desplumado, para Fig.3 Disección de la gallina cloroformo al 10% poder realizar el corte. FIJACION Los frotis fueron fijados en alcohol Fig. 5 Frotis de la sangre Fig.4 Extracción de aparato metílico. fresca del organismo reproductor (no se obtuvo oviducto)
  • 11. FIJACION DEL TEJIDO HISTOQUINETE INCLUSION
  • 12. Fig. 6 Aparato de inclusión. Fig. 7 Bloque de parafina (tejido incluido). Fig.8 Bloque de parafina
  • 13. CORTE Fig. 9 Micrótomo con el Fig. 10 Corte del Bloque bloque incluido. Fig. 13 Fig. 12 Fig. 11 Tinción del frotis
  • 14. TINCION Y FIJACION Fig. 15 Fig. 14
  • 15. XILOL TREN DE TINCION XILOL
  • 16. TINCION Y MONTAJE DE FROTIS • 2-3 minutos Metanol • Cubrir todo el frotis • 10 gotas aproximadamente (Cubrir todo el frotis) May- Grünwald • 3 minutos Enjuague • Con agua destilada • 10 gotas aproximadamente (Cubrir todo el frotis) Giemsa • 2 minutos Enjuague • Con agua destilada y secar
  • 17. Fig. 16 Reactivos Fig. 18 Frotis montado Fig. 17 Tinción del frotis
  • 18. Diagrama de los diferentes tipos celulares que se pueden observar en un frotis.
  • 21.
  • 22. CORTES HISTOLOGICOS TC N C ESP Fig. 3 Ovocito previtelogénico de gallina. 40x. (N)Núcleo Fig. 21 Ovocito Previtelogénico de gallina en crecimiento. 40x. (C) Citoplasma (EPS) Epitelio simple plano (TC)Tejido conjuntivo
  • 23. O Fig. 2 – Ovocitos de gallina. 40x.
  • 24. METODOLOGIA Fecundación en M. aurantiaca (almeja chocolata)
  • 25. 1: Se abrió la concha de la almeja con 2. A partir de cortes al cuerpo de la ayuda de un desarmador. almeja se identificaron las gónadas. SEXADO OBSERVACION DE LA MUESTRA AL MICROSCÓPIO
  • 26. En un portaobjetos escavado se colocan las muestras de gónada (asegurando la presencia de gametos femeninos y masculinos) y se añadió una gota de agua de mar. Se observó al microscopio. En este caso no pudimos identificar el evento de fecundación.
  • 29. DISCUSION Y CONCLUSIONES -Importancia de la Histología como disciplina, y herramienta para los biólogos por la combinación de observación de estructuras microscópicas y la función de los órganos, en este caso los aparatos reproductores. -El cuidado que se debe tener al hacer preparaciones. -Estadios juveniles en los organismos utilizados para este tipo de prácticas. -Problématica en la práctica de fecundación: más hembras que machos Gracias a estas prácticas podemos familiarizarnos con todo un proceso que se lleva a cabo para el estudio histológico de los organismos y de cómo se lleva a cabo en los diferentes grupos de vertebrados el proceso de desarrollo y el evento de la reproducción.
  • 30. REFERENCIAS RODRÍGUEZ, F. 2003. Bases de la producción animal. Primera edición. Ed. Universidad de Sevilla. Sevilla.