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Facultad de Ciencias Agrarias
        Escuela Académico Profesional
                de Agronomía
   Departamento Académico de Sanidad Vegetal
             y Producción Pecuaria




Plagas del Cultivo de Soya
        PEDRO SAÚL CASTILLO CARRILLO
                TUMBES – PERÚ
                     2009
Autor     : Pedro Saúl Castillo Carrillo. Ingeniero Agrónomo, egresado de la Universidad
Nacional de Piura, postgrado en Entomología, Universidad Nacional Agraria La Molina.
Profesor Principal de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional de
Tumbes.
E-mail: pcastillocarrillo@yahoo.es
        pcastilloc@untumbes.edu.pe
        pcastillo26@gmail.com



Edición               : Universidad Nacional de Tumbes-Perú

Primera edición       : Septiembre 2009

Fotos de la portada : La foto superior izquierda corresponde a un adulto de la especie
Cerotoma fascialis Erickson, la foto superior central a daños en cultivo de soya realizados por
Anticarsia gemmatalis, la foto superior derecha a una larva de Anticarsia gemmatalis y la foto
inferior a daños ocasionados por Omiodes indicata.




                                              1
CONTENIDO




                                                                                              Pág.
Introducción……………………………………………….. ………. 04
Gusanos de tierra, gusanos cortadores o trozadores..………..                                     05
Gusano picador del tallo…………………………………………                                                      09
Gusano pegador de hojas, gusano encrespador………………                                             13
Gusano caballada o gusano de terciopelo……………………..                                             16
Falso gusano medidor (P. includens)…………………………..                                               20
Falso gusano medidor (T. ni)…………………………………….                                                   23
Gusano enrollador del fríjol………………………………………                                                   25
Escarabajo de hojas, mosquilla o cucarroncito………..……….. 26
Mosca blanca o petrolera…………..……………………………… 29
Trips……………………………………………………..…………..                                                             32
Arañita roja……………….……………..………………………….                                                         33
Barrenador de los brotes..……………………………………..…                                                   34
Gusano perforador de los tallos y vainas.........................…….                          36
Escarabajo barrenador de peciolos y tallos…………………….                                           37
Chinches de las vainas o chinches hediondos…………....……. 40
Bibliografía...............................................................................   43




                                                        2
INTRODUCCIÓN

 En la región Tumbes, el cultivo de soya Glycine max (L) Merrill, hace más de
dos décadas, era uno de los cultivos tradicionales de la región y constituía un
cultivo de rotación después de la campaña de arroz, realizada entre los
meses de enero a junio, esta práctica tenía efectos positivos, pues la soya es
una especie mejoradora del suelo al fijar el nitrógeno libre del aire, a través de
la asociación de sus raíces con bacterias nitrificantes del género Rhizobium y
permite interrumpir el ciclo biológico de las plagas del cultivo de arroz.

En la región Tumbes, en la década del 80, llegaron a instalarse cerca de
3 000 hectáreas, considerándose a Tumbes como el primer productor de
soya a nivel nacional. Sin embargo, problemas de precios y decisiones de tipo
político al autorizarse desde 1987 la siembra de dos campañas del cultivo de
arroz, ha generado que este cultivo sea relegado, sembrándose en este
momento menos de 100 hectáreas al año.

 Existe, actualmente, interés por la siembra de esta leguminosa por algunas
empresas agroindustriales, su cultivo representa entonces una importante
alternativa de producción, más aún si se tiene en cuenta los costos elevados
que se requiere para instalar una hectárea de arroz, aunado a esto, la baja
rentabilidad por los bajos precios que tiene el arroz.

El cultivo de soya, tiene factores abióticos y bióticos adversos que afectan su
normal desarrollo fenológico, mereciendo atención los insectos, que bajo
ciertas condiciones climáticas logran alcanzar poblaciones elevadas llegando
a constituirse en plagas, que influyen negativamente en el rendimiento y en la
calidad de los granos producidos.

 El propósito de este manual es proporcionar a los profesionales, técnicos y
agricultores, una información básica que permita reconocer en el campo a los
principales insectos que actúan como plagas del cultivo de soya. Se
proporciona la ubicación taxonómica de cada una de las especies más
frecuentes, una breve descripción sobre su distribución e importancia;
asimismo se ilustran; los daños que producen, características morfológicas de
los estados de desarrollo - huevo, larva, pupa y adulto-, algunos datos sobre
su biología y comportamiento, además se indican los métodos de control que
tengan que utilizarse para atenuar los daños dentro de un esquema de
Manejo Integrado de Plagas.




                                   3
“Gusanos de tierra”, “gusanos cortadores” o “gusanos
                           trozadores”

      Agrotis ipsilon (Hufnagel, 1766), Spodoptera eridania(Cramer, 1782)

Ubicación taxonómica
Orden     : Lepidoptera
Familia   : Noctuidae

Importancia y distribución. Estas especies son de hábitos polífagos y pueden
ocasionar daños en la primera fase del cultivo. Se les localiza tanto en Costa,
Sierra y Selva (Sánchez y Vergara, 1998).

Daños.- En los primeros estadios las larvas realizan raspaduras de las hojas
de las plantas recién germinadas, larvas más desarrolladas afectan a las
semillas y plantas tiernas cortándolas a la altura del cuello de la raíz,
provocando finalmente su caída y muerte (Fig. 1). El ataque se produce
durante los 12 a 20 primeros días de edad de cultivo, ocasionando fallas en la
siembra como consecuencia hay que realizar labores de resiembra. En el caso
de la especie S. eridania posteriormente se convierte en plaga de follaje.




      Fig. 1.- Daños ocasionados por “gusano de tierra” (A. ipsilon)


Características morfológicas del “gusano de tierra” A. ipsilon

De acuerdo a ICI (1985) y, Sánchez y Vergara (1998) se tiene la siguiente
descripción.

Huevo.- Recién ovipositado es de color blanco amarillento, de contorno
circular, con estrías longitudinales y transversales, próximo a la eclosión se
torna blanco oscuro (Fig. 2a).

Larva.- Es de tipo eruciforme, cuando está pequeña es de color gris oscuro con
manchas dorsales más pálidas, luego se torna, negra a gris brillante y la
cápsula cefálica es de color marrón amarillento a marrón rojizo. Presenta una


                                                       4
banda dorsal gris pálido y tubérculos negros, en número de cuatro en cada uno
de los segmentos, de los cuales los anteriores son más pequeños que los
posteriores. La cutícula presenta finas granulaciones redondeadas y convexas
fuertemente contrastantes (Fig. 2b), en el último estadio llega a medir entre 40
a 50 mm de longitud, empupa en el suelo en una cámara pupal.

Pupa.- Es de color marrón rojizo, presenta dos espinas en el cremaster y
excepcionalmente espinas secundarias (Fig. 2c).

Adulto.- Mide 30 a 50 mm de expansión alar. El cuerpo es de color gris, las
alas anteriores son de color gris; con frecuencia conservan marcas más
oscuras, a veces negras, en forma de una banda transversal y con el extremo
apical algo más claro. En el área central se observa una mancha reniforme,
prolongada con un pequeño triangulo de color negro, al que se oponen otros
dos con el vértice en sentido contrario. Las alas posteriores son de un color
blanco perla, con el margen externo de color gris (Fig. 2 d).




         Fig. 2.- “Gusano de tierra” A. ipsilon (a) Huevo (Crédito: ICI), (b) Larva, (c) Pupa y (d) Adulto (crédito: Don
                                                     Herbison-Evans & Stella Croslay


Biología y comportamiento,
En relación a su ciclo de desarrollo para condiciones de la costa central del
Perú, Sánchez y Vergara (1990) reportan lo siguiente:

Incubación (huevo)        : 05 días
Periodo larval            : 34 días
Periodo pupal             : 14 días
Total                    53 días.

Los adultos son de actividad nocturna, las hembras ovipositan en forma
individual o en pequeños grupos en las plantas o en las grietas del suelo (ICI,
1985). Larvas actúan durante la noche y se refugian durante el día en el suelo
cerca del lugar de alimentación.

Características morfológicas de S. eridania
De acuerdo a lo reportado por García (1986), Valverde y Sarmiento (1986),
Sánchez y Vergara (1990) se tiene lo siguiente:

Huevo.- Es esferoidal, con estructura esculpida en el corion; recién ovipositado
presenta color verde claro y próximo a eclosionar adquiere un color negro. Son
ovipositados en masas y las hembras los protegen con escamas de su cuerpo
(Fig. 3a).



                                                        5
Larva.- En el primer estadio es de color verde claro o negro oscuro
aterciopelado y con rayas amarillas laterales. En el último estadio el cuerpo es
de color gris variando a verde oliva o rosado, con dos líneas paralelas dorsales
de manchas triangulares negras, a veces pobremente definidas (Fig. 3b),
igualmente poseen líneas subdorsales rojizas. Se puede distinguir una línea
subespiracular prominente, quebrada por manchas oscuras, a veces una
mancha difusa en el primer segmento abdominal inmediatamente detrás del
último par de patas verdaderas. La cabeza es de color amarillo rojizo con
reticulaciones brillantes de color pardo cobrizo. El aspecto ventral del cuerpo es
anaranjado o rosado con puntitos de color blanco. Llega a medir de 35 a 40
mm.

Pupa.- Es momificada, mide de 25 a 35 mm de longitud, de color marrón a café
brillante tornándose marrón oscuro o negruzco antes de la emergencia del
adulto.

Adulto.- Mide de 20 a 25 mm de expansión alar y de 12 a 16 mm de longitud.
El macho es más pequeño y presenta las alas anteriores de color gris con un
punto negro en su parte central (Fig. 3c), y la hembra presenta un color marrón
claro jaspeado con manchas negras (Fig. 3d).




 a
                                                   b               c                d


        Fig. 3.- “Gusano de tierra” S. eridania (a) Huevos, (b) larva, (c) Adulto macho
                                     y (d) Adulto hembra

Biología.- Valverde (1986) para condiciones de la Molina reporta los siguientes
datos.

Huevo (incubación)         : 04 días
Larva                      : 19 días
Pupa                       : 11 días
Total                        34 días

Métodos de control

Cultural
  Riego pesado de machaco con la finalidad de provocar el ahogamiento de
   larvas y pupas que se encuentran en el suelo.
  Labranzas adecuadas y profundas para exponer los estados de
   conservación (pupas y adultos) a la acción de sus controladores biológicos.
  Eliminación de plantas hospederas de bordes y acequias.



                                             6
Etológico

Entre las medidas de control etológico se recomienda:
  Utilización de trampas de luz
  Utilización de trampas alimenticias empleando melaza de caña de azúcar en
   mezcla con agua

Biológico

Entre los predadores Sánchez y Vergara (1998) reportan varias especies de
carábidos como Calosoma abreviatum y Pterostichus sp., al cicindelido
Megacephala carolina chilensis, al dermaptero Labidura riparia y entre los
parasitoides a los taquinidos Archytas marmoratus, Gonia peruviana; al eulofido
del género Euplectrus sp. y al ichneumonido Enicospilus sp. Zarate (2003)
para las condiciones de Tumbes reporta a los parasitoides Archytas sp.
(Tachinidae) y los Chalcididae Spilochalcis sp.,y Brachymeria sp.



Químico

Se puede utilizar bajo las formas siguientes:

   1. Utilización de cebos tóxicos. Para su preparación se         necesita los
      siguientes componentes:

        50 a 100 kg de afrecho, polvillo de arroz, coronta molida o aserrín.
        3 galones o 10 kilos de melaza de caña o azúcar.
        Se puede emplear en la preparación del cebo cualquiera de los
        siguientes insecticidas: 0,8 kg de trichlorfon (Dipterex 80 PM), 1 kg de
        carbaryl (Sevin 85 PM), ó 0,5 kg de methomyl (Lannate 90 PS).
        60 a 70 litros de agua suficiente para formar una pasta semisólida. Este
          cebo se distribuye al atardecer en la proporción de 50 a 70 kg por ha.

   2. Aplicación de insecticidas a la semilla al momento de la siembra.

     Se puede utilizar acefato (Orthene 75 PS o Vencetho Saume) a la dosis
     de    3 a 4 g / kg de semilla.

   3. Aplicación de insecticidas en campo definitivo

     Cuando se detecte más de 5% de plantas cortadas o exista ataques
     severos o generalizados se puede aplicar trichlorfon (Dipterex 80% PS),
     clorpirifos (Paladin 480 EC) 1 L/ha dirigido hacia la base de la planta o
     clorpirifos (Lorsban 2,5 % P) a dosis de 20 kg/ha, espolvoreado sobre las
     plantas.




                                        7
“GUSANO PICADOR DEL TALLO”
                    Elasmopalpus lignosellus Zeller, 1848

Ubicación taxonómica
Orden: Lepidoptera
Familia: Pyralidae

Distribución e importancia.- Esta especie se encuentra distribuida en toda
la América Latina. En el país es una de las principales plagas de
leguminosas que inciden en toda la Costa y esporádicamente en la Selva
Alta (Sarmiento et al., 1998). En condiciones de Tumbes es más frecuente
en verano y sobre todo en cultivos instalados en suelos de textura franco
arenosa (Castillo-Carrillo, 1995).


Daños

En los primeros estadios larvales se alimentan de las hojas, posteriormente
las larvas penetran al tallo a escasa profundidad del nivel del suelo, luego
lo barrenan hacia arriba, formando de esta manera un túnel que provoca
finalmente la muerte de las plantitas. Los daños se reconocen por un
decaimiento o marchitamiento de las plantas y por los cocones semejantes
a terroncitos que se encuentran próximos o pegados al tallo (Fig. 4).




                   Fig. 4.- Daños ocasionados por el “gusano
                       picador de los tallos” (E. lignosellus)



Características morfológicas

De acuerdo a lo reportado por Sandoval (1972) y Carbonell (1977) se tiene
la siguiente descripción.

Huevo.- Es pequeño de forma ovalada, recién ovipositado es de color
blanco lechoso, próximo a la eclosión se torna de color rosado hasta rojizo.
El huevo en su diámetro mayor mide en promedio 0,6 mm y el diámetro
menor mide 0,4 mm (Fig. 5a).




                                           8
Larva.- En completo desarrollo llega a medir de 13 a 16 mm y como señal
característica, tiene sobre su cuerpo verde azulado varias líneas
longitudinales brunas oscuras que se interrumpen en las líneas ínter
segméntales (Fig. 5b).

Pupa. – Es del tipo obtecta, inicialmente es de color verde limón pero a
medida que avanza el desarrollo se torna de color marrón oscuro .Mide 7 a
10 mm. (Fig. 5c).

Adulto .- Mide 11 a 12 mm de longitud y 20 a 22 mm de expansión alar,
presentan dimorfismo sexual, el macho es de color amarillo pajizo o marrón
amarillento lo cual le sirve para mimetizarse o camuflarse con los rastrojos,
mientras que la hembra es de color café grisáceo con manchas marrón
rojizas, casi negras. Cuando están en posición de descanso las alas se
doblan sobre el dorso. (Fig. 5d).




                                                 a                         b




                                   c                                           d

           Fig.4.- Estados de desarrollo del gusano picador de los tallos
         (E.lignosellus): (a) Huevos, (b) Larva, (c) Pupa y (d) Adulto (Crédito, CIAT)

Biología y comportamiento

En relación a la duración del ciclo de desarrollo, Sandoval (1972), en
estudios realizados en La Molina – Lima con temperatura y humedad
relativa no controlada y como maíz de substrato obtuvo los siguientes
resultados:
Periodo de incubación          : 03-05 días
Periodo larval (6 estadios)    : 14-21 días
Periodo prepupal              : 01-02 días
Periodo pupal                 : 08-11 días
Total                         :   26-39 días


                                             9
Los adultos son de hábitos nocturnos, la oviposición es realizada, sobre las
hojas, tallos, o sobre el suelo en forma aislada o en pequeños grupos. A
medida que transcurre el tiempo, la larva va fabricando una especie de
cápsula, conocida como cocón, cerca de la planta con partículas de tierra o
detrimentos de vegetales semejándose a un pequeño terrón.

Métodos de control

Entre los métodos a        tener en cuenta con la finalidad de reducir
infestaciones severas se tienen los siguientes:

Cultural
• Eliminación del rastrojo de cultivos anteriores y malezas.
• Buena preparación del suelo con araduras o gradeos profundos para
   exponer los estados de conservación como son larvas y pupas a la
   acción de factores físicos o biológicos.
• Se puede aplicar riegos pesados para asfixiar las larvas que se
   encuentran al pie de las plantas. Esto implica realizar evaluaciones
   periódicas desde que emergen las plantas para aplicar agua cuando las
   larvas son pequeñas y el daño aún no es importante. Para aplicar el
   riego pesado debe tomarse en cuenta la textura del suelo, por que si se
   hace en un suelo pesado se tendrían problemas de compactación y
   muerte de plántulas por pudriciones radiculares.

 Biológico

 Los enemigos naturales son poco eficientes debido a los hábitos muy
 particulares de las larvas. Sarmiento et al., 1998, reportan dos moscas
 Tachinidae (Stomatomyia meridionalis y Nemorilla sp.), un Braconidae
 (Orgilius sp.) y un Eulophidae (Pediobius sp.) como parásitoides de
 larvas.

 Químico

 Con respecto a medidas de control químico éste está enfocado al
 tratamiento de la semilla con cualquiera de los siguientes insecticidas:

 Thiodicarb (Semevin) a dosis de 8 a 10 cc/kg semilla), acefato (Orthene 75
 PS o Vencetho 75 PS) a dosis de 4g/kg semilla. En áreas de frecuente
 incidencia se recomienda realizar aspersiones dirigidas a la base de las
 plantas con los siguientes insecticidas: methomyl (Lannate 90 PS) al
 0,2%, trichlorfon (Dipterex 80 PS) al (0,2%) o carbaryl (Sevin 85 PM) al
 0,3%.




                                   10
“Gusano pegador de hojas”, “gusano sanguchero” ó “gusano
                     encrespador”

        Omiodes indicata (Fabricius, 1775) (Hedylepta indicata F.)

   Ubicación taxonómica
   Orden : Lepidoptera
   Familia : Pyralidae

   Distribución e Importancia.- En Tumbes es uno de los insectos plagas
   más importantes en el cultivo de soya, ocasiona daños ligeros en fríjol
   caupi. En el Perú se le encuentra distribuido en las tres regiones, a nivel
   mundial se le encuentra en América y Asia (Avalos, 1981).

   Daños.- Es ocasionado por la larva. En el estadio inicial raspa el
   parénquima, a partir del 2º estadio teje un estuche para lo cual con ayuda
   de hilos de seda pega los bordes de un foliolo doblándolo hacia el centro
   (Fig.6), en otros casos pega un foliolo con otro, luego la larva comienza a
   alimentarse del tejido parenquimático dejando solo la epidermis. Un
   ataque intenso provoca la defoliación, afectando el rendimiento, más aún
   si se realiza en estado de floración o durante la formación de vainas.




                     Fig. 6.- Daños ocasionados por “gusano pegador
                                  de hojas” ( O. indicata)


   Características morfológicas

   Según lo observado por el autor y lo reportado por Sánchez y Vergara
   (1998) se tiene lo siguiente:

  Huevo.- Es ovalado, mide 0,6 x 0,82 mm; recién ovipositado es de color
  blanquecino y próximo a eclosionar toma un color amarillento.

   Larva.- En su máximo desarrollo mide 15,3 mm de longitud, presenta dos
   manchas semicirculares en la parte dorso lateral del protórax, una banda
   longitudinal de color verde oscuro en la parte media del dorso, patas
   torácicas de color marrón; presenta cuatro pares de pseudopatas de
   color verde claro, todo el cuerpo presenta tubérculos con setas de color
   marrón claro (Fig. 7a).




                                          11
Pupa.- Inicialmente es de color marrón claro, cuando se acerca la
emergencia del adulto toma un color oscuro. En machos mide 9,3 mm y
en hembra 10,0 mm de longitud (Fig. 7b).

Adulto.- La expansión alar en machos es de 17,3 mm y en hembras 18,2
mm. Presenta un color amarillo dorado con reflejos cúprico-pálidos. En
estado de reposo las alas se disponen en forma de abanico, formándose
tres líneas transversales de forma ondulada y de color oscuro (Fig. 7c).



                                                         c

    a
                                             b

        Fig.7.- “Pegador de las hojas” O. indicata: (a) Larva, (b) Pupa, (c) Adulto.

Biología y comportamiento.-
En relación a la duración del ciclo de desarrollo, Cruz y Castillo-Carrillo
(1988) para las condiciones de Tumbes reportan lo siguiente:

Periodo de Incubación                :           05-06 días
Periodo larval                       :           14-18 días
Periodo pupal                        :           06- 09 días
Ciclo de Desarrollo                  :           25 -33 días

La hembra oviposita los huevos en el haz de las hojas en grupos de diez
o más. La larva es lucífuga y al completar su estado de desarrollo teje un
cocón con hilos de seda y restos de heces donde empupa (Fig.8).




                      Fig.8.- Lugares donde empupa O. indicata

Métodos de control

Entre los métodos que se pueden tener en cuenta con la finalidad de
reducir infestaciones severas se tienen los siguientes:



                                           12
Cultural

•   Realizar buena preparación del terreno
•   Rotación con cultivos que no sean hospederos del insecto.

Mecánico

Recojo a mano y destrucción de los refugios o estuches conteniendo
larvas y pupas

Biológico

Según Cruz y Castillo - Carrillo (1989) y Zarate (2003) para Tumbes han
registrado como parasitoides de larvas, a los Braconidos Cotesia sp.,
Chelonus sp. Chelonus insularis, Bracon sp. al Chalcididae Brachymeria
sp., y al Scelionidae parásitoide de huevos Telenomus sp. El autor en
evaluaciones de campo ha encontrado al estado larval y adulto un
coleóptero de la familia Carabidae, y una larva de mosca Syrphidae
predatando larvas. Para las condiciones de costa central Valdivieso y
Bartra (1993) reportan al parasitoide Elachertus proteoteralis (Eulophidae)
y Coccygomimus punnicipes (Ichneumonidae).

Un medio de control de esta plaga es el empleo del chinche Podissus
nigrispinus un eficiente predador que puede ser criado en laboratorio y
liberado cuando recién se inicia la infestación del cultivo por Omiodes. Se
recomienda liberar 1 000 chinches de tercer estadio ninfal por hectárea,
también se hacen liberaciones de Trichogramma pintoi a razón de 25 a 30
pulg 2/ha.

Químico

En condiciones de alta infestación, especialmente si proceder al empleo
de insecticidas como chlorfuazuron (Atabron) a dosis de 300 cc/cilindro,
clorpirifos (Lorpyfos) a dosis de 600 cc/cilindro, metamidofos + cyfluthrin
(Baytroid TM 525 SL) a dosis de 1 L/ha, o aplicaciones de insecticidas a
base de Bacillus thuringuiensis a dosis de 0,5 a 0,75 kg/ha.




                                 13
“Gusano caballada” o “gusano de terciopelo”

                    Anticarsia gemmatalis Hübner, 1818

   Ubicación taxonómica
   Orden     : Lepidoptera
   Familia   : Pyralidae

   Distribución e Importancia.- En el continente se encuentra distribuida
   desde el sur de los Estados Unidos hasta América del Sur y el Caribe
   (Ávalos, 1981). En el Perú incide en las tres regiones en cultivos como
   fríjol y alfalfa. En la región Tumbes, este insecto es una plaga potencial y
   generalmente se presenta en aquellos cultivos que se siembran fuera de
   la fecha de siembra, así como en aquellos en los cuales se realiza una
   aplicación indiscriminada de insecticidas

   Daños.- Es ocasionado por la larva que es comedora de hojas. En sus
   dos primeros estadios, se alimenta del envés de las hojas comiendo la
   epidermis de esta y el mesófilo dejando la epidermis de la superficie que
   luego se desprende, dejando pequeños agujeros, los cuales se hacen
   grandes a medida que la hoja crece (Fig. 9). A partir del tercer estadio ya
   se alimenta de todo el tejido dejando únicamente la nervadura central y
   las laterales, quedando la hoja esqueletizada. Altas infestaciones dejan en
   7 días a las plantas sin hojas. Los daños dependen del estado vegetativo
   de la planta. En el caso de la soya, esta puede soportar alta defoliación
   antes de la floración, que puede llegar al 30% sin que se noten diferencias
   importantes en los rendimientos. Se ha verificado en algunas
   oportunidades que cuando la defoliación se produce durante la floración o
   formación de vaina los daños son muy significativos.




                       Fig.9.- Daños producidos por “caballada” A. gemmatalis

Características morfológicas

Costilla (1988) y Lozano (1998) reportan lo siguiente:

Huevo.- Mide aproximadamente 0,5 mm de diámetro, esférico, aplanado en
la base y de superficie estriada, color verdoso en diferentes tonalidades.




                                        14
Larva.- Es delgada, de color verde pálido a café oscuro, con líneas laterales
amarillas o pálidas y líneas dorsales delgadas, los segmentos a menudo
están separados por bandas amarillas delgadas, y de exoesqueleto de
textura aterciopelada. En altas densidades toman una coloración oscura casi
negra. En su máximo desarrollo alcanza entre 28 a 30 mm de longitud.
Presenta pseudopatas caudales bastantes separadas y semejan una V,
característica muy típica de la especie (Fig. 10a)

Pupa.- Es del tipo obtecta, mide 20 a 25 mm de longitud, color café oscuro.
En la parte terminal del abdomen presenta 4 pares de espinas que forman el
cremaster siendo el par más apical casi el doble de largo y diámetro que los
otros tres.

Adulto.- Es de color algo ceniciento aunque hay individuos con tonalidades
rojizas. Las alas tienen manchas de colores claros y oscuros más acentuados
en algunos adultos. La mariposa tiene una envergadura alar de 26 a 36 mm y
posa con las alas abiertas. La característica más distintiva de las alas son
dos líneas, una en vista dorsal de color marrón claro muy definida que
recorre transversalmente la parte más ancha, separándola en dos partes
(Fig. 10 b). La otra línea se observa ventralmente y está formada por
puntuaciones de color blanco dispuestas en una hilera curva que recorre
también transversalmente cerca del extremo de las alas superiores e
inferiores.




                                                               b
    a



        Fig.10.- “Gusano caballada” A. gemmatalis: (a) Larva, (b) Adulto (Crédito, Larry line)

   Biología y comportamiento
   En lo que corresponde a la duración del ciclo de desarrollo, Lozano
   (1998), registra para Tumbes lo siguiente:

   Periodo de incubación       : 03-04 días
   Periodo larval (6 estadios) : 15-20 días
   Periodo pupal               : 08-14 días
   Total                       : 26-38 días

   La hembra oviposita los huevos en forma aislada en medio de las
   nervaduras especialmente en la cara inferior de las hojas entre los pelos.
   Esto lo hace generalmente en los atardeceres o en la noche. Según
   Lozano (1998) una hembra en promedio puede ovipositar entre 207 y 223
   huevos. La larva es medidora y completado su desarrollo baja al suelo se
   entierra teje un cocón o capullo de seda y empupa.



                                               15
Métodos de Control:

     Entre los métodos que se pueden tener en cuenta con la finalidad de
     reducir infestaciones severas se tienen los siguientes:


     Cultural

     Se sugiere una conveniente rotación de cultivos y una buena preparación
     del terreno reforzado con un riego pesado.

     Biológico

     García (1986) cita como predadores de larvas a Calosoma, Blennius
     (Carabidae),     Cycloneda       sanguinea,    Hippodamia   comvergens
     (Coccinellidae), Polystes sp. (Vespidae) y entre los parasitóides a
     Carinodes sp. (Ichneumonidae), Microcharops sp. (Chalcididae) y como
     patógenos de larvas al hongo Nomurea rileyi (Moniliaceae). En Tumbes,
     Zarate (2003) reporta la presencia de los braconidos Apanteles impiger,
     Cotesia sp., al encirtido Copidosma trucantellum y a Elasmus sp.
     (Elasmidae). El autor ha observado la presencia de Glyptapanteles sp.
     (Braconidae) parasitando larvas (Fig.11 a). Del mismo modo pueden
     hacerse liberaciones de 20 a 25 pulg2/ha de Trichogramma pretiosum. Al
     igual que para el caso de Omiodes, se recomienda hacer liberaciones de
     P. nigrispinus para el control de A. gemmatalis (Fig. 11b).




                    a                                      b



          Fig.11. - (a) Larva parasitada por Glyptapanteles sp., (b) Adulto de P. nigrispinus
                                            (Crédito, SENASA)



Químico

Pueden realizarse aplicaciones de cualquiera de los siguientes insecticidas:
trichlorfon (Dipterex 80 PS) al 0,25%, thiodicarb (Larvin 375 F) al 0,1%,
methomyl (Lannate 90 PS) al 0,15%, chlorfuazuron (Atabron) 200 a 250
cc/cilindro de 200 L, Bacillus thurigiensis (Dipel 2X) a dosis de 0,5 a 1 kg/ha.




                                                 16
“Falso gusano medidor”

                   Pseudoplusia includens (Walker, 1857)

Ubicación taxonómica
Orden       : Lepidoptera
Familia     : Noctuidae

Importancia y distribución.- Se encuentra distribuida en toda América y
en el Perú tanto en Costa, Sierra y Selva (Sánchez y Vergara, 1998).En
Tumbes, esta especie es una plaga potencial del cultivo de soya.

Daños.- En los primeros estadios la larva raspa el envés de las hojas
dejando pequeñas manchas transparentes, posteriormente las larvas
comen porciones grandes de hoja haciendo comeduras irregulares,
llegando a dejar solamente las nervaduras, puede atacar vainas. El daño
más importante se produce en ataques previos al llenado de vainas.

Características morfológicas

Sánchez y Vergara (1998) reportan lo siguiente:

Huevo.- Es de contorno semiesférico con estrías radiales, recién
ovipositado es de color blanco, posteriormente adquiere un color verde
claro, mide 0,4 a 06 mm de diámetro.

Larva.- Es de tipo eruciforme, de color amarillento a verde con líneas
laterales y dorsales de color blanco a lo largo del cuerpo, el cual es más
delgado en la parte torácica, presenta pináculos negros. La cabeza
presenta puntos negros. Las patas torácicas generalmente son negras
con tres pares de pseudopatas abdominales de color verde (Fig. 13a). En
el último estadio llega a medir entre 30 a 40 mm de longitud.

Pupa.- Inicialmente es de color verde amarillento y antes de la
emergencia del adulto toma un color marrón claro, llega a medir 20 a 25
mm.

Adulto.- Es de color café oscuro tiene las alas ligeramente bronceadas,
brillantes, con dos manchas plateadas, separadas, en el centro de cada
ala (Fig. 13b). En el aspecto dorsal del tórax presenta una cresta (Fig.
13c). Tiene una expansión alar de 29 a 36 mm.

Biología y comportamiento.- Según Combe y Pérez (1978) para las
condiciones de La Molina – Lima, indican lo siguiente.

Incubación (huevo)   :   03 - 07 días
Periodo larval       :   11 -18 días
Periodo pupal        :   06 - 11 días
Total                :   20 - 36 días



                                  17
Los adultos son de actividad nocturna, la hembra oviposita en forma
     individual en las hojas .La larva se encuentran casi siempre en el envés
     de las hojas y su manera de caminar es arqueando el cuerpo lo que les
     da a esta el nombre común de medidor, empupan en un capullo de seda
     en el envés de las hojas.




                                                                   b
                     a




                                                                        c

               Fig.13. - “Falso gusano medidor” P. includens (a) Larva (crédito, Russ Ottens).
University of Georgia) (b) Adulto en posición de expansión alar, y (c) Adulto visto de perfil (crédito, Humble
                                                  widlife)




     Métodos de Control.

     Biológico

     Es suficiente para mantener las poblaciones reguladas por debajo del
     nivel de daño económico. Entre los predadores Sánchez y Vergara (1998)
     citan a Geocoris punctipes Say, Nabis punctipennis; Metacanthus
     tenellus, Podisus sp., Polistes sp. y arañas y entre los parasitoides de
     huevos a Trichogramma sp. Como parasitoides de larvas citan a
     Litomastix trucantellum (Dalman)(Encyrtidae), Euplectrus plathypenae
     How (Eulophidae), Meteorus leviventris (Braconidae); a los taquinidos
     Eucelatoria digitata Sabrosky, Lespesia sp. y Voria rurales (Fallen) y
     calcididos que emergen de pupas. También reportan a los hongos
     entomopatógenos: Nomurea rileyi y Entomophtora.
     Se recomienda también utilizar larvas afectadas por el virus de la
     poliedrosis a dosis de 50 cc/hectárea, para lo cual se recomienda
     macerar 20 larvas afectadas en 50 cc de agua y luego diluir en 25 litros de
     agua.

     Químico

     trichlorfon (Dipterex 80 PS) al 0,25 %, methomyl (Methavin 90 PS) al 0,1a
     0,15%, cypermetrina + metamidofos (Caporal) al 0,25 a 0,35%, clorpirifos
     (Lorpyfos) a dosis de 600-800 cc/cilindro, clorfuazuron (Atabron ) a dosis
     de 200 a 300 cc/ cilindro.




                                                     18
“Falso gusano medidor”

                      Trichoplusia ni (Hübner, 1803)

Ubicación taxonómica
Orden    : Lepidoptera
Familia : Noctuidae

Importancia y distribución.- Se encuentra distribuida en toda América y
en el Perú tanto en costa, sierra y Selva. Es una plaga potencial del cultivo
de soya en Tumbes.

Daños.- En los primeros estadios la larva raspa el envés de las hojas
dejando pequeñas manchas transparentes, posteriormente la larva comen
porciones grandes de hoja haciendo comeduras irregulares, llegando a
dejar solamente las nervaduras, puede atacar vainas. El daño más
importante se produce en ataques previos al llenado de vainas.

Morfología

Sánchez y Vergara (1998) reportan para esta especie lo siguiente:

Huevo.- Es de contorno semiesférico con estrías radiales, recién
ovipositado es de color blanco, posteriormente se torna de color verde
claro, y mide 0,4 a 0,6 mm de diámetro (Fig. 14 a).

Larva.- De tipo eruciforme, color verde pálido a verde azulado. El cuerpo
se adelgaza hacia la cabeza. Tiene longitudinalmente una línea blanca
delgada pero notoria en cada lado del cuerpo, justamente debajo de los
espiráculos y otras dos cerca de la línea media del dorso, sin
microespinas. Las patas torácicas generalmente son delgadas con tres
pares de pseudopatas abdominales más anchas en forma de maza de
color verde (Fig. 14 b). En el último estadio llega a medir entre 30 a 40
mm de longitud.

Pupa.- Inicialmente es de color verde amarillento, pero antes de la
emergencia del adulto adquiere una coloración marrón claro, llega a medir
20 a 25 mm.

Adulto.- De color café opaco, tiene las alas ligeramente bronceadas
brillantes, presenta dos manchas plateadas unidas que forman una
especie de ocho en el centro de cada ala (Fig. 14 c y d). Tienen una
expansión alar de 30 a 38 mm.

Biología y comportamiento.- Según Combe y Pérez (1978) para las
condiciones de La Molina – Lima reporta la siguiente información.




                                  19
Incubación (huevo)            :   03 - 07 días
     Periodo larval                :   11 -18 días
     Periodo pupal                 :   06 - 11 días
     Total                         :   20 - 36 días

     Los adultos son de actividad nocturna, la hembra oviposita en forma
     individual en las hojas superiores verticales del hospedero. Una hembra
     oviposita alrededor de 275 a 300 huevos. La larva se encuentran casi
     siempre en el envés de las hojas y su manera de caminar es arqueando el
     cuerpo, empupa en un cocón delicado de hilos de seda en las hojas de
     las cuales se alimenta.




                                                       b
           a




           c                                               d




Fig.14.- “Falso medidor” T. ni (a) Huevos (crédito, ICI) (b) Larva, (c) Adulto visto de perfil (crédito: Barry
   Stewart) (d) Adulto en posición de expansión alar (Crédito: Colegio Postgraduados Chapingo-México)




     Métodos de Control

     Similar al de P. includens




                                                     20
“Gusano enrollador de fríjol”
                   Urbanus proteus (Linnaeus, 1758) (Eudanus proteus)

Ubicación taxonómica
Orden       : Lepidoptera
Familia     : Hesperiidae

Daños.- Es ocasionado por la larva que enrolla las hojas hacia arriba y comen
en su interior produciendo huecos en las hojas destruyéndolas por completo.

Características morfológicas
Sánchez y Vergara (1998) y Capinera (2009) reportan la siguiente información:

Huevo.- De forma esférica, ligeramente aplanado en la base, mide alrededor
de 1 mm de diámetro, inicialmente es de color blanco, posteriormente adquiere
un color amarillo (Fig. 15a).

Larva.- Presenta color verde amarillento con muchos puntos finos de color
negro y con una línea longitudinal de color negro sobre todo el cuerpo y dos
líneas de color amarillo en la áreas laterales, la cabeza y protórax de color
marrón. El protórax es reducido. Las pseudopatas son de color amarillo rojizo
(Fig. 15b).

Pupa.- Es de color amarillo a marrón oscuro y llega a medir 20 mm y es
cubierta por una pubescencia blanco azulada.

Adulto.- Mide alrededor de 50 mm de expansión alar, las alas son de color
marrón oscuro con 5 a 7 manchas cuadradas o rectangulares de color blanco a
y medio transparentes y con brillo azul verdoso sobre todas las alas (Fig. 15c).

Biología y comportamiento
Se tiene la siguiente información.
Incubación (huevo) : 04-05 días
Periodo larval         : 15-20 días
Periodo pupal          : 05-06 días
Total                  : 23- 31 días

Los huevos son ovipositados en forma individual o en grupos de dos a seis en
las puntas de las hojas, empupan en el cartucho de las hojas (Capinera, 2005).

Método de control:
Mecánico: Recojo de larvas




                          a           b                                    c

       Fig.15. - “Enrollador de fríjol” U. proteus (a)Huevo y (b) Larva (crédito: University of Florida)
                  (B) Adulto en posición de expansión alar (crédito,entweb.clemson.edu)




                                                     21
“Escarabajo de hojas”, “mosquilla” o “cucarroncito”

                     Cerotoma fascialis Erichson, 1847

Ubicación taxonómica
Orden    : Coleoptera
Familia : Chrysomelidae

Distribución e importancia.- En la región de Tumbes es una plaga clave en el
cultivo de soya y en el cultivo de fríjol caupi. Esta especie se encuentra
distribuida en toda la costa del Perú (Avalos, 1981).

Daños.- Lo ocasiona la larva al alimentarse de las raíces y nódulos y el adulto
al alimentarse de las hojas. El adulto además de perforar las hojas (Fig. 12),
puede perforar también los cotiledones de plantitas recién germinadas, flores o
vainas jóvenes. Se considera que son transmisores de enfermedades virósicas.
Además de esta especie en el cultivo de soya se presenta Diabrotica decolor
pero en bajas poblaciones.




                        Fig.12.- Daños en fríjol caupi ocasionados por C. fascialis
                                       (Crédito: S. Carbajal. UNPRG)




 Características morfológicas

 De acuerdo a lo reportado por CIAT (1981), García et al. (1982) y Gonzáles et
 al. (1982) se tiene lo siguiente:

 Huevo.- Es de forma elíptica, superficie reticulada de color anaranjado hasta
 color ladrillo mide 0,72 x 0,42 mm de diámetro polar y ecuatorial.

 Larva.- Presenta un color crema, con cabeza y una placa anal quitinizada de
 color café oscuro. Presenta patas torácicas y una pseudopata caudal. Mide
 8,6 mm en promedio. Por lo general presentan 3 estadios.

 Pupa.- De tipo exárate o libre, mide 3 a 4,5 mm. Los élitros y las alas están
 ligeramente desplazados unos sobre las otras y recubren una parte del
 abdomen.




                                          22
Adulto.- Presenta cabeza, tórax y abdomen de color negro. Las patas en
 general son de color amarillo ámbar, pero las patas posteriores presentan un
 área negra en el tercio apical del fémur. Los élitros son del mismo color que
 las patas pero con áreas negras bien diferenciadas, miden de 4,5 a 6 mm
 (Fig. 13a). Presentan polimorfismo (Fig. 13b) y dimorfismo sexual a nivel de
 antenas (Fig. 13c).


                                                                                1

                                                                                               2



                                                                                           c
            a                              b
                                                                         c.1. macho, c2.hembra

       .
 Fig.12.- C. fascialis (a) Adulto típico, (b) Adulto polimórfico, y (c) diferencias entre antenas de macho y
                                        hembra (Crédito: Gonzáles et al.)



Biología y comportamiento

En lo que respecta a la duración del ciclo de desarrollo.- Gonzáles et al. (1982)
para el valle del Cauca Colombia, reportan los siguientes datos:

Periodo de incubación       : 6,4 días
Periodo larval (3 estadios) : 10,6 días
Periodo de pre-pupa         : 2,9 días
Periodo de pupa             : 6,4 días
Total                       : 26,3 días

En un ensayo de crianza masal en condiciones de Tumbes, López (1992)
reporta que el ciclo de desarrollo de los individuos que fueron criados con dieta
de soya tuvieron una duración de 33 a 38 días y los criados en dieta de fríjol
caupi 28 a 36 días, las hembras criadas con la dieta de fríjol caupi ovipositaron
en promedio 894 a 912 y aquellas con la dieta de soya, en promedio
ovipositaron 454 a 482 huevos.

Las hembras ovipositan alrededor de la base del tallo de las plantas, en la
proximidad de las raíces dependiendo del agrietamiento del suelo. Cuando la
larva alcanza su máximo desarrollo empupa en un cocón.


Métodos de Control

Cultural

   •       Se recomienda hacer una buena preparación del suelo, con la finalidad
           de exponer huevos, larvas y pupas a la acción del sol y a la acción de
           los predatores.


                                                    23
•   Eliminación de plantas hospederas especialmente la especie conocida
       como tacón de campo.

 Químico

 Cuando la infestaciones de adultos son altas, se recomienda la aplicación de
 cualquiera de los siguientes insecticidas, carbaryl (Dicarbam 85 PM o Sevin
 85 PM) de 0,3 a 0,4 %, fipronil (Regent 200 SC) a dosis de 200 a 250 cc/ha,
 Malathion 57 CE al 0,3%, methomyl ( Methavin 90 PS o Lannate 90 PS) al
 0,15%, clorpirifos (Lorsban 4E) al 0,2%.

                     “Mosca blanca” o “petrolera”

                      Bemisia tabaci (Gennadius, 1889)

Ubicación taxonómica

Orden        : Hemiptera
Familia      : Aleyrodidae

Distribución e importancia. Se encuentra en toda la costa del Perú. Esta
especie se convierte en muy importante en el cultivo de soya y en menor
escala en fríjol caupi.

Daños.- Ocasiona daños directos e indirectos. El daño directo lo hace el adulto
y la ninfa al extraer grandes cantidades de savia de las plantas, lo que reduce
el vigor de estas, afectando la producción. Los daños indirectos son de 2
clases: primero, es causado por la secreción del adulto y ninfa de sustancias
azucaradas sobre las hojas en donde desarrolla el hongo de la fumagina, lo
que reduce la capacidad fotosintética de estas (Fig. 16); segundo, esta especie
es excelente vector de enfermedades causadas por virus de la familia
Geminiviridae (Sánchez y Vergara,1998).




                        Fig.16.- Daños ocasionados en soya por “mosca
                                    blanca” B. tabaco




                                         24
Características morfológicas

   CIAT (1979) y Sánchez y Vergara (1998) reportan para esta especie lo
   siguiente:

   Huevo.- Presenta forma ovalada y un pequeño pedicelo que le permite
   adherirse a la hoja (Fig. 17a), recién ovipositado es de color blanco
   cremoso y conforme avanza el periodo de incubación se vuelve de color
   oscuro mide 0,2 mm de longitud.

   Ninfa.- Pasa por tres estadios, el primer estadio (crawler) es de color
   amarillo verdoso, aplanado y oval; con patas pequeñas que le permiten
   desplazarse a cortas distancias del lugar de emergencia. Los dos estadios
   siguientes (II y III) no son móviles debido a sus patas atrofiadas; son
   achatados, en forma de escamas la cual se protege con polvo ceroso
   (Fig. 17b). Mide 0, 29 a 0,52 mm de longitud.

   Pupa (Ninfa IV).- Es de forma oval, con márgenes redondeados,
   protegida en algunos casos con abundantes proyecciones cerosas. Se
   puede observar a los costados dos manchas de color rojo que serán los
   futuros ojos del adulto.

   Adulto.- Mide 0,94 a 1,4 mm de color blanco debido al polvo ceroso que
   es secretado por un par de glándulas (Fig. 17c), eliminan mielecilla a
   través del opérculo de la placa anal, esta mielecilla al depositarse sobre el
   área foliar facilita el desarrollo del hongo de la fumagina.

   Biología.- Tiene una metamorfosis especial denominada remetabola. El
   adulto deposita sus huevos en el envés de las hojas especialmente las del
   tercio inferior en forma aislada. Una hembra de B. tabaci puede poner
   entre 50 a 100 huevos por hembra. El periodo de incubación dura en
   promedio de 7 a 14 días, pasa por 3 estadios ninfales que duran de 7 a 23
   días dependiendo de la temperatura. Pupa de 2 a 4 días.




            Fig.17.- “Mosca blanca” B. tabaci : (a) huevos (b) Ninfas (c) Adulto (Crédito: ICI)

Métodos de Control

Cultural.

 Eliminar los rastrojos del cultivo inmediatamente después de la cosecha,
 principalmente si ha sido hospedero de la plaga y presenta síntomas de
 virosis.

   Debe existir periodo de campo limpio.


                                                25
Establecer siembras escalonadas de maíz o sorgo, para facilitar el
 desarrollo de la población de crisopas, chinches, coccinélidos y arañas.

   Efectuar riegos adecuados, evitando la sequía.

 Instalación de plantas trampa alrededor del cultivo tal como melón, sandía,
 zapallo o crotalaria, donde se realizará la aplicación de insecticidas en
 forma localizada.

Etológico

Usar trampas pegantes fijas, de color amarillo, ubicándolas en el contorno,
según la dirección del viento, y dentro del campo.

Mecánico

Usar trampas pegantes móviles construidas de plástico amarillo (2 a 3
pasadas semanales).

Biológico

García (1986), reporta predadores de huevos y ninfas como: Delphastes
catalinae, Coleomegilla maculata, Hippodamia convergens, (Coccinellidae),
Geocoris sp. (Lygaeidae) Metacantus tenellus (Neididae), Chrysoperla
externa (Chrysopidae), Amblyseusius sp.(Phytoseidae).

Gonzáles (2007) reporta para Tumbes a los parasitoides Encarsia
nigricephala (Ninfas III y Pupas), y Eretmocerus sp. (Pupas). Sánchez y
Vergara (1998) reportan la acción de hongos entomopatogenos Verticillium
lecanii, Beauveria bassiana, Paecilomyces fumosoreus,

Químico

Buprofezim (Applaud, Hook, Triunfo) a dosis de 200 g/cilindro, acetamiprid
(Rescate PS) a 150-200 g/ha, thiamethozam (Actara 25 WG) a la dosis de
250 g/ha. De igual modo se recomienda la aplicación del bioinsecticida a
base del hongo Entomophthora virulenta (Vektor) 250 ml/200L.




                                    26
“Trips”

                   Caliothrips braziliensis Morgan

Ubicación taxonómica
Orden    : Thysanoptera
Familia : Thripidae

Daños.- Esta especie ocasionalmente produce daños económicos,
especialmente bajo condiciones cálidas y secas. El adulto y ninfa succiona
la savia de las hojas, y yemas dándoles una apariencia decolorada o
plateada, que puede volverse café. También puede causar malformación
o achaparramiento de la planta y retardar el crecimiento.

Características morfológicas

Adulto.- La hembra es de color marrón oscuro, margen anterior de la
cabeza es amarillento, los tarsos y ápices de las tibias son de color
amarillo, segmentos antenales II a IV amarillo con sombreado marrón
apicalmente. Las alas anteriores son marrones, con 3 bandas blancas
transversales sub-apicalmente, medial y sub basalmente, pero las bandas
medianas algunas veces débiles. La cabeza es reticulada, con márgenes
a los lados de los retículos. La antena tiene 8 segmentos. El pronotum no
presenta setas largas. El tarso es uní segmentado (Fig. 19).

Métodos de Control

•   Cultural.

    Se recomienda mantener una adecuada humedad en el campo

•   Químico.
    benfuracarb (Oncol 40 CE ) 200 a 300 cc/cilindro, clorpirifos (Paladín
    480 C.E, Lorsban 4E)          300 a 400 cc/cilindro, cypermetrina+
    metamidophos (Caporal 540 E.C. ) 500 a 750 cc/cilindro, cypermetrina
    (Cypertrin 200 EC. ) 200 cc/cilindro.




                 Fig.19.- Adulto de C. braziliensis (crédito: Laurence Mound)




                                       27
“Arañita roja”

                Tetranychus cinnabarinus Boisduval

Ubicación taxonómica
Orden    : Acarina
Familia : Tetranychidae

Características morfológicas
De acuerdo a lo reportado por Sánchez y Vergara (1998) se tiene lo
siguiente:

Huevo.- Tiene forma esférica y con la superficie del corion liso. Recién
ovipositado presenta una coloración clara, transparente y brillosa,
posteriormente se torna amarillento hasta alcanzar un color naranja o
rojizo brilloso. Mide 0,11 a 0,15 mm de longitud.

Larva.- Es ovalada, hexápoda. Inicialmente amarillo-transparente, con
manchas oculares rojizas. A medida que se alimenta cambia de color,
observándose dos manchas en el dorso a cada lado del idiosoma. Mide
entre 0,14 a 0,24 mm de longitud.

Ninfa.- Es octopoda, de color verde claro, con las manchas del idiosoma
más acentuadas. Alcanza a medir 0,24 a 0,45 mm.

 Adulto.- La hembra es de forma oval y con el cuerpo cubierto de setas,
 tanto dorsales como ventrales, siendo las dorsales en número de 24. Las
patas son de color claro, con el primer par mas largas que las demás y el
 cuarto par del área anal. El color general es rojo carmín, mientras que el
macho es amarillo pálido a verdoso, con las patas de color canela y más
largas que en las hembras. El macho mide entre 0,31 a 0,41 mm mientras
que la hembra 0,43 a 0,48 mm.

Métodos de Control

Químico

Clorobenzilato 25% CE al 0,1%, dicofol Kelthane 18,5% PM al 0,25%
Sulfer Saume es una forma especial de azufre, que actúa por contacto en
el control de insectos, hongos y ácaros 25 a 30 kg/ha. Metamidofos
(Stermine 600 SL) 500 a 750 cc/200 L.




                       Fig.20.- arañita roja T. cinnabarinus




                                     28
“Barrenador de los brotes”

                     Epinotia aporema (Walsingham, 1914)

Ubicación taxonómica
Orden    : Lepidoptera
Familia     : Tortricidae

Distribución e Importancia.- Se encuentra distribuida desde el sur de
Estados Unidos de América, México, América Central y del Sur. En el
Perú, se le ha registrado en las tres regiones pero tiene mayor incidencia
en la costa (Avalos, 1981) y Sánchez y Vergara (1998).Constituye una
plaga importante del cultivo de leguminosas. En condiciones de Tumbes
se comporta como una plaga potencial.

Daños.- Son ocasionados por la larva que pega las hojitas del brote
terminal que luego son comidas y la yema terminal destruida, lo mismo
sucede con las yemas axilares, puede barrenar tallos y ramas, destruir
flores y perforar vainas; infestaciones sucesivas comprometen el
desarrollo del cultivo.




                 a                              b


            Fig.21.- Daños ocasionados por E. aporema (a) brotes y (b) tallos


Morfología
Sánchez y Vergara (1998) reportan lo siguiente:

Huevo.- Es elíptico un poco convexo, de color verde claro a amarillo
naranja y de aproximadamente 0,5 mm de diámetro.

Larva.- En los 3 primeros estadios larvales tiene una coloración verde
claro, siendo posible observar por transparencia el contenido oscuro del
tubo digestivo. La cabeza y el escudo pro torácico es de color negro
brillante (Fig. 22a). En el cuarto estadio adquiere una coloración más
verdosa, con cabeza y escudo pro torácico de color negro. En el quinto
estadio presenta una coloración amarillenta, con la cabeza y el escudo pro
torácico marrón claro, y normalmente, antes de entrar al periodo de pre-
pupa adquieren una coloración rosácea. En su máximo desarrollo mide 6
mm de largo.

Pupa.- Es obtecta, de 5 a 7 mm de longitud, de color castaño rosado.



                                       29
Adulto.- Tiene una expansión alar de 13 a 15 mm, de color marrón
grisáceo con dibujos claros y negros que configuran en el ángulo externo
de, las alas exteriores un ojo, y en la parte media una letra V (Fig. 22b). El
macho se distingue de la hembra por poseer un pliegue costal en la
longitud del ala anterior y por ser su coloración en total más clara.




                              a
                                                                           b


            Fig.22.- E. aporema (a) larva (crédito Aventis.S.A.), (b) Adulto

Biología y comportamiento

En lo que corresponde a la duración del ciclo de desarrollo, Wille (1952)
para condiciones de la costa y para verano e invierno, da respectivamente
la siguiente información:

Incubación (huevo)       :   04-07 días
Periodo larval           :   16-25 días
Periodo pupal            :   10-28 días
Total                    :   30-60 días

La mariposa oviposita sus huevos sobre las partes más tiernas de la
planta, brotes y hojitas nuevas en la cara inferior de las hojas cerca de la
nervadura central o bien a lo largo de ella. Una hembra en promedio pone
de 110 a 180 huevos. La larva recién emergida, simultáneamente comen
en las hojitas en el brote mismo; en los primeros estadios esqueletiza
superficialmente a la epidermis, pero más tarde destruye en forma muy
efectiva y rápida los órganos infestados, en todos sus estadios tejen finos
hilos de seda reuniendo las hojitas destruidas y formando un estuche.

Métodos de Control

Cultural.

Destrucción de residuos de cosechas, rotación de cultivos.

Biológico.
Entre los enemigos naturales se mencionan como parásitoides de larvas a
los taquínidos Eucelatoria australis y Nemorilla sp. al braconido Apanteles
sp., y entre los predadores a Rhinacloa forticornis (Miridae), Geocoris
punctipes (Lygaeidae) y Nabis sp. (Nabidae).

Químico.

En caso de infestaciones severas se puede aplicar los siguientes
insecticidas: carbaril (Sevin 85 PS) al 0,35%, metamidofos + ciflutrina
(Baytroid TM 525 SL) al 0,15%; clorpirifos (Paladin 480 EC) 1 L/ha.


                                          30
“Gusano Perforador de los Tallos y Vainas”

     Cydia fabivora (Meyrick 1928) (Laspeyresia leguminis Heinrich)

   Ubicación taxonómica
   Orden    : Lepidoptera
   Familia : Tortricidae

   Distribución e importancia.- Esta especie se halla distribuida en toda la
   Costa del Perú. En Tumbes se comporta como una plaga potencial,
   siendo los cultivos atrasados los mayormente afectados.

   Daños.- Es ocasionado por la larva que barrena tallos cuando la soya aún
   carece de vainas bien formadas, el ataque inicia en las axilas de las
   ramas laterales con el tallo, a medida que la larva alcanza su máximo
   desarrollo ingresa al interior del tallo haciendo galerías en el cilindro
   central impidiendo la circulación de la savia hecho que motiva el
   marchitamiento paulatino y la muerte de las plantas. En las vainas las
   larvas hacen galerías y destruyen las semillas (Fig. 23), eliminando por
   los agujeros los excrementos hacia afuera que quedan aglomerados
   sobre el agujero y reunidos por finos hilos de seda.




                         Fig.23.- daños en vainas ocasionados por el
                       “gusano barrenador de vainas y tallos” C. fabivora.

Características morfológicas.
De acuerdo a lo reportado por Risco (1951), Sánchez y Vergara (1998)
tenemos la siguiente descripción.

Huevo.- Tiene forma globular, sin embargo, no se presenta como esfera
completamente redonda, es algo aplanado en la parte basal, de estructura
reticulada, formada por pequeños hexágonos y pentágonos. Recién
ovipositado es de color amarillo cremoso, luego presenta una coloración rojiz
y finalmente en el interior del huevo se va formando una mancha rojo vinoso
oscuro, de forma más o menos circular y concéntrica a la superficie.

Larva.- Recién eclosionada presenta color amarillo anaranjado, en su último
estadio toma coloraciones más oscuras, la cabeza y el protórax son de color
bruno oscuro hasta negro. La larva llega a medir hasta 19,0 mm. Próxima al
estado de pupa (pre-pupa) adquiere una coloración rosácea.




                                        31
Pupa.- Es del tipo obtecta y presenta inicialmente color marrón claro,
posteriormente se torna de color marrón oscuro al estar por emerger el
adulto, mide 8 mm. La característica de esta pupa es que presenta en el
aspecto latero dorsal de los segmentos abdominales dos hileras de espinas,
la hilera anterior son espinas de mayor tamaño que las espinas de la hilera
posterior.

Adulto.- Es de color ceniciento con reflejos plateados debido a la coloración
de sus escamas que recubren totalmente el cuerpo y la superficie del ala. En
el ángulo formado por el margen anterior y el margen externo se puede
apreciar la presencia de una mancha pequeña irregular , comprimida de color
plateado la cual parece continuarse siguiendo el borde del margen externo,
pero, es interrumpida más o menos a la mitad de su recorrido por una
mancha de color ceniciento (Fig. 24). La expansión alar varía entre 18 y 22
mm.




                              Fig.24.- Adulto del “barrenador de
                                  tallos y vainas” C. fabivora

Biología y comportamiento

En lo que corresponde a la duración del ciclo de desarrollo, Risco (1951) para las
condiciones de Lima y utilizando como substrato alimenticio el fríjol proporciona la
siguiente información:

Incubación (huevo)   :   04-08 días
Periodo larval       :   20-30 días
Periodo pupal        :   13-27 días
Total                :   37-65 días


                                          32
Los huevos son ovipositados en forma aislada o en grupos sobre las vainas
contrastando con el color de estas, pero como la mariposa pone sus huevos en los
tallos y ramas el color es disimulado. La larva recién eclosionada permanece inmóvil
durante algún tiempo después del cual comienza a barrenar en zonas próximas al
sitio en que el huevo es ovipositado. El estado de pupa se lleva a cabo dentro del
tallo o las vainas para lo cual las larvas construyen un cocón de seda muy fino. Los
adultos son de hábitos nocturnos.

Métodos de Control

El control está orientado básicamente a sembrar en las fechas establecidas para el
valle evitando siembras atrasadas y al uso de variedades precoces.



Biológico

En lo que respecta a enemigos naturales en Tumbes el autor ha observado un
parasitoide de larvas pertenecientes al género Bracon, para otras condiciones se
reporta a Orgilus sp. y a Plagiprospherysa parvipalpis (Tachinidae). Como
predadores se puede citar a Rhinacloa forticornis y Geocoris punctipes

Se recomienda hacer liberaciones de Trichogramma pintoi a razón de 100 000
individuos / semana durante la fructificación proporcionando buenos resultados.

Químico
Si se presentan fuertes infestaciones se puede recurrir al uso de insecticidas entre
los que se podrían indicar: carbaryl (Sevin 85 PS) al 0,3%, dimetoato +clorpirifos
(Saluthion ) al 0,15% ó 0,20 %; metamidofos+cyfluthrin (Baytroid TM 525 SL) a 0,15
ó 0,2%.




                                       33
“Escarabajo barrenador de los peciolos y tallos”

                                  Grammopsoides sp.

Ubicación taxonómica
Orden       : Coleoptera
Familia     : Cerambycidae

Daños.- Es ocasionado por la larva que barrena inicialmente los peciolos y
posteriormente los tallos haciendo galerías en el cilindro central impidiendo la
circulación de la savia que motiva el marchitamiento paulatino y la muerte de
las plantas.

Características morfológicas.
De acuerdo a lo observado por el autor se tiene lo siguiente descripción.

Larva.- Es de tipo cerambiciforme de color blanco cremoso llega a medir cerca
de 20 mm (Fig. 25a).

Pupa.- Es del tipo exarate y presenta inicialmente color marrón claro,
posteriormente al estar por emerger el adulto adquiere un color marrón oscuro,
mide 8 mm. Se puede observar los apéndices en formación (Fig. 25b).

Adulto.- Presenta cuerpo cilíndrico alargado, de color negro, la característica
es que tiene antenas muy largas. Mide 18 y 22 mm (Fig. 25c).




         a                          b                         c


              Fig.25.- Escarabajo barrenador de los peciolos y tallos Grammopsoides sp.
                 (a) Larva, (b) pupa y (c) adulto (Crédito. M.Arias,INIAP-Ecuador)




                                             34
“Chinches de las Vainas”, “chinches hediondos” o
                           “chinches escudo”

                          Euchistus rubiginosus Dallas, 1851,
                         Piezodorus guildinii, Westwood, 1837
                     Acrosternum (chinavia) ubicum Rolston, 1983,
                        Loxa viridis (Palisot de Beauvois, 1805)
                           Nezara viridula (Linnaeus, 1758)


Ubicación taxonómica
Orden    : Hemíptera
Familia : Pentatomidae

Daños.- Es ocasionado por las ninfas y los adultos pueden llegar a impedir el
normal desarrollo de las vainas, dañando total o parcialmente una o más
semillas de su interior ocasionando semillas pequeñas.




   Fig.26.- Chinches que ocasionan daño a vainas: (a) E. rubiginosus, (b) P. guildinnii, (c)A. ubicum,
     (d) L. viridis (crédito Museum of Comparative Zoology(MCZ) Harvard University (e) N. viridula
                        insectographs.com.au/media/Greenvegetable.jpg



“Chinche de la alfalfa” Piezodorus guildinii Westwood, 1837
Características morfológicas

• Huevo.- Es de forma cilíndrica con base redondeada su color es gris con
  una ancha banda central transversal y una faja angosta del mismo color en
  el borde superior. Tiene un corion reticulado y pubescente. Mide 0,8 mm. de
  altura y 0,5 mm de diámetro.
• Ninfa.- En el primer estadio posee cabeza y tórax negro de color negro y
  abdomen verde amarillento manchas dorsales negras, en este estadio mide
  0,8 mm de longitud de forma casi esférica. En el quinto estadio, posee
  cabeza de color verde con márgenes negros, el tórax es verde y presenta
  muchos puntos negros, el abdomen es blanco verdoso o verde amarillento
  con tres manchas vinosas y las manchas centrales negras. Bordeando
  dorsalmente el abdomen se observa una línea negra; ventralmente el
  abdomen es verde amarillento miden 10 mm de longitud, se observan los
  rudimentos alares.




                                                  35
• Adulto. Llega a medir 10 mm de color verde claro recién emergido,
  posteriormente presenta un color ocre sucio. En la parte posterior del
  pronoto por lo general hay una banda transversal parda oscura. Los
  hemielitros son verdes con una manchita negra en el corión y la membrana
  es incolora y transparente.

Biología y comportamiento.- La hembra coloca los huevos sobre hojas, flores
y frutos de las plantas hospederas números de 13 a 17 en dos hileras
paralelas, puede poner entre 130 a 170 huevos, las recién nacidas permanecen
cerca de dos horas para luego pasar a las hojas, flores y para alimentarse.

     Incubación         : 07-08 días
     Ninfa              : 25 -33 días (5 estadios)
     Total                32-41 dias


 Acrosternum (chinavia) ubicum Rolston, 1983
 Schwerthner et al. (202) reportan para el estado de huevo y ninfa lo que a
 continuación se detalla:

• Huevo.- Presenta un corion reticulado y procesos micropilares clavados de
  coloración blanca, presenta una coloración ocre a castaño pardo. Mide 1,36
  mm de altura y 1,15 mm de diámetro.

• Ninfa.- Del primer al tercer estadio, la ninfa tiene una coloración de cuerpo
  predominantemente oscura, el abdomen presenta una serie de manchas de
  coloración crema blanca. A partir del segundo estadio, presentan manchas
  de coloración rojizo a rojizo anaranjado en las márgenes dorsales del
  pronoto y mesonoto. La coloración rojizo-anaranjada de las manchas
  dorsales es aparentemente especifica de A. ubicum. A partir del 4º estadio,
  las manchas son mas amplias, pudiendo también ocurrir en las márgenes
  de los jugum, en la superficie dorsal del pronoto y mesonoto y en el centro
  de las placas medianas y laterales del abdomen. El 4º y 5º estadio presenta
  formas oscuras y claras, siendo que su proporción varía de acuerdo con el
  tipo de alimento ofrecido.


• Adulto. Es de un color verde claro llegan a medir 12 mm de longitud

Loxa viridis (Palisot de Beauvois, 1805)

Adulto. Es un chinche grande de color verde claro, el pronotum presenta
prolongaciones laterales a manera de espina y los márgenes anteriores son
aserrados, connexivia ligeramente expuesta; proboscis alcanza la porción
media del metasterno o el margen posterior del esternito abdominal III, llegan a
medir 22 mm de longitud. No se ha logrado obtener información morfológica del
estado de huevo y ninfa.




                                      36
"Chinche verde” Nezara viridula (Linnaeus, 1758)

Características morfológicas

Huevo.- Es cilíndrico con base redondeada, de color amarillo anaranjado; tiene
un opérculo convexo blanco nacarado, próximo a la eclosión es de un color
rojizo anaranjado. Mide 1,25 mm de altura y 0,85 mm de diámetro.

Ninfa.- En el primer estadio presenta un color negro con 4 manchas amarillo
anaranjado, en este estadio mide 1,6 mm de longitud. En el quinto estadio
miden 11 a 12 mm de longitud, de colores verde claro a oscuros se observan
los rudimentos alares.

Adulto.- Existen dos formas una que es completamente verde y la otra que
además del verde presenta en la parte antero posterior de la cabeza y anterior
del pronoto callosidades amarillentas y, a veces algo rojizas. Llegan a medir de
14 a 15,5 mm

Biología y comportamiento
En lo que respecta al ciclo de desarrollo se cuenta con la siguiente información.

Huevo (Incubación    : 05 - 11 días
Ninfa                : 25 - 60 días (5 estadios)
Total                : 30- 71 días

La hembra coloca los huevos en el envés de una hoja en número de 55 a 105,
la ninfa del primer estadio se alimenta muy poco; viven agrupadas sobre los
restos de los huevos hasta producirse la muda, luego se dispersan por el
vegetal.

Métodos de Control
Biológico

Se reporta como parasitoide de huevos al Scelionidae Trissolcus scuticarinatus
y de adultos a los taquinidos Trichopodopsis y Gymnosmatida

Químico.- En caso sea necesario se puede aplicar los siguientes insecticidas
metamidofos + ciflutrina (Baytroid TM 525 SL) a dosis de 0,75 L/ha,
betacyflutrina (Bulldock 25 EC) a 0,2 L/ha.




                                       37
VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

•   AVENTIS.S.A. http://www.viarural.com.ar/agricultura/aa-insects/epinotia-aporema.1jpg
•   ARIAS, LOPEZ DE. M. 1981. Manejo Integrado de Insectos Plaga en Soya: En            : Manual del Cultivo
       de Soya (Glycine max (L.) Merril. Editorial INIAP-Ecuador: pp. 63-77
•   AVALOS, F. 1981. Plagas e las leguminosas alimenticias. II Curso Intensivo de l Control Integrado de
       Plagas y Enfermedades Agrícolas UNA-La Molina. Tomo III: fascículo 41: 16 pp.
•   CARRASCO DE LAMA, R. A. 1995. Fluctuación poblacional de la mosca minadora (Liriomyza sativae
       Blanchard, Diptera: Agromyzidae) y su parasitoides en el fríjol caupi en el valle de Tumbes. Tesis
       para optar el Título de Ingº Agrº Universidad Nacional de Tumbes-Perú.129 pp.
•   CASTILLO-CARRILLO, P. S. 1997. Principales Plagas del cultivo de Fríjol Castilla en el Valle de
       Tumbes. Edtorial. PET-UNT. Segunda edición. 28 pp.
•   CRUZ, L. y P. CASTILLO-CARRILLO. 1988. Omiodes indicata (Lepidoptera: Pyralidae) en Tumbes:
       ciclo biológico y potencial reproductivo en insectario. Rev. per. Ent. 31:103-106.
•   CENTRO INTERNACIONAL DE AGRICULTURA TROPICAL.1981. Principales crisomélidos que tacan
       el fríjol y su control; guía de estudio para ser usada como complemento de la unidad audiotutorial
       sobre el mismo tema. Contenido Científico: César Cardona y Jorge García, Producción: Héctor F.
       Ospina y Marceliano López. Cali, Colombia. CIAT. 24 pp.
•   ……………………………………………………………………..1979. Descripción y                                     daños de las plagas
       que atacan fríjol. 41 pp.
•   COLEGIO POSTGRADUADOS DE CHAPINGO MEXICO. www.colpos.mx/entomologia/plagas2.htm.
•   COSTILLA, M. A. 1988. Biología e importancia de la oruga verde de la soja Anticarsia gemmatalis
       Hub. (Lepidoptera:Noctuidae) Rev. Ind. Y Agrícola de Tucumán, 65         (1-2): 169 -184.
•   COMBE L.,I. y G. PEREZ.1978. Biología del “gusano medidor” Pseudoplusia includens (Walk)
       (Lep.:noctuidae) en Rev. Per. Ent. 21:61-62.
•   CRUZ, L. y P. CASTILLO-CARRILLO. 1989. Omiodes indicata (Lepidoptera, Pyralidae) en Tumbes:
       ciclo biológico y potencial reproductivo en insectario. En Rev. per. Ent. 31:103-106(junio 1989).
•   EXTENSION ENTOMOLOGY. http://insects.tamu.edu/images/insects/color/cloop1.
•   GARCIA, F. J. PULIDO y A. De GUTIERREZ.1982. Plagas de la soya. En: Instituto Colombiano
       agropecuario. Curso de producción de soya. 3er. Edición. Edit. ICA-INSOY. Palmira, Colombia. :
       pp 251-316
•   GARCIA, U. 1986. insectos dañinos de las leguminosas. Copias mimeografiadas. UNA-La Molina.
       Lima-Perú. 27 pp.
•   GONZALES, J. A. 2007. Población de mosca blanca Bemisia tabaci Gennadius y sus parasitoides en
       el cultivo de soya Glycine max (Linneo) en el centro de Investigaciones y Extensión Agraria Los
       Cedros-Tumbes, Octubre 2004- septiembre 2005.             Tesis para optar el Título de Ing. Agr.
       Universidad Nacional de Tumbes-Perú.56 pp.
•   GONZALES, R.; CARDONA, C. Y A. V. SCHOONHOVEN. 1982. Morfología y biología de los
       crisomelidos Diabrotica balteata Le conté y Cerotoma fascialis Erickson como plagas del fríjol
       común. Turrialba.Vol 32 Nº 3. 257-264.
•   HAMBLE WILDLIFE. www.humblewildlife.com/moths/images/moths_2_agair-jpg
•   HERBISON, D. y S. CROSBY. www.staff.it.uts.edu.au/-donlarvae/noct./ypsile.html. Acceso. 06
       septiembre 2009.



                                                      38
•   ICI-PLAN PROTECTION DIVISION. 1985. Manual de Identificación de las Plagas del Algodonero.
       Printed in England by Dramrite Printers Limited, London.40 pp.
•   LOPEZ, L. E. 1993. Determinación de Un Método de Crianza para la Mosquilla de la Soya (Cerotoma
       fascialis Erickson) bajo condiciones de insectario. Tesis para optar el Título de Ingº. Agrº.
       Universidad Nacional de Tumbes-Perú.51 pp.
•   LOZANO, C.1998. Estudio del Ciclo de Desarrollo y Biología de la “caballada” (Anticarsia gemmatalis
       Hübner) en Tumbes. Tesis para optar el Título de Ingº Agrº Universidad Nacional de Tumbes-
       Perú.69 pp.
•   MOUND, L. 2008. American bean thrips (Caliothrips phaseoli) Pest and Diseases Image Library.
       Updated on 1/12/2008 1:53:51 PM. Available online: http://www.padil.gov.au
•   RISCO, S. H. 1951. El perforador de la vainas y minador de los tallos del frijol Laspeyresia leguminis
       Heinr. Tesis Ing. Agr. Escuela Nac. de Agricultura.Lima-Perú. 62 pp.
•   SANCHEZ, G. y C. VERGARA. 1990. Manual de prácticas de entomología agrícola. Edit. Universidad
       Nacional Agraria la Molina. Departamento de Entomología. Lima-Perú. 139 pp.
•   ---------------------------------------1998. Plagas de Hortalizas. Edit. Universidad Nacional Agraria la Molina-
       Lima-Perú. 270 pp.
•   SANDOVAL, J.G. 1972. Contribución al estudio de la biología de Elasmoplapus lignosellus Zeller.
       Tesis. Ing. Agr. UNA-La Molina –Lima-Perú. 72 pp.
•   SARMIENTO, J., SANCHEZ, G. y J. HERRERA. 1998. Plagas de los cultivos de caña de azúcar, maíz
       y arroz. Edit. Universidad Nacional Agraria La Molina-Lima-Perú.231 pp.
•   SCHWERTNER, C., ALBURQUEQUE, G., Y J. GRAZIA. 2002. Descricao dos Estadios Imaturos de
       Acrosternum (Chinavia) ubicum Rolston(Heteroptera: Pentatomidae) y efecto del alimento en el
       tamaño y coloración de ninfas. Neotropical Entomology 31(4): 571-579.
•   STEWART, B. http://ukmoth.org.uk/show.php?bf=2432.
•   UNIVERSITY OF FLORIDA. www.entnemdept.ufl.edu/fasulo/woodypest/329.htm
•   VALDIVIESO, L.W. y C.E.BARTRA. 1993. Control Biológico, Tecnología Ecológicas para Controlar
       Plagas. Edit. R.A.A.A. Lima-Perú. 137 pp.
•   VILLALTA, E. 2000. Ensayo preliminar de control químico contra mosca blanca Bemisia tabaci
       (Gennadius) en el valle de Tumbes. Tesis para optar el Título de Ing. Agr. Universidad Nacional de
       Tumbes-Perú. 78 pp.
•   WILLE, J. E. 1952. Entomología Agrícola del Perú. Edit. Junta de Sanidad Vegetal. Dir. Gral de
       Agricultura. Ministerio de agricultura. Lima-Perú. 544 pp.
•   ZARATE, J. 2003. Parasitoides de los principales lepidópteros que afectan al cultivo de soya (Glycine
       max (L.) Merril) en Tumbes. Tesis para optar el Título de Ing. Agr. Univ. Nac. de Tumbes-Perú. 100
       pp.




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Manual De Plagas De Soya

  • 1. Facultad de Ciencias Agrarias Escuela Académico Profesional de Agronomía Departamento Académico de Sanidad Vegetal y Producción Pecuaria Plagas del Cultivo de Soya PEDRO SAÚL CASTILLO CARRILLO TUMBES – PERÚ 2009
  • 2. Autor : Pedro Saúl Castillo Carrillo. Ingeniero Agrónomo, egresado de la Universidad Nacional de Piura, postgrado en Entomología, Universidad Nacional Agraria La Molina. Profesor Principal de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional de Tumbes. E-mail: pcastillocarrillo@yahoo.es pcastilloc@untumbes.edu.pe pcastillo26@gmail.com Edición : Universidad Nacional de Tumbes-Perú Primera edición : Septiembre 2009 Fotos de la portada : La foto superior izquierda corresponde a un adulto de la especie Cerotoma fascialis Erickson, la foto superior central a daños en cultivo de soya realizados por Anticarsia gemmatalis, la foto superior derecha a una larva de Anticarsia gemmatalis y la foto inferior a daños ocasionados por Omiodes indicata. 1
  • 3. CONTENIDO Pág. Introducción……………………………………………….. ………. 04 Gusanos de tierra, gusanos cortadores o trozadores..……….. 05 Gusano picador del tallo………………………………………… 09 Gusano pegador de hojas, gusano encrespador……………… 13 Gusano caballada o gusano de terciopelo…………………….. 16 Falso gusano medidor (P. includens)………………………….. 20 Falso gusano medidor (T. ni)……………………………………. 23 Gusano enrollador del fríjol……………………………………… 25 Escarabajo de hojas, mosquilla o cucarroncito………..……….. 26 Mosca blanca o petrolera…………..……………………………… 29 Trips……………………………………………………..………….. 32 Arañita roja……………….……………..…………………………. 33 Barrenador de los brotes..……………………………………..… 34 Gusano perforador de los tallos y vainas.........................……. 36 Escarabajo barrenador de peciolos y tallos……………………. 37 Chinches de las vainas o chinches hediondos…………....……. 40 Bibliografía............................................................................... 43 2
  • 4. INTRODUCCIÓN En la región Tumbes, el cultivo de soya Glycine max (L) Merrill, hace más de dos décadas, era uno de los cultivos tradicionales de la región y constituía un cultivo de rotación después de la campaña de arroz, realizada entre los meses de enero a junio, esta práctica tenía efectos positivos, pues la soya es una especie mejoradora del suelo al fijar el nitrógeno libre del aire, a través de la asociación de sus raíces con bacterias nitrificantes del género Rhizobium y permite interrumpir el ciclo biológico de las plagas del cultivo de arroz. En la región Tumbes, en la década del 80, llegaron a instalarse cerca de 3 000 hectáreas, considerándose a Tumbes como el primer productor de soya a nivel nacional. Sin embargo, problemas de precios y decisiones de tipo político al autorizarse desde 1987 la siembra de dos campañas del cultivo de arroz, ha generado que este cultivo sea relegado, sembrándose en este momento menos de 100 hectáreas al año. Existe, actualmente, interés por la siembra de esta leguminosa por algunas empresas agroindustriales, su cultivo representa entonces una importante alternativa de producción, más aún si se tiene en cuenta los costos elevados que se requiere para instalar una hectárea de arroz, aunado a esto, la baja rentabilidad por los bajos precios que tiene el arroz. El cultivo de soya, tiene factores abióticos y bióticos adversos que afectan su normal desarrollo fenológico, mereciendo atención los insectos, que bajo ciertas condiciones climáticas logran alcanzar poblaciones elevadas llegando a constituirse en plagas, que influyen negativamente en el rendimiento y en la calidad de los granos producidos. El propósito de este manual es proporcionar a los profesionales, técnicos y agricultores, una información básica que permita reconocer en el campo a los principales insectos que actúan como plagas del cultivo de soya. Se proporciona la ubicación taxonómica de cada una de las especies más frecuentes, una breve descripción sobre su distribución e importancia; asimismo se ilustran; los daños que producen, características morfológicas de los estados de desarrollo - huevo, larva, pupa y adulto-, algunos datos sobre su biología y comportamiento, además se indican los métodos de control que tengan que utilizarse para atenuar los daños dentro de un esquema de Manejo Integrado de Plagas. 3
  • 5. “Gusanos de tierra”, “gusanos cortadores” o “gusanos trozadores” Agrotis ipsilon (Hufnagel, 1766), Spodoptera eridania(Cramer, 1782) Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Noctuidae Importancia y distribución. Estas especies son de hábitos polífagos y pueden ocasionar daños en la primera fase del cultivo. Se les localiza tanto en Costa, Sierra y Selva (Sánchez y Vergara, 1998). Daños.- En los primeros estadios las larvas realizan raspaduras de las hojas de las plantas recién germinadas, larvas más desarrolladas afectan a las semillas y plantas tiernas cortándolas a la altura del cuello de la raíz, provocando finalmente su caída y muerte (Fig. 1). El ataque se produce durante los 12 a 20 primeros días de edad de cultivo, ocasionando fallas en la siembra como consecuencia hay que realizar labores de resiembra. En el caso de la especie S. eridania posteriormente se convierte en plaga de follaje. Fig. 1.- Daños ocasionados por “gusano de tierra” (A. ipsilon) Características morfológicas del “gusano de tierra” A. ipsilon De acuerdo a ICI (1985) y, Sánchez y Vergara (1998) se tiene la siguiente descripción. Huevo.- Recién ovipositado es de color blanco amarillento, de contorno circular, con estrías longitudinales y transversales, próximo a la eclosión se torna blanco oscuro (Fig. 2a). Larva.- Es de tipo eruciforme, cuando está pequeña es de color gris oscuro con manchas dorsales más pálidas, luego se torna, negra a gris brillante y la cápsula cefálica es de color marrón amarillento a marrón rojizo. Presenta una 4
  • 6. banda dorsal gris pálido y tubérculos negros, en número de cuatro en cada uno de los segmentos, de los cuales los anteriores son más pequeños que los posteriores. La cutícula presenta finas granulaciones redondeadas y convexas fuertemente contrastantes (Fig. 2b), en el último estadio llega a medir entre 40 a 50 mm de longitud, empupa en el suelo en una cámara pupal. Pupa.- Es de color marrón rojizo, presenta dos espinas en el cremaster y excepcionalmente espinas secundarias (Fig. 2c). Adulto.- Mide 30 a 50 mm de expansión alar. El cuerpo es de color gris, las alas anteriores son de color gris; con frecuencia conservan marcas más oscuras, a veces negras, en forma de una banda transversal y con el extremo apical algo más claro. En el área central se observa una mancha reniforme, prolongada con un pequeño triangulo de color negro, al que se oponen otros dos con el vértice en sentido contrario. Las alas posteriores son de un color blanco perla, con el margen externo de color gris (Fig. 2 d). Fig. 2.- “Gusano de tierra” A. ipsilon (a) Huevo (Crédito: ICI), (b) Larva, (c) Pupa y (d) Adulto (crédito: Don Herbison-Evans & Stella Croslay Biología y comportamiento, En relación a su ciclo de desarrollo para condiciones de la costa central del Perú, Sánchez y Vergara (1990) reportan lo siguiente: Incubación (huevo) : 05 días Periodo larval : 34 días Periodo pupal : 14 días Total 53 días. Los adultos son de actividad nocturna, las hembras ovipositan en forma individual o en pequeños grupos en las plantas o en las grietas del suelo (ICI, 1985). Larvas actúan durante la noche y se refugian durante el día en el suelo cerca del lugar de alimentación. Características morfológicas de S. eridania De acuerdo a lo reportado por García (1986), Valverde y Sarmiento (1986), Sánchez y Vergara (1990) se tiene lo siguiente: Huevo.- Es esferoidal, con estructura esculpida en el corion; recién ovipositado presenta color verde claro y próximo a eclosionar adquiere un color negro. Son ovipositados en masas y las hembras los protegen con escamas de su cuerpo (Fig. 3a). 5
  • 7. Larva.- En el primer estadio es de color verde claro o negro oscuro aterciopelado y con rayas amarillas laterales. En el último estadio el cuerpo es de color gris variando a verde oliva o rosado, con dos líneas paralelas dorsales de manchas triangulares negras, a veces pobremente definidas (Fig. 3b), igualmente poseen líneas subdorsales rojizas. Se puede distinguir una línea subespiracular prominente, quebrada por manchas oscuras, a veces una mancha difusa en el primer segmento abdominal inmediatamente detrás del último par de patas verdaderas. La cabeza es de color amarillo rojizo con reticulaciones brillantes de color pardo cobrizo. El aspecto ventral del cuerpo es anaranjado o rosado con puntitos de color blanco. Llega a medir de 35 a 40 mm. Pupa.- Es momificada, mide de 25 a 35 mm de longitud, de color marrón a café brillante tornándose marrón oscuro o negruzco antes de la emergencia del adulto. Adulto.- Mide de 20 a 25 mm de expansión alar y de 12 a 16 mm de longitud. El macho es más pequeño y presenta las alas anteriores de color gris con un punto negro en su parte central (Fig. 3c), y la hembra presenta un color marrón claro jaspeado con manchas negras (Fig. 3d). a b c d Fig. 3.- “Gusano de tierra” S. eridania (a) Huevos, (b) larva, (c) Adulto macho y (d) Adulto hembra Biología.- Valverde (1986) para condiciones de la Molina reporta los siguientes datos. Huevo (incubación) : 04 días Larva : 19 días Pupa : 11 días Total 34 días Métodos de control Cultural Riego pesado de machaco con la finalidad de provocar el ahogamiento de larvas y pupas que se encuentran en el suelo. Labranzas adecuadas y profundas para exponer los estados de conservación (pupas y adultos) a la acción de sus controladores biológicos. Eliminación de plantas hospederas de bordes y acequias. 6
  • 8. Etológico Entre las medidas de control etológico se recomienda: Utilización de trampas de luz Utilización de trampas alimenticias empleando melaza de caña de azúcar en mezcla con agua Biológico Entre los predadores Sánchez y Vergara (1998) reportan varias especies de carábidos como Calosoma abreviatum y Pterostichus sp., al cicindelido Megacephala carolina chilensis, al dermaptero Labidura riparia y entre los parasitoides a los taquinidos Archytas marmoratus, Gonia peruviana; al eulofido del género Euplectrus sp. y al ichneumonido Enicospilus sp. Zarate (2003) para las condiciones de Tumbes reporta a los parasitoides Archytas sp. (Tachinidae) y los Chalcididae Spilochalcis sp.,y Brachymeria sp. Químico Se puede utilizar bajo las formas siguientes: 1. Utilización de cebos tóxicos. Para su preparación se necesita los siguientes componentes: 50 a 100 kg de afrecho, polvillo de arroz, coronta molida o aserrín. 3 galones o 10 kilos de melaza de caña o azúcar. Se puede emplear en la preparación del cebo cualquiera de los siguientes insecticidas: 0,8 kg de trichlorfon (Dipterex 80 PM), 1 kg de carbaryl (Sevin 85 PM), ó 0,5 kg de methomyl (Lannate 90 PS). 60 a 70 litros de agua suficiente para formar una pasta semisólida. Este cebo se distribuye al atardecer en la proporción de 50 a 70 kg por ha. 2. Aplicación de insecticidas a la semilla al momento de la siembra. Se puede utilizar acefato (Orthene 75 PS o Vencetho Saume) a la dosis de 3 a 4 g / kg de semilla. 3. Aplicación de insecticidas en campo definitivo Cuando se detecte más de 5% de plantas cortadas o exista ataques severos o generalizados se puede aplicar trichlorfon (Dipterex 80% PS), clorpirifos (Paladin 480 EC) 1 L/ha dirigido hacia la base de la planta o clorpirifos (Lorsban 2,5 % P) a dosis de 20 kg/ha, espolvoreado sobre las plantas. 7
  • 9. “GUSANO PICADOR DEL TALLO” Elasmopalpus lignosellus Zeller, 1848 Ubicación taxonómica Orden: Lepidoptera Familia: Pyralidae Distribución e importancia.- Esta especie se encuentra distribuida en toda la América Latina. En el país es una de las principales plagas de leguminosas que inciden en toda la Costa y esporádicamente en la Selva Alta (Sarmiento et al., 1998). En condiciones de Tumbes es más frecuente en verano y sobre todo en cultivos instalados en suelos de textura franco arenosa (Castillo-Carrillo, 1995). Daños En los primeros estadios larvales se alimentan de las hojas, posteriormente las larvas penetran al tallo a escasa profundidad del nivel del suelo, luego lo barrenan hacia arriba, formando de esta manera un túnel que provoca finalmente la muerte de las plantitas. Los daños se reconocen por un decaimiento o marchitamiento de las plantas y por los cocones semejantes a terroncitos que se encuentran próximos o pegados al tallo (Fig. 4). Fig. 4.- Daños ocasionados por el “gusano picador de los tallos” (E. lignosellus) Características morfológicas De acuerdo a lo reportado por Sandoval (1972) y Carbonell (1977) se tiene la siguiente descripción. Huevo.- Es pequeño de forma ovalada, recién ovipositado es de color blanco lechoso, próximo a la eclosión se torna de color rosado hasta rojizo. El huevo en su diámetro mayor mide en promedio 0,6 mm y el diámetro menor mide 0,4 mm (Fig. 5a). 8
  • 10. Larva.- En completo desarrollo llega a medir de 13 a 16 mm y como señal característica, tiene sobre su cuerpo verde azulado varias líneas longitudinales brunas oscuras que se interrumpen en las líneas ínter segméntales (Fig. 5b). Pupa. – Es del tipo obtecta, inicialmente es de color verde limón pero a medida que avanza el desarrollo se torna de color marrón oscuro .Mide 7 a 10 mm. (Fig. 5c). Adulto .- Mide 11 a 12 mm de longitud y 20 a 22 mm de expansión alar, presentan dimorfismo sexual, el macho es de color amarillo pajizo o marrón amarillento lo cual le sirve para mimetizarse o camuflarse con los rastrojos, mientras que la hembra es de color café grisáceo con manchas marrón rojizas, casi negras. Cuando están en posición de descanso las alas se doblan sobre el dorso. (Fig. 5d). a b c d Fig.4.- Estados de desarrollo del gusano picador de los tallos (E.lignosellus): (a) Huevos, (b) Larva, (c) Pupa y (d) Adulto (Crédito, CIAT) Biología y comportamiento En relación a la duración del ciclo de desarrollo, Sandoval (1972), en estudios realizados en La Molina – Lima con temperatura y humedad relativa no controlada y como maíz de substrato obtuvo los siguientes resultados: Periodo de incubación : 03-05 días Periodo larval (6 estadios) : 14-21 días Periodo prepupal : 01-02 días Periodo pupal : 08-11 días Total : 26-39 días 9
  • 11. Los adultos son de hábitos nocturnos, la oviposición es realizada, sobre las hojas, tallos, o sobre el suelo en forma aislada o en pequeños grupos. A medida que transcurre el tiempo, la larva va fabricando una especie de cápsula, conocida como cocón, cerca de la planta con partículas de tierra o detrimentos de vegetales semejándose a un pequeño terrón. Métodos de control Entre los métodos a tener en cuenta con la finalidad de reducir infestaciones severas se tienen los siguientes: Cultural • Eliminación del rastrojo de cultivos anteriores y malezas. • Buena preparación del suelo con araduras o gradeos profundos para exponer los estados de conservación como son larvas y pupas a la acción de factores físicos o biológicos. • Se puede aplicar riegos pesados para asfixiar las larvas que se encuentran al pie de las plantas. Esto implica realizar evaluaciones periódicas desde que emergen las plantas para aplicar agua cuando las larvas son pequeñas y el daño aún no es importante. Para aplicar el riego pesado debe tomarse en cuenta la textura del suelo, por que si se hace en un suelo pesado se tendrían problemas de compactación y muerte de plántulas por pudriciones radiculares. Biológico Los enemigos naturales son poco eficientes debido a los hábitos muy particulares de las larvas. Sarmiento et al., 1998, reportan dos moscas Tachinidae (Stomatomyia meridionalis y Nemorilla sp.), un Braconidae (Orgilius sp.) y un Eulophidae (Pediobius sp.) como parásitoides de larvas. Químico Con respecto a medidas de control químico éste está enfocado al tratamiento de la semilla con cualquiera de los siguientes insecticidas: Thiodicarb (Semevin) a dosis de 8 a 10 cc/kg semilla), acefato (Orthene 75 PS o Vencetho 75 PS) a dosis de 4g/kg semilla. En áreas de frecuente incidencia se recomienda realizar aspersiones dirigidas a la base de las plantas con los siguientes insecticidas: methomyl (Lannate 90 PS) al 0,2%, trichlorfon (Dipterex 80 PS) al (0,2%) o carbaryl (Sevin 85 PM) al 0,3%. 10
  • 12. “Gusano pegador de hojas”, “gusano sanguchero” ó “gusano encrespador” Omiodes indicata (Fabricius, 1775) (Hedylepta indicata F.) Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Pyralidae Distribución e Importancia.- En Tumbes es uno de los insectos plagas más importantes en el cultivo de soya, ocasiona daños ligeros en fríjol caupi. En el Perú se le encuentra distribuido en las tres regiones, a nivel mundial se le encuentra en América y Asia (Avalos, 1981). Daños.- Es ocasionado por la larva. En el estadio inicial raspa el parénquima, a partir del 2º estadio teje un estuche para lo cual con ayuda de hilos de seda pega los bordes de un foliolo doblándolo hacia el centro (Fig.6), en otros casos pega un foliolo con otro, luego la larva comienza a alimentarse del tejido parenquimático dejando solo la epidermis. Un ataque intenso provoca la defoliación, afectando el rendimiento, más aún si se realiza en estado de floración o durante la formación de vainas. Fig. 6.- Daños ocasionados por “gusano pegador de hojas” ( O. indicata) Características morfológicas Según lo observado por el autor y lo reportado por Sánchez y Vergara (1998) se tiene lo siguiente: Huevo.- Es ovalado, mide 0,6 x 0,82 mm; recién ovipositado es de color blanquecino y próximo a eclosionar toma un color amarillento. Larva.- En su máximo desarrollo mide 15,3 mm de longitud, presenta dos manchas semicirculares en la parte dorso lateral del protórax, una banda longitudinal de color verde oscuro en la parte media del dorso, patas torácicas de color marrón; presenta cuatro pares de pseudopatas de color verde claro, todo el cuerpo presenta tubérculos con setas de color marrón claro (Fig. 7a). 11
  • 13. Pupa.- Inicialmente es de color marrón claro, cuando se acerca la emergencia del adulto toma un color oscuro. En machos mide 9,3 mm y en hembra 10,0 mm de longitud (Fig. 7b). Adulto.- La expansión alar en machos es de 17,3 mm y en hembras 18,2 mm. Presenta un color amarillo dorado con reflejos cúprico-pálidos. En estado de reposo las alas se disponen en forma de abanico, formándose tres líneas transversales de forma ondulada y de color oscuro (Fig. 7c). c a b Fig.7.- “Pegador de las hojas” O. indicata: (a) Larva, (b) Pupa, (c) Adulto. Biología y comportamiento.- En relación a la duración del ciclo de desarrollo, Cruz y Castillo-Carrillo (1988) para las condiciones de Tumbes reportan lo siguiente: Periodo de Incubación : 05-06 días Periodo larval : 14-18 días Periodo pupal : 06- 09 días Ciclo de Desarrollo : 25 -33 días La hembra oviposita los huevos en el haz de las hojas en grupos de diez o más. La larva es lucífuga y al completar su estado de desarrollo teje un cocón con hilos de seda y restos de heces donde empupa (Fig.8). Fig.8.- Lugares donde empupa O. indicata Métodos de control Entre los métodos que se pueden tener en cuenta con la finalidad de reducir infestaciones severas se tienen los siguientes: 12
  • 14. Cultural • Realizar buena preparación del terreno • Rotación con cultivos que no sean hospederos del insecto. Mecánico Recojo a mano y destrucción de los refugios o estuches conteniendo larvas y pupas Biológico Según Cruz y Castillo - Carrillo (1989) y Zarate (2003) para Tumbes han registrado como parasitoides de larvas, a los Braconidos Cotesia sp., Chelonus sp. Chelonus insularis, Bracon sp. al Chalcididae Brachymeria sp., y al Scelionidae parásitoide de huevos Telenomus sp. El autor en evaluaciones de campo ha encontrado al estado larval y adulto un coleóptero de la familia Carabidae, y una larva de mosca Syrphidae predatando larvas. Para las condiciones de costa central Valdivieso y Bartra (1993) reportan al parasitoide Elachertus proteoteralis (Eulophidae) y Coccygomimus punnicipes (Ichneumonidae). Un medio de control de esta plaga es el empleo del chinche Podissus nigrispinus un eficiente predador que puede ser criado en laboratorio y liberado cuando recién se inicia la infestación del cultivo por Omiodes. Se recomienda liberar 1 000 chinches de tercer estadio ninfal por hectárea, también se hacen liberaciones de Trichogramma pintoi a razón de 25 a 30 pulg 2/ha. Químico En condiciones de alta infestación, especialmente si proceder al empleo de insecticidas como chlorfuazuron (Atabron) a dosis de 300 cc/cilindro, clorpirifos (Lorpyfos) a dosis de 600 cc/cilindro, metamidofos + cyfluthrin (Baytroid TM 525 SL) a dosis de 1 L/ha, o aplicaciones de insecticidas a base de Bacillus thuringuiensis a dosis de 0,5 a 0,75 kg/ha. 13
  • 15. “Gusano caballada” o “gusano de terciopelo” Anticarsia gemmatalis Hübner, 1818 Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Pyralidae Distribución e Importancia.- En el continente se encuentra distribuida desde el sur de los Estados Unidos hasta América del Sur y el Caribe (Ávalos, 1981). En el Perú incide en las tres regiones en cultivos como fríjol y alfalfa. En la región Tumbes, este insecto es una plaga potencial y generalmente se presenta en aquellos cultivos que se siembran fuera de la fecha de siembra, así como en aquellos en los cuales se realiza una aplicación indiscriminada de insecticidas Daños.- Es ocasionado por la larva que es comedora de hojas. En sus dos primeros estadios, se alimenta del envés de las hojas comiendo la epidermis de esta y el mesófilo dejando la epidermis de la superficie que luego se desprende, dejando pequeños agujeros, los cuales se hacen grandes a medida que la hoja crece (Fig. 9). A partir del tercer estadio ya se alimenta de todo el tejido dejando únicamente la nervadura central y las laterales, quedando la hoja esqueletizada. Altas infestaciones dejan en 7 días a las plantas sin hojas. Los daños dependen del estado vegetativo de la planta. En el caso de la soya, esta puede soportar alta defoliación antes de la floración, que puede llegar al 30% sin que se noten diferencias importantes en los rendimientos. Se ha verificado en algunas oportunidades que cuando la defoliación se produce durante la floración o formación de vaina los daños son muy significativos. Fig.9.- Daños producidos por “caballada” A. gemmatalis Características morfológicas Costilla (1988) y Lozano (1998) reportan lo siguiente: Huevo.- Mide aproximadamente 0,5 mm de diámetro, esférico, aplanado en la base y de superficie estriada, color verdoso en diferentes tonalidades. 14
  • 16. Larva.- Es delgada, de color verde pálido a café oscuro, con líneas laterales amarillas o pálidas y líneas dorsales delgadas, los segmentos a menudo están separados por bandas amarillas delgadas, y de exoesqueleto de textura aterciopelada. En altas densidades toman una coloración oscura casi negra. En su máximo desarrollo alcanza entre 28 a 30 mm de longitud. Presenta pseudopatas caudales bastantes separadas y semejan una V, característica muy típica de la especie (Fig. 10a) Pupa.- Es del tipo obtecta, mide 20 a 25 mm de longitud, color café oscuro. En la parte terminal del abdomen presenta 4 pares de espinas que forman el cremaster siendo el par más apical casi el doble de largo y diámetro que los otros tres. Adulto.- Es de color algo ceniciento aunque hay individuos con tonalidades rojizas. Las alas tienen manchas de colores claros y oscuros más acentuados en algunos adultos. La mariposa tiene una envergadura alar de 26 a 36 mm y posa con las alas abiertas. La característica más distintiva de las alas son dos líneas, una en vista dorsal de color marrón claro muy definida que recorre transversalmente la parte más ancha, separándola en dos partes (Fig. 10 b). La otra línea se observa ventralmente y está formada por puntuaciones de color blanco dispuestas en una hilera curva que recorre también transversalmente cerca del extremo de las alas superiores e inferiores. b a Fig.10.- “Gusano caballada” A. gemmatalis: (a) Larva, (b) Adulto (Crédito, Larry line) Biología y comportamiento En lo que corresponde a la duración del ciclo de desarrollo, Lozano (1998), registra para Tumbes lo siguiente: Periodo de incubación : 03-04 días Periodo larval (6 estadios) : 15-20 días Periodo pupal : 08-14 días Total : 26-38 días La hembra oviposita los huevos en forma aislada en medio de las nervaduras especialmente en la cara inferior de las hojas entre los pelos. Esto lo hace generalmente en los atardeceres o en la noche. Según Lozano (1998) una hembra en promedio puede ovipositar entre 207 y 223 huevos. La larva es medidora y completado su desarrollo baja al suelo se entierra teje un cocón o capullo de seda y empupa. 15
  • 17. Métodos de Control: Entre los métodos que se pueden tener en cuenta con la finalidad de reducir infestaciones severas se tienen los siguientes: Cultural Se sugiere una conveniente rotación de cultivos y una buena preparación del terreno reforzado con un riego pesado. Biológico García (1986) cita como predadores de larvas a Calosoma, Blennius (Carabidae), Cycloneda sanguinea, Hippodamia comvergens (Coccinellidae), Polystes sp. (Vespidae) y entre los parasitóides a Carinodes sp. (Ichneumonidae), Microcharops sp. (Chalcididae) y como patógenos de larvas al hongo Nomurea rileyi (Moniliaceae). En Tumbes, Zarate (2003) reporta la presencia de los braconidos Apanteles impiger, Cotesia sp., al encirtido Copidosma trucantellum y a Elasmus sp. (Elasmidae). El autor ha observado la presencia de Glyptapanteles sp. (Braconidae) parasitando larvas (Fig.11 a). Del mismo modo pueden hacerse liberaciones de 20 a 25 pulg2/ha de Trichogramma pretiosum. Al igual que para el caso de Omiodes, se recomienda hacer liberaciones de P. nigrispinus para el control de A. gemmatalis (Fig. 11b). a b Fig.11. - (a) Larva parasitada por Glyptapanteles sp., (b) Adulto de P. nigrispinus (Crédito, SENASA) Químico Pueden realizarse aplicaciones de cualquiera de los siguientes insecticidas: trichlorfon (Dipterex 80 PS) al 0,25%, thiodicarb (Larvin 375 F) al 0,1%, methomyl (Lannate 90 PS) al 0,15%, chlorfuazuron (Atabron) 200 a 250 cc/cilindro de 200 L, Bacillus thurigiensis (Dipel 2X) a dosis de 0,5 a 1 kg/ha. 16
  • 18. “Falso gusano medidor” Pseudoplusia includens (Walker, 1857) Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Noctuidae Importancia y distribución.- Se encuentra distribuida en toda América y en el Perú tanto en Costa, Sierra y Selva (Sánchez y Vergara, 1998).En Tumbes, esta especie es una plaga potencial del cultivo de soya. Daños.- En los primeros estadios la larva raspa el envés de las hojas dejando pequeñas manchas transparentes, posteriormente las larvas comen porciones grandes de hoja haciendo comeduras irregulares, llegando a dejar solamente las nervaduras, puede atacar vainas. El daño más importante se produce en ataques previos al llenado de vainas. Características morfológicas Sánchez y Vergara (1998) reportan lo siguiente: Huevo.- Es de contorno semiesférico con estrías radiales, recién ovipositado es de color blanco, posteriormente adquiere un color verde claro, mide 0,4 a 06 mm de diámetro. Larva.- Es de tipo eruciforme, de color amarillento a verde con líneas laterales y dorsales de color blanco a lo largo del cuerpo, el cual es más delgado en la parte torácica, presenta pináculos negros. La cabeza presenta puntos negros. Las patas torácicas generalmente son negras con tres pares de pseudopatas abdominales de color verde (Fig. 13a). En el último estadio llega a medir entre 30 a 40 mm de longitud. Pupa.- Inicialmente es de color verde amarillento y antes de la emergencia del adulto toma un color marrón claro, llega a medir 20 a 25 mm. Adulto.- Es de color café oscuro tiene las alas ligeramente bronceadas, brillantes, con dos manchas plateadas, separadas, en el centro de cada ala (Fig. 13b). En el aspecto dorsal del tórax presenta una cresta (Fig. 13c). Tiene una expansión alar de 29 a 36 mm. Biología y comportamiento.- Según Combe y Pérez (1978) para las condiciones de La Molina – Lima, indican lo siguiente. Incubación (huevo) : 03 - 07 días Periodo larval : 11 -18 días Periodo pupal : 06 - 11 días Total : 20 - 36 días 17
  • 19. Los adultos son de actividad nocturna, la hembra oviposita en forma individual en las hojas .La larva se encuentran casi siempre en el envés de las hojas y su manera de caminar es arqueando el cuerpo lo que les da a esta el nombre común de medidor, empupan en un capullo de seda en el envés de las hojas. b a c Fig.13. - “Falso gusano medidor” P. includens (a) Larva (crédito, Russ Ottens). University of Georgia) (b) Adulto en posición de expansión alar, y (c) Adulto visto de perfil (crédito, Humble widlife) Métodos de Control. Biológico Es suficiente para mantener las poblaciones reguladas por debajo del nivel de daño económico. Entre los predadores Sánchez y Vergara (1998) citan a Geocoris punctipes Say, Nabis punctipennis; Metacanthus tenellus, Podisus sp., Polistes sp. y arañas y entre los parasitoides de huevos a Trichogramma sp. Como parasitoides de larvas citan a Litomastix trucantellum (Dalman)(Encyrtidae), Euplectrus plathypenae How (Eulophidae), Meteorus leviventris (Braconidae); a los taquinidos Eucelatoria digitata Sabrosky, Lespesia sp. y Voria rurales (Fallen) y calcididos que emergen de pupas. También reportan a los hongos entomopatógenos: Nomurea rileyi y Entomophtora. Se recomienda también utilizar larvas afectadas por el virus de la poliedrosis a dosis de 50 cc/hectárea, para lo cual se recomienda macerar 20 larvas afectadas en 50 cc de agua y luego diluir en 25 litros de agua. Químico trichlorfon (Dipterex 80 PS) al 0,25 %, methomyl (Methavin 90 PS) al 0,1a 0,15%, cypermetrina + metamidofos (Caporal) al 0,25 a 0,35%, clorpirifos (Lorpyfos) a dosis de 600-800 cc/cilindro, clorfuazuron (Atabron ) a dosis de 200 a 300 cc/ cilindro. 18
  • 20. “Falso gusano medidor” Trichoplusia ni (Hübner, 1803) Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Noctuidae Importancia y distribución.- Se encuentra distribuida en toda América y en el Perú tanto en costa, sierra y Selva. Es una plaga potencial del cultivo de soya en Tumbes. Daños.- En los primeros estadios la larva raspa el envés de las hojas dejando pequeñas manchas transparentes, posteriormente la larva comen porciones grandes de hoja haciendo comeduras irregulares, llegando a dejar solamente las nervaduras, puede atacar vainas. El daño más importante se produce en ataques previos al llenado de vainas. Morfología Sánchez y Vergara (1998) reportan para esta especie lo siguiente: Huevo.- Es de contorno semiesférico con estrías radiales, recién ovipositado es de color blanco, posteriormente se torna de color verde claro, y mide 0,4 a 0,6 mm de diámetro (Fig. 14 a). Larva.- De tipo eruciforme, color verde pálido a verde azulado. El cuerpo se adelgaza hacia la cabeza. Tiene longitudinalmente una línea blanca delgada pero notoria en cada lado del cuerpo, justamente debajo de los espiráculos y otras dos cerca de la línea media del dorso, sin microespinas. Las patas torácicas generalmente son delgadas con tres pares de pseudopatas abdominales más anchas en forma de maza de color verde (Fig. 14 b). En el último estadio llega a medir entre 30 a 40 mm de longitud. Pupa.- Inicialmente es de color verde amarillento, pero antes de la emergencia del adulto adquiere una coloración marrón claro, llega a medir 20 a 25 mm. Adulto.- De color café opaco, tiene las alas ligeramente bronceadas brillantes, presenta dos manchas plateadas unidas que forman una especie de ocho en el centro de cada ala (Fig. 14 c y d). Tienen una expansión alar de 30 a 38 mm. Biología y comportamiento.- Según Combe y Pérez (1978) para las condiciones de La Molina – Lima reporta la siguiente información. 19
  • 21. Incubación (huevo) : 03 - 07 días Periodo larval : 11 -18 días Periodo pupal : 06 - 11 días Total : 20 - 36 días Los adultos son de actividad nocturna, la hembra oviposita en forma individual en las hojas superiores verticales del hospedero. Una hembra oviposita alrededor de 275 a 300 huevos. La larva se encuentran casi siempre en el envés de las hojas y su manera de caminar es arqueando el cuerpo, empupa en un cocón delicado de hilos de seda en las hojas de las cuales se alimenta. b a c d Fig.14.- “Falso medidor” T. ni (a) Huevos (crédito, ICI) (b) Larva, (c) Adulto visto de perfil (crédito: Barry Stewart) (d) Adulto en posición de expansión alar (Crédito: Colegio Postgraduados Chapingo-México) Métodos de Control Similar al de P. includens 20
  • 22. “Gusano enrollador de fríjol” Urbanus proteus (Linnaeus, 1758) (Eudanus proteus) Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Hesperiidae Daños.- Es ocasionado por la larva que enrolla las hojas hacia arriba y comen en su interior produciendo huecos en las hojas destruyéndolas por completo. Características morfológicas Sánchez y Vergara (1998) y Capinera (2009) reportan la siguiente información: Huevo.- De forma esférica, ligeramente aplanado en la base, mide alrededor de 1 mm de diámetro, inicialmente es de color blanco, posteriormente adquiere un color amarillo (Fig. 15a). Larva.- Presenta color verde amarillento con muchos puntos finos de color negro y con una línea longitudinal de color negro sobre todo el cuerpo y dos líneas de color amarillo en la áreas laterales, la cabeza y protórax de color marrón. El protórax es reducido. Las pseudopatas son de color amarillo rojizo (Fig. 15b). Pupa.- Es de color amarillo a marrón oscuro y llega a medir 20 mm y es cubierta por una pubescencia blanco azulada. Adulto.- Mide alrededor de 50 mm de expansión alar, las alas son de color marrón oscuro con 5 a 7 manchas cuadradas o rectangulares de color blanco a y medio transparentes y con brillo azul verdoso sobre todas las alas (Fig. 15c). Biología y comportamiento Se tiene la siguiente información. Incubación (huevo) : 04-05 días Periodo larval : 15-20 días Periodo pupal : 05-06 días Total : 23- 31 días Los huevos son ovipositados en forma individual o en grupos de dos a seis en las puntas de las hojas, empupan en el cartucho de las hojas (Capinera, 2005). Método de control: Mecánico: Recojo de larvas a b c Fig.15. - “Enrollador de fríjol” U. proteus (a)Huevo y (b) Larva (crédito: University of Florida) (B) Adulto en posición de expansión alar (crédito,entweb.clemson.edu) 21
  • 23. “Escarabajo de hojas”, “mosquilla” o “cucarroncito” Cerotoma fascialis Erichson, 1847 Ubicación taxonómica Orden : Coleoptera Familia : Chrysomelidae Distribución e importancia.- En la región de Tumbes es una plaga clave en el cultivo de soya y en el cultivo de fríjol caupi. Esta especie se encuentra distribuida en toda la costa del Perú (Avalos, 1981). Daños.- Lo ocasiona la larva al alimentarse de las raíces y nódulos y el adulto al alimentarse de las hojas. El adulto además de perforar las hojas (Fig. 12), puede perforar también los cotiledones de plantitas recién germinadas, flores o vainas jóvenes. Se considera que son transmisores de enfermedades virósicas. Además de esta especie en el cultivo de soya se presenta Diabrotica decolor pero en bajas poblaciones. Fig.12.- Daños en fríjol caupi ocasionados por C. fascialis (Crédito: S. Carbajal. UNPRG) Características morfológicas De acuerdo a lo reportado por CIAT (1981), García et al. (1982) y Gonzáles et al. (1982) se tiene lo siguiente: Huevo.- Es de forma elíptica, superficie reticulada de color anaranjado hasta color ladrillo mide 0,72 x 0,42 mm de diámetro polar y ecuatorial. Larva.- Presenta un color crema, con cabeza y una placa anal quitinizada de color café oscuro. Presenta patas torácicas y una pseudopata caudal. Mide 8,6 mm en promedio. Por lo general presentan 3 estadios. Pupa.- De tipo exárate o libre, mide 3 a 4,5 mm. Los élitros y las alas están ligeramente desplazados unos sobre las otras y recubren una parte del abdomen. 22
  • 24. Adulto.- Presenta cabeza, tórax y abdomen de color negro. Las patas en general son de color amarillo ámbar, pero las patas posteriores presentan un área negra en el tercio apical del fémur. Los élitros son del mismo color que las patas pero con áreas negras bien diferenciadas, miden de 4,5 a 6 mm (Fig. 13a). Presentan polimorfismo (Fig. 13b) y dimorfismo sexual a nivel de antenas (Fig. 13c). 1 2 c a b c.1. macho, c2.hembra . Fig.12.- C. fascialis (a) Adulto típico, (b) Adulto polimórfico, y (c) diferencias entre antenas de macho y hembra (Crédito: Gonzáles et al.) Biología y comportamiento En lo que respecta a la duración del ciclo de desarrollo.- Gonzáles et al. (1982) para el valle del Cauca Colombia, reportan los siguientes datos: Periodo de incubación : 6,4 días Periodo larval (3 estadios) : 10,6 días Periodo de pre-pupa : 2,9 días Periodo de pupa : 6,4 días Total : 26,3 días En un ensayo de crianza masal en condiciones de Tumbes, López (1992) reporta que el ciclo de desarrollo de los individuos que fueron criados con dieta de soya tuvieron una duración de 33 a 38 días y los criados en dieta de fríjol caupi 28 a 36 días, las hembras criadas con la dieta de fríjol caupi ovipositaron en promedio 894 a 912 y aquellas con la dieta de soya, en promedio ovipositaron 454 a 482 huevos. Las hembras ovipositan alrededor de la base del tallo de las plantas, en la proximidad de las raíces dependiendo del agrietamiento del suelo. Cuando la larva alcanza su máximo desarrollo empupa en un cocón. Métodos de Control Cultural • Se recomienda hacer una buena preparación del suelo, con la finalidad de exponer huevos, larvas y pupas a la acción del sol y a la acción de los predatores. 23
  • 25. Eliminación de plantas hospederas especialmente la especie conocida como tacón de campo. Químico Cuando la infestaciones de adultos son altas, se recomienda la aplicación de cualquiera de los siguientes insecticidas, carbaryl (Dicarbam 85 PM o Sevin 85 PM) de 0,3 a 0,4 %, fipronil (Regent 200 SC) a dosis de 200 a 250 cc/ha, Malathion 57 CE al 0,3%, methomyl ( Methavin 90 PS o Lannate 90 PS) al 0,15%, clorpirifos (Lorsban 4E) al 0,2%. “Mosca blanca” o “petrolera” Bemisia tabaci (Gennadius, 1889) Ubicación taxonómica Orden : Hemiptera Familia : Aleyrodidae Distribución e importancia. Se encuentra en toda la costa del Perú. Esta especie se convierte en muy importante en el cultivo de soya y en menor escala en fríjol caupi. Daños.- Ocasiona daños directos e indirectos. El daño directo lo hace el adulto y la ninfa al extraer grandes cantidades de savia de las plantas, lo que reduce el vigor de estas, afectando la producción. Los daños indirectos son de 2 clases: primero, es causado por la secreción del adulto y ninfa de sustancias azucaradas sobre las hojas en donde desarrolla el hongo de la fumagina, lo que reduce la capacidad fotosintética de estas (Fig. 16); segundo, esta especie es excelente vector de enfermedades causadas por virus de la familia Geminiviridae (Sánchez y Vergara,1998). Fig.16.- Daños ocasionados en soya por “mosca blanca” B. tabaco 24
  • 26. Características morfológicas CIAT (1979) y Sánchez y Vergara (1998) reportan para esta especie lo siguiente: Huevo.- Presenta forma ovalada y un pequeño pedicelo que le permite adherirse a la hoja (Fig. 17a), recién ovipositado es de color blanco cremoso y conforme avanza el periodo de incubación se vuelve de color oscuro mide 0,2 mm de longitud. Ninfa.- Pasa por tres estadios, el primer estadio (crawler) es de color amarillo verdoso, aplanado y oval; con patas pequeñas que le permiten desplazarse a cortas distancias del lugar de emergencia. Los dos estadios siguientes (II y III) no son móviles debido a sus patas atrofiadas; son achatados, en forma de escamas la cual se protege con polvo ceroso (Fig. 17b). Mide 0, 29 a 0,52 mm de longitud. Pupa (Ninfa IV).- Es de forma oval, con márgenes redondeados, protegida en algunos casos con abundantes proyecciones cerosas. Se puede observar a los costados dos manchas de color rojo que serán los futuros ojos del adulto. Adulto.- Mide 0,94 a 1,4 mm de color blanco debido al polvo ceroso que es secretado por un par de glándulas (Fig. 17c), eliminan mielecilla a través del opérculo de la placa anal, esta mielecilla al depositarse sobre el área foliar facilita el desarrollo del hongo de la fumagina. Biología.- Tiene una metamorfosis especial denominada remetabola. El adulto deposita sus huevos en el envés de las hojas especialmente las del tercio inferior en forma aislada. Una hembra de B. tabaci puede poner entre 50 a 100 huevos por hembra. El periodo de incubación dura en promedio de 7 a 14 días, pasa por 3 estadios ninfales que duran de 7 a 23 días dependiendo de la temperatura. Pupa de 2 a 4 días. Fig.17.- “Mosca blanca” B. tabaci : (a) huevos (b) Ninfas (c) Adulto (Crédito: ICI) Métodos de Control Cultural. Eliminar los rastrojos del cultivo inmediatamente después de la cosecha, principalmente si ha sido hospedero de la plaga y presenta síntomas de virosis. Debe existir periodo de campo limpio. 25
  • 27. Establecer siembras escalonadas de maíz o sorgo, para facilitar el desarrollo de la población de crisopas, chinches, coccinélidos y arañas. Efectuar riegos adecuados, evitando la sequía. Instalación de plantas trampa alrededor del cultivo tal como melón, sandía, zapallo o crotalaria, donde se realizará la aplicación de insecticidas en forma localizada. Etológico Usar trampas pegantes fijas, de color amarillo, ubicándolas en el contorno, según la dirección del viento, y dentro del campo. Mecánico Usar trampas pegantes móviles construidas de plástico amarillo (2 a 3 pasadas semanales). Biológico García (1986), reporta predadores de huevos y ninfas como: Delphastes catalinae, Coleomegilla maculata, Hippodamia convergens, (Coccinellidae), Geocoris sp. (Lygaeidae) Metacantus tenellus (Neididae), Chrysoperla externa (Chrysopidae), Amblyseusius sp.(Phytoseidae). Gonzáles (2007) reporta para Tumbes a los parasitoides Encarsia nigricephala (Ninfas III y Pupas), y Eretmocerus sp. (Pupas). Sánchez y Vergara (1998) reportan la acción de hongos entomopatogenos Verticillium lecanii, Beauveria bassiana, Paecilomyces fumosoreus, Químico Buprofezim (Applaud, Hook, Triunfo) a dosis de 200 g/cilindro, acetamiprid (Rescate PS) a 150-200 g/ha, thiamethozam (Actara 25 WG) a la dosis de 250 g/ha. De igual modo se recomienda la aplicación del bioinsecticida a base del hongo Entomophthora virulenta (Vektor) 250 ml/200L. 26
  • 28. “Trips” Caliothrips braziliensis Morgan Ubicación taxonómica Orden : Thysanoptera Familia : Thripidae Daños.- Esta especie ocasionalmente produce daños económicos, especialmente bajo condiciones cálidas y secas. El adulto y ninfa succiona la savia de las hojas, y yemas dándoles una apariencia decolorada o plateada, que puede volverse café. También puede causar malformación o achaparramiento de la planta y retardar el crecimiento. Características morfológicas Adulto.- La hembra es de color marrón oscuro, margen anterior de la cabeza es amarillento, los tarsos y ápices de las tibias son de color amarillo, segmentos antenales II a IV amarillo con sombreado marrón apicalmente. Las alas anteriores son marrones, con 3 bandas blancas transversales sub-apicalmente, medial y sub basalmente, pero las bandas medianas algunas veces débiles. La cabeza es reticulada, con márgenes a los lados de los retículos. La antena tiene 8 segmentos. El pronotum no presenta setas largas. El tarso es uní segmentado (Fig. 19). Métodos de Control • Cultural. Se recomienda mantener una adecuada humedad en el campo • Químico. benfuracarb (Oncol 40 CE ) 200 a 300 cc/cilindro, clorpirifos (Paladín 480 C.E, Lorsban 4E) 300 a 400 cc/cilindro, cypermetrina+ metamidophos (Caporal 540 E.C. ) 500 a 750 cc/cilindro, cypermetrina (Cypertrin 200 EC. ) 200 cc/cilindro. Fig.19.- Adulto de C. braziliensis (crédito: Laurence Mound) 27
  • 29. “Arañita roja” Tetranychus cinnabarinus Boisduval Ubicación taxonómica Orden : Acarina Familia : Tetranychidae Características morfológicas De acuerdo a lo reportado por Sánchez y Vergara (1998) se tiene lo siguiente: Huevo.- Tiene forma esférica y con la superficie del corion liso. Recién ovipositado presenta una coloración clara, transparente y brillosa, posteriormente se torna amarillento hasta alcanzar un color naranja o rojizo brilloso. Mide 0,11 a 0,15 mm de longitud. Larva.- Es ovalada, hexápoda. Inicialmente amarillo-transparente, con manchas oculares rojizas. A medida que se alimenta cambia de color, observándose dos manchas en el dorso a cada lado del idiosoma. Mide entre 0,14 a 0,24 mm de longitud. Ninfa.- Es octopoda, de color verde claro, con las manchas del idiosoma más acentuadas. Alcanza a medir 0,24 a 0,45 mm. Adulto.- La hembra es de forma oval y con el cuerpo cubierto de setas, tanto dorsales como ventrales, siendo las dorsales en número de 24. Las patas son de color claro, con el primer par mas largas que las demás y el cuarto par del área anal. El color general es rojo carmín, mientras que el macho es amarillo pálido a verdoso, con las patas de color canela y más largas que en las hembras. El macho mide entre 0,31 a 0,41 mm mientras que la hembra 0,43 a 0,48 mm. Métodos de Control Químico Clorobenzilato 25% CE al 0,1%, dicofol Kelthane 18,5% PM al 0,25% Sulfer Saume es una forma especial de azufre, que actúa por contacto en el control de insectos, hongos y ácaros 25 a 30 kg/ha. Metamidofos (Stermine 600 SL) 500 a 750 cc/200 L. Fig.20.- arañita roja T. cinnabarinus 28
  • 30. “Barrenador de los brotes” Epinotia aporema (Walsingham, 1914) Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Tortricidae Distribución e Importancia.- Se encuentra distribuida desde el sur de Estados Unidos de América, México, América Central y del Sur. En el Perú, se le ha registrado en las tres regiones pero tiene mayor incidencia en la costa (Avalos, 1981) y Sánchez y Vergara (1998).Constituye una plaga importante del cultivo de leguminosas. En condiciones de Tumbes se comporta como una plaga potencial. Daños.- Son ocasionados por la larva que pega las hojitas del brote terminal que luego son comidas y la yema terminal destruida, lo mismo sucede con las yemas axilares, puede barrenar tallos y ramas, destruir flores y perforar vainas; infestaciones sucesivas comprometen el desarrollo del cultivo. a b Fig.21.- Daños ocasionados por E. aporema (a) brotes y (b) tallos Morfología Sánchez y Vergara (1998) reportan lo siguiente: Huevo.- Es elíptico un poco convexo, de color verde claro a amarillo naranja y de aproximadamente 0,5 mm de diámetro. Larva.- En los 3 primeros estadios larvales tiene una coloración verde claro, siendo posible observar por transparencia el contenido oscuro del tubo digestivo. La cabeza y el escudo pro torácico es de color negro brillante (Fig. 22a). En el cuarto estadio adquiere una coloración más verdosa, con cabeza y escudo pro torácico de color negro. En el quinto estadio presenta una coloración amarillenta, con la cabeza y el escudo pro torácico marrón claro, y normalmente, antes de entrar al periodo de pre- pupa adquieren una coloración rosácea. En su máximo desarrollo mide 6 mm de largo. Pupa.- Es obtecta, de 5 a 7 mm de longitud, de color castaño rosado. 29
  • 31. Adulto.- Tiene una expansión alar de 13 a 15 mm, de color marrón grisáceo con dibujos claros y negros que configuran en el ángulo externo de, las alas exteriores un ojo, y en la parte media una letra V (Fig. 22b). El macho se distingue de la hembra por poseer un pliegue costal en la longitud del ala anterior y por ser su coloración en total más clara. a b Fig.22.- E. aporema (a) larva (crédito Aventis.S.A.), (b) Adulto Biología y comportamiento En lo que corresponde a la duración del ciclo de desarrollo, Wille (1952) para condiciones de la costa y para verano e invierno, da respectivamente la siguiente información: Incubación (huevo) : 04-07 días Periodo larval : 16-25 días Periodo pupal : 10-28 días Total : 30-60 días La mariposa oviposita sus huevos sobre las partes más tiernas de la planta, brotes y hojitas nuevas en la cara inferior de las hojas cerca de la nervadura central o bien a lo largo de ella. Una hembra en promedio pone de 110 a 180 huevos. La larva recién emergida, simultáneamente comen en las hojitas en el brote mismo; en los primeros estadios esqueletiza superficialmente a la epidermis, pero más tarde destruye en forma muy efectiva y rápida los órganos infestados, en todos sus estadios tejen finos hilos de seda reuniendo las hojitas destruidas y formando un estuche. Métodos de Control Cultural. Destrucción de residuos de cosechas, rotación de cultivos. Biológico. Entre los enemigos naturales se mencionan como parásitoides de larvas a los taquínidos Eucelatoria australis y Nemorilla sp. al braconido Apanteles sp., y entre los predadores a Rhinacloa forticornis (Miridae), Geocoris punctipes (Lygaeidae) y Nabis sp. (Nabidae). Químico. En caso de infestaciones severas se puede aplicar los siguientes insecticidas: carbaril (Sevin 85 PS) al 0,35%, metamidofos + ciflutrina (Baytroid TM 525 SL) al 0,15%; clorpirifos (Paladin 480 EC) 1 L/ha. 30
  • 32. “Gusano Perforador de los Tallos y Vainas” Cydia fabivora (Meyrick 1928) (Laspeyresia leguminis Heinrich) Ubicación taxonómica Orden : Lepidoptera Familia : Tortricidae Distribución e importancia.- Esta especie se halla distribuida en toda la Costa del Perú. En Tumbes se comporta como una plaga potencial, siendo los cultivos atrasados los mayormente afectados. Daños.- Es ocasionado por la larva que barrena tallos cuando la soya aún carece de vainas bien formadas, el ataque inicia en las axilas de las ramas laterales con el tallo, a medida que la larva alcanza su máximo desarrollo ingresa al interior del tallo haciendo galerías en el cilindro central impidiendo la circulación de la savia hecho que motiva el marchitamiento paulatino y la muerte de las plantas. En las vainas las larvas hacen galerías y destruyen las semillas (Fig. 23), eliminando por los agujeros los excrementos hacia afuera que quedan aglomerados sobre el agujero y reunidos por finos hilos de seda. Fig.23.- daños en vainas ocasionados por el “gusano barrenador de vainas y tallos” C. fabivora. Características morfológicas. De acuerdo a lo reportado por Risco (1951), Sánchez y Vergara (1998) tenemos la siguiente descripción. Huevo.- Tiene forma globular, sin embargo, no se presenta como esfera completamente redonda, es algo aplanado en la parte basal, de estructura reticulada, formada por pequeños hexágonos y pentágonos. Recién ovipositado es de color amarillo cremoso, luego presenta una coloración rojiz y finalmente en el interior del huevo se va formando una mancha rojo vinoso oscuro, de forma más o menos circular y concéntrica a la superficie. Larva.- Recién eclosionada presenta color amarillo anaranjado, en su último estadio toma coloraciones más oscuras, la cabeza y el protórax son de color bruno oscuro hasta negro. La larva llega a medir hasta 19,0 mm. Próxima al estado de pupa (pre-pupa) adquiere una coloración rosácea. 31
  • 33. Pupa.- Es del tipo obtecta y presenta inicialmente color marrón claro, posteriormente se torna de color marrón oscuro al estar por emerger el adulto, mide 8 mm. La característica de esta pupa es que presenta en el aspecto latero dorsal de los segmentos abdominales dos hileras de espinas, la hilera anterior son espinas de mayor tamaño que las espinas de la hilera posterior. Adulto.- Es de color ceniciento con reflejos plateados debido a la coloración de sus escamas que recubren totalmente el cuerpo y la superficie del ala. En el ángulo formado por el margen anterior y el margen externo se puede apreciar la presencia de una mancha pequeña irregular , comprimida de color plateado la cual parece continuarse siguiendo el borde del margen externo, pero, es interrumpida más o menos a la mitad de su recorrido por una mancha de color ceniciento (Fig. 24). La expansión alar varía entre 18 y 22 mm. Fig.24.- Adulto del “barrenador de tallos y vainas” C. fabivora Biología y comportamiento En lo que corresponde a la duración del ciclo de desarrollo, Risco (1951) para las condiciones de Lima y utilizando como substrato alimenticio el fríjol proporciona la siguiente información: Incubación (huevo) : 04-08 días Periodo larval : 20-30 días Periodo pupal : 13-27 días Total : 37-65 días 32
  • 34. Los huevos son ovipositados en forma aislada o en grupos sobre las vainas contrastando con el color de estas, pero como la mariposa pone sus huevos en los tallos y ramas el color es disimulado. La larva recién eclosionada permanece inmóvil durante algún tiempo después del cual comienza a barrenar en zonas próximas al sitio en que el huevo es ovipositado. El estado de pupa se lleva a cabo dentro del tallo o las vainas para lo cual las larvas construyen un cocón de seda muy fino. Los adultos son de hábitos nocturnos. Métodos de Control El control está orientado básicamente a sembrar en las fechas establecidas para el valle evitando siembras atrasadas y al uso de variedades precoces. Biológico En lo que respecta a enemigos naturales en Tumbes el autor ha observado un parasitoide de larvas pertenecientes al género Bracon, para otras condiciones se reporta a Orgilus sp. y a Plagiprospherysa parvipalpis (Tachinidae). Como predadores se puede citar a Rhinacloa forticornis y Geocoris punctipes Se recomienda hacer liberaciones de Trichogramma pintoi a razón de 100 000 individuos / semana durante la fructificación proporcionando buenos resultados. Químico Si se presentan fuertes infestaciones se puede recurrir al uso de insecticidas entre los que se podrían indicar: carbaryl (Sevin 85 PS) al 0,3%, dimetoato +clorpirifos (Saluthion ) al 0,15% ó 0,20 %; metamidofos+cyfluthrin (Baytroid TM 525 SL) a 0,15 ó 0,2%. 33
  • 35. “Escarabajo barrenador de los peciolos y tallos” Grammopsoides sp. Ubicación taxonómica Orden : Coleoptera Familia : Cerambycidae Daños.- Es ocasionado por la larva que barrena inicialmente los peciolos y posteriormente los tallos haciendo galerías en el cilindro central impidiendo la circulación de la savia que motiva el marchitamiento paulatino y la muerte de las plantas. Características morfológicas. De acuerdo a lo observado por el autor se tiene lo siguiente descripción. Larva.- Es de tipo cerambiciforme de color blanco cremoso llega a medir cerca de 20 mm (Fig. 25a). Pupa.- Es del tipo exarate y presenta inicialmente color marrón claro, posteriormente al estar por emerger el adulto adquiere un color marrón oscuro, mide 8 mm. Se puede observar los apéndices en formación (Fig. 25b). Adulto.- Presenta cuerpo cilíndrico alargado, de color negro, la característica es que tiene antenas muy largas. Mide 18 y 22 mm (Fig. 25c). a b c Fig.25.- Escarabajo barrenador de los peciolos y tallos Grammopsoides sp. (a) Larva, (b) pupa y (c) adulto (Crédito. M.Arias,INIAP-Ecuador) 34
  • 36. “Chinches de las Vainas”, “chinches hediondos” o “chinches escudo” Euchistus rubiginosus Dallas, 1851, Piezodorus guildinii, Westwood, 1837 Acrosternum (chinavia) ubicum Rolston, 1983, Loxa viridis (Palisot de Beauvois, 1805) Nezara viridula (Linnaeus, 1758) Ubicación taxonómica Orden : Hemíptera Familia : Pentatomidae Daños.- Es ocasionado por las ninfas y los adultos pueden llegar a impedir el normal desarrollo de las vainas, dañando total o parcialmente una o más semillas de su interior ocasionando semillas pequeñas. Fig.26.- Chinches que ocasionan daño a vainas: (a) E. rubiginosus, (b) P. guildinnii, (c)A. ubicum, (d) L. viridis (crédito Museum of Comparative Zoology(MCZ) Harvard University (e) N. viridula insectographs.com.au/media/Greenvegetable.jpg “Chinche de la alfalfa” Piezodorus guildinii Westwood, 1837 Características morfológicas • Huevo.- Es de forma cilíndrica con base redondeada su color es gris con una ancha banda central transversal y una faja angosta del mismo color en el borde superior. Tiene un corion reticulado y pubescente. Mide 0,8 mm. de altura y 0,5 mm de diámetro. • Ninfa.- En el primer estadio posee cabeza y tórax negro de color negro y abdomen verde amarillento manchas dorsales negras, en este estadio mide 0,8 mm de longitud de forma casi esférica. En el quinto estadio, posee cabeza de color verde con márgenes negros, el tórax es verde y presenta muchos puntos negros, el abdomen es blanco verdoso o verde amarillento con tres manchas vinosas y las manchas centrales negras. Bordeando dorsalmente el abdomen se observa una línea negra; ventralmente el abdomen es verde amarillento miden 10 mm de longitud, se observan los rudimentos alares. 35
  • 37. • Adulto. Llega a medir 10 mm de color verde claro recién emergido, posteriormente presenta un color ocre sucio. En la parte posterior del pronoto por lo general hay una banda transversal parda oscura. Los hemielitros son verdes con una manchita negra en el corión y la membrana es incolora y transparente. Biología y comportamiento.- La hembra coloca los huevos sobre hojas, flores y frutos de las plantas hospederas números de 13 a 17 en dos hileras paralelas, puede poner entre 130 a 170 huevos, las recién nacidas permanecen cerca de dos horas para luego pasar a las hojas, flores y para alimentarse. Incubación : 07-08 días Ninfa : 25 -33 días (5 estadios) Total 32-41 dias Acrosternum (chinavia) ubicum Rolston, 1983 Schwerthner et al. (202) reportan para el estado de huevo y ninfa lo que a continuación se detalla: • Huevo.- Presenta un corion reticulado y procesos micropilares clavados de coloración blanca, presenta una coloración ocre a castaño pardo. Mide 1,36 mm de altura y 1,15 mm de diámetro. • Ninfa.- Del primer al tercer estadio, la ninfa tiene una coloración de cuerpo predominantemente oscura, el abdomen presenta una serie de manchas de coloración crema blanca. A partir del segundo estadio, presentan manchas de coloración rojizo a rojizo anaranjado en las márgenes dorsales del pronoto y mesonoto. La coloración rojizo-anaranjada de las manchas dorsales es aparentemente especifica de A. ubicum. A partir del 4º estadio, las manchas son mas amplias, pudiendo también ocurrir en las márgenes de los jugum, en la superficie dorsal del pronoto y mesonoto y en el centro de las placas medianas y laterales del abdomen. El 4º y 5º estadio presenta formas oscuras y claras, siendo que su proporción varía de acuerdo con el tipo de alimento ofrecido. • Adulto. Es de un color verde claro llegan a medir 12 mm de longitud Loxa viridis (Palisot de Beauvois, 1805) Adulto. Es un chinche grande de color verde claro, el pronotum presenta prolongaciones laterales a manera de espina y los márgenes anteriores son aserrados, connexivia ligeramente expuesta; proboscis alcanza la porción media del metasterno o el margen posterior del esternito abdominal III, llegan a medir 22 mm de longitud. No se ha logrado obtener información morfológica del estado de huevo y ninfa. 36
  • 38. "Chinche verde” Nezara viridula (Linnaeus, 1758) Características morfológicas Huevo.- Es cilíndrico con base redondeada, de color amarillo anaranjado; tiene un opérculo convexo blanco nacarado, próximo a la eclosión es de un color rojizo anaranjado. Mide 1,25 mm de altura y 0,85 mm de diámetro. Ninfa.- En el primer estadio presenta un color negro con 4 manchas amarillo anaranjado, en este estadio mide 1,6 mm de longitud. En el quinto estadio miden 11 a 12 mm de longitud, de colores verde claro a oscuros se observan los rudimentos alares. Adulto.- Existen dos formas una que es completamente verde y la otra que además del verde presenta en la parte antero posterior de la cabeza y anterior del pronoto callosidades amarillentas y, a veces algo rojizas. Llegan a medir de 14 a 15,5 mm Biología y comportamiento En lo que respecta al ciclo de desarrollo se cuenta con la siguiente información. Huevo (Incubación : 05 - 11 días Ninfa : 25 - 60 días (5 estadios) Total : 30- 71 días La hembra coloca los huevos en el envés de una hoja en número de 55 a 105, la ninfa del primer estadio se alimenta muy poco; viven agrupadas sobre los restos de los huevos hasta producirse la muda, luego se dispersan por el vegetal. Métodos de Control Biológico Se reporta como parasitoide de huevos al Scelionidae Trissolcus scuticarinatus y de adultos a los taquinidos Trichopodopsis y Gymnosmatida Químico.- En caso sea necesario se puede aplicar los siguientes insecticidas metamidofos + ciflutrina (Baytroid TM 525 SL) a dosis de 0,75 L/ha, betacyflutrina (Bulldock 25 EC) a 0,2 L/ha. 37
  • 39. VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS • AVENTIS.S.A. http://www.viarural.com.ar/agricultura/aa-insects/epinotia-aporema.1jpg • ARIAS, LOPEZ DE. M. 1981. Manejo Integrado de Insectos Plaga en Soya: En : Manual del Cultivo de Soya (Glycine max (L.) Merril. Editorial INIAP-Ecuador: pp. 63-77 • AVALOS, F. 1981. Plagas e las leguminosas alimenticias. II Curso Intensivo de l Control Integrado de Plagas y Enfermedades Agrícolas UNA-La Molina. Tomo III: fascículo 41: 16 pp. • CARRASCO DE LAMA, R. A. 1995. Fluctuación poblacional de la mosca minadora (Liriomyza sativae Blanchard, Diptera: Agromyzidae) y su parasitoides en el fríjol caupi en el valle de Tumbes. Tesis para optar el Título de Ingº Agrº Universidad Nacional de Tumbes-Perú.129 pp. • CASTILLO-CARRILLO, P. S. 1997. Principales Plagas del cultivo de Fríjol Castilla en el Valle de Tumbes. Edtorial. PET-UNT. Segunda edición. 28 pp. • CRUZ, L. y P. CASTILLO-CARRILLO. 1988. Omiodes indicata (Lepidoptera: Pyralidae) en Tumbes: ciclo biológico y potencial reproductivo en insectario. Rev. per. Ent. 31:103-106. • CENTRO INTERNACIONAL DE AGRICULTURA TROPICAL.1981. Principales crisomélidos que tacan el fríjol y su control; guía de estudio para ser usada como complemento de la unidad audiotutorial sobre el mismo tema. Contenido Científico: César Cardona y Jorge García, Producción: Héctor F. Ospina y Marceliano López. Cali, Colombia. CIAT. 24 pp. • ……………………………………………………………………..1979. Descripción y daños de las plagas que atacan fríjol. 41 pp. • COLEGIO POSTGRADUADOS DE CHAPINGO MEXICO. www.colpos.mx/entomologia/plagas2.htm. • COSTILLA, M. A. 1988. Biología e importancia de la oruga verde de la soja Anticarsia gemmatalis Hub. (Lepidoptera:Noctuidae) Rev. Ind. Y Agrícola de Tucumán, 65 (1-2): 169 -184. • COMBE L.,I. y G. PEREZ.1978. Biología del “gusano medidor” Pseudoplusia includens (Walk) (Lep.:noctuidae) en Rev. Per. Ent. 21:61-62. • CRUZ, L. y P. CASTILLO-CARRILLO. 1989. Omiodes indicata (Lepidoptera, Pyralidae) en Tumbes: ciclo biológico y potencial reproductivo en insectario. En Rev. per. Ent. 31:103-106(junio 1989). • EXTENSION ENTOMOLOGY. http://insects.tamu.edu/images/insects/color/cloop1. • GARCIA, F. J. PULIDO y A. De GUTIERREZ.1982. Plagas de la soya. En: Instituto Colombiano agropecuario. Curso de producción de soya. 3er. Edición. Edit. ICA-INSOY. Palmira, Colombia. : pp 251-316 • GARCIA, U. 1986. insectos dañinos de las leguminosas. Copias mimeografiadas. UNA-La Molina. Lima-Perú. 27 pp. • GONZALES, J. A. 2007. Población de mosca blanca Bemisia tabaci Gennadius y sus parasitoides en el cultivo de soya Glycine max (Linneo) en el centro de Investigaciones y Extensión Agraria Los Cedros-Tumbes, Octubre 2004- septiembre 2005. Tesis para optar el Título de Ing. Agr. Universidad Nacional de Tumbes-Perú.56 pp. • GONZALES, R.; CARDONA, C. Y A. V. SCHOONHOVEN. 1982. Morfología y biología de los crisomelidos Diabrotica balteata Le conté y Cerotoma fascialis Erickson como plagas del fríjol común. Turrialba.Vol 32 Nº 3. 257-264. • HAMBLE WILDLIFE. www.humblewildlife.com/moths/images/moths_2_agair-jpg • HERBISON, D. y S. CROSBY. www.staff.it.uts.edu.au/-donlarvae/noct./ypsile.html. Acceso. 06 septiembre 2009. 38
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