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INSTITUTO POLITECNICO NACIONAL
ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS
BIOLÓGICAS
MICROBIOLOGÍA VETERINARIA
Infecciones del aparato
respiratorio
Pasteurella
TAXONOMÍA
REINO : Bacteria
PHYLUM : Proteobacteria
CLASE: Gammaproteobacteria
ORDEN: Pasteurellales
FAMILIA:Pasteurellaceae
GÉNERO: Pasteurella
ESPECIES: 14 especies reconocidas
 Pasteurella multocida
4 subespecies
5 serogrupos capsulares ( A,B,D,E,F)
 Pasteurella trehalosi
(Bibersteinia trehalosi)
 Pasteurella haemolytica
( Mannheimia haemolytica )
Figura 1 . Ilustración 3D de Pasteurella
multocida
MORFOLOGÍA
Bacilo corto Gram Negativo
Tamaño : 0.3 – 1.0 µm de ancho
1.0 – 2.0 µm de largo.
No móvil
Anaerobios facultativos
Oxidasa : +
Catalasa : +
Indol : +
Posee una capsula polisacárida
Tinción bipolar con Giemsa y Wright
Crecimiento óptimo en medios
enriquecidos
Temperatura optima de crecimiento :
37°C
Lábiles en el medio externo
Microscópica
Figura 2 y 3 . Morfología
microscópica de Pasteurella
multocida (2) y Tinción bipolar de
MORFOLOGÍA
Macroscópica
Tamaño : 0.5 – 2 mm diámetro
Color : blanquecina o grisácea
Forma : circular
Elevación : Convexa
Superficie : Lisas
Aspecto : húmeda
Consistencia : Mucoide
Luz reflejada : brillante
Luz transmitida : traslúcidas
 No hemolítica
 Olor tenue típico
 No crece en McConkey
P
.multocida
Figura 4. Morfología microscópica de
Pasteurella multocida en agar sangre .
EPIZOOTIOLOGIA
Pasteurella
multocida
SEROTIPO ¿ A QUIEN AFECTA? ENFERMEDAD
A Vacas
Ovejas
Cerdos
Aves
Conejos
Pasteurelosis neumónica bovina
( Fiebre de embarque )
Neumonía , mamitis
Rinitis atrófica , Neumonía
Cólera aviar
Pasteurelosis del conejo
B Vacas , búfalos Septicemia hemorrágica ( Asia )
D Cerdos Rinitis atrófica y neumonía
E Vacas y búfalos Septicemia hemorrágica ( África )
F Pavos Cólera aviar
FACTORES PREDISPONENTES
 Principalmente a animales
jóvenes y de engorda
 Transporte masivo a largas
distancias
 Estabulación hacinada
 Destete
 Cambios de temperatura
 Mezcla de animales de
diferentes edades
Figura 5 y 6 : Diferentes factores
predisponentes .
FACTORES DE VIRULENCIA
Cápsula: mucoide de ácido hialurónico actúa
como antígeno antifagocitario (serotipo A)
Fimbrias: Adherencia y colonización
Endotoxina (LPS): Daña leucocitos bovinos y
células endoteliales
Leucotoxina : Citolisina formadora de poros
que afecta a la función de los leucocitos y
plaquetas
Proteína de membrana externa (OMP) :
hgb tipo A y B
Sideroforo : Quelante de Hierro ( serotipos A
y B )
Toxina dermonecrótica (PMT): Destrucción de
osteoblastos, destrucción de los cornetes
( serotipo A y D)
ENFERMEDADES DEL GANADO BOVINO
Pasteurelosis
neumónica bovina
Septicemia
hemorrágica
 Secreción nasal
serosa o
mucupurulenta con
rastros de sangre
 Muerte por asfixia
Mortalidad :45-55%
• Manifestación
aguda y mortal
• Salivación,
protrusión de la
lengua, inflamación
dolorosa de
garganta y ruido
bronquial
pronunciado
• Morbi-morta : 100
%
Fiebre, depresión, anorexia, disnea, tos, cianosis de las membranas mucosas,
respiración forzada y dolorosa.
ENFERMEDAD DEL GANADO PORCINO
Rinitis atrófica
 Vías respiratorias altas de
cerdos (3-8 semanas de
edad).
 Secreción lagrimal
excesiva, estornudos y
ocasionalmente epistaxis.
 Enfermedad severa y
progresiva: daño en los
cornetes y posible
desviación del hocico.
 Provocada también por B.
bronchiseptica
ENFERMEDAD DEL GANADO
AVÍCOLA
Cólera aviar
• 3 presentaciones :
hiperaguda, aguda y
crónica
• Mortalidad y morbilidad
(arriba de 70%) en aves de
edad avanzada
PASTEURELOSIS DEL CONEJO
(CATARRO)
 Abscesos, conjuntivitis,
mastitis, septicemia
 Descarga oculonasal,
vaginal, disnea, edema
subcutáneo y muerte
repentina.
NECROPSIA
Ganado vacuno
 PNB : los pulmones aparecen
rojos, inflamados y
consolidados, abundante
fibrina (pleura) . Puede haber
abscesos .
 Ganglios linfáticos bronquiales
y mediastínicos edematosos
 Petequias en pulmones y
mucosa respiratoria
• SH: hemorragias petequiales
difusas generalizadas, edema
(líquido amarillento o
manchas de sangre) e
hiperemia, ganglios linfáticos
hemorrágicos e inflamados y
fluido sanguinolento en la
cavidad pleural y el saco
pericárdico
NECROPSIA
Ganado porcino
• Diferentes grados de atrofia de
los cornetes dorsales y
ventrales, pudiendo llegar a
desaparecer.
• Desviación del tabique nasal,
que en casos de lesión
bilateral, se acompaña de la
desviación facial hacia arriba,
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lado si las lesiones son
unilaterales. Tabique nasal desviado y
desaparición de cornetes (Foto:
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patología porcina).
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 Cólera aviar
Hemorragias en superficies
serosas, epicardio, grasa
abdominal y mucosa intestinal,
acumulación de fluidos en
cavidades corporales, hígado,
pulmones y bazo edematosos y
áreas de necrosis .
inflamación local
Necrosis
en
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s
Daño en barbilla con
contenido fibrinoso y caseoso
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Conejo ( Pasteurelosis del conejo
)
• Vías respiratorias altas (rinitis-
coriza)
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• Oído (Otitis internas y
externas)
• Dérmicos (abscesos debajo la
piel)
• Glándula mamaria (mamitis,
poco frecuente)
• Reproductivo ( metritis,
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• Tórax (pericarditis, pleuritis)
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internas)
DIAGNÓSTICO
 Historia clínica: exposición al estrés del transporte o sobrepoblación
 Histopatología: frotis de tejido pulmonar afectado (observación de los
bacilos cortos en coloración bipolar)
 Análisis microbiológico: aspirados traqueobronquiales, hisopos nasales
 Perfil bioquímico y morfología colonial (48h/37°C/aerobiosis, agar sangre
y MacConkey)
 Serotipificación
Hemaglutinación indirecta del antígeno capsular y la inmunodifusión en agar
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toxicidad en cultivo celular, ELISA y PCR
BIOQUÍMICA
PREVENCIÓN Y CONTROL
 Inmunización con bacterinas mixtas
 Control basado en el buen manejo de animales, evitar producir estrés de todo
tipo
 Evitar el agrupamiento de animales de distintas edades así como la cuarentena de
animales recién ingresados
 Saneamiento del medio, ventilación y disminución del polvo
 Eliminar portadores en el caso de cólera aviar
 Detectar portadores por inmunohistoquímica en muestras
TRATAMIENTO
• Los animales enfermos deben aislarse y tratarse al comienzo de la
enfermedad
• Antibióticos en comida y agua, antiinflamatorios
• Reducirse al máximo los factores de estrés
BIBLIOGRAFÍA
1. Carter, G., Chengapa, M., Roberts, A., William, G. y Rikishia, Y. (1995). Essentials of
veterinary microbiology. 5° edición. Williams y Wilkins.
2. Ocádiz, J. (2003). Epidemiología en animales domésticos. Control de Enfermedades. 5°
edición. Trillas, México.
3. Quinn, P
. y Markey, B. ( (2003). Elementos de microbiología veterinaria. 1° edición. Acribia,
España.
4. Gnanarajan, A. (2018). Enfermedades avícolas en India. Disponible en:
https://www.veterinariadigital.com/articulos/principales-enfermedades-avicolas-presentes-
en-la-india/ [Consultado: 11-10-20].
5. Trigo, F. (1987). El complejo respiratorio infeccioso de los bovinos y ovinos. Disponible en:
http://www.fmvz.unam.mx/fmvz/cienciavet/revistas/CVvol4/CVv4c1.pdf [Consultado: 11-10-
20].
6. Kumar, R., Kumari, B. y Kumar, B. (2018). Haemorrhagic Septicaemia in Buffaloes and its
Therapeutic Management – A Report of 3 Cases. Disponible en:
https://www.ijcmas.com/special/7/Ranveer%20Kumar%20Sinha,%20et%20al.pdf [Consultado:
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Pasteurella en animales

  • 1. INSTITUTO POLITECNICO NACIONAL ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS MICROBIOLOGÍA VETERINARIA Infecciones del aparato respiratorio Pasteurella
  • 2. TAXONOMÍA REINO : Bacteria PHYLUM : Proteobacteria CLASE: Gammaproteobacteria ORDEN: Pasteurellales FAMILIA:Pasteurellaceae GÉNERO: Pasteurella ESPECIES: 14 especies reconocidas  Pasteurella multocida 4 subespecies 5 serogrupos capsulares ( A,B,D,E,F)  Pasteurella trehalosi (Bibersteinia trehalosi)  Pasteurella haemolytica ( Mannheimia haemolytica ) Figura 1 . Ilustración 3D de Pasteurella multocida
  • 3. MORFOLOGÍA Bacilo corto Gram Negativo Tamaño : 0.3 – 1.0 µm de ancho 1.0 – 2.0 µm de largo. No móvil Anaerobios facultativos Oxidasa : + Catalasa : + Indol : + Posee una capsula polisacárida Tinción bipolar con Giemsa y Wright Crecimiento óptimo en medios enriquecidos Temperatura optima de crecimiento : 37°C Lábiles en el medio externo Microscópica Figura 2 y 3 . Morfología microscópica de Pasteurella multocida (2) y Tinción bipolar de
  • 4. MORFOLOGÍA Macroscópica Tamaño : 0.5 – 2 mm diámetro Color : blanquecina o grisácea Forma : circular Elevación : Convexa Superficie : Lisas Aspecto : húmeda Consistencia : Mucoide Luz reflejada : brillante Luz transmitida : traslúcidas  No hemolítica  Olor tenue típico  No crece en McConkey P .multocida Figura 4. Morfología microscópica de Pasteurella multocida en agar sangre .
  • 5. EPIZOOTIOLOGIA Pasteurella multocida SEROTIPO ¿ A QUIEN AFECTA? ENFERMEDAD A Vacas Ovejas Cerdos Aves Conejos Pasteurelosis neumónica bovina ( Fiebre de embarque ) Neumonía , mamitis Rinitis atrófica , Neumonía Cólera aviar Pasteurelosis del conejo B Vacas , búfalos Septicemia hemorrágica ( Asia ) D Cerdos Rinitis atrófica y neumonía E Vacas y búfalos Septicemia hemorrágica ( África ) F Pavos Cólera aviar
  • 6. FACTORES PREDISPONENTES  Principalmente a animales jóvenes y de engorda  Transporte masivo a largas distancias  Estabulación hacinada  Destete  Cambios de temperatura  Mezcla de animales de diferentes edades Figura 5 y 6 : Diferentes factores predisponentes .
  • 7. FACTORES DE VIRULENCIA Cápsula: mucoide de ácido hialurónico actúa como antígeno antifagocitario (serotipo A) Fimbrias: Adherencia y colonización Endotoxina (LPS): Daña leucocitos bovinos y células endoteliales Leucotoxina : Citolisina formadora de poros que afecta a la función de los leucocitos y plaquetas Proteína de membrana externa (OMP) : hgb tipo A y B Sideroforo : Quelante de Hierro ( serotipos A y B ) Toxina dermonecrótica (PMT): Destrucción de osteoblastos, destrucción de los cornetes ( serotipo A y D)
  • 8. ENFERMEDADES DEL GANADO BOVINO Pasteurelosis neumónica bovina Septicemia hemorrágica  Secreción nasal serosa o mucupurulenta con rastros de sangre  Muerte por asfixia Mortalidad :45-55% • Manifestación aguda y mortal • Salivación, protrusión de la lengua, inflamación dolorosa de garganta y ruido bronquial pronunciado • Morbi-morta : 100 % Fiebre, depresión, anorexia, disnea, tos, cianosis de las membranas mucosas, respiración forzada y dolorosa.
  • 9.
  • 10. ENFERMEDAD DEL GANADO PORCINO Rinitis atrófica  Vías respiratorias altas de cerdos (3-8 semanas de edad).  Secreción lagrimal excesiva, estornudos y ocasionalmente epistaxis.  Enfermedad severa y progresiva: daño en los cornetes y posible desviación del hocico.  Provocada también por B. bronchiseptica
  • 11. ENFERMEDAD DEL GANADO AVÍCOLA Cólera aviar • 3 presentaciones : hiperaguda, aguda y crónica • Mortalidad y morbilidad (arriba de 70%) en aves de edad avanzada
  • 12. PASTEURELOSIS DEL CONEJO (CATARRO)  Abscesos, conjuntivitis, mastitis, septicemia  Descarga oculonasal, vaginal, disnea, edema subcutáneo y muerte repentina.
  • 13. NECROPSIA Ganado vacuno  PNB : los pulmones aparecen rojos, inflamados y consolidados, abundante fibrina (pleura) . Puede haber abscesos .  Ganglios linfáticos bronquiales y mediastínicos edematosos  Petequias en pulmones y mucosa respiratoria • SH: hemorragias petequiales difusas generalizadas, edema (líquido amarillento o manchas de sangre) e hiperemia, ganglios linfáticos hemorrágicos e inflamados y fluido sanguinolento en la cavidad pleural y el saco pericárdico
  • 14. NECROPSIA Ganado porcino • Diferentes grados de atrofia de los cornetes dorsales y ventrales, pudiendo llegar a desaparecer. • Desviación del tabique nasal, que en casos de lesión bilateral, se acompaña de la desviación facial hacia arriba, que se desplazará hacia un lado si las lesiones son unilaterales. Tabique nasal desviado y desaparición de cornetes (Foto: Guía de diagnóstico de necropsia en patología porcina).
  • 15. NECROPSIA  Cólera aviar Hemorragias en superficies serosas, epicardio, grasa abdominal y mucosa intestinal, acumulación de fluidos en cavidades corporales, hígado, pulmones y bazo edematosos y áreas de necrosis . inflamación local Necrosis en hígado Hemorragia s Daño en barbilla con contenido fibrinoso y caseoso
  • 16. NECROPSIA Conejo ( Pasteurelosis del conejo ) • Vías respiratorias altas (rinitis- coriza) • Vías respiratorias bajas (neumonías) • Oído (Otitis internas y externas) • Dérmicos (abscesos debajo la piel) • Glándula mamaria (mamitis, poco frecuente) • Reproductivo ( metritis, salpingitis) • Tórax (pericarditis, pleuritis) • Abdomen (peritonitis) • Septicemia (hemorragias internas)
  • 17. DIAGNÓSTICO  Historia clínica: exposición al estrés del transporte o sobrepoblación  Histopatología: frotis de tejido pulmonar afectado (observación de los bacilos cortos en coloración bipolar)  Análisis microbiológico: aspirados traqueobronquiales, hisopos nasales  Perfil bioquímico y morfología colonial (48h/37°C/aerobiosis, agar sangre y MacConkey)  Serotipificación Hemaglutinación indirecta del antígeno capsular y la inmunodifusión en agar  Deformidad facial característica es de valor diagnóstico, demostración de toxicidad en cultivo celular, ELISA y PCR
  • 19. PREVENCIÓN Y CONTROL  Inmunización con bacterinas mixtas  Control basado en el buen manejo de animales, evitar producir estrés de todo tipo  Evitar el agrupamiento de animales de distintas edades así como la cuarentena de animales recién ingresados  Saneamiento del medio, ventilación y disminución del polvo  Eliminar portadores en el caso de cólera aviar  Detectar portadores por inmunohistoquímica en muestras TRATAMIENTO • Los animales enfermos deben aislarse y tratarse al comienzo de la enfermedad • Antibióticos en comida y agua, antiinflamatorios • Reducirse al máximo los factores de estrés
  • 20. BIBLIOGRAFÍA 1. Carter, G., Chengapa, M., Roberts, A., William, G. y Rikishia, Y. (1995). Essentials of veterinary microbiology. 5° edición. Williams y Wilkins. 2. Ocádiz, J. (2003). Epidemiología en animales domésticos. Control de Enfermedades. 5° edición. Trillas, México. 3. Quinn, P . y Markey, B. ( (2003). Elementos de microbiología veterinaria. 1° edición. Acribia, España. 4. Gnanarajan, A. (2018). Enfermedades avícolas en India. Disponible en: https://www.veterinariadigital.com/articulos/principales-enfermedades-avicolas-presentes- en-la-india/ [Consultado: 11-10-20]. 5. Trigo, F. (1987). El complejo respiratorio infeccioso de los bovinos y ovinos. Disponible en: http://www.fmvz.unam.mx/fmvz/cienciavet/revistas/CVvol4/CVv4c1.pdf [Consultado: 11-10- 20]. 6. Kumar, R., Kumari, B. y Kumar, B. (2018). Haemorrhagic Septicaemia in Buffaloes and its Therapeutic Management – A Report of 3 Cases. Disponible en: https://www.ijcmas.com/special/7/Ranveer%20Kumar%20Sinha,%20et%20al.pdf [Consultado: 11-10-20].