Este documento resume un estudio sobre los cambios en la calidad del suelo asociados con la implementación de técnicas de agricultura ecológica en plantaciones de café bajo diferentes coberturas en Perú. El estudio evaluó parámetros fisicoquímicos, abundancia de microorganismos y actividad enzimática del suelo en parcelas de café con coberturas de plátano, mandarina y una mezcla de cítricos. Se aplicaron técnicas como compostaje, biofertilizantes, cultivos de cobertura y abonos ver

1. UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE HUAMANGA
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
ESCUELA PROFESIONAL DE AGRONOMÍA
Tema: Cambios en la Calidad del Suelo Asociados a la Implementación de Técnicas de
Agricultura Ecológica en Plantas de Café Bajo Diferentes coberturas
Curso:
Docente:
 ORIUNDO CISNEROS, JUAN CARLOS
 PRADO HINOSTROZA, MARTIN
 YARASCA EVANAN EMERSON
 HUAMAN HUARCAYA YURI
 QUISPE CUBA FREDY
 HUARANCCAY DE LA CRUZ ALCIDES
 ZAMORA MENDEZ ROGER
 LLALLAHUI HUAMANI LINA
AYACUCHO – PERÚ
2022
II Ciclo de actualización profesional 2022

2. Según muchos autores definen el concepto de agricultura ecológica (AE) como una
diferencia ´muy significante al respecto de la Revolución verde lo cual hoy en día
podríamos hablar de la agricultura convencional, en la agricultura convencional se
practica el uso extensivo de fertilizantes químicos, maquinaria pesadas lo cual
conlleva al deterioro ambiental y la inestabilidad eco sistémico, sin embargo en la
Agricultura Ecológica (EA se practica técnicas favorables para el medio ambiente
como la rotación de cultivos, Uso de Abonos verdes, los biofertelizantes y los
microorganismos eficientes manteniendo una diversidad de especies.
La agroecología también es una de las practicas amigables con en medio ambiente y
dentro de AE, Por ello dentro del presente Articulo tiene por objetivo de evaluar
Cambios de la calidad de suelo asociados a ala aplicación de técnicas de
ecológica en plantas café bajo diferentes coberturas en San José de Pare-
los diferentes coberturas son Plátano, Mandarina, y una mezcla de cítricos.
INTRODUCCION

3. Según la Comisión Nacional para el conocimiento y uso de la biodiversidad
(CONABIO, 2015) Las practicas de EA Como las diferentes coberturas generan
Beneficio al Suelo, Según Ruelas (2014) El café de sombra genera mayor biomasa,
mas nutrientes del suelo, menos malezas y insectos dañinos, y mantiene la
humedad, como otras coberturas también generan beneficio al aportar la materia
orgánica al suelo por las hojarascas.
A pesar de las practicas EA que son beneficiosos para el suelo aun no existen
estudios, sobre el cambio ocurre en los indicadores del suelo. Según este articulo
considera la practica técnicas con cobertura en café de EA genera un cambio de
manera positivo incrementando algunos niveles de nutrientes como en contenido
de fosforo, , carbono orgánico , nitrógeno, como también el aumento de
microorganismos hongos y bacterias.

4. MATERIALES Y MÉTODOS
DESCRIPCIÓN DEL ÁREA DE ESTUDIO
• Esta investigación se llevó a cabo en una zona rural ubicada en el municipio colombiano
de San José de Pare, en el departamento de Boyacá, a una altitud de 1545 msnm y
temperaturas promedio de 13 y 24 ºC, con las siguientes coordenadas geográficas: 6º01.84
'N de longitud, 73º31' de latitud O. Este municipio está ubicado en la República de
Colombia, a 217 km al norte de Bogotá DC.
• Diseño experimental y muestreo de suelo
• Como se muestra en Figura 1, el muestreo se realizó seleccionando tres parcelas de café
(doce plantas de café en cada parcela) bajo tres coberturas diferentes: plátanos (CP),
mandarinos (CM) y tres cítricos (CC) (mandarina, limón y naranja).).
• Las técnicas de EA aplicadas fueron: 1) humus de lombriz (lombriz de California) (Milanésy
otros., 2005); 2) biofertilizante, obtenido de la mezcla de leguminosas, melaza, levadura,
chicha, gallinaza, gallinaza, ceniza de madera y leche (Trejo-Escareñoy otros., 2013); 3)
microorganismos eficientes (EM) a partir de una mezcla de hojarasca, sémola de arroz,
melaza y leche (Callisaya & Fernández, 2017); 4) estiércol de aves ( Gonzálezy otros., 2013);
5) Abonos verdes de trébol rojo (Trifolium pratense) (Fonseca-Lópezy otros., 2020 ); y 6)
cultivos de cobertura.

5. Las técnicas de ea aplicadas fueron: 1) humus de lombriz (lombriz de california)
(Milanés y otros., 2005); 2) biofertilizante, obtenido de la mezcla de leguminosas,
melaza, levadura, chicha, gallinaza, gallinaza, ceniza de madera y leche (Trejo-Escareño
et al., 2013); 3) microorganismos eficientes (em) a partir de una mezcla de hojarasca,
sémola de arroz, melaza y leche (Callisaya & Fernández, 2017); 4) estiércol de aves
(González et al., 2013); 5) abonos verdes de trébol rojo (trifolium pratense) (fonseca-
López et al., 2020 ); y 6) cultivos de cobertura(Geisser et al., 2017). A medida que se
fueron aplicando las técnicas de EA, se recolectaron muestras de suelo bimestralmente
(meses 0, 2, 4, 6, 8, 10) durante diez meses, para un total de 6 momentos de muestreo.
cada parcela proporcionó tres muestras compuestas por 10 submuestras diferentes, las
cuales fueron tomadas en zigzag de los 20 cm superiores del suelo. las muestras de
suelo fueron luego homogeneizadas, etiquetadas y almacenadas en bolsas a diferentes
temperaturas según su finalidad: las bolsas para análisis fisicoquímicos a temperatura
ambiente, las de análisis de abundancia de microorganismos a 4 °c y las de actividades
enzimáticas a -20 °c..

6. FIGURA 1
Metodología para la aplicación de las técnicas de EA a partir de la toma de muestra de suelo

7. PARÁMETROS FISICOQUÍMICOS DEL SUELO
Todas las muestras se sometieron a análisis fisicoquímicos de acuerdo con los
siguientes métodos:
a. PH (potenciómetro):1:1, suelo: agua. (Bernaly otros., 2014).
b. Humedad (método gravimétrico): consiste en tomar una muestra de suelo,
pesarla antes y después del secado y calcular su contenido de humedad. La
muestra de suelo se considera seca cuando su peso permanece constante a
una temperatura de 105 ºC (IDEA, 1994).
c. Fósforo (Bray II):el fósforo del suelo se extrae con 25 ml de la solución
extractora de HCl 0.1N y NH F 0.03N, agitada, se filtra y el fósforo disponible
se cuantifica colorimétricamente por reacción con ácido cloromolíbdico y
cloruro estannoso para formar un complejo azul cuya intensidad es
proporcional a la cantidad del elemento presente (García & Ballesteros, 2006).

8. PARÁMETROS FISICOQUÍMICOS DEL SUELO
d. Carbón orgánico (Walkley-Black):este método se basa en la oxidación del carbono orgánico
del suelo mediante una solución de dicromato de potasio (K2Cr O ) y el calor de reacción
generado al mezclarlo con ácido sulfúrico concentrado (H SO ). Después de un tiempo de espera,
se diluye la mezcla, se agrega ácido fosfórico para evitar interferencias de Fe3+ y se titula el
dicromato de potasio residual con sulfato ferroso (FeSO 1N. pH 7) (Velay otros., 2012).
e. Nitrógeno (Kjendahl): que consta de tres etapas digestión, destilación y titulación, donde la
muestra se deja en digestión con ácido sulfúrico puro, luego se utiliza una solución absorbente
como el ácido bórico para la etapa de destilación y finalmente se realiza una titulación con ácido
sulfúrico 1N ( Jarquíny otros., 2011).

9. Abundancia de grupos funcionales de microorganismos.
Para determinar la abundancia de grupos de microorganismos funcionales,
realizamos sembrado y conteo en placa en diferentes medios, para luego
cuantificar las unidades formadoras de colonias (UFC) por gramo de suelo seco.
Para la siembra y conteo de hongos y bacterias solubilizadoras de fosfato se
utilizó el medio Sundara y Sinha modificado (Sundara y Sinha, 1963). El
procedimiento se realizó incubando las bacterias a 28 ºC por 40 h y los hongos a
20 ºC por seis días; para bacterias y hongos celulolíticos se utilizó un medio cuya
única fuente de carbono era carboximetilcelulosa al 1%, donde las bacterias se
incubaron a 28 ºC durante 48 h y los hongos a 20 ºC durante seis días
(Avellaneda-Torresy otros., 2014); y, por último, para las bacterias fijadoras de
nitrógeno se utilizó el N-free Rennie medio (Rennie, 1981) y recuento de UFC en
placa manteniendo la temperatura a 28 ºC durante 48 h (Avellaneda-Torresy
otros., 2020).

10. Abundancia de grupos funcionales de microorganismos.
Actividad enzimatica Con el propósito de evaluar las actividades enzimáticas, se
consideró la asociación con los ciclos del fósforo, carbono y nitrógeno. Para el ciclo
del fósforo, el estudio determinó actividades de fosfatasa ácida y alcalina, las cuales se
cuantificaron determinando el p-nitrofenol que se liberó tras la incubación con
solución de pnitrofenil fosfato durante 1 ha 37 ºC. El p-nitrofenol se determinó
fotométricamente a 400 nm. Para el ciclo del carbón, la actividad de β-glucosidasa se
determinó cuantificando el p-nitrofenol liberado después de la incubación con una
solución de pnitrofenil glucósido durante 1 h, a 37 ºC. El pnitrofenol se determinó
fotométricamente a 400 nm. En cuanto al ciclo del nitrógeno, se determinó la
actividad de la ureasa,Avellaneda-Torresy otros., 2018). Finalmente, el estudio
determinó la actividad de la proteasa incubando las muestras de suelo durante 2 h a
50 ºC utilizando caseína como sustrato (Caballero Vanegasy otros., 2018) tras
incubación durante 2 h a 50 ºC y pH 8,1. En este método, los aminoácidos liberados
reaccionaron con el reactivo de Folin-Ciocalteu en una solución alcalina para formar
un complejo azul que se evaluó colorimétricamente (700 nm) ( Avellaneda-Torresy
otros., 2018).

11. Análisis estadístico
Determinar si hubo diferencias significativas en los parámetros fisicoquímicos, la
abundancia de grupos funcionales de microorganismos y las actividades enzimáticas a
lo largo de los meses de aplicación de técnicas de EA en los suelos con cafetales bajo
tres cubiertas diferentes (CP
, CM y CC), llevamos a cabo análisis de datos univariados y
multivariados. Para este efecto, los supuestos de normalidad y homogeneidad de
varianzas se verificaron mediante las pruebas de Kolmogorov -Smirnov y Barlett,
respectivamente, seguidas de las pruebas de Kruskal-Wallis con unposthoc Análisis de
Mann-Whitney para determinar diferencias significativas. Las pruebas se realizaron
con el paquete Stats (Equipo central R, 2019). También se realizó un análisis de
componentes principales (PCA) utilizando el paquete factoextra (Kassambara y
Mundt, 2020). Los análisis se realizaron con el software estadístico R, versión 3.5.3.
(Equipo central R, 2019).

12. Resultados
Parámetros fisicoquímicos Según los resultados presentados en tabla 1, parece que, en
promedio, podemos encontrar un 29.3% para CP en el Ɵg, lo que demuestra que es
un suelo con buen contenido de humedad, así como un promedio de 37.4 y 8,7%
para CM y CC, respectivamente. Esto quiere decir que, según su contenido de agua,
es un suelo aprovechable. En general, el pH en registra valores fuertemente ácidos
entre (5.0 y 5.7), indicando así que algunos de los elementos que se encuentran
disponibles en el suelo no tienen niveles adecuados. Por otro lado, encontramos una
CIC promedio de 26.4 meq.100g-1para CP y 38,7 meq.100g-1para CM, lo que indica
que es un suelo CIC medio, mientras que 41.4 meq.100g-1para CC implican un suelo
con alta CIC. En cuanto al contenido de fósforo se obtuvo un promedio de 30,6%
para las tres parcelas, lo que indica que el fósforo en el suelo en estudio se encuentra
en niveles altos. Se observó que los niveles de carbono eran altos, pues oscilaban
entre 4,3 y 8,7%.

13. Finalmente, los valores de contenido de nitrógeno fueron altos (entre 0,4 y 0,9%). De
acuerdo atabla 1, la Ɵg muestra fluctuaciones a lo largo de los meses con cada uno de
los revestimientos. Sin embargo, no son estadísticamente significativos. Además, el pH
de los suelos no cambió significativamente para los tres recubrimientos evaluados
como los meses transcurridos de la aplicación de la técnica EA. Además, no hubo
cambios significativos en la CEC durante este período. Para el carbono orgánico se
observó un aumento significativo en los tres recubrimientos. El mismo comportamiento
se observó en el caso del fósforo, donde se evidenció un incremento significativo en
cada uno de los recubrimientos, con el mayor incremento estadístico en el mes 10 tanto
para el fósforo como para el carbón. No hubo cambios significativos para el nitrógeno
durante los meses de aplicación de las técnicas de EA.

14. TABLA 1
Parámetros fisicoquímicos por recubrimientos y tiempo de aplicación de técnicas de ea en meses:
humedad gravimétrica ( ɵg), ph, capacidad de intercambio catiónico (cec) en meq.100g-1, fósforo (p)
ppm, carbono orgánico (oc) en % y nitrógeno (n) en %. letras diferentes indican diferencias
estadísticamente significativas, mientras que letras iguales simbolizan diferencias no significativas
(p<0,05)
Cobierta Mes Ɵ gramo pH CEC P OC N
CP
0 47.9 a 5.4 a 25.7 a 22.3 a 4.3 a 0.4 a
2 21.7 a 5.1 a 31.3 b 15.8 b 4.7 b 0.4 a
4 33.1 a 5.1 a 28.9 c 30.9 c 5.1 bc 0.4 a
6 29.6 a 5.1 a 23.3 a 31.9 c 5.2 c 0.4 a
8 17.9 a 5.4 a 23.1 a 25.8 d 7.6 d 0.6 a
10 25.7 a 5.4 a 26.0 a 44.7 e 8.6 e 0.7 a
CM
0 48.8 a 5.4 a 35.3 a 22.5 a 5.1 a 0.4 a
2 45.6 ac 5.2 b 37.7 ab 18.9 b 5.1 a 0.4 a
4 28.4 bc 5.2 ab 38.2 a 29.9 c 5.2 a 0.4 a
6 27.4 b 5.4 ab 42.6 bc 31.3 c 8.7 bc 0.6 a
8 46.8 a 5.2 ab 42.0 ac 32.1 c 8.7 b 0.7 a
10 27.4 b 5.4 ab 36.7 a 45.4 d 8.3 c 0.7 a
CC
0 80.9 a 5.5 ab 45.0 a 27.3 a 4.5 a 0.4 a
2 22.3 ab 5.1 a 38.3 ab 15.9 b 8.0 b 0.4 a
4 48.9 b 5.3 ab 37.0 ab 34.6 cd 5.2 c 0.6 ab
6 27.4 c 5.0 a 44.3 a 31.3 cd 5.2 c 0.5 ab
8 45.6 b 5.7 b 37.1 b 31.8 d 8.1 b 0.9 b
10 67.1 a 5.4 ab 47.0 a 59.5 e 8.0 b 0.8 b

15. RESUMEN
El objetivo de la investigación fue evaluar los cambio en la calidad del suelo
asociada a las técnicas de agricultura ecológica bajo distintas coberturas para ello se
determinaron cambios en los parámetros físico químicos la abundancia de
microorganismos y las actividades enzimáticas. Las muestras de suelo se
recolectaron cada 2 meses durante 10 meses en parcelas cultivadas con café con
tres cubiertas diferentes plátano , mandarina y cítricos. Los resultados mostraron
modificaciones en la calidad del suelo producto de la aplicación de agricultura
ecológica, donde hubo un aumento en el contenido de fosforo, carbono, bacterias
y hongos solubilizadores de fosfato y hongos celulíticos.