EXÁMENES DE
LABORATORIO
ASPECTOS ADMINISTRATIVOS
GENERALES
A) Coordinación con Laboratorio Central
1.- Conocer las normas del laboratorio del hospital en cuanto a:
○ Condiciones del paciente para realizar examen.
○ Tipo de frasco o tubo, utilización de anticoagulante, jeringa
heparinizada, etc.
○ Cantidad de sangre requerida.
○ Datos complementarios del paciente, en algunos exámenes se
solicita por ejemplo, el peso, la talla, la edad, la temperatura,
uso de antibióticos, etc.
2.- Obtener de manera correcta la muestra.
3.- Conocer el horario de recepción de muestras en laboratorio y los
exámenes que son considerados de urgencia y que se pueden
enviar las 24 horas del día.
4.- Constatar la correcta rotulación de los frascos y adjuntar la orden
de solicitud al ser enviadas las muestras al laboratorio.
5.- Registro en el cuaderno de entrega y recepción de
muestras de cada servicio.
6.- Informar al personal encargado del transporte de las
muestras, sobre las medidas de seguridad en el manejo
de estas, uso de receptáculo plástico tapado y frascos
en posición vertical, evitando que se destapen o volteen,
no utilizar frascos con tapón de algodón.
7.- Al recibir el informe de los resultados, interpretarlos y
controlarlos por médico residente o tratante, si se
presentan valores alterados.
8.- Obtener prioritariamente los exámenes de urgencia y
preocuparse del control de los resultados.
ASPECTOS ADMINISTRATIVOS
GENERALES
B) Consecuencias de una mala técnica en la toma de
muestras de exámenes:
1. Daño para el paciente al atrasar o perder la oportunidad de un
diagnóstico precoz, de una valoración de la evolución o ajuste
oportuno de una terapia.
2. Pérdida de tiempo y material.
3. Pérdida de confianza del paciente.
4. Alteración de los resultados.
5. Alteración del rodaje del servicio y del laboratorio.
ASPECTOS ADMINISTRATIVOS
GENERALES
NORMAS ESTABLECIDAS POR EL
MINISTERIO DE SALUD
● El Ministerio de Salud ha establecido algunas
consideraciones que se deben tener en cuenta,
al extraer muestras de fluidos corporales
considerados de riesgo, en pacientes
ambulatorios y hospitalizados, como una
manera de realizar técnicas con un margen de
seguridad, tanto para el personal de salud,
como para los pacientes que son atendidos en
consultorios y hospitales.
Estas medidas son las siguientes:
• Personal: Las punciones vasculares deben ser
realizadas por profesionales capacitados y
constantemente evaluados.
• Materiales: Todo material de uso venoso o intra-
arterial debe ser estéril y de un solo uso. No se debe
usar material desechable reesterilizado. (Medidas de
Asepsia)
● Lavado de Manos: El profesional responsable de la
punción debe lavarse las manos antes y después del
procedimiento.
● Uso de guantes: Todas las punciones venosas y
arteriales deben realizarse con guantes protectores
(Precauciones Estándares con sangre y fluidos
corporales)
● Elección del sitio de
punción: La piel del
sitio de punción
elegido, debe estar
indemne y limpia. Se
deben utilizar
preferentemente,
venas del pliegue del
codo, medianas
basílicas o cefálicas.
Preparación del sitio de punción:
● Piel limpia, en caso contrario se debe lavar con agua y
jabón antes de aplicar el antiséptico.
● La pincelación del sitio de punción debe ser con alcohol
de 70º, una vez aplicado, esperar que tome contacto
con la piel al menos por 30 segundos, antes de
puncionar.
● Desecho de Material: La
eliminación de la jeringa y
aguja debe ser en receptáculo
especialmente designado
(tarro o botella plástica
desechable) sin doblar, lavar,
quebrar o recapsular la aguja.
Soltar la aguja con pinzas
no tocar con las manos
Eliminar aguja en recipiente
resistente a punciones
Eliminar aguja y jeringa
sin desconectarla
Receptáculo para desecho material corto
punzante
EXÁMENES DE LABORATORIO
● DEFINICIÓN: Es la obtención de una muestra de sangre,
mediante una punción venosa periférica o central del
paciente para realizar el posterior análisis en el
laboratorio clínico.
OBJETIVOS:
- Ayudar al diagnóstico médico (reacción de aglutinación:
en fiebre tifoidea)
- Indicar tratamiento específico (vitamina B12: en anemia
perniciosa)
- Controlar la evolución de una enfermedad (bilirrubinemia:
en hepatitis)
- Investigación clínica (presentación casos en eventos
científicos)
- Evaluar el efecto al tratamiento y ajustar dosis terapéutica
(niveles plasmáticos de drogas)
INDICACIONES GENERALES TOMA
MUESTRAS EXAMENES DE SANGRE
● Explicar al paciente acerca de la indicación médica del
examen, dando instrucciones respecto a la preparación,
necesidad de ayuno, tipo de régimen y objetivos del
examen.
● Constatar que el paciente está en las condiciones
requeridas para el examen (ayunas u otra) En general
los exámenes de sangre se toman en ayunas, pues la
ingesta de alimentos puede hacer variar los resultados
de algunos exámenes (Ej: glicemia basal)
● Controlar que el paciente ingiera desayuno después de
la toma de la muestra.
● No tomar en vena donde esté pasando medicamentos o
soluciones terapéuticas.
● Una vez tomadas las muestras deben ser enviadas a la
brevedad al laboratorio, ya que éstas continúan con su
metabolismo, al permanecer a temperatura ambiente,
produciéndose alteración de los valores reales del
paciente.
● No deben utilizarse frascos que merezcan dudas, sin
tapas, sucios o con cantidad insuficiente de
anticoagulante.
INDICACIONES GENERALES TOMA
MUESTRAS EXAMENES DE SANGRE
● Al tomar la muestra de sangre, evitar la formación de
espuma sanguinolenta, ya que esta favorece la
coagulación y la hemólisis (ruptura del glóbulo rojo).
● Se debe vaciar suavemente la sangre por las paredes
del frasco, esta acción evita la hemólisis de la muestra,
situación que al ocurrir podría alterar los valores reales
del paciente.
● Llenar primero los frascos que contengan anticoagulante
y mezclar suavemente.
EXTRACCIÓN DE SANGRE
● En la actualidad se utilizan tubos para exámenes
sellados al vacío, en los cuales viene indicada la
cantidad de muestra requerida, estos se puncionan
cuidadosamente en el tapón de goma y se llenan por
gradiente de presión con la cantidad de sangre
determinada, no siendo necesario realizar presión con el
émbolo de la jeringa. En este caso hay que tener la
precaución de retirar suavemente la jeringa, evitando
acercarla demasiado al rostro, pues se pueden producir
pequeñas pulverizaciones de sangre y penetrar en la
conjuntiva ocular.
Extracción de sangre
INDICACIONES ESPECÍFICAS
Procedimiento normalizado
Toma de muestras después de 12 horas de ayuno y de
baja actividad o reposo, para una correcta interpretación
de los resultados de laboratorio.
Hora de toma de muestra
- Regla General: Momento más apropiado entre 07:00 y 09:00 h,
anotar hora de toma de muestra.
Ayuno relativo: El examen puede tomarse con ayuno de 3
horas.
Ayuno estricto (algunos exámenes requieren este ayuno)
- El día previo a la toma de muestra NO ingerir alimentos ricos
en grasas (cerdo, cecinas, frituras, mantequilla, lácteos).
- La última comida se debe ingerir a más tardar a las 19 hrs.
Consumir alimentos livianos, no beber alcohol. Se
requieren 14 horas de ayuno.
Controlar que la orden de solicitud del
examen esté con todos los datos:
● Nombre Completo del Paciente
● Nº de Ficha y Nº de Cuenta Corriente (datos en hoja de estadísticas)
● Servicio y Nº de cama
● Tipo de Examen
● Diagnóstico del paciente en algunos casos
● Condiciones en que fue tomado, por ejemplo si los exámenes son
para determinar gases venosos o arteriales, especificar si fueron
tomados con O2, (señalar litros por minuto) o con aire ambiental.
● En caso de tomar hemocultivos, consignar en la orden, si se está
administrando antibióticos, dosis, vía, la última dosis administrada y
la temperatura axilar del paciente.
● Al solicitarse niveles plasmáticos de drogas registrar dosis y hora de
la última administrada.
● Código de barra. (Los Ángeles), ingresar los datos del usuario al
sistema informático del Laboratorio.
● Pegar el código sobre el papel del frasco, respetando el espacio libre
del frasco.
● Pegar la etiqueta SOBRE la etiqueta propia del tubo, DESDE LA TAPA
HACIA EL FONDO, de modo que los datos puedan leerse en este sentido.
La ventana del tubo
debe quedar SIEMPRE
DESCUBIERTA, de
manera que se vea el
nivel y las condiciones
de la muestra.
● Recuerde que es responsabilidad del profesional de
enfermería el realizar una correcta toma de muestras
solicitadas, su envío oportuno al laboratorio, el
solicitar los resultados y su posterior control con el
médico tratante o residente.
● El paciente que se encuentre capacitado, debe estar
informado de los resultados de los análisis
realizados.
La vena cubital es la que se utiliza con más
frecuencia en la punción venosa de adultos
ya que es grande, está cercana a la piel y
es la menos dolorosa.
En pacientes con venas difíciles,
maltratadas por haber sufrido extracciones
frecuentes o haber recibidos tratamientos
intravenosos, obesos o en niños, se
utilizan otras venas de la parte posterior
del brazo, las muñecas, las manos, el
cuello, los tobillos o los pies.
Toma de muestras para exámenes: tubos de recolección
NO OLVIDAR en Toma de muestras para exámenes
Verificar rigurosamente con la orden médica el nombre del paciente y
los exámenes a tomar.
• Verificar el tipo de tubos a utilizar antes de tomar la muestra. Las
técnicas de análisis varían en cada institución, por lo tanto, es
importante confirmar con el laboratorio el tipo de tubo, cantidad de
muestra y condiciones específicas de manejo de las muestras.
• Rotular los tubos con los datos del paciente, fecha y exámenes a
realizar antes de tomar la muestra.
• Enviar la muestra al laboratorio en el menor tiempo posible.
Llenar los tubos al vacío hasta el nivel marcado; es imprescindible que
estén llenos justo hasta la señal.
Ligar y buscar vena por
palpación
Limpiar el sitio de punción
Desligar antes de retirar la
aguja
Presionar el sitio de punción 1 a 5
min.
Pasos a seguir en una toma de muestra al vacío
Nota: Si la sangre no fluye en el tubo se deberá
girar ligeramente la aguja para excluir que este
ocluida por la pared interna de la vena. Si la
sangre sigue sin fluir puede ser que no haya
encontrado la vena en la punción. Antes de
retirar la aguja saque el tubo para preservar el
vacío para una utilización posterior.
Toma de Muestras para Exámenes:
Tubos de Recolección
Existen códigos
estandarizados (ISO 6710)
para las diferentes
presentaciones comerciales
de los tubos. Cada color de
tapón indica que ese tubo
tiene determinado aditivo o
no.
Frascos de exámenes
Anticoagulante
La sangre una vez extraída sufre un proceso de coagulación que
comienza espontáneamente, para evitar este fenómeno se utilizan
anticoagulantes
Los anticoagulantes utilizados con mayor frecuencia son:
EDTA: (ETILENDIAMINO TETRACETATO) quelante del calcio
Citrato de sodio: precipita el calcio
Heparina: inhibe que la protrombina se trasforme en trombina
Tubo ROJO sin anticoagulante: utilizado en los análisis de hormonas e
inmunológicos.
Tubo LILA con EDTA: utilizado para determinaciones de Hematología
(hemograma y lactato).
Tubo NEGRO con citrato: utilizado para medir la velocidad de
sedimentación, VHS.
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección
Tubo CELESTE con Citrato trisódico: utilizado para pruebas de caogulación (TTPK;
TP e INR).
Tubo VERDE con heparina sódica: es utilizado para pruebas de bioquímica .
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección
Exámenes de
sangre
Hematología clínica
Hemograma
● Estudio sanguíneo
● Muy común y utilizado
● Estudio de las células sanguíneas
Hemograma
● Recuento celular
○ Glóbulos rojos (GR)
○ Leucocitos
○ Plaquetas
● Morfología al microscopio
● 2 cc Sangre venosa
● Tapón lila
Hemograma
● Hematocrito
● Hemoglobina (Hb)
● VCM (volumen corpuscular medio)
● CHCM (concentración hemoglobina corpuscular media)
● HCM (hemoglobina corpuscular media)
Hemograma
● Glóbulo Rojo (GR) o
hematíes
○ Valor normal:
■ Hombre: 4.5 a 5.9 x
106 mm3
■ Mujer: 4.1 a 5.1 x 106
mm3
Hemograma
● Hematocrito: En un volumen determinado de sangre, el volumen total de glóbulos rojos es conocido
como hematocrito. Se expresa en %
● Valor normal:
○ Hombre: 40 – 52%
○ Mujer: 35 – 47%
Hemograma
● Hemoglobina
○ Proteína del GR que
transporta O2
○ Valor normal
○ Hombre: 14 – 17,5
gr/dl
○ Mujer: 12.3– 15.3
gr/dl
Hemograma
● VCM: mide tamaño
de los GR
○ Normocítico
○ Microcítico
○ Macrocítico
● Valor normal:
• 80 – 96 fl (fentolitros)
Hemograma
● HCM: mide cantidad
de Hb en GR
○ GR normocrómico
○ GR hipocrómico
○ GR hipercrómico
● Valor normal:
• 28 – 33 pg
(picogramos)
Hemograma
● Plaquetas: elemento
figurado necesario
para la coagulación
○ Valor normal 150.000 a
400.000/mm3
○ Trombocitosis: >
400.000/mm3
○ Trombocitopenia: <
150.000/mm3
Hemograma
● Glóbulo blanco o
leucocito
● Valor normal: 4400 a
11300 mm3
○ Neutrófilos
○ Basófilos
○ Eosinófilos
○ Linfocitos
○ Monocitos
● Leucocitosis: >11300
● Leucopenia: < 4400
Leucocitos
● Granulocitos
○ Neutrófilos:
○ Basófilos
○ Eosinófilos
● Mononucleares
○ Monocitos
○ Linfocitos
Orden de
maduraci
ón
Mieloblastos
Pro mielocitos
Mielocitos
Juveniles
Baciliformes
Segmentados
Leucocitos
● Formas inmaduras:
○ Juveniles: 0 x mm3
○ Mielocitos: 0 x mm3
○ Mieloblastos: 0 x mm3
Si aparece en la fórmula leucocitaria alguna de estas
formas inmaduras, decimos que “hay desviación a la izquierda”
● VHS: velocidad de
sedimentación (velocidad a la
que decantan los GR )
● Muestra: sangre venosa
○ Valor normal:
hombre mujer
○ < 50 años <15 <25
○ > 50 años <20 <30mm/hr
Pruebas de coagulación
● TTPK (tiempo de tromboplastina parcial)
● Útil para comprobar la existencia de todos los factores de la
coagulación, además se utiliza para realizar seguimiento a
pacientes en terapia con heparina, es muy sensible y seguro y su
resultado se expresa en segundos
○ Valor normal: <38 seg
● TP (tiempo de protrombina)
● Su utilidad clínica principal es la monitorización y control terapéutica
anticoagulante y como prueba funcional hepática. Se suele
expresar su resultado en porcentaje.
○ Valor normal: 70 a 100 %
● INR (International Normalized Ratio)la utilidad es la estandarización
de los resultados de TP de pacientes bajo tto. con cumarínicos,
expresión que representa las veces que se prolonga el tiempo
normal.
BIOQUÍMICOS
Bioquímicos
● Uremia
● Acido úrico
● Creatinemia
● Perfil hepático
● Perfil lipídico
● Glicemia
● Lactato
● ELP
● Enzimas cardíacas
● PCR
Tapón verde
● 4 cc sangre venosa
Bioquímicos
● Glicemia
○ Valor normal entre
70 mg/dL y 100
mg/dL
Mide la cantidad de
este monosacárido
que circula por la
sangre. Estas cifras se
miden cuando la
persona se encuentra
en ayunas.
● Test de tolerancia a la glucosa: se utiliza para
diagnosticar diabetes en pacientes con
glicemias normales en ayunas, pero deficientes
en el metabolismo de carbohidratos luego de
ingeridos
● Curva normal:
○ Basal 70 a 100 mg/dl
○ 2 horas menor o igual a 140 mg/dl
● El diagnóstico de diabetes se confirma cuando
el valor en ayunas o a las 2 horas supera los
valores normales.
Bioquímicos
● Glucosa postprandial
● Es una abreviación de la prueba de tolerancia
● Se mide la glicemia del paciente luego de 2 horas de haber ingerido alimentos, aprox. 100g de CH
(desayuno, almuerzos, etc)
● Nivel normal tras dos horas:
■Menor a 140 mg/dl
Bioquímicos
● Hemoglobina glicosilada: producto formado por la adición de glucosa a la hemoglobina.
● Determina valores de glicemia de los 2 a 3 meses anteriores al análisis.
● Valor normal:
● 4.4 – 5.7%
Bioquímicos
Bioquímicos
● Creatinina
○ Valor normal entre
(0.6 a 0.9 mujeres y
0.9 a 1.2 hombres
mg/dl)
○ Es una proteína
derivada del músculo
que circula por la
sangre y se elimina a
través de la orina. Se
emplea para valorar la
función de los riñones.
Bioquímicos
● Uremia
○ Producto final del
catabolismo proteico.
○ También se expresa como
BUN
○ Es otra medida de la
función renal
○ Depende de la ingesta y
estado de hidratación
○ Valor normal entre 20 y
40 mg/dl
○ BUN: 9 - 19 mg/dl
Bioquímico
● Ácido Úrico
○ Producto final del catabolismo
de las purinas
○ Puede cristalizarse en la orina
y formar cálculos o
depositarse en tejidos
cartilaginosos (Gota)
○ Toma de muestra: en ayunas,
sangre venosa; orina, debe
ser de 24 horas
○ Valor normal:
○ hombre: 3.6 y 8.7 mg/dl
○ Mujer: 2.3 – 6.1 mg/dl
○ Orina : 0.20 – 1.0gr/24 horas
Perfil lipídico
● Colesterol total:
○ Valor normal entre < 200
mg/dL
Es un lípido o grasa que
circula por la sangre,
transportado por lipoproteínas
○ HDL: valor > 35 mg/dl
○ LDL: valor < 155 mg/dl
Triglicéridos
● Valor normal entre < 150 mg/dL
Son también un tipo especial de
grasas que circulan en la sangre,
varía con la ingesta.
● La obtención de la muestra
requiere del paciente ayuno de 12
horas.
Pruebas hepáticas
● Bilirrubina: Es un pigmento
que se almacena en la
vesícula y se elimina por la
bilis al tubo digestivo.
● Se emplea fundamentalmente
para valorar la función de la
vía biliar y del hígado.
● Valor normal:
○ Total: <1.0 mg/dl
○ Directa (conjugada): < 0,2
mg/dl
○ Indirecta (no conjuda):
< o.8 mg/dl
Pruebas hepáticas
● Transaminasas
○ Son enzimas que se
encuentran en el interior de
las células hepáticas
(hepatocitos). Existen tres
tipos principales:
GOT - ALT: (transaminasa
glutámico oxalacética) Valor
normal < 35 U/L hombres; <31
mujeres
GPT - AST: (transaminasa
glutámico pirúvica) Valor
normal <45 hombres; <34
mujeres U/L
GGT: (glutamil transferasa)
Valor normal entre < 49 U/L
Sirven para medir la función
del hígado
Pruebas hepáticas
● Fosfatasa Alcalina
Es una sustancia (enzima)
presente en diferentes partes
del organismo, como el
hígado, el hueso o el intestino.
Puede alterarse en
situaciones de enfermedad,
pero también durante el
crecimiento.
• Valor normal entre 40 y 100
U/L
Lactato (ácido láctico)
● Se utiliza para detectar si la acumulación de ácido láctico es la responsable de la acidosis
● Valor normal: 4.5- 19.8 mg/dl venoso
4.5- 14.4 mg/dl arterial
Electrolitos plasmáticos
● Sodio: 138 – 148 mEq/L
● Potasio: 4.0 – 5.0 mEq/L
● Cloro: 98 – 104 mEq/L
● Calcio: 8.6 – 10.3 mg/dl
● fósforo: 2.7 – 4.5 mg/dl
Proteína C reactiva
● Proteína liberada por hígado y vasos sanguíneos, como respuesta inflamatoria
● Valor normal < 5 mg/dl
● Es un marcador inespecífico.
Pruebas cruzadas
● TAPÓN ROJO
CAPACIDAD 9 cc
● Tubo sin
anticoagulante, se
obtiene suero tras
retracción del
coágulo.
Enzimas cardíacas
● Troponina (enzima cardíaca específica): 0.02 – 0.04 ng/ml
● CKMB: 0 – 24 U/L (6% de CK)
○ Aparece en el suero 6 a 12 horas post infarto y se mantiene 18 a 32 horas después de este
● CK total: < 190 U/L
● Es un examen microbiológico que permite la detección en el laboratorio, de una bacteremia, lo cual
contribuye a adecuar la terapia antimicrobiana de acuerdo al microorganismo aislado.
● La muestra debe obtenerse por punción periférica, siempre por una nueva punción y debe ser la
primera muestra que debe obtenerse si existe indicación de otros exámenes.
● El momento óptimo de la toma de la muestra es previo al peack febril, que muchas veces se manifiesta
con escalofríos.
Hemocultivo: cultivo de sangre
Técnica Hemocultivo
● Lavar zona con agua y jabón y luego desinfectar con
antiséptico.
● Usar guantes estériles.
● 2 muestras.
● Se toman las muestras en forma consecutiva, en
distintos lugares de punción (idealmente en distintas
extremidades).
● Muestra 8 a 10cc sangre venosa.
● Cambiar aguja para vaciar la sangre.
● Desinfectar tapón del frasco.
● La solicitud del examen debe incluir:
○ Nombre completo del usuario, con 2 apellidos.
○ Edad y RUT
○ Diagnóstico
○ Temperatura del paciente.
○ Tratamiento antimicrobiano previo a la toma de muestra.
○ Especificar si requiere cultivo especial, ejemplo hongos.
○ Nombre de la persona que toma la muestra.
● Nota: los valores de exámenes varían de un laboratorio a otro, depende de los equipos que dispongan.
● Bibliografía:
● Manual de Toma de muestra Laboratorio Clínico Complejo Asistencial Dr. Víctor Ríos Ruiz.

Examenes_de_laboratorio (1).pptx

  • 1.
  • 2.
    ASPECTOS ADMINISTRATIVOS GENERALES A) Coordinacióncon Laboratorio Central 1.- Conocer las normas del laboratorio del hospital en cuanto a: ○ Condiciones del paciente para realizar examen. ○ Tipo de frasco o tubo, utilización de anticoagulante, jeringa heparinizada, etc. ○ Cantidad de sangre requerida. ○ Datos complementarios del paciente, en algunos exámenes se solicita por ejemplo, el peso, la talla, la edad, la temperatura, uso de antibióticos, etc. 2.- Obtener de manera correcta la muestra. 3.- Conocer el horario de recepción de muestras en laboratorio y los exámenes que son considerados de urgencia y que se pueden enviar las 24 horas del día. 4.- Constatar la correcta rotulación de los frascos y adjuntar la orden de solicitud al ser enviadas las muestras al laboratorio.
  • 3.
    5.- Registro enel cuaderno de entrega y recepción de muestras de cada servicio. 6.- Informar al personal encargado del transporte de las muestras, sobre las medidas de seguridad en el manejo de estas, uso de receptáculo plástico tapado y frascos en posición vertical, evitando que se destapen o volteen, no utilizar frascos con tapón de algodón. 7.- Al recibir el informe de los resultados, interpretarlos y controlarlos por médico residente o tratante, si se presentan valores alterados. 8.- Obtener prioritariamente los exámenes de urgencia y preocuparse del control de los resultados. ASPECTOS ADMINISTRATIVOS GENERALES
  • 4.
    B) Consecuencias deuna mala técnica en la toma de muestras de exámenes: 1. Daño para el paciente al atrasar o perder la oportunidad de un diagnóstico precoz, de una valoración de la evolución o ajuste oportuno de una terapia. 2. Pérdida de tiempo y material. 3. Pérdida de confianza del paciente. 4. Alteración de los resultados. 5. Alteración del rodaje del servicio y del laboratorio. ASPECTOS ADMINISTRATIVOS GENERALES
  • 5.
    NORMAS ESTABLECIDAS POREL MINISTERIO DE SALUD ● El Ministerio de Salud ha establecido algunas consideraciones que se deben tener en cuenta, al extraer muestras de fluidos corporales considerados de riesgo, en pacientes ambulatorios y hospitalizados, como una manera de realizar técnicas con un margen de seguridad, tanto para el personal de salud, como para los pacientes que son atendidos en consultorios y hospitales.
  • 6.
    Estas medidas sonlas siguientes: • Personal: Las punciones vasculares deben ser realizadas por profesionales capacitados y constantemente evaluados. • Materiales: Todo material de uso venoso o intra- arterial debe ser estéril y de un solo uso. No se debe usar material desechable reesterilizado. (Medidas de Asepsia)
  • 7.
    ● Lavado deManos: El profesional responsable de la punción debe lavarse las manos antes y después del procedimiento.
  • 8.
    ● Uso deguantes: Todas las punciones venosas y arteriales deben realizarse con guantes protectores (Precauciones Estándares con sangre y fluidos corporales)
  • 9.
    ● Elección delsitio de punción: La piel del sitio de punción elegido, debe estar indemne y limpia. Se deben utilizar preferentemente, venas del pliegue del codo, medianas basílicas o cefálicas.
  • 10.
    Preparación del sitiode punción: ● Piel limpia, en caso contrario se debe lavar con agua y jabón antes de aplicar el antiséptico. ● La pincelación del sitio de punción debe ser con alcohol de 70º, una vez aplicado, esperar que tome contacto con la piel al menos por 30 segundos, antes de puncionar.
  • 11.
    ● Desecho deMaterial: La eliminación de la jeringa y aguja debe ser en receptáculo especialmente designado (tarro o botella plástica desechable) sin doblar, lavar, quebrar o recapsular la aguja.
  • 12.
    Soltar la agujacon pinzas no tocar con las manos Eliminar aguja en recipiente resistente a punciones Eliminar aguja y jeringa sin desconectarla
  • 13.
    Receptáculo para desechomaterial corto punzante
  • 14.
    EXÁMENES DE LABORATORIO ●DEFINICIÓN: Es la obtención de una muestra de sangre, mediante una punción venosa periférica o central del paciente para realizar el posterior análisis en el laboratorio clínico.
  • 15.
    OBJETIVOS: - Ayudar aldiagnóstico médico (reacción de aglutinación: en fiebre tifoidea) - Indicar tratamiento específico (vitamina B12: en anemia perniciosa) - Controlar la evolución de una enfermedad (bilirrubinemia: en hepatitis) - Investigación clínica (presentación casos en eventos científicos) - Evaluar el efecto al tratamiento y ajustar dosis terapéutica (niveles plasmáticos de drogas)
  • 16.
    INDICACIONES GENERALES TOMA MUESTRASEXAMENES DE SANGRE ● Explicar al paciente acerca de la indicación médica del examen, dando instrucciones respecto a la preparación, necesidad de ayuno, tipo de régimen y objetivos del examen. ● Constatar que el paciente está en las condiciones requeridas para el examen (ayunas u otra) En general los exámenes de sangre se toman en ayunas, pues la ingesta de alimentos puede hacer variar los resultados de algunos exámenes (Ej: glicemia basal) ● Controlar que el paciente ingiera desayuno después de la toma de la muestra. ● No tomar en vena donde esté pasando medicamentos o soluciones terapéuticas.
  • 17.
    ● Una veztomadas las muestras deben ser enviadas a la brevedad al laboratorio, ya que éstas continúan con su metabolismo, al permanecer a temperatura ambiente, produciéndose alteración de los valores reales del paciente. ● No deben utilizarse frascos que merezcan dudas, sin tapas, sucios o con cantidad insuficiente de anticoagulante. INDICACIONES GENERALES TOMA MUESTRAS EXAMENES DE SANGRE
  • 18.
    ● Al tomarla muestra de sangre, evitar la formación de espuma sanguinolenta, ya que esta favorece la coagulación y la hemólisis (ruptura del glóbulo rojo). ● Se debe vaciar suavemente la sangre por las paredes del frasco, esta acción evita la hemólisis de la muestra, situación que al ocurrir podría alterar los valores reales del paciente. ● Llenar primero los frascos que contengan anticoagulante y mezclar suavemente.
  • 19.
    EXTRACCIÓN DE SANGRE ●En la actualidad se utilizan tubos para exámenes sellados al vacío, en los cuales viene indicada la cantidad de muestra requerida, estos se puncionan cuidadosamente en el tapón de goma y se llenan por gradiente de presión con la cantidad de sangre determinada, no siendo necesario realizar presión con el émbolo de la jeringa. En este caso hay que tener la precaución de retirar suavemente la jeringa, evitando acercarla demasiado al rostro, pues se pueden producir pequeñas pulverizaciones de sangre y penetrar en la conjuntiva ocular.
  • 20.
  • 21.
    INDICACIONES ESPECÍFICAS Procedimiento normalizado Tomade muestras después de 12 horas de ayuno y de baja actividad o reposo, para una correcta interpretación de los resultados de laboratorio. Hora de toma de muestra - Regla General: Momento más apropiado entre 07:00 y 09:00 h, anotar hora de toma de muestra. Ayuno relativo: El examen puede tomarse con ayuno de 3 horas. Ayuno estricto (algunos exámenes requieren este ayuno) - El día previo a la toma de muestra NO ingerir alimentos ricos en grasas (cerdo, cecinas, frituras, mantequilla, lácteos). - La última comida se debe ingerir a más tardar a las 19 hrs. Consumir alimentos livianos, no beber alcohol. Se requieren 14 horas de ayuno.
  • 22.
    Controlar que laorden de solicitud del examen esté con todos los datos: ● Nombre Completo del Paciente ● Nº de Ficha y Nº de Cuenta Corriente (datos en hoja de estadísticas) ● Servicio y Nº de cama ● Tipo de Examen ● Diagnóstico del paciente en algunos casos ● Condiciones en que fue tomado, por ejemplo si los exámenes son para determinar gases venosos o arteriales, especificar si fueron tomados con O2, (señalar litros por minuto) o con aire ambiental. ● En caso de tomar hemocultivos, consignar en la orden, si se está administrando antibióticos, dosis, vía, la última dosis administrada y la temperatura axilar del paciente. ● Al solicitarse niveles plasmáticos de drogas registrar dosis y hora de la última administrada. ● Código de barra. (Los Ángeles), ingresar los datos del usuario al sistema informático del Laboratorio. ● Pegar el código sobre el papel del frasco, respetando el espacio libre del frasco.
  • 23.
    ● Pegar laetiqueta SOBRE la etiqueta propia del tubo, DESDE LA TAPA HACIA EL FONDO, de modo que los datos puedan leerse en este sentido. La ventana del tubo debe quedar SIEMPRE DESCUBIERTA, de manera que se vea el nivel y las condiciones de la muestra.
  • 24.
    ● Recuerde quees responsabilidad del profesional de enfermería el realizar una correcta toma de muestras solicitadas, su envío oportuno al laboratorio, el solicitar los resultados y su posterior control con el médico tratante o residente. ● El paciente que se encuentre capacitado, debe estar informado de los resultados de los análisis realizados.
  • 25.
    La vena cubitales la que se utiliza con más frecuencia en la punción venosa de adultos ya que es grande, está cercana a la piel y es la menos dolorosa. En pacientes con venas difíciles, maltratadas por haber sufrido extracciones frecuentes o haber recibidos tratamientos intravenosos, obesos o en niños, se utilizan otras venas de la parte posterior del brazo, las muñecas, las manos, el cuello, los tobillos o los pies. Toma de muestras para exámenes: tubos de recolección
  • 26.
    NO OLVIDAR enToma de muestras para exámenes Verificar rigurosamente con la orden médica el nombre del paciente y los exámenes a tomar. • Verificar el tipo de tubos a utilizar antes de tomar la muestra. Las técnicas de análisis varían en cada institución, por lo tanto, es importante confirmar con el laboratorio el tipo de tubo, cantidad de muestra y condiciones específicas de manejo de las muestras. • Rotular los tubos con los datos del paciente, fecha y exámenes a realizar antes de tomar la muestra. • Enviar la muestra al laboratorio en el menor tiempo posible. Llenar los tubos al vacío hasta el nivel marcado; es imprescindible que estén llenos justo hasta la señal.
  • 27.
    Ligar y buscarvena por palpación Limpiar el sitio de punción Desligar antes de retirar la aguja Presionar el sitio de punción 1 a 5 min.
  • 28.
    Pasos a seguiren una toma de muestra al vacío
  • 29.
    Nota: Si lasangre no fluye en el tubo se deberá girar ligeramente la aguja para excluir que este ocluida por la pared interna de la vena. Si la sangre sigue sin fluir puede ser que no haya encontrado la vena en la punción. Antes de retirar la aguja saque el tubo para preservar el vacío para una utilización posterior.
  • 30.
    Toma de Muestraspara Exámenes: Tubos de Recolección Existen códigos estandarizados (ISO 6710) para las diferentes presentaciones comerciales de los tubos. Cada color de tapón indica que ese tubo tiene determinado aditivo o no.
  • 31.
    Frascos de exámenes Anticoagulante Lasangre una vez extraída sufre un proceso de coagulación que comienza espontáneamente, para evitar este fenómeno se utilizan anticoagulantes Los anticoagulantes utilizados con mayor frecuencia son: EDTA: (ETILENDIAMINO TETRACETATO) quelante del calcio Citrato de sodio: precipita el calcio Heparina: inhibe que la protrombina se trasforme en trombina
  • 32.
    Tubo ROJO sinanticoagulante: utilizado en los análisis de hormonas e inmunológicos. Tubo LILA con EDTA: utilizado para determinaciones de Hematología (hemograma y lactato). Tubo NEGRO con citrato: utilizado para medir la velocidad de sedimentación, VHS. Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección
  • 33.
    Tubo CELESTE conCitrato trisódico: utilizado para pruebas de caogulación (TTPK; TP e INR). Tubo VERDE con heparina sódica: es utilizado para pruebas de bioquímica . Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección
  • 34.
  • 35.
    Hemograma ● Estudio sanguíneo ●Muy común y utilizado ● Estudio de las células sanguíneas
  • 36.
    Hemograma ● Recuento celular ○Glóbulos rojos (GR) ○ Leucocitos ○ Plaquetas ● Morfología al microscopio ● 2 cc Sangre venosa ● Tapón lila
  • 37.
    Hemograma ● Hematocrito ● Hemoglobina(Hb) ● VCM (volumen corpuscular medio) ● CHCM (concentración hemoglobina corpuscular media) ● HCM (hemoglobina corpuscular media)
  • 38.
    Hemograma ● Glóbulo Rojo(GR) o hematíes ○ Valor normal: ■ Hombre: 4.5 a 5.9 x 106 mm3 ■ Mujer: 4.1 a 5.1 x 106 mm3
  • 39.
    Hemograma ● Hematocrito: Enun volumen determinado de sangre, el volumen total de glóbulos rojos es conocido como hematocrito. Se expresa en % ● Valor normal: ○ Hombre: 40 – 52% ○ Mujer: 35 – 47%
  • 40.
    Hemograma ● Hemoglobina ○ Proteínadel GR que transporta O2 ○ Valor normal ○ Hombre: 14 – 17,5 gr/dl ○ Mujer: 12.3– 15.3 gr/dl
  • 41.
    Hemograma ● VCM: midetamaño de los GR ○ Normocítico ○ Microcítico ○ Macrocítico ● Valor normal: • 80 – 96 fl (fentolitros)
  • 42.
    Hemograma ● HCM: midecantidad de Hb en GR ○ GR normocrómico ○ GR hipocrómico ○ GR hipercrómico ● Valor normal: • 28 – 33 pg (picogramos)
  • 43.
    Hemograma ● Plaquetas: elemento figuradonecesario para la coagulación ○ Valor normal 150.000 a 400.000/mm3 ○ Trombocitosis: > 400.000/mm3 ○ Trombocitopenia: < 150.000/mm3
  • 44.
    Hemograma ● Glóbulo blancoo leucocito ● Valor normal: 4400 a 11300 mm3 ○ Neutrófilos ○ Basófilos ○ Eosinófilos ○ Linfocitos ○ Monocitos ● Leucocitosis: >11300 ● Leucopenia: < 4400
  • 45.
    Leucocitos ● Granulocitos ○ Neutrófilos: ○Basófilos ○ Eosinófilos ● Mononucleares ○ Monocitos ○ Linfocitos Orden de maduraci ón Mieloblastos Pro mielocitos Mielocitos Juveniles Baciliformes Segmentados
  • 46.
    Leucocitos ● Formas inmaduras: ○Juveniles: 0 x mm3 ○ Mielocitos: 0 x mm3 ○ Mieloblastos: 0 x mm3 Si aparece en la fórmula leucocitaria alguna de estas formas inmaduras, decimos que “hay desviación a la izquierda”
  • 47.
    ● VHS: velocidadde sedimentación (velocidad a la que decantan los GR ) ● Muestra: sangre venosa ○ Valor normal: hombre mujer ○ < 50 años <15 <25 ○ > 50 años <20 <30mm/hr
  • 48.
    Pruebas de coagulación ●TTPK (tiempo de tromboplastina parcial) ● Útil para comprobar la existencia de todos los factores de la coagulación, además se utiliza para realizar seguimiento a pacientes en terapia con heparina, es muy sensible y seguro y su resultado se expresa en segundos ○ Valor normal: <38 seg ● TP (tiempo de protrombina) ● Su utilidad clínica principal es la monitorización y control terapéutica anticoagulante y como prueba funcional hepática. Se suele expresar su resultado en porcentaje. ○ Valor normal: 70 a 100 % ● INR (International Normalized Ratio)la utilidad es la estandarización de los resultados de TP de pacientes bajo tto. con cumarínicos, expresión que representa las veces que se prolonga el tiempo normal.
  • 49.
  • 50.
    Bioquímicos ● Uremia ● Acidoúrico ● Creatinemia ● Perfil hepático ● Perfil lipídico ● Glicemia ● Lactato ● ELP ● Enzimas cardíacas ● PCR Tapón verde ● 4 cc sangre venosa
  • 51.
    Bioquímicos ● Glicemia ○ Valornormal entre 70 mg/dL y 100 mg/dL Mide la cantidad de este monosacárido que circula por la sangre. Estas cifras se miden cuando la persona se encuentra en ayunas.
  • 52.
    ● Test detolerancia a la glucosa: se utiliza para diagnosticar diabetes en pacientes con glicemias normales en ayunas, pero deficientes en el metabolismo de carbohidratos luego de ingeridos ● Curva normal: ○ Basal 70 a 100 mg/dl ○ 2 horas menor o igual a 140 mg/dl ● El diagnóstico de diabetes se confirma cuando el valor en ayunas o a las 2 horas supera los valores normales. Bioquímicos
  • 53.
    ● Glucosa postprandial ●Es una abreviación de la prueba de tolerancia ● Se mide la glicemia del paciente luego de 2 horas de haber ingerido alimentos, aprox. 100g de CH (desayuno, almuerzos, etc) ● Nivel normal tras dos horas: ■Menor a 140 mg/dl Bioquímicos
  • 54.
    ● Hemoglobina glicosilada:producto formado por la adición de glucosa a la hemoglobina. ● Determina valores de glicemia de los 2 a 3 meses anteriores al análisis. ● Valor normal: ● 4.4 – 5.7% Bioquímicos
  • 55.
    Bioquímicos ● Creatinina ○ Valornormal entre (0.6 a 0.9 mujeres y 0.9 a 1.2 hombres mg/dl) ○ Es una proteína derivada del músculo que circula por la sangre y se elimina a través de la orina. Se emplea para valorar la función de los riñones.
  • 56.
    Bioquímicos ● Uremia ○ Productofinal del catabolismo proteico. ○ También se expresa como BUN ○ Es otra medida de la función renal ○ Depende de la ingesta y estado de hidratación ○ Valor normal entre 20 y 40 mg/dl ○ BUN: 9 - 19 mg/dl
  • 57.
    Bioquímico ● Ácido Úrico ○Producto final del catabolismo de las purinas ○ Puede cristalizarse en la orina y formar cálculos o depositarse en tejidos cartilaginosos (Gota) ○ Toma de muestra: en ayunas, sangre venosa; orina, debe ser de 24 horas ○ Valor normal: ○ hombre: 3.6 y 8.7 mg/dl ○ Mujer: 2.3 – 6.1 mg/dl ○ Orina : 0.20 – 1.0gr/24 horas
  • 58.
    Perfil lipídico ● Colesteroltotal: ○ Valor normal entre < 200 mg/dL Es un lípido o grasa que circula por la sangre, transportado por lipoproteínas ○ HDL: valor > 35 mg/dl ○ LDL: valor < 155 mg/dl Triglicéridos ● Valor normal entre < 150 mg/dL Son también un tipo especial de grasas que circulan en la sangre, varía con la ingesta. ● La obtención de la muestra requiere del paciente ayuno de 12 horas.
  • 59.
    Pruebas hepáticas ● Bilirrubina:Es un pigmento que se almacena en la vesícula y se elimina por la bilis al tubo digestivo. ● Se emplea fundamentalmente para valorar la función de la vía biliar y del hígado. ● Valor normal: ○ Total: <1.0 mg/dl ○ Directa (conjugada): < 0,2 mg/dl ○ Indirecta (no conjuda): < o.8 mg/dl
  • 60.
    Pruebas hepáticas ● Transaminasas ○Son enzimas que se encuentran en el interior de las células hepáticas (hepatocitos). Existen tres tipos principales: GOT - ALT: (transaminasa glutámico oxalacética) Valor normal < 35 U/L hombres; <31 mujeres GPT - AST: (transaminasa glutámico pirúvica) Valor normal <45 hombres; <34 mujeres U/L GGT: (glutamil transferasa) Valor normal entre < 49 U/L Sirven para medir la función del hígado
  • 61.
    Pruebas hepáticas ● FosfatasaAlcalina Es una sustancia (enzima) presente en diferentes partes del organismo, como el hígado, el hueso o el intestino. Puede alterarse en situaciones de enfermedad, pero también durante el crecimiento. • Valor normal entre 40 y 100 U/L
  • 62.
    Lactato (ácido láctico) ●Se utiliza para detectar si la acumulación de ácido láctico es la responsable de la acidosis ● Valor normal: 4.5- 19.8 mg/dl venoso 4.5- 14.4 mg/dl arterial
  • 63.
    Electrolitos plasmáticos ● Sodio:138 – 148 mEq/L ● Potasio: 4.0 – 5.0 mEq/L ● Cloro: 98 – 104 mEq/L ● Calcio: 8.6 – 10.3 mg/dl ● fósforo: 2.7 – 4.5 mg/dl
  • 64.
    Proteína C reactiva ●Proteína liberada por hígado y vasos sanguíneos, como respuesta inflamatoria ● Valor normal < 5 mg/dl ● Es un marcador inespecífico.
  • 65.
    Pruebas cruzadas ● TAPÓNROJO CAPACIDAD 9 cc ● Tubo sin anticoagulante, se obtiene suero tras retracción del coágulo.
  • 66.
    Enzimas cardíacas ● Troponina(enzima cardíaca específica): 0.02 – 0.04 ng/ml ● CKMB: 0 – 24 U/L (6% de CK) ○ Aparece en el suero 6 a 12 horas post infarto y se mantiene 18 a 32 horas después de este ● CK total: < 190 U/L
  • 67.
    ● Es unexamen microbiológico que permite la detección en el laboratorio, de una bacteremia, lo cual contribuye a adecuar la terapia antimicrobiana de acuerdo al microorganismo aislado. ● La muestra debe obtenerse por punción periférica, siempre por una nueva punción y debe ser la primera muestra que debe obtenerse si existe indicación de otros exámenes. ● El momento óptimo de la toma de la muestra es previo al peack febril, que muchas veces se manifiesta con escalofríos. Hemocultivo: cultivo de sangre
  • 68.
    Técnica Hemocultivo ● Lavarzona con agua y jabón y luego desinfectar con antiséptico. ● Usar guantes estériles. ● 2 muestras. ● Se toman las muestras en forma consecutiva, en distintos lugares de punción (idealmente en distintas extremidades). ● Muestra 8 a 10cc sangre venosa. ● Cambiar aguja para vaciar la sangre. ● Desinfectar tapón del frasco.
  • 69.
    ● La solicituddel examen debe incluir: ○ Nombre completo del usuario, con 2 apellidos. ○ Edad y RUT ○ Diagnóstico ○ Temperatura del paciente. ○ Tratamiento antimicrobiano previo a la toma de muestra. ○ Especificar si requiere cultivo especial, ejemplo hongos. ○ Nombre de la persona que toma la muestra.
  • 70.
    ● Nota: losvalores de exámenes varían de un laboratorio a otro, depende de los equipos que dispongan.
  • 71.
    ● Bibliografía: ● Manualde Toma de muestra Laboratorio Clínico Complejo Asistencial Dr. Víctor Ríos Ruiz.