Módulo 2- Curso Medicina y Manejo de Mascotas Exóticas

1. Medicina en Aves
PhD MVZ Rosalía Pastor Nieto
Coordinadora Regional IUCN WHSG

2. Medicina en Aves

3. Importaciones de Psitacidos
Mercado de mascotas

7. Exámen Físico de un Ave
• Observación: actitud, tipo de instalaciones
o jaula, condición del plumaje, heces
fecales, postura, simetría.
• Dificultad respiratoria se observa en un
exagerado movimiento de la cola

8. Historia Clínica -Anamnésis

12. Lista de Regiones Anátomicas
a Revisar
• Cabeza
• Cuello
• Ojos
• Pico
• Orificios auditivos
• Piel
• Plumaje
• Buche
• Musculos pectorales
• Alas
• Abdomen
• Cloaca
• Dedos y Patas
• Hidratación- vena ulnar

13. Bienestar en Cautiverio

14. CARATERISTICAS PSITACIDOS
350 especies aproximadamente
Patas son prensiles con dedos I y IV dirigidos
caudalmente , II y III cranealmente
monógamos

15. CARACTERISTICAS GENERALES
① Son homeotermos
② No presentan dimorfismo sexual
③ Son monogamos
④ Su visión es perfecta
⑤ Oviparas

16. ANATOMIA
• La piel esta compuesta de epidermis y dermis, es
muy delgada
• No presentan glandulas sudoriparas
• La única glándula sebacea es glandula uropigial
• Corazón tiene 2 auriculas y 2 ventriculos
• No presentan vejiga urinaria
• El aparato genital esta formado solo por el ovario y
el oviducto izquierdo

17. DISTRIBUCION
• Sudeste de África
• Sudeste de Asia

18. INSTALACIONES
• Se alberga en parejas
• Aviarios hecho de malla metálica
• Suficiente espacio para evitar agresiones
• Perchas de diversos tamaños, fácil
limpieza, no tóxicos
• Bebederos grandes
• Baños no profundos
• El albergue debe tener un área de
sombra y un área de sol
• Enriquecimiento ambiental
• N o mezclar especies o edades en un
mismo albergue

19. CONTENCION Y MANEJO
• Evaluar la jaula
• Evitar contención si esta
comprometido el sistema
respiratorio
• Envolver en toallas y
asegurar el pico
• Condicionamiento
mediante refuerzo
positivo

20. Psitácidos mexicanos amenazados
• LOS PSITÁCIDOS MEXICANOS EN
ALGUNA CATEGORÍA DE RIESGO.
• Loro cabeza amarilla (Amazona oratrix),
amenazada
• Loro tamaulipeco (A. viridigenalis)
amenazada
• Guacamaya verde (Ara militaris) vulnerable
• Perico de Socorro (Aratinga brevipes)
vulnerable
• Cotorra serrana occidental (Rhynchopsitta
pachyrhynca) amenazada
• Cotorra serrana oriental (R. terris)

21. MEDICINA PREVENTIVA
1. Higiene del aviario
2. Lavar y desinfectar alimentos
3. Estudios coproparasitoscopicos semestralmente
4. Dieta balanceada
5. Chequeos semestrales
6. Corte de uñas y pico si es necesario
7. Corte de plumas cada 4 meses

22. Las aves disfrutan de
una amplia variedad de
alimentos de consumo
humano, incluyendo
frutas, verduras, pastas
y panes.

23. Aguacate, carnes, chocolate y grandes
cantidades de productos lácteos no se debe
ofrecer a las aves.

24. Balance nutricional.
PELLETS.
• Proporcionan equilibrio nutricional.
• La dieta de pellets también puede
tener granos, frutas y verduras
aditivos para la variedad y
probióticos para apoyar la salud
digestiva.

25. SEMILLAS.
• Semillas se pueden ofrecer en cantidades pequeñas (menos de
10% de la dieta) y deben ser una mezcla de mijo, calabaza,
girasol y otras semillas.
• Las dietas sólo de semillas se han relacionado con la
enfermedad de hígado graso y la enfermedad arterial coronaria
en las aves.

26. AVENA Y GRANOS
• Son inadecuados como una dieta completa, porque no
son nutricionalmente completos.

27. GOLOSINAS.
• Deben ofrecerse como recompensa al
buen comportamiento

28. • El proceso de localización de los alimentos, ha dado
buenos resultados, no sólo para desafiar el intelecto
de las aves como mascotas, sino también para
ayudar a controlar el tamaño de las porciones.

30. Mantenimiento
del ave.
PELIGROS DEL HOGAR.
• Las aves son muy sensibles al
humo y olores fuertes.
• No deben alojarse en la cocina.
• Mantener objetos brillantes
fuera de su alcance.
• Alejar de otras mascotas.

31. Aseo.
• Corte de uñas se recomienda para
limar los puntos fuertes y debe ser
realizados por una persona con
experiencia.
• El pico no debe recortarse
n o r m a l m e n t e , s i p r e s e n t a
asimetría, debe ser evaluado por
un MVZ.

32. Salud
• Nuevo entorno y el entorno pueden ser estresantes
para los animales domésticos. Antes de tocar a la
mascota, deben darse 3-4 días para adaptarse a su
nuevo entorno y para detectar cualquier signo de
estrés o enfermedad

33. Signos que deben observarse.
• Disminución del apetito, pérdida de peso.
• Disminución de actividad y conducta de aseo
• Cambio en el excremento
• Si está sentado en la parte inferior de la jaula
• Secreción en la nariz o la boca; estornudos

34. Conducta Social
• Tienen lazos muy fuertes con sus propietarios.
• Enseñar cosas y ser recompensados por extraños para que
puedan relacionarse con ellos.

35. PROCEDIMIENTOS DE RUTINA Y
METODOS DE TRATAMIENTO.
• Recorte de plumas de alas
• Puede ser una ayuda para la domesticación y para evitar la perdida de las aves a las que
se le permite salir de la jaula
• Puede ser mejor recortar solamented e 6 a 8 primarias, desde el exterior al interior
• En loros de gran peso (el loro gris africano) el recorte debe ser minimo, la extracción de las
6 primarias de cada lado en general será suficienmte.
• Los recortes unilateralesde las alas son eficaes.
• Lkas plumas de crecimiento no se deben de cortar ya que puede ocasionar una
hemorragia
• Estas plumas frecuentemente son mordidas o arrancadas por las aves y la extracción
inmediata sacando el cañon que queda y aplicando presión hasta detener la hemorragia
es el mejor tx.
• Recorte de uñas.
• Agentes hemostáticos: Nitrato de plata o con presión en la base de la uña que esta
sagrando
• Equipo: taladros equipados con cabeza de limar

36. Hematología
• Conteo visual de componentes
celulares /mcl
• Muestras delicadas fácilmente se
descomponen
• Se sugiere procesar las muestras
inmediatamente posterior a su colecta

37. Hematología
• Volúmen de muestra depende de especie
y tamaño del individuo
– 5 ml/100g de peso- faisanes
– 16 ml/ 100g de peso- columbiformes
– 1% del PC en Paseriformes
– 3% en Anseriformes

38. Hematología
• Venopunción:
– Sitio depende de especies, condición de
salud
– Mejor resultado de muestra venosa
– No se recomienda de corte de uña

39. Hematología
• Venopunción
– Yugular derecha- es más grande
– Extensión de cuello, fija la vena que es muy
mobil
– Yugular cae en el surco- y no hay plumas en
el apterium
– Realizar de preferencia con anestesia
inhalada

40. Hematología
• Venopunción en vena Ulnar- Aves de tamaño
medio a grande
• Se puede tomar con mariposa o tubos
capilares con ETDA
• Venopunción en la vena Metatarsiana- medial
al tibiotarso

41. Hematología
• Realización de frotis- laminilla- HEMOGRAMA-
sangre fresca recien colectada
• Si se DX hempparasitos- laminilla sin
anticoagulante
• EDTA puede –hemolisis en algunas especies-
cuervos, garzas, guajolotes

42. Hematología
• El resto de la muestra es centrifugada para
obtener el PCV- packed cell volume
• Tubo de microhematocrito- 12 000 rpm
• Conteo de eritrocitos- manual o automatizado
– Manual- Unopette
– Aotomatizado- Método de Natt y Henrrick

43. Hematología
• PCV, HG y Eritrocitos – MCV- Mean
Corpuscular Volume
• MCHC- mean corpuscular hemoglobin-
caracteriza a los eritrocitos e indica si hay
anemia

44. Hematología
• Reticulocitos- evaluación de regeneración de
eritrocitos
• Leucocitos- conteo manual ya que los
eritrocitos y trombocitos están nucleados

45. Interpretación de Hematología
de Aves
• Eritrocitos- Nucleados
– ANEMIA- POLICROMASIA
• Leucocitos- Heterofilos en lugar de neutrofilos
• Trombocitos- en lugar de plaquetas

47. Interpretación de Hematología
en Aves
Heterofilia muy
elevada
Infecciones,
inflamación, necrosis,
neoplasias

48. Interpretación de Hematología
en Aves
Heterofilia
moderada
Necrosis Infección

49. HETEROFILIA
Clamidiosis
Aspergilosis
Tuberculosis
Cambios
tóxicos de
los
heterófilos

50. Monocitosis
Enfermedad
granulomatosa,
con necrosis
extensiva;
aspergilosis,
tuberculosis,
clamidiosis
Eosinofilia
Endoparasitos
intestinales, no
suele ser indicativo
de enfermedades
alergicas
Basofilos
Aumento
exagerado-
enfermedades
respiratorias

51. Proteínas sanguíneas
Proporción
Prealbúmina,
Albúmina:
Globulina
(prealbumina+
albumina)/
globulina
Rango Normal:
1.6-4.5

52. Alfa globulinas
Proteínas inflamatorias
Beta globulinas
Proteínas asociadas a
inflamación agúda
Gama globulinas
Anticuerpos
INFESTACIÓN POR
PARÁSITOS
HEPATOPATÍAS,
NEFROPATIAS,
ASPERGILOSIS,
CLAMIDIOSIS
CLAMIDIOSIS AGUDA

53. Hematología
• Química sanguínea
– Muestra en Heparina
– QS- aves
– Responde las siguientes interrogantes
• ¿Existe enfermadad subclinica presente?
• ¿Mi diagnóstico tentativo es correcto?
• Grados de severidad de la enfermedad
• ¿Esta funcionando el tratamiento?

54. Hematología
• Las químicas sanguíneas de las aves
manifiestan ciclos circadianos-
– ej- cortisol plasmático- ciclo anual- Tiroxina
en plasma

55. Hematología
• QS- aves
– Valores de referencia muy variables
– Cambios de valor muy sutiles entre salud y
enfermedad
– No todos los valores de los individuos sanos
entran dentro de los rangos normales
– No todos los valores de los animales
enfermos salen fuera de rango

56. Toma de muestra
• Tubo Heparina- Química sanguínea
• Tubo EDTA- Hemograma

59. ANALITO INTERPRETACIÓN
Alanino amino transferasa (ALT) Enzima intracelular, aumento en alteraciones hepatocelulares;
aumenta en daño a hepatocitos
Aspartato amino transferasa (AST) Idem, aumento tb en daño muscularcardiovascular y renal,
coincide con aumento de CK
Albumina Proteína sanguínea, niveles asociados a malnutrición,
enfermedad inflamatoria, infecciones y parasitismo
Amilasa AVES- pancreas, intestino e higado; falta de especificidad;
aumento asociado a pancreatitis y/o enteriis
Fosfatasa alcalina Hueso, riñon, intestino, higado; enfermedades oseas asociadas
a su elevación
Alfa globulinas Inflamación aguda; parasitosis

60. IMAGENOLOGÍA
DIAGNÓSTICA EN AVES

61. IMAGENOLOGÍA
• SISTEMA MUSCULO ESQUELÉTICO
FACILMENTE IDENTIFICABLE
• Tejidos blandos en cavidad celómica
dificilmente identificable
• Aves obesas o pequeñas complicado

62. 1. Trachea
2. Cervical air sac
3. Crop
4. Clavicular air sac
5. Brachiocephalic artery and aorta
6. (Heart base vessel)
7. Heart
8. Lung
9. Thoracic air sac
10. Liver
11. Kidneys
12. Proventriculus
13. Ventriculus
14. Intestines
15. Abdominal air sac

64. Imagenología
• Variables para una buena radiografía en aves
– Equipo- Tradicional o digital
– Chasis y tipo de película
– Contraste radiográfico y definición de imágen

65. Imagenología
• Técnica Radiológica
– Paseriformes- alejar la película o chasis- 30
cms
– Maquinas digitales- calibración automática

66. Imagenología
• Posicionamiento y manejo
– Anestesia idealmente
– Posición con plexiglass, bolsas de arena,
velcro, cinta adehesiva
– Estudios radiológicos en aves
• VENTRODORSAL
• LATERALES IZQUIERDOS Y DERECHOS

67. Imagenología
• Posicionamiento
– Laterales- alas en 90 grados fijas con cinta;
extremidades posicionadas caudalmente,
paralelas fijadas a la altura del metatarso
– Cráneo- siempre bajo anestesia

68. Evidencia Radiológica de
Patologías Esqueléticas
• Enfermedad metabólica de los huesos-
fracturas patológicas
• Anormalidades congénitas de los huesos
• Hipovitaminosis D3, desbalances Ca: P-
osteopenia, osteomalacia

69. Evidencia Radiológica de
Patologías Esqueléticas
• Valgus- Deformidad Tibiotarsal
• Xifosis- escoliosis- lordosis
• Traumatismos
• Luxaciones

70. Aplicaciones de RX

73. Aplicaciones de RX de
Contraste

74. Tiempos de Tránsito de Bario

78. INFLAMACIÓN DEL BUCHE

79. Contraindicaciones y
Complicaciones de Endoscopía
• Obesidad
• Ascitis- perforación de sacos aéreos i entrada de liquido-
ahogamiento
• Inexperiencia- desconocimiento de anatomía aviar
• Trama de órganos
• Ruptura de vasos
• Peritonitis
• Enfisema subcutáneo
• Granulomas de sacos aéreos

80. Indicaciónes previas
• Ayuno de 3 horas
• Ayuno en rapaces – 24-36 horas
• Embrocar area quirúrgica
• Colocación de campos plasticos
autoadeheribles
• Anestesia apropiada

81. TERAPÉUTICA EN AVES

82. Terapia de soporte
y Urgencias Médicas
• Triada identica a mamíferos- adaptada a
Anatomía y Fisiología

84. Terapia de soporte
y Urgencias Médicas
• Tipos de emergencias
– Ave caquéctica, debilitada, desnutrida- mal manejo
– Ave recien adquirida- enfermedades infecciosas- clamydiosis y enfermedades
virales
– Neonatos- criados a mano- quemaduras de buche- deficiencias nutricionales;
enfermedades micóticas, bacterianas y virales (candidiasis, ingluvitis bacteriana,
poliomavirus)

85. Terapia de soporte
y Urgencias Médicas
• Aves al fondo de la jaula, disnéicas
– Exámen físico
– Pbas diagnósticas
– Deben ser realizadas escalonadamente, para
evitar estrés excesivo

86. Estabilización de Emergencia
• Observación cuidadosa- verificar
frecuencia respiratoria
• Colocar en terapia de oxigeno antes de
cualquier manejo
• Realizar entrevista puntual a propietarios
( dieta, recinto, temperatura, convivencia
con otras especies)

87. Estabilización de Emergencia
• Anestesia inhalada 0.25 % (0.25- 2%)
• Permite la colocación de catéter intraóseo
• Toma de muestras de sangre
• Estudio radiográfico

88. TERAPIA DE FLUÍDOS

90. Terapia de Fluídos
• Reto para el MVZ
• De la terapia de fluídos depende el éxito
del tratamiento
• Comprensión de fisiología renal aviar
• Valorar la conveniencia de realizar
transfusión sanguínea

91. Terapia de Fluídos
• Par de riñones ubicados en el espacio
retroperitoneal (fossa renal)
• Superficie ventral del sinsacro
• Ambos riñones separados por el saco
aereo abdominal

92. Terapia de Fluídos
• Riñón aviar dividido en 3 secciones
– Craneal-irrigado por arteria aorta
– Medial y Caudal- Irrigado por arteria isquiática
– Venas Renales- Portales “ anillo vascular”
• Vena isquíatica, seno venoso vertebral, vena mesentética caudal, vena
ileaca interna
• Aves paserinas- secciones caudales y mediales fusionadas; no
paserinas 3 secciones bien diferenciadas

95. Terapia de Fluídos
• Flujo sanguíneo a los riñones se controla
a través de las válvulas de las venas
ileacas
– Válvulas cerradas- 2/3 del flujo sanguíneo
procede del sistema portal
– Vávlulas abiertas- el 100% de la sangre
circulante pasará por los riñones

96. Terapia de Fluídos
• Válvulas abiertas
– 100% de la sangre pasa por los riñones
• Respuesta a la hipovolemia, shock, estimulación
simpática
• Cambios en la osmolaridad del plasma estimula la
secreción de ADH (hormona anitidiurética)

97. Terapia de Fluídos
• 2 tipos de nefronas
– Corticales – nefrona reptiliana
– Medulares- nefrona mamíferos
– En aves el riñón continua secretando acido
úrico, a pesar de que la filtración glomerular
se encuentra reducida- los niveles de acido
urico no se elevan en sangre, en un ave
deshidratada

98. Terapia de Fluídos
• Filtrado glomerular
– Regulado por la presion sanguínea
– Disminución del FG- consecuencia de
deshidratación
– Capacidad de aumentar FG si se incrementa
la expansión del fluído ( por TX oral o IV)

99. Terapia de Fluídos
• Choque hipovolémico
– Reducción de lujo sanguíneo desde ventrículo
– Baroreceptores carótideos y aorticos envían info a médulla
oblongata
– Estímulo simpático- vasoconstricción periférica- y aumento de
la frecuencia y fuerza cardiaca
– Liberación de renina y angiotensina II- potente vaso constrictor
– Angiotensina- estimula a la gl adrenal a liberar aldosterona y en
consecuencia se libera vasopresina

100. Signos de Choque
Hipovolémico en Aves
Fase
compensatoria
Aumento de presion sanguínea
Perdida de sangre de menos del 20%
Signos: aumento FC, Aumento de PS,
aumento TLLC
Necesaria la terapia de fluídos

101. Signos de Choque
Hipovolémico en Aves
Fase
descompensatoria
temprana
Pérdida de electrolitos >25-30%
Hipotermia, FC aumentada, Depresion
Disminuye presión sanguínea
Terapia de Fluídos Agresiva

102. Signos de Choque
Hipovolémico en Aves
Fase
Descompensatoria
Perdida >60%
Ataxia, coma
Pulso débil
Disminución severa de FC

103. Metas de la Terapia de Fluídos
1. Reemplazar las pérdidas
2. Evitar la sobrecarga de fluídos
3. Anticipar las pérdidas en curso y proveer las necesidades de
mantenimiento
4. Administrar electrolitos y corregir las anormalidades acido-base
5. Coadyuvar en el tratamiento
6. Intervención temprana

104. Efectividad de la Terapia de
Fluidos en aves
• Conocimiento sobre los
mejores productos para
producir el efecto deseado
– Conocimiento de fisiología aviar
– Respuesta a cristaloides y coloides
– Detección de déficit de fluidos y
electrolitos
– Corrección de anormalidades acido-base
– Ruta ideal de administración

105. Efectividad de la Terapia de
Fluídos en Aves
• Uso de cristaloides y coloides para uso en
mamíferos
• Extrapolación de información
• Osmolalidad del plasma de aves
ligeramente mas elevado en aves
comparativamente con mamíferos

106. Efectividad de Terapia de
Fluídos en Aves
• Osmolaridad vs osmolalidad
– OSMLL-conc de solutos por KG
– OSMRL- conc de solutos por litro
– En terminos fisiológicos ambos aumenta y
disminuyen de manera simultánea

107. Soluciones para Aves
• Cristaloides- hidratantes intersticiales
– De reemplazo y emergencia
• 0.9 Solución salina- De preferencia en traumatismos craneales
• Ringer Lactato- preferible en terapias de resucitación- por ser bufer- neutralizan
acidosis metabolica
• RL no debe ser administrada en pacientes con insuficiencia hepática, ya que el lactato
se metaboliza en el hígado
• Sol Salina Hipertónica- en Resucitación puede utilizarse- expansión rápida del volumen
intravascular- efecto parecido al del coloide- no utilizar en pacientes deshidratados

108. Soluciones para Aves
• Coloides
– Adicionados con moléculas que no pasan por
el lumen capilar
– Coloides sintéticos- OJO con cuagulopatias
• Hetarstarch
• Oxyglobin
– Coloides naturales
• Sangre
• Albumina
• Plasma

109. Soluciones para Aves
• Coloides
– Hetastarch aumenta el volumen sanguíneo 1.4 veces
– Combinaciones coloides + cristaloides evita la disminución del fluido
intersticial
– Hetastarch- recomendable en traumatismos encefálicos, trauma
pulmonar, disfunción miocárdica- aumenta en espació intravascular por
ósmosis
– Todos los coloides son isotónicos para el plasma de psitácidas y
pueden utilizarse sin problema
– Hetastarch- vida media es de 25 horas

110. Soluciones para Aves
• Bicarbonato de sodio
– Corrección de acidosis metabólica
– 1-2 mEq/kg por 30 minutos

111. Aplicación de Terapia de
Fluidos
• Solución salina 0.9% y RL
– SC, IV, IO,PO o por Cloaca
– IO- ulna distal- aves grandes; ulna proximal, tibiotarso proximal,
femur lateral en aves pequeñas, 1 ½ ¨¨ aguja espinal- iniciar un
agujas heparinizadas
– SC- se añade hialuronidasa para acelerar la absorción del fluído

113. Parametros de Deshidratación
• Aves psitácidas
– Turgencia de vena ulnar
– Elasticidad de la piel
– Humedad de la cornea
– PCV
• ** Psitácidas pequeñas- enrojecidas, ojos saltones
– Enfermedad, trauma- 5-10% de deshidratación-
deficit que se debe recuperar en 48-72 horas

114. Aplicación de Terapia de
Fluídos
• Fluidos de mantenimiento
– 100 ml / kg / 24 horas. En polluelos el doble
– RL (10 ml / kg) + Hetastarch (5 ml / kg)
– Infusión alternada de bolos aumenta PS
– Hetastarch unicamente 10-15 ml / kg, 1-4
bolos en 24 horas unicamente

115. Antes de la Terapia de Fluídos
• Colocar en paciente el:
– Incubadora
– Terapia de oxígeno
– Entibiar la solución
– Soluciones isotónicas en
TX SC

116. ENFERMEDADES Y SUS
TRATAMIENTOS

117. Medicina en Psitácidas
• Enfermedades nutricionales
– Malnutrición- Compromiso inmunológico- susceptibilidad a
infeccion y enfermedades sistémicas
– Metaplasia de Gl Salivales por Def de vitamina A asociadoa a
susceptibilidad aspergilosis
– Deficiencia de Riboflavina- en ninfas se observa acromatosis de
plumas primarias

120. Medicina en Psitácidas
• Enfermedades nutricionales
– Deficiencia de Vitamina A- en 112 especies
• 55% cacatuas; 48% loros grises africanos; 51% Amazonas- alteraciones de
las glándulas salivales = ALIMENTACIÓN CON GRAN CANTIDAD DE
SEMILLAS
• Las parasitosis por coccidias, Giardia y Capilaria predispone a deficiencia
de vitamina A
• Predisposición a enfermedades respiratorias- reducción de inmunidad
celular y humoral- coriza, sinusitis, problemas reproductivos, dificultad para
deglutir, , pica, pododermatitis plantar, gota

121. Medicina en Psitácidas
• Deficiencia de proteínas
– Deficiencia de arginina- plumaje pobre, líneas de estrés, muda
incompleta, crecimiento de cañones sin barbillas; plumas quebradizas
– Deficiencia de lisina- problemas de pigmentación del plumaje- plumas
verdes o azules se vuelven negras o amarillas
• Deficiencia de yodo- gota e hipotiroidismo
• Deficiencia de Ca, P, Vitamina D- Descalcificación de huesos
largos, fracturas patológicas, fracturas de pico, convulsiones
tetánicas, e higado graso
• Deficiencias de varios nutrientes- manifestaciones epidérmicas, seborrea,
descamación

122. Medicina en Psitácidas
• Enfermedades Virales
– Circovirus- “Enfermedad de pico y plumas”
– Ara, Amazonas, Cacatuas, Loro Gris africano
– Histopatología- cuerpos de inclusión intracitoplasmáticos en
macrófagos de células epiteliales foliculares; intranucleares en bolsa de
Fabricio
– Transmisión por contacto con partículas virales en heces, plumas
– SX- Crecimiento asimétrico de plumaje, deformación de plumas, falta
de crecimiento, retención de plumas, cambio de coloración

125. Medicina en Psitácidas
• Circovirus
– SX- Distrofia de la piel, pico deformado y necrótico, necrósis del
paladar
– DX- PCR
– Incubación- 21-25 días- hasta 18 méses
– DX diferenciales- adenovirus, trauma, septicemia, foliculitis
micótica, poliomavirus

126. Medicina en Psitácidas
• Circovirus- Manejo de aves enfermas
– Cuarentena de ejemplar
– Desinfección de instalaciones, fomites, utensilios
– Terapia de soporte
– No existe tratamiento

127. Medicina en Psitácidas
• Poxvirus
– Afecta a especies sudamericanas
– Amazona frente azul
– Transmitido por vectores (mosquitos), ectoparásitos
– Incubación- 10-14 días
– LX- Coriza y Lesiones oculares, enteritis difteroide, necrosis
miocárdica
– DX- Cytología, ELISA,
– DX Diferenciales, trauma, Tricophyton, Knemidocoptes

128. Medicina de Psitácidas
• Poxvirus
– Terapeutica- Lavado y retiro de tejidos necróticos e infectados,
lavados con clorhexidina
– Terapia de soporte- Terapia de Fluídos- inmunoterapia
– Vitamina A (10, 000- 25,000 IU/ 300 g, IM SID)
– Alimentación forzada
– Pomada ttopica de cloranfenicol

129. Medicina de Psitácidas
• Poxvirus- Prevención
– Vacuna Polluelos 10-14 días de edad- áreas con abundantes
mosquitos
– Control- Eliminación de vectores, higiene, medidas de higiene y
desnfección de medicos y cuidadores, lavado de manos
– Esterilizacion de materiales e instrumentos
– Destrucción de perchas contaminadas

130. Medicina en Psitácidas
• Adenovirus
– Variación en susceptibilidad por especie
– Ninfas, periquitos australianos, cacatuas, eclectus y Amazonas
– SX. Depresión, Anorexia, diarrea verdosa, hemorragia cloacal,
enteritis y hepatitis, pancreatitis, encefalitis, esplenitis,
conjuntivitis
– LX- Necrosis hepática, enteritis
– Histopatología- Cuerpos de inclusión intracitoplasmáticos
– DX. PCR, NX,

131. Medicina en Psitácidas
• Adenovirus
– No existen vacunas
– Virus resistente- muere con formol
– Terapeutica- Terapia de soporte- TF y Antibioterapia

132. Medicina en Psitácidas
• Enfermedad de Pacheco (Herpesvirus)
– Loro gris africano, cacatuas, ninfas, guacamayas, Amazonas,
Eclectus
– Virus eliminado por heces y secreciones faringeas
– Incubación. 3-14 días
– SX- muerte súbita, diarrea verde amarillenta, lipemia,
leucopenia, y anemia
– DX: PCR, aislamiento viral

133. Medicina en Psitácidas
• Enfermedad de Pacheco
– Vacunacion
– Desinfección con cualquier desinfectante
– 80 mg/kg de Acyclovir cada 8 horas

134. Medicina en Psitácidas
• Enfermedad Desgastante de las Psitácidas, Dilatación Gastrica
Idiopática
– Eclectus, Ara, Cacatua, Amazonas
– Probablemente Viral
– SX: perdida de peso, buen apetito, mala absorción y digestión, ataxia y
convulsiones, aumento en CPK, hipoproteinemia, hipoglicemia, heterofilia,
transito TGI acélerado
– DX: Dilatación del proventrículo, buche lleno y flácido
– DX: diferencial- Megabacteriosis, enteritis parasitaria, toxicosis por metales
pesados
– TX: terapia de soporte

135. Medicina en Psitácidas
• Poliomavirus
– Guacamayas de todas las especies
– Enfermedad que puede pasar subclínica
– Liberación del virus por heces
– SX: Muerte súbita, digestión lenta, depresión, diarrea,
regurgitación, hemorragias cutáneas, melena
– LX: hepatomegalia, esplenomegalia, hemorragias
subcutám¡neas generalizadas,

136. Medicina en Psitácidas
• Poliomavirus
– DX: PCR muestra de heces, amuento de
AST, LDH
– Vacunas

137. Medicina en Psitácidas
• Enfermedades micóticas
– Aspergilosis
– Hongo que prolifera en ambientes húmedos, oscuros y con poca
ventilación
– Esporas se inhalan o ingieren, penetran cascarón de huevos, y
la piel
– Inmunosupresión, antibioterapia, cotocosteroides, humo, gases
tóxicos, como factor predisponente

138. Medicina de Psitácidas
• Aspergilosis- Signos
– Inflamación de senos paranasales, descargas nasales y
bronquiales purulentas, disnea, respiración complicada,
movimientos esternales exagerados
– Perdida de peso, depresión, poliuria, polidipsia, torticolis y
ataxia, ascitis
– DX: RX, hematología, endoscopia, placas amarillento verdosas
en pulmones y sacos aereos

139. Medicina en Psitácidas
• Aspergilosis
– Tratamiento
• Reto
• Antibióticos
• Remoción quirurgica de placas
• Antifungicos: Anfotericina B 1.5 mg/kg TID 3-5 días IV; combinado con
Flucitosina 20-60 mg/ kg PO BID
• Lavados intratraqueales SSF- BID
• Nebulizaciones

140. Medicina en Psitácidas
• Candidiasis
– Prevalente en animales jóvenes
– Concomitante a GE
– Psitácidas pequeñas
– Inmunosupresión, antibioterapia prolongada, parasitosis, Def.
Vitamina A, falta de higiene,
– SX; placas blancas en cavidad or comisuras del pico ,hialitosis
exudados mucosos, conjuntivitis
– DX: SX, identificación de levaduras

141. Medicina en Psitácidas
• Candidiasis
– Tratamiento Nistatina 250, 000 UI/kg BID
– Ketoconazol- 10-30 mg/kg BID por 21 días
– Floconazol 2-5 mg kg por 7 dias SID

142. Medicina en Psitácidas
• Clamidiosis Clamydia tracomatis, Clamydia pneumoniae
– Microrganismo intracelular obligatorio
– Ornitosis, Psitacosis
– Zoonósis
– Cuerpos de inclusión- Leninthal-Cole- Lilie
– SX: estrés, infecciones, sinusitis, pérdida de peso,
deshidratación, neumonía
– DX: ELISA- secreciones ojos, heces

143. Medicina en Psitácidas
• Clamidiosis
– Tratamiento
• Clortetraciclina, doxiciclina, oxitetraciclina
• Evitar cambios de temperatura, pesaje diario, no administrar complejos
vitaminicos con calcio
• En 1 semana de tratamiento se observa mejoría
PX- No adquirir animales con sx respiratorios, medidas de higiene
para evitar contagios, desifeccion de jaulas y materiales (cloro)

144. Ecto y endoparásitos en
aves de ornato
Dra Rosalía Pastor Nieto
PhD. DVM

145. ENDOPARÁSITOS

146. Plasmodium spp
• Sinónimos:
Palaudismo de las
aves, Malaria.
• Infección causada
por la acción de
varias especies del
género Plasmodium
en eritrocitos y
células endoteliales.
• Mayor predisposición
en pollos, guajolotes
y palomas.
Etiología
• Plasmodium gallinaceum
• Plasmodium juxtanucleare
• Plasmodium durae
• Plasmodium relictum
• Plasmodium matutinum
• Plasmodium griffitshi
q Presencia de
Plasmodium juxtanucleare en
México en el estado de
Chiapas.

147. Mecanismo de acción
Los merozoítos
infectan los
glóbulos rojos.
Se reproducen
asexualmente
dentro de ellos.
Los glóbulos rojos
se rompen
liberando los
merozoítos.
Éstos infectan a
otros glóbulos de
manera sistémica.
HD: mosquito
Culex y Aedes.
No tiene gran importancia
económica debido a su baja
mortalidad.

148. Signos de Plasmodium
juxtanucleare
• Poca o ningún
grado de fiebre
• Anemia
• Ataxia
• Diarrea

149. Tratamiento
Cloroquina
• Dosis: 1 mL por cada 20 Kg de peso.
• Vía de administración: Intramuscular o intravenosa.
• No actúa contra etapas tisulares que no hayan invadido al eritrocito.
• Concentra su acción hasta 25 veces más en los eritrocitos que han sido
parasitados.
• Tiempo de retiro: 5 días antes del sacrificio.
Pirimetamina
• Dosis: 0.3 mg/kg
• Vía de administración: en agua de bebida.
• Absorción lenta.
• Vida media de 1.5 días.
• No administrar a aves productoras de alimentos para el consumo

150. Leucocytozoon spp
• Infección causada
por la acción de
protozoarios del
género
Leucocytozoon en los
leucocitos, eritrocitos y
otros tejidos.
• Mayor predisposición
en patos, gansos,
guajolotes y pollos.
Etiología
• Leucocytozoon simondi
• Leucocytozoon smithi
• Leucocytozoon caulleryi
• Leucocytozoon sabrazesi
• Leucocytozoon
marchouxi
Leucocytozoon simondi

151. mortalidad a causa
de :
ØLeucocytozoon
caulleryi à Gallinas
ØLeucocytozoon
smithi à Pavos
ØLeucocytozoon
simondi à Patos y
gansos

152. Lesiones
Ø Esplenomegalia
Ø Hepatomegalia
Ø Heterofilia
Ø Coagulación retardada
Ø Destrucción de fagocitos y células inflamatorias
Ø Necrosis
Los
animales
recuperados
permanecerán
como
portadores.

153. Acción patógena de los
parásitos
•Utilizan el citoplasma de
las células como alimento.
Acción
expoliatriz
• Presión sobre las células vecinas al
desarrollarse los esquizontes y
megaloesquizontes. Acción mecánica
obstructiva a nivel capilar en pulmones.
Acción
mecánica
•Al romper la célula para
liberar merozoitos.
Acción
traumática
Vectores
à mosquitos
del
género
Simulium
y
Culicoides.

154. Tratamiento
v No se conocen compuestos efectivos.
Prevención
vControl
de
los
vectores
transmisores:
mosquitos
de
los
géneros
Simulium
y
Culicoides.

155. Capillaria spp
• Sinónimo: Nematodosis
gastroentérica
• Infestación causada
por la acción de varias
especies del género
Capillara en esófago,
ingluvis, intestino
delgado y ciego.
• Mayor predisposición
en pollos, guajolotes,
palomas, patos y
gansos.

156. Capillaria contorta Mucosa de la boca, esófago e ingluvis.
Capillaria caudinflata Mucosa del intestino delgado.
Capillaria bursatalata Mucosa intestino
delgado.
Capillaria obsignata Mucosa del intestino
delgado.
Capillaria anatis Ciego e intestino delgado.
Capillaria montevidensis Ciego.
Capillaria uruguayensis Ciego e intestino grueso.

157. Forma
de transmisión
• La transmisión varía según la especie.
• Hay infestaciones con ciclo directo y otras con ciclo
indirecto en que intervienen las lombrices como
huéspedes intermediarios.
• La transmisión se realiza por el suelo.
• En algunas especies con ciclo directo, en otras con ciclo
indirecto con participación de lombrices.

158. Epidemiología
• Los huevos socierto grado de humedad.
• n muy resistentes a las condiciones del
medio, pudiendo resistir más de un año con
• Las lombrices permiten que las larvas
permanezcan viables por periodos
prolongados en las capas profundas de la
tierra.
• El calor y los rayos solares directos los
destruyen.

159. Signos
q Emaciación
q Inapetencia
q Postración
q Algunas veces anemia en un alto grado
q Si hay lesiones en esófago e ingluvis, habrá disfragia
(dificultad para la deglución)
q Pavos: actitud de pingüino, mueren en estado
caquéctico.
q Diarrea hemorrágica, conteniendo restos epiteliales
y moco.
En animales jóvenes la muerte ocurrirá rápidamente un lapso de 8 a 10 días
con un estado de enflaquecimiento extremo y anemia importante.

160. Tratamiento
Metiridina
Dosis: 150 a 200 mg/kg.
Se absorbe rápidamente
por vía oral o parenteral.
En 3 horas se alcanza la
concentración plasmática
máxima.
Provoca un bloqueo en la
acción de acetilcolina y en
la transmisión del impulso
nervioso al nivel de la
placa motora, con lo que
paraliza al parásito
Efectivo contra C.
caudinflata, C. obsignata,
C. contorta.
Tiabendazol
Dosis: 44 mg/kg.
PO
Efectivo contra forma
juvenil pero no contra
los adultos.
Es muy eficaz contra
los parásitos en
forma adulta.
Amplio margen de
seguridad: todas las
edades, animales
gestantes y
debilitados.
Tiempo de retiro de
21 días.
Levamisol
En agua en dosis de 36 ó 48
mg/kg permite eliminar
arriba del 95% de las formas
adultas y estadios larvarios.
Antihelmíntico de amplio
espectro para el control de
formas larvarias y adultas de
parásitos pulmonares y
gastrointestinales.
Estimula los ganglios
nerviosos del parásito,
produciendo una
contracción permanente.
Al ser administrado vía
intramuscular o subcutánea,
la biodisponibilidad será tres
veces mayor que por vía
enteral.

161. Tetrameres americana
• Nemátodo hematófago.
• Localización: Glándulas del proventrículo.
• Presente en animales jóvenes y adultos.
• Signos: Pérdida de peso, diarrea, tristeza (excesiva
población), hematomas en serosa.

162. Ciclo de vida
*Presente en todo
México. En zonas con
clima templado y
lluvias.
-Macho posterior a la
fecundación, se
desprende de hembra.
Difícil de encontrar.

163. Medidas preventivas.
• Incidencia enfermedad: 30%
• Eliminar huéspedes intermediarios
(chapulines y cucarachas.
• Aves en confinamiento.
• Separar animales jóvenes de adultos.

164. Tratamiento.
• Dx: Observación (Complicado).
-Tiabendazol/Foldán: 0.1% alimento
semana. Ovicida.
por 1
-Mebendazole (amoebriz,mebeciclol): 0.1%
alimento por 1 semana.
-Dizofenol: 8mg/kg de peso durante 3 días.
-Imidazotiazoles: Tetramisol: 0.3% en agua por
3 días. Adulticidas.

165. Farmacodinamia
Inhiben enzima fumarato-reductasa
(mitocondrias) de algunos helmintos e
inhibe ensamblaje de microtúbulos
(inhibición de acetilcolina) = desalojo de los
gusanos.

166. Programa control.
• Tetramerosis se confunde con otros padecimientos.
• Desparasitación cada 3 meses.
• Antes de época de lluvia (humedad).
• Dar preferencia a los animales adultos.

167. Haemoproteus columbae
v Hemoproteosis (Malaria de
las Palomas)
v Hemoprotozoario
v Localización: alrededor del
núcleo de glóbulos rojos
v P a l o m a s j ó v e n e s :
pérdida de peso, baja
condición física y muerte.
No zoonosis

169. Pseudolynchia maura
Especies más susceptibles:
• Pichones
• Palomas adultas
*Pp. aves menores de 6
meses
Falta de higiene en palomar
(acumulación de heces)
Medio adecuado para crecimiento de la
mosca

170. Pseudolynchia maura

171. Signos clínicos:
• Fiebre
• Palidez
• Pérdida del apetito
Diagnóstico:
• Análisis sanguíneo
• En necropsia
Frotis
*sangre obtenida de vena
radial de ala
Neumonía, congestión, hepatomegalia,
esplenomegalia
Tramiento:
v Emtryl (Dimetridazol 40% ) 1gr/lt.
de agua durante 5-10 días.
o Polvo sol. agua
o Nitroimidazoles

172. Prevención y control
Limpieza
Eliminación de heces
Nidos cada 3 semanas
mínimo
Fumigar los nidos
Limitar reproducción P.
maura

173. Sternostoma sp.

174. Características
• En traquea y sacos aéreos
• Afecta en su etapa adulta
• Ciclo de 2-3 semanas

175. Ciclo
• Expulsado con la comida de los padres a la cría
• En la cría se empiezan a reproducir
• Se alimentan de exudados
• Machos y hembras adultos

176. Especies afectadas
• Canarios
• Gorriones
• Periquitos australianos
• Pinzones
• Tordos
• Estorninos
• Loros

177. Signos
• Perdidas de capacidad
de canto
• Disnea
• Plumas erizadas
• Perdida de peso
• Exudado mucoso
• Neumonía
• Pericarditis
• Tristeza
• Perdida de apetito
• Muerte

178. Tratamientos
• Triclorfon
• Levamisol

179. • Levamisol: estimula a los ganglios nerviosos
produciendo contracción permanente, esto
produce parálisis de los nematodos .

180. Medidas de prevención
• Se recomienda el confinamiento de las aves para
evitar que ingieran huéspedes intermediarios.

181. Protozoario flagelado, de distribución mundial, que afecta a cualquier
tipo de ave.
Las aves son susceptibles todo el tiempo y no hay una relación entre la
edad y la probabilidad de contraer Trichomonas.
Trichomona gallinae

182. Ciclo de Vida

183. § Contacto con aves con Trichomona (Silvestres o de Ornato),
§ Contacto con heces o saliva
§ consumo de agua contaminada o aves infectadas(Aves
cazadoras).
Signos
Desde inflamación, hasta necrosis en cavidad oral, esófago y buche. Las lesiones provocan
regurgitación, letargia, anorexia poliuria y/o
polidipsia y a corto plazo la muerte.

184. Diagnostico
Microscopia directa a través de frotis húmedos
tomando muestras de las áreas lesionadas.

185. Metronidazol, con dosis de 10 mL por litro de agua u 8 gotas en
un bebedero de 50 mL de capacidad, durante 10 días.
También se pueden administrar 500 mg de Metronidazol (si la
presentación no es liquida) mezclados en 1.25 litros de agua del
bebedero.
Tratamiento

186. Se introduce entre las cadenas de ADN inhibiendo la síntesis de
ácidos nucleicos en protozoarios. No induce resistencias.
Se puede usar a cualquier edad, pero a dosis altas provoca
diarrea, estomatitis y vomito, por lo que se debe dosificar bien,
para no confundir los signos con los efectos colaterales.

187. Aplicar Metronidazol durante 1 semana a dosis terapéutica cada
uno ó dos meses.
Para evitar infestaciones o reinfestaciones se deben aislar a las aves
del contacto con aves del exterior.
Cambiar diario el agua, además debe estar limpia.
Y limpiar cada 2 días al menos, la jaula donde habiten las aves.
Profilaxis

188. ECTOPARÁSITOS

189. Cnemidocoptes spp
Acaro, que afecta a todas las aves, pero principalmente a los
individuos neonatos, viejos y a los periquitos.
Su distribución es mundial.

190. Ciclo de vida• El ciclo de vida dura entre 10 y 14 días.
• Se lleva todo el ciclo en el huésped.

191. v Mala o nula higiene de la jaula o del entorno.
v Temperaturas altas.
v Contacto directo con animales ya parasitados.
v Presencia de objetos que permitan su sobrevivencia fuera de las
aves, como alfombras, cobijas, ropa sucia. (Generen calor y
permitan su ocultación)

192. Ø Dermatitis
Ø Prurito en pico, membrana cérea, patas, y esfínter cloacal.
Ø Hiperqueratosis
Ø Distrofia de pico, uñas, piel y patas
Signos

193. Diagnostico
ü Raspado cutáneo de las áreas con prurito y
observación al microscopio

194. El mas eficaz es tópico, con Ivermectina diluida al 0.01% en
propilenglicol.
Las lesiones se frotan con un hisopo de algodón impregnado.
• MECANISMO DE ACCIÓN
• Provoca la inmovilización de los parásitos induciendo una
parálisis tónica de la musculatura.
Tratamiento

195. • Parálisis mediada por la potencialización y/o activación directa
de los canales de cloro sensibles a la ivermectina.
• Estos canales están presentes sólo en los nervios y células
musculares de los insectos, crustáceos y otros invertebrados y una
vez potencializados permiten un aumento de la permeabilidad
de la membrana celular a los iones de cloro.
• Hiperpolarización de los nervios y células musculares, resultando
en parálisis y en la muerte del parásito.

197. ü Buena higiene de jaula, y de la casa.
ü Aspirar la casa
ü Proveer de agua a las aves para su limpieza.
ü Garantizar una buena ventilación del área donde habiten las aves,
sin llegar a temperaturas frías.
ü Evitar el contacto con aves silvestres.
Profilaxis

198. Ornithonyssus
sp.

199. Características
• Chupador
• Distribución mundial
• Pasan toda su vida en el hospedador
• Están en la plumas
alrededor de la cloaca
• Puede transmitir viruela aviar, Newc
Pasteurella sp.
astle,

201. Especies afectadas• Canarios
• Gorriones
• Palomas
• Gallinas
• Guajolotes

202. Signos• Prurito
• Tristeza
• Anemia
• Caquexia
• Bajo consumo

203. Tratamiento
Triclorfon 96% Coumaphos 50% Popoxur1%

204. • Caumaphos: se hidroliza lentamente en
condiciones alcalinas, amplio rango de artrópodos,
insecticida selectivo
• Triclorfon: es un insecticida, cuyo mecanismo de
acción se basa en la inhibición de la
acetilcolinesterasa

205. Medidas de prevención
• Lavar y desparasitar perchas , jaulas y paredes

206. Echidnophaga gallinacea
Afecta aves de cualquier edad.
Genera:
•Anemia
•Engrosamiento de piel
•Prurito en cara, escoriaciones
•pérdida de peso
•Muerte (jóvenes/ pequeños)
No zoonosis.

207. Ciclo de vida
Presentes en todo México, lugares
sucios y húmedos (larvas). Inviernos
=estacional.
Hembras grávidas
quedan fijadas al
hospedador------se
incrustan en piel.
Antes de la copula de
los machos y hembras
son activos.

208. Medidas preventivas
• Limpieza en lugar de las aves.
• Evitar entrada de animales parasitados.
• Eliminar humedad de las camas.
• Desinfectar piso de casetas y paja de
cama:
DDT (Dicloro Difenil Tricloroetano) 3%
Lindano 2%
Malation 1-2%
Ruda (nido).

209. Tratamiento
• Diagnóstico: Recolección con éter-alcohol
• Individual: mojando cara en baño insectici
• Baños inmersión: diluciones 1:1000 a 1:5000
• INFESTACIONES: Cada 3 meses.
da.
Principio
ac-vo
Nombre
comercial
Triclorfon
96%
Neguvon
polvo
Ceavex
80
Ps
Coumaphos
50%
Asuntol
polvo
Negasunt
polvo
Propoxur
15%
Bolfo
líquido
Bolfo
polvo
Dicrotofos
100%
Ektafos
100
Bidrin
85
Malation
MalaOon
S
B
50
Ovide

210. Farmacodinamia
• Basan su acción tóxica en su efecto
inhibidor de la enzima acetilcolinesterasa,
ocasionando aumento de la acetilcolina,
origina una tetanización y la muerte.
• Nivel sinapsis.

211. Desmanyssus gallinae
(Ácaro rojo)
• Ectoparásito que afecta a
la mayoría de las aves
tanto domésticas como de
ornato
• Su importancia radica en que
produce retardo en el
desarrollo, baja productividad

212. Ciclo Biológico
1. Los huevecillos se depositan
en la paredes o perchas
2. Huevecillos – larvas
3. Larvas – Ninfas
4. Ninfas – Machos o hembras
5. Hembras -- huevecillos
Ácaros se alimentan de la sangre del
huésped desde el estado de ninfa

213. Epidemiología
• Se presentan frecuentemente en gallineros donde
los pájaros silvestres entran con facilidad
• El clima cálido constante, es propicio para que
exista una población siempre en aumento
de parásitos
• En lugares donde el invierno es bastante frío, la
población disminuye notablemente

214. Epidemiología
Las especies más susceptibles a acarosis son la
mayoría de las aves, tanto domésticas como de
ornato:
•Gallinas
•Guajolotes
•Palomas
•Gorriones
•Canarios

215. Signos Clínicos
Caso leves:
•Prurito periódico
• Infestaciones
Masivas
• Tristeza
• Anemia
• Caquexia
• Bajo en el consumo
• de alimento

216. Tratamiento
Se
pueden
uOlizar
en
baños
de
inmersión
en
diluciones
1:1000
a
1:5000
cuando
la
infestación
no
es
grave.
Si
se
elige
esta
forma
de
aplicación
se
recomienda
que
e
haga
en
un
día
soleado
para
evitar
trastornos
respiratorios
Principio
ac-vo
Nombre
comercial
Triclorfon
96%
Neguvon
polvo
Coumaphos
50%
Asuntol
polvo
Propoxur
15%
Bolfo
polvo
MalaOon
MalaOon
S
B
50

217. Neguvon polvo
• Organofosforado que mata los insectos y
parásitos tanto por ingestión como por contacto
al penetrar a través de la cutícula de
los mismos.
• Atraviesa la piel ejerciendo acción sobre los
ectoparásitos por fuera (por contacto) y desde
dentro por medio de la sangre, linfa, etc.
(por ingestión).
• La concentración máxima de Neguvon polvo
en la sangre, piel y resto del cuerpo se produce
a las dos o tres horas después de la aplicación,

218. Asuntol polvo
• Garrapaticida y ectoparasiticida
de amplio espectro, del grupo de
los organofosforados
para consumo humano dentro de los
10 días siguientes a la
finalización del tratamiento
• Tiempo de retiro: los animales
tratados no se deben sacrificar

219. Menopon gallinae
• En México, la infestación por piojos se presenta con
mayor frecuencia dentro de las aves explotadas
comercialmente.
• Es el piojo más frecuente en aves comerciales

220. Ciclo biológico
1. Hembra pone los huevecillos
(liendres) en la base de las
plumas
2. Los piojos parasitan
permanentemente al huésped

221. Epidemiología
Se presenta en lugares con:
•Mala iluminación
•Condiciones inadecuadas de limpieza
•Fácil acceso de pájaros silvestres (granjas)
•Morbilidad: llega a ser un 100% en algunas granjas,
aunque en general el problema no es grave
•Mortalidad: rara a menos que haya una infestación
masiva sobre aves jóvenes

222. Signos Clínicos
• Prurito continuo
• Las plumas se ven incompletas
• En casos graves puede haber tristeza

223. Tratamiento
Principio
ac-vo
Nombre
comercial
Triclorfon
96%
Neguvon
polvo
Coumaphos
50%
Asuntol
polvo
Propoxur
15%
Bolfo
líquido
Dicrotofos
100%
Ektafos
100
Malation
Malation
S
B
50
Se
pueden
uOlizar
en
baños
de
inmersión
en
diluciones
1:1000
a
1:5000

224. Argas persicus
(Garrapata de las aves)
v Hematófagas
v Blanda (no posee escudo dorsal)
v Gris
v 1 cm
o Cólera aviar
Ø Hematofagia 20’-30’ continua, rápida
Provocan:
• Anemia
• Prurito
• Dolor
• Eritema
• Costras
o Pérdida de peso
o caída en la producción de
huevos
o decaimiento, depresión,
o toxemia
o parálisis
No zoonosis

226. Especies susceptibles:

227. Ciclo biológico
• Huevecillos en grietas
•
•
200-300 huevos
Ciclo 6-10 meses
Ninfas Adultos-8 patas

228. Ø Signos clínicos:
§ Depresión
§ Baja de consumo de alimento
Ø Tratamiento: Bravo (Permetrina)
(amplio espectro, más efectivo)
• 0.5 mL alrededor de la cloaca
Insecticida neurotóxico:
• actúa por contacto
directo con el parásito
provocándole la muerte.
Ø Medidas de prevención y control:
§ Fumigación: clordano 2%,
Ø Diagnóstico: observación

229. • Samour, J. Medicina aviaria. 2° ed.Estados
• Unidos: Elsevier, 2010.
• Sumano, H. y Gutiérrez, L. Farmacología clínica
en aves. 3° ed. México: Facultad de MVZ,
UNAM, 2008.
• Moreno. Enfermedades parasitarias de las aves.
• 2° ed. México: Facultad de MVZ, UNAM, 1989