Piroplasmidos (Babesia sp)

1. Babesia spp.
PRACTICA 12. PIROPLASMIDOS
7QV1 EQUIPO 4

2. General: El alumno estudiará la morfología, el ciclo de vida y el
diagnóstico de Babesia spp.
Conductuales:
1. Describirá las fases del ciclo de vida del género Babesia.
2. Describirá la morfología de las fases eritrocíticas de las dos especies
de Babesia que parasitan a los bovinos.
3. Describirá la morfología de las fases eritrocíticas del género Babesia
que parasitan al hombre.
4. Practicará una técnica de diagnóstico utilizada para la babesiosis.
5. Identificará por su morfología a las garrapatas transmisoras de Babesia
spp: las garrapatas del género Rhipicphalus Boophilus spp.
Objetivos

3. Parásito
Dominio Eukarya
Reino Protista
Phylum Apicomplexa
Clase Aconoidasida
Orden Piroplasmida
Género
Babesia

4. Historia
Victor Babes
▪ Primer caso en 1957.
▪ Reportado en la antigua
Yugoslavia.

5. • Causa la enfermedad de babesiosis.
• La enfermedad transmitida por artrópodos
más importante del mundo.
• Distribución cosmopolita y en animales
domésticos.
• En su huésped vertebrado es intracelular.
• Las garrapatas son las transmisoras.
• Su principal cuadro será la presencia de
fiebre persistente.
Babesia spp.

6. CICLO DE VIDA

7. Peromyscus leucopus
Ratón de patas
blancas

10. Morfología

11. Diagrama de un zoito de Babesia sp.
mostrando el conoide, roptrias y microenemas
(Cordero del Campillo M., 1999)
1-5 micras

13. Panel de infección de Babesia divergens en extendido sanguíneo.(A)
Trofozoíto anular, (B) Merozoítos emparejados, (C) Cruz de Malta (Tetrada)
(D)Formas parasitarias en división, (E)Múltiples merozoítos, (F)Formas anilladas
en el eritrocito, (G) y (H) formas poco comunes por estado de crisis.
Babesia divergens–like Infection, Washington State
•Barbara L. Herwaldt, Guy de Bruyn

14. • Corpúsculo único o en pares, con forma redondeada u ovalada.
• Las dimensiones varían dependiendo de la especie.
• Babesia bovis es de las más pequeñas: 1.8 x 1.2 m
• Babesia bigemina es de las más grandes, ocupa casi ¾ partes del
eritrocito: 4-5 x 2 m

15. Babesia microti

16. Babesia bovis

17. Babesia divergens

18. Quiroz Romero, 2005
Representación esquemática de las diferentes
especies de Babesia que afectan a bovinos

19. Transmisor
Macho
adulto
Hembra
adulta
Género :
Boophilus

20. Morfología del transmisor

22. Tabla 1. Distribución geográfica de las diferentes especies de Boophilus en el
mundo.

23. Hospederos
*Hay huéspedes respectivos para cada
especie.

24. Babesiosis
en
Bovinos
Fiebr
e
Anemi
a
Icterici
a
Hemoglobinuri
a

25. PROCEDIMIENTO

26. No se fija con
metanol
Se fija con metanol
Gota
gruesa
Teñir con
Giemsa

27. Discusión

28.  La más frecuente cuando no hay
alteraciones inmunológicas en el
huésped.
 Se pude identificar
microscópicamente por al
formación de cruz de malta que
forma la tetrada de merozoitos.
 Los merozoitos pueden estar
juntos o separados.
 Huésped invertebrado:
 Ixodes damnini
 Ixodes scapularis
 Huésped vertebrado:
 Roedores y humanos.
Babesia microti

29.  Llega a abarcar ¾ partes del
eritrocito (El más grande).
 Los merozoitos están en pares.
 Su ángulo de separación entre
merozoitos es de 45°.
 Huésped invertebrado:
Rhipicephalus microplus
 Huésped vertebrado:
 Ganado bovino
Babesia bigemina

31.  Ocupa 1/3 del tamaño del
eritrocito.
 Los merozoitos se encuentran
en pares formando un
ángulo obtuso
(generalmente).
 Su fase de trofozoito presenta
formas anulares.
 Huésped invertebrado:
 Rhipicephalus microplus
 Rhipicephalus annulatus
 Huésped vertebrado:
 Ganado bovino.
Babesia bovis
Trofozoito
anular
Pares en
ángulo obtuso

32. Observaciones en el laboratorio
Babesia microti.
Merozoitos en cruz de malta.
Eritrocito en sangre de ratón
Tinción de Giemsa100x
Babesia bigemina.
Merozoitos en ares en ángulo de 45°.
Preparación fija.
Tinción de Giemsa100x

33. Observaciones en el laboratorio
Babesia bovis.
Merozoitos en pares. Ángulo de obtuso.
Preparación fija.
Tinción de Giemsa100x
Babesia microti.
Esporozoitos libres
Técnica de gota gruesa
40x

34. Transmisor
Rhipicephalus
(Boophilus)
microplus

37. Morfología del transmisor
Capitulum
Idiosoma
Festones

38. Morfología general de
una garrapata.
Guerrero1996

42. Referencias consultadas
• Rodríguez-Vivas, R. I., Rosado-Aguilar, J. A., Ojeda-Chi, M. M., Pérez-
Cogollo, L. C., Trinidad-Martínez, I., & Bolio-González, M. E. (2014). Control
integrado de garrapatas en la ganadería bovina. Ecosistemas y recursos
agropecuarios, 1(3), 295-308.
• Suárez Hernández, M., ALONSO CASTELLANO, M. A. G. A. L. Y., Peláez
Martínez, R., Sánchez Pérez, B., Bravo González, J. R., & Sánchez Sibello, A.
(1997). Pesquisaje de Babesia en trabajadores agropecuarios y donantes
en la provincia de Ciego de Ávila. Revista cubana de medicina
tropical, 49(2), 130-135.
• González, G., Todorovic, R. A., & Adams, L. G. (1971). Ultraestructura de la
Babesia bigemina. Revista ICA (Colombia) v. 6 (1) p. 89-120.
• Smith, R. D. (1978). Ciclo biológico de Babesia en la garrapata. Ciencia
Veterinaria, 2, 233-264.
• Corwin RM, Nahm J. Boophilus spp [online]. University of Missouri, College
of Veterinary Medicine; 1997. Available at:
http://www.parasitology.org/Arthropods/ Arachnida/Boophilus.htm.
Revisado el 13 Nov. 2019