Micropropagación de plantas




               Micropropagación


Micropropagación vs. propagación vegetativa convencional

         Tipos de técnicas de micropropagación

Etapas de la micropropagación y principales problemáticas

                         Costos
Micropropagación de plantas

Micropropagación vs. propagación vegetativa convencional
Micropropagación de plantas


              MICROPROPAGACIÓN
  Técnica de propagación vegetativa de plantas en
                condiciones in vitro.
     Producción masiva a precios competitivos.


Cultivo aséptico de un explanto en un medio de
cultivo artificial y en condiciones ambientales
controladas.
Micropropagación vs. propagación vegetativa
              convencional


Es posible propagar algunas especies que no se propagan “in
                          vivo”.

         Se necesita muy poco material de partida.

  El crecimiento es mayor por rejuvenecimiento y sanidad.

                  Se requiere poca área.

              Se elimina el efecto estacional.

          Simultáneamente se “limpia” el material.
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Tipos de técnicas de micropropagación

       Por brotación de yemas axilares.


     Por brotación de yemas adventicias:
                  •directa
                 •indirecta
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           Etapas de la micropropagación
          Por brotación de yemas axilares.

        Elección y preparación de la planta madre (etapa 0).

Establecimiento del cultivo y elección del medio de cultivo (etapa 1).

                      Multiplicación (etapa 2).

               Elongación y enraizamiento (etapa 3).

                       Aclimatación (etapa 4).
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 Etapa 0: Elección y preparación de la planta madre.


  Crecimiento en condiciones de sanidad
controlada.


 Tratamientos de rejuvenecimiento.


  Pretratamientos con reguladores de
crecimiento.
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Etapa 0: Elección y preparación de la planta madre.




      Yemas epicórmicas
                                         Podas severas
     Rebrotes
      de raíz


                             Rebrotes de tocón
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Etapa 0: Elección y preparación de la planta madre.




   Brotaciones epicórmicas,      Brotaciones epicórmicas,
     Eucalyptus grandis.            Pinus canariensis.
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Etapa 0: Elección y preparación de la planta madre.

            Pretratamientos con reguladores de crecimiento.


   Pulverizaciones con citoquininas
       •    Reversión a estado semi-juvenil
       •    Incremento en el número de brotes


   Combinación con tratamientos anteriores


                                                      Rebrotes juveniles,
   Giberelinas en algunas especies
                                                       Acca sellowiana
                                                              (BAP)
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Etapa 1: Establecimiento del cultivo en condiciones
                    de asepsia.
      Objetivo:
         Iniciar el cultivo
         Método reproducible
         % de éxito
         Compromiso esterilización/tasa de
             sobrevivencia
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Etapa 1: Establecimiento del cultivo en condiciones de
                      asepsia.
Procedimiento:


                    Cortar brotes con características juveniles.
                    Lavar con agua y jabón.




                    Se descartan las hojas, se dejan los pecíolos.
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Etapa 1: Establecimiento del cultivo en condiciones de
                      asepsia.
Procedimiento:


                    Realizar la desinfección:
                        •etanol, hipoclorito de sodio,etc.
                        •tiempos




                    Realizar tres enjuagues con agua destilada
                    estéril.
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Etapa 1: Establecimiento del cultivo en condiciones de
                      asepsia.
Procedimiento:


                    Cortar segementos nodales, descartando los
                    extremos basal y apical.




                    Cada nudo contiene un meristemo axilar.
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Etapa 1: Establecimiento del cultivo en condiciones de
                      asepsia.
Procedimiento:


                    Introducir un segmento nodal por tubo de
                    ensayo conteniendo el medio de cultivo.




                    Tapar y colocar en cámara de crecimiento.
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    Etapa 1: Establecimiento del cultivo en condiciones
                        de asepsia.




Eucalyptus grandis   Acca sellowiana   Actinidia deliciosa    Allium cepa
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¿Cuáles son las principales limitantes en esta etapa?




       Contaminación             Oxidación

            Hongos
           Bacterias
             Virus
         Mycoplasmas
     Microartrópodos y Trips
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Principales causas de contaminación fúngica:
    •Esterilización superficial inadecuada
    •Manipulación
    •Introducción de esporas por Trips


Se detecta fácilmente a simple vista.


Géneros de hongos más frecuentes:
    •Aspergillus
    •Candida
    •Cladosporium
    •Microsporium
    •Phialophora
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Bacterias:
    •Principal agente contaminante.
    •Síntomas sobre el explanto o en el medio de cultivo.
    •Pueden aparecer luego de varios subcultivos.
    •Síntomas no visibles, plantas que no sobreviven la aclimatación.
    •(Bacterias no patogénicas, benéficas)

Géneros de bacteria más frecuentemente observados en cultivos de tejidos in vitro.
                            (Leifert & Waites, 1990)

                            Agrobacterium       3%
                                Bacillus       13 %
                              Enterobacter     12 %
                             Pseudomonas       19 %
                             Lactobacillus     11 %
                            Staphylococcus     26 %
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             ¿Cómo puede solucionarse?


Hongos:       Adecuada desinfección

Bacterias:    Antibióticos

              Uso humano y animal

              Efecto bacteriostático/bactericida

Virus:        Cultivo de meristemas y termoterapia
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Oxidación:

 •Amarronamiento del explanto y/o el medio.
 •Inhibición del crecimiento y muerte del explanto.
 •Más marcado en especies que naturalmente tengan altos niveles de
 taninos u otros compuestos fenólicos.

Causas:

 •Acción de enzimas oxidasas que son liberadas o sintetizadas en
 respuesta a heridas.
 •Sustratos distintos según el tejido.
 •Fenoles se oxidan a quinonas que a su vez tienen alto poder
 oxidante sobre proteínas.
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       ¿Cómo puede solucionarse?

 Agua estéril 2-3 hs previo a la introducción.
  Empleo de antioxidantes en el último enjuague o en
el medio de cultivo (ácido cítrico, ascórbico).
 Transferencias frecuentes (cada dos o tres días) a
medio fresco.
 Carbono activado.
 PVP
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Etapa 2: Multiplicación.
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            Etapa 2: Multiplicación.

Objetivo:
    Máximo coeficiente de multiplicación
    Calidad de plantas




 Número teórico de plantas que pueden producirse en
                       un año.
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Etapa 2: Multiplicación.
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                 Etapa 2: Multiplicación.
Procedimiento:


                     Extraer los explantos que brotaron en la etapa
                     previa.




                     Cortar separando brotes individuales o
                     segmentos nodales (según el hábito de
                     crecimiento de la especie).
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                 Etapa 2: Multiplicación.

Procedimiento:


                     Separar los brotes por tamaño.




                     Colocar en medio de multiplicación.
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                    Etapa 2: Multiplicación.

Medio de cultivo:
        Hormonas




          Efecto de los reguladores de crecimiento en la sobrevivencia y
                            multiplicación de Salix sp.
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   Etapa 2: Multiplicación.




Todos los medios contienen ANA (0,3 µM).
                                            Grigoriadou, 2002.
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        Etapa 2: Multiplicación.




 Efecto de los reguladores de crecimiento en la
multiplicación de Malus sp. (4 semanas en cultivo).

                                                      Xu, 2007.
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                 Etapa 2: Multiplicación.

Hábito de crecimiento:
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¿Cuáles son las principales limitantes en esta etapa?

                                 Variación somaclonal
                             Variación genética heredable, que surge
                             en plantas producidas por cultivo de
                             tejidos.
                             Desventaja importante cuando el objetivo
                             es la fidelidad clonal.




         ¿Cómo puede solucionarse?
          Reducir el número de repiques.
          Uso racional de reguladores de crecimiento.
          Evitar el 2,4 D.
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¿Cuáles son las principales limitantes en esta etapa?



                                       Hiperhidricidad (Vitrificación)




           Desorden fisiológico, metabólico y morfológico
   inducido por las condiciones de estrés durante el cultivo in vitro.
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   Etapa 3: Elongación y enraizamiento.


Elongación: es necesaria en especies con hábito
de multiplicación en roseta.


Tratamientos:

    Medio sin citoquinina.
    Uso de carbón activado.
    Uso de giberelinas.
    Crecimiento en oscuridad.
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        Etapa 3: Elongación y enraizamiento.

   Enraizamiento:
                            In vitro o ex vitro
                            Auxinas: AIB, ANA
                            Sustratos




Enraizamiento ex vitro de A. flaccida.            Enraizamiento in vitro de A. sellowiana.
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  Principal problemática en esta etapa.



Capacidad de enraizamiento dependiente del genotipo.

Conexión raíz – parte aérea
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                     Etapa 4: Aclimatación
  Objetivo:
  Optimizar la transferencia del ambiente in vitro a condiciones de
  invernáculo o campo.
  Minimizar pérdidas y acelerar el proceso.


PLANTAS OBTENIDAS IN
VITRO:                                          PROCESO GRADUAL:
 Hojas delgadas
                                                  Disminución de la HR
 Tallos débiles
  Raíces débiles y poco                           Crecimiento autotrófico
funcionales
                                                  Condiciones sépticas.
 Conexión tallo-raíz incompleta
 Baja tasa fotosintética
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                 Etapa 4: Aclimatación
Procedimiento:
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Etapa 4: Aclimatación
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             Etapa 4: Aclimatación




Plantas in vitro presentan poca capacidad de retención de agua.
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             Etapa 4: Aclimatación




Dark respiration and net photosynthesis measured at 80 µmol m-2 s-1 (PPFD)
during acclimatization of micropropagated (A) Spathiphyllum and (B) Calathea,
   for in vitro (open symbols) and ex vitro (closed symbols) formed leaves.
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             Acca sellowiana, Guayabo del país




Etapa 0                 Etapa 1              Etapa 2




                                            Etapa 4
          Etapa 3
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Micropropagación por brotación de yemas adventicias.
Método directo: Saintpaulia ionantha. Violeta africana
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Micropropagación por brotación de yemas adventicias.
           Método indirecto: Prunus sp.




                                                       Feeney, 2007.
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Micropropagación por brotación de yemas adventicias.




   Formación de callo/brotes a partir de explantos foliares en Arándano,
                en respuesta al agregado de citoquinina.
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Dificultades que presentan las especies leñosas in vitro.


            Menor capacidad regenerativa

            Efecto de dormancia en yemas

            Inducción de rejuvenecimiento

            Menor tasa de multiplicación

            Mayor oxidación inicial del explante

            Desinfección más dificultosa

            Enraizamiento y aclimatación limitantes
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         Costos de la micropropagación
Capital para la instalación del laboratorio
Costo de la mano de obra
Costo de los materiales
Características del comportamieno in vitro del material a propagar
    •    Facilidad de establecimiento, rejuvenecimiento, etc.
    •    Tasa de multiplicación
    •    Enraizamiento in vitro/ex vitro

Pérdidas que ocurren en cada etapa del proceso
    •    contaminación
    •    hiperhidricidad
    •    % plantas que no enraizan
    •    % plantas que no sobreviven la aclimatación
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       Costos de la micropropagación

      Componente del costo                         %

           Costo capital                          27.3
  (Edificaciones y equipamiento)
              Salarios                            63.8
 (Laboratorio, invernáculo, oficina)
         Funcionamiento
 (Prod. Químicos, energía, agua,                  8.9
   mantenimiento, imprevistos)


En base a un laboratorio que produce 3 millones de plantas al año
                        (800 a 1400 m2).

Micropropagacin 2009

  • 1.
    Micropropagación de plantas Micropropagación Micropropagación vs. propagación vegetativa convencional Tipos de técnicas de micropropagación Etapas de la micropropagación y principales problemáticas Costos
  • 2.
    Micropropagación de plantas Micropropagaciónvs. propagación vegetativa convencional
  • 3.
    Micropropagación de plantas MICROPROPAGACIÓN Técnica de propagación vegetativa de plantas en condiciones in vitro. Producción masiva a precios competitivos. Cultivo aséptico de un explanto en un medio de cultivo artificial y en condiciones ambientales controladas.
  • 4.
    Micropropagación vs. propagaciónvegetativa convencional Es posible propagar algunas especies que no se propagan “in vivo”. Se necesita muy poco material de partida. El crecimiento es mayor por rejuvenecimiento y sanidad. Se requiere poca área. Se elimina el efecto estacional. Simultáneamente se “limpia” el material.
  • 5.
  • 6.
    Micropropagación de plantas Tiposde técnicas de micropropagación Por brotación de yemas axilares. Por brotación de yemas adventicias: •directa •indirecta
  • 7.
    Micropropagación de plantas Etapas de la micropropagación Por brotación de yemas axilares. Elección y preparación de la planta madre (etapa 0). Establecimiento del cultivo y elección del medio de cultivo (etapa 1). Multiplicación (etapa 2). Elongación y enraizamiento (etapa 3). Aclimatación (etapa 4).
  • 8.
    Micropropagación de plantas Etapa 0: Elección y preparación de la planta madre. Crecimiento en condiciones de sanidad controlada. Tratamientos de rejuvenecimiento. Pretratamientos con reguladores de crecimiento.
  • 9.
    Micropropagación de plantas Etapa0: Elección y preparación de la planta madre. Yemas epicórmicas Podas severas Rebrotes de raíz Rebrotes de tocón
  • 10.
    Micropropagación de plantas Etapa0: Elección y preparación de la planta madre. Brotaciones epicórmicas, Brotaciones epicórmicas, Eucalyptus grandis. Pinus canariensis.
  • 11.
    Micropropagación de plantas Etapa0: Elección y preparación de la planta madre. Pretratamientos con reguladores de crecimiento. Pulverizaciones con citoquininas • Reversión a estado semi-juvenil • Incremento en el número de brotes Combinación con tratamientos anteriores Rebrotes juveniles, Giberelinas en algunas especies Acca sellowiana (BAP)
  • 12.
    Micropropagación de plantas Etapa1: Establecimiento del cultivo en condiciones de asepsia. Objetivo: Iniciar el cultivo Método reproducible % de éxito Compromiso esterilización/tasa de sobrevivencia
  • 13.
    Micropropagación de plantas Etapa1: Establecimiento del cultivo en condiciones de asepsia. Procedimiento: Cortar brotes con características juveniles. Lavar con agua y jabón. Se descartan las hojas, se dejan los pecíolos.
  • 14.
    Micropropagación de plantas Etapa1: Establecimiento del cultivo en condiciones de asepsia. Procedimiento: Realizar la desinfección: •etanol, hipoclorito de sodio,etc. •tiempos Realizar tres enjuagues con agua destilada estéril.
  • 15.
    Micropropagación de plantas Etapa1: Establecimiento del cultivo en condiciones de asepsia. Procedimiento: Cortar segementos nodales, descartando los extremos basal y apical. Cada nudo contiene un meristemo axilar.
  • 16.
    Micropropagación de plantas Etapa1: Establecimiento del cultivo en condiciones de asepsia. Procedimiento: Introducir un segmento nodal por tubo de ensayo conteniendo el medio de cultivo. Tapar y colocar en cámara de crecimiento.
  • 17.
    Micropropagación de plantas Etapa 1: Establecimiento del cultivo en condiciones de asepsia. Eucalyptus grandis Acca sellowiana Actinidia deliciosa Allium cepa
  • 18.
    Micropropagación de plantas ¿Cuálesson las principales limitantes en esta etapa? Contaminación Oxidación Hongos Bacterias Virus Mycoplasmas Microartrópodos y Trips
  • 19.
    Micropropagación de plantas Principalescausas de contaminación fúngica: •Esterilización superficial inadecuada •Manipulación •Introducción de esporas por Trips Se detecta fácilmente a simple vista. Géneros de hongos más frecuentes: •Aspergillus •Candida •Cladosporium •Microsporium •Phialophora
  • 20.
    Micropropagación de plantas Bacterias: •Principal agente contaminante. •Síntomas sobre el explanto o en el medio de cultivo. •Pueden aparecer luego de varios subcultivos. •Síntomas no visibles, plantas que no sobreviven la aclimatación. •(Bacterias no patogénicas, benéficas) Géneros de bacteria más frecuentemente observados en cultivos de tejidos in vitro. (Leifert & Waites, 1990) Agrobacterium 3% Bacillus 13 % Enterobacter 12 % Pseudomonas 19 % Lactobacillus 11 % Staphylococcus 26 %
  • 21.
    Micropropagación de plantas ¿Cómo puede solucionarse? Hongos: Adecuada desinfección Bacterias: Antibióticos Uso humano y animal Efecto bacteriostático/bactericida Virus: Cultivo de meristemas y termoterapia
  • 22.
    Micropropagación de plantas Oxidación: •Amarronamiento del explanto y/o el medio. •Inhibición del crecimiento y muerte del explanto. •Más marcado en especies que naturalmente tengan altos niveles de taninos u otros compuestos fenólicos. Causas: •Acción de enzimas oxidasas que son liberadas o sintetizadas en respuesta a heridas. •Sustratos distintos según el tejido. •Fenoles se oxidan a quinonas que a su vez tienen alto poder oxidante sobre proteínas.
  • 23.
    Micropropagación de plantas ¿Cómo puede solucionarse? Agua estéril 2-3 hs previo a la introducción. Empleo de antioxidantes en el último enjuague o en el medio de cultivo (ácido cítrico, ascórbico). Transferencias frecuentes (cada dos o tres días) a medio fresco. Carbono activado. PVP
  • 24.
  • 25.
    Micropropagación de plantas Etapa 2: Multiplicación. Objetivo: Máximo coeficiente de multiplicación Calidad de plantas Número teórico de plantas que pueden producirse en un año.
  • 26.
  • 27.
    Micropropagación de plantas Etapa 2: Multiplicación. Procedimiento: Extraer los explantos que brotaron en la etapa previa. Cortar separando brotes individuales o segmentos nodales (según el hábito de crecimiento de la especie).
  • 28.
    Micropropagación de plantas Etapa 2: Multiplicación. Procedimiento: Separar los brotes por tamaño. Colocar en medio de multiplicación.
  • 29.
    Micropropagación de plantas Etapa 2: Multiplicación. Medio de cultivo: Hormonas Efecto de los reguladores de crecimiento en la sobrevivencia y multiplicación de Salix sp.
  • 30.
    Micropropagación de plantas Etapa 2: Multiplicación. Todos los medios contienen ANA (0,3 µM). Grigoriadou, 2002.
  • 31.
    Micropropagación de plantas Etapa 2: Multiplicación. Efecto de los reguladores de crecimiento en la multiplicación de Malus sp. (4 semanas en cultivo). Xu, 2007.
  • 32.
    Micropropagación de plantas Etapa 2: Multiplicación. Hábito de crecimiento:
  • 33.
    Micropropagación de plantas ¿Cuálesson las principales limitantes en esta etapa? Variación somaclonal Variación genética heredable, que surge en plantas producidas por cultivo de tejidos. Desventaja importante cuando el objetivo es la fidelidad clonal. ¿Cómo puede solucionarse? Reducir el número de repiques. Uso racional de reguladores de crecimiento. Evitar el 2,4 D.
  • 34.
    Micropropagación de plantas ¿Cuálesson las principales limitantes en esta etapa? Hiperhidricidad (Vitrificación) Desorden fisiológico, metabólico y morfológico inducido por las condiciones de estrés durante el cultivo in vitro.
  • 35.
    Micropropagación de plantas Etapa 3: Elongación y enraizamiento. Elongación: es necesaria en especies con hábito de multiplicación en roseta. Tratamientos: Medio sin citoquinina. Uso de carbón activado. Uso de giberelinas. Crecimiento en oscuridad.
  • 36.
    Micropropagación de plantas Etapa 3: Elongación y enraizamiento. Enraizamiento: In vitro o ex vitro Auxinas: AIB, ANA Sustratos Enraizamiento ex vitro de A. flaccida. Enraizamiento in vitro de A. sellowiana.
  • 37.
    Micropropagación de plantas Principal problemática en esta etapa. Capacidad de enraizamiento dependiente del genotipo. Conexión raíz – parte aérea
  • 38.
    Micropropagación de plantas Etapa 4: Aclimatación Objetivo: Optimizar la transferencia del ambiente in vitro a condiciones de invernáculo o campo. Minimizar pérdidas y acelerar el proceso. PLANTAS OBTENIDAS IN VITRO: PROCESO GRADUAL: Hojas delgadas Disminución de la HR Tallos débiles Raíces débiles y poco Crecimiento autotrófico funcionales Condiciones sépticas. Conexión tallo-raíz incompleta Baja tasa fotosintética
  • 39.
    Micropropagación de plantas Etapa 4: Aclimatación Procedimiento:
  • 40.
  • 41.
    Micropropagación de plantas Etapa 4: Aclimatación Plantas in vitro presentan poca capacidad de retención de agua.
  • 42.
    Micropropagación de plantas Etapa 4: Aclimatación Dark respiration and net photosynthesis measured at 80 µmol m-2 s-1 (PPFD) during acclimatization of micropropagated (A) Spathiphyllum and (B) Calathea, for in vitro (open symbols) and ex vitro (closed symbols) formed leaves.
  • 43.
    Micropropagación de plantas Acca sellowiana, Guayabo del país Etapa 0 Etapa 1 Etapa 2 Etapa 4 Etapa 3
  • 44.
    Micropropagación de plantas Micropropagaciónpor brotación de yemas adventicias. Método directo: Saintpaulia ionantha. Violeta africana
  • 45.
    Micropropagación de plantas Micropropagaciónpor brotación de yemas adventicias. Método indirecto: Prunus sp. Feeney, 2007.
  • 46.
    Micropropagación de plantas Micropropagaciónpor brotación de yemas adventicias. Formación de callo/brotes a partir de explantos foliares en Arándano, en respuesta al agregado de citoquinina.
  • 47.
    Micropropagación de plantas Dificultadesque presentan las especies leñosas in vitro. Menor capacidad regenerativa Efecto de dormancia en yemas Inducción de rejuvenecimiento Menor tasa de multiplicación Mayor oxidación inicial del explante Desinfección más dificultosa Enraizamiento y aclimatación limitantes
  • 48.
    Micropropagación de plantas Costos de la micropropagación Capital para la instalación del laboratorio Costo de la mano de obra Costo de los materiales Características del comportamieno in vitro del material a propagar • Facilidad de establecimiento, rejuvenecimiento, etc. • Tasa de multiplicación • Enraizamiento in vitro/ex vitro Pérdidas que ocurren en cada etapa del proceso • contaminación • hiperhidricidad • % plantas que no enraizan • % plantas que no sobreviven la aclimatación
  • 49.
    Micropropagación de plantas Costos de la micropropagación Componente del costo % Costo capital 27.3 (Edificaciones y equipamiento) Salarios 63.8 (Laboratorio, invernáculo, oficina) Funcionamiento (Prod. Químicos, energía, agua, 8.9 mantenimiento, imprevistos) En base a un laboratorio que produce 3 millones de plantas al año (800 a 1400 m2).