INFLUENCIA DE LA SALINIDAD EN LA VEGETACION EN LA ISLA DE SAN JUAN DE SALINAS

UNIVERSIDADNACIONAL DEL ALTIPLANO – PUNO
ESCUELAPROFESIONAL DE INGENIERIAAGRICOLA
FACULTADDE INGENIERIAAGRICOLA
CURSO: Salinidad y Recuperación de Tierras
TEMA:
INFLUENCIA DE LA SALINIDAD EN LA VEGETACION
EN LA ISLA DE SAN JUAN DE SALINAS
DOCENTE: Ing. Calderon Montalico, Alcides
PRESENTADO POR:
 Aroquipa Mamani Alexis J.
 Condori Ccoa Nélida G.
 Tapara Ccahuana Alex H.
 Palaco Roque Patricia P.
 Calcina chura Nelida
 Arocutipa Vizcarra Mirian Y.
 Cori Mamani Ricky O.
 Ramos Sagua Sheila K.
 Quispe Yanapa Luigi R.
 Cauna Useca Willian
 Quispe Ilaquita Milagros
 Chuquicallata Rocio

INDICE
I. INTRODUCCION.................................................................................................... 4
II. OBJETIVOS............................................................................................................. 4
2.1. OBJETIVO GENERAL..................................................................................... 4
2.2. OBJETIO ESPECIFICOS.................................................................................. 4
MARCO TEORICO ......................................................................................................... 5
2.3. Salinidad............................................................................................................. 5
2.4. Medida de la salinidad ....................................................................................... 7
2.4.1. Conductividad eléctrica: ............................................................................. 7
2.5. Salinidad en plantas ........................................................................................... 8
2.6. Indicadores de salinidad en las plantas .............................................................. 8
2.7. Características de las plantas en suelos salinos.................................................. 9
2.8. Efecto de sales ensuelo....................................................................................... 9
2.9. Problemas para las plantas ............................................................................... 10
2.10. Problemas de Salinidad en la Agricultura .................................................... 11
2.10.1. Adaptaciones de las Plantas...................................................................... 11
2.11. Clasificaciones de las Plantas de Ambientes Salinos ................................... 12
2.12. Tolerancia de los cultivos a la salinidad ....................................................... 12
2.13. El Muestreo .................................................................................................. 14
III. METODOLOGIA................................................................................................... 15
3.1. El Muestreo...................................................................................................... 15
3.2. La Preparación de la muestra. .......................................................................... 16
3.3. Análisis............................................................................................................. 16
3.4. La Interpretación de los Resultados................................................................. 17
3.2. Determinación de cloruros por el método de MOHR.......................................... 17
IV. RESULTADOS ...................................................................................................... 18
4.1. Procedimiento en laboratorio........................................................................... 18
4.2. Resultados de laboratorio................................................................................. 21
V. CONCLUSIONES.................................................................................................. 23
VI. BIBLIOGRAFIA .................................................................................................... 23
VII. ANEXOS ................................................................................................................ 24

Ilustración 1: Muestra seca en 24 horas ..................................................................24
Ilustración 2: Molido de la Muestra –pesado de la muestra (25 gramos)...........24
Ilustración 3: Ebullición de la Muestra con agua destilada ...................................24
Ilustración 5: Destilación de la Mezcla .....................................................................25
Ilustración 4: Filtración y Resultado de la Muestra.................................................25
Ilustración 6: Reactivos Empleados para Determinar la salinidad de la
Muestra..........................................................................................................................26

UNIVERSIDAD NACIONAL DEL ALTIPLANO
FACULTAD DE INGENIERÍA AGRÍCOLA
CURSO: SALINIDAD Y RECUPERACION DE SUELO
pág. 4
I. INTRODUCCION
Existen diversos tipos de estrés ambiental, los cuales afectan los cultivos que
son el sustento alimenticio del hombre. La sequía, salinidad y temperaturas
extremas son los principales tipos de estrés que causan efectos adversos en
el crecimiento y productividad de los cultivos. La sequía es mayor en las
regiones secas y calientes, en donde la concentración de sales se incrementa
en la capa superior del suelo debido a la evapotranspiración, que excede a la
precipitación (Oliva et al., 2008). El incremento de los suelos salinos en todo
el mundo limita la producción de cultivos para la alimentación humana y
animal, estas áreas se consideran marginales, en un mundo donde el espacio
y la alimentación constituyen grandes limitaciones (Mesa, 2003).
II. OBJETIVOS
2.1. OBJETIVO GENERAL
 Aplicar los conocimientos obtenidos en clases y elaborar un informe de
investigación sobre la Influencia de la Salinidad en la Vegetación en la isla de
san juan de salinas.
2.2. OBJETIO ESPECIFICOS
 Determinar el grado de salinidad que contiene nuestra planta de la muestra
obtenida en San Juan de Salinas

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MARCO TEORICO
2.3. Salinidad
La salinidad del suelo es un problema que se incrementa año con año en las
regiones áridas y semiáridas del mundo como consecuencia de una baja
precipitación y un mal manejo del agua de riego y los fertilizantes (Villa et
al., 2006). La salinidad y la sequía son dos de los factores limitativos
ambientales que afectan el establecimiento y desarrollo de las especies,
así como la producción agrícola (Madueño-Molina et al., 2006).
La salinidad es el contenido de sales minerales disueltas en un cuerpo de
agua y que se encuentra en altitudes medias.
Es la concentración total de sales solubles presentes en el agua o en el
suelo.
Doorenbos y Pnútt (1976) indicaron que en la evapotranspiración del cultivo
incide salinidad del suelo y que se debía en parte a la reducida disponibilidad
de agua salina un crecimiento deficiente, provocado por desequilibrio de
nutrición y los efectos tóxicos de determinados iones en la solución.
Mencionan además, que condiciones fuertes de evaporación acentúan el
efecto de la salinidad sobre la absorción de agua por las plantas y por
consiguiente se pone de manifiesto sobre la evapotranspiración del cultivo,
previendo que para un mismo nivel de salinidad del suelo provoque más
daño condicion.es calientes que en frío. Concluyeron que los efectos nocivos
de la salinidad del suelo sobre la absorción de agua por el cultivo pueden
quedar parcialmente contrapesados manteniendo un alto nivel de humedad
en la rizósfera. (Doorenbos, J. y Pruitt, W. 1976. Las necesidades de agua
en los cultivos. Publicación N° 24 F AO. Roma 2° edición. 194 pp.)
Hoffinan y Jobes (1977) mencionaron que la tolerancia de un cultivo a las
sales no es absoluta, porque depende de factores ambientales como la
humedad relativa, un conveniente manejo del riego y fertilización. Sevilla
(1986) también indicó que la tolerancia a las sales varia en forma
considemble de acuerdo a las especies de plantas los factores ambientales,
edáficos y el manejo agronómico; todos los cuales se interrelacionan por
influenciar la tolerancia de los cultivos a las sales. (Hoffinan y Jobes. 1977.

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Growth and water relations of cereal crops as injluenced by salinity and
relative humidity. Agron. Jour 70: 765-769.)
Resh ( 1987) señaló que los síntomas que se observan en las plantas
afectadas por la salinidad son:
• Detenimiento general del crecimiento de la planta.
• Hojas pequeñas y de color oscuro.
• Quemaduras en los bordes de las hojas que luego se extienden hacia la
misma lámina foliar.
• Azulado o blanqueado del tejido de la planta.
El mismo autor reportó que la salinidad puede inhibir la absorción de algunos
iones.
Concentraciones muy altas de sulfatos dan lugar a la adsorción de sodio,
causándole toxicidad por Sodio, una disminución de la adsorción del calcio
dando lugar a deficiencia (especialmente en lechugas) e interferencia en la
adsorción de potasio. Las condiciones salinas también reducen la
disponibilidad de ciertos micro elementos haciendo necesaria la adición de
estos al medio de crecimiento de las plantas. Además, pueden afectar a las
plantas por toxicidad causada por cloruros y el sodio.
Esto depende de la tolerancia natural de la planta en cuestión.
La salinidad y su influencia en suelos y plantas- ing. Arg. Oscar utenberg-
Mashav-Israel.

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Tolerancia de los cultivos a la salinidad:
Caracterizados por un umbral bajo de tolerancia a la sal y una fuerte
disminución en el desarrollo vegetativo
2.4. Medida de la salinidad
2.4.1. Conductividad eléctrica:
Este proceso de evaporación es más intenso en las zonas tropicales, y
menor en las zonas polares. Las aguas superficiales son más saladas
porque la evaporación hace que la concentración de sal aumente. El
contenido salino de muchos lagos, ríos, o arroyos es tan pequeño, que a
esas aguas se las denomina agua dulce. El contenido de sal en agua potable
es, por definición, menor a 0,05 %. Si no, el agua es señalada como salobre,
o definida como salina si contiene de 3 a 5 % de sal en volumen. Por encima
de 5% se la considera salmuera. El océano es naturalmente salino con
aproximadamente 3,5 % de sal (ver agua de mar). Algunos lagos o mares
son más salinos. El mar Muerto, por ejemplo, tiene un contenido superficial
de alrededor del 15 %.
salinidad del agua
agua dulce agua salobre agua de mar salmuera
< 0,5 % 0,05 - 3 % 3 - 5 % > 5 %
< 5,5 g/L 0,5 - 30 g/L 30 - 50 g/L > 50 g/L
Ds/m o mmhos/ cm
1ds/m = 1000μS/cm

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2.5. Salinidad en plantas
La clasificación de los suelos afectados por salinidad, se basen en un
conjunto de parámetros, fundamentalmente en el análisis de la relación
existente entre ellos; así como la valoración no solo del contenido total de
iones; sino también de todos los aspectos que en el agroecosistema
provoquen afectaciones o deterioro significativo de la fertilidad de las
plantas.
La acción de la salinidad ejerce sobre las plantas pueden ser estudiadas
desde tres aspectos fundamentales (Pasternak, 1987):
 Acciones sobre las relaciones energéticas
 Acciones sobre las relaciones hídricas.
 Acciones sobre las relaciones nutricionales.
(Pasternak, 1987). La adaptación de las plantas a la salinidad puede dar
origen a una disminución de las reservas energéticas necesarias para el
crecimiento. Estas pérdidas energéticas pueden deberse a la desviación de
los fotosintatos necesarios para el crecimiento hacia funciones
osmorreguladoras o a la energía consumida en el transporte iónico.
2.6. Indicadores de salinidad en las plantas
Los indicadores químicos de salinidad de carácter global utilizados para la
caracterización y el diagnóstico de la afectación por la salinidad son la CE,
PSI (% Na + intercambiable) y pH (Kochba et al., 2004; Mueller et al., 2004;
Shukla et al., 2004), cuyos parámetros permiten separar a los suelos
afectados por salinidad en 3 grupos: Clasificación pH CEPSI Proceso Salinos
< 8.5 > 4 < 15 Salinización Sódicos > 8.5 < 4 > 15 Sodificación Salinos -
Sódicos < 8.5 > 4 > 15 Salinización - Sodificación Existen otros índices o
indicadores auxiliares provenientes de los análisis físicos y químicos de las
muestras de suelos, frecuentemente utilizados en dependencia de la finalidad
de los estudios como Relación de Adsorción de Sodio (RAS), aNa/(aCa)0.5 ,
Ca/Na, Relación de Sodio Intercambiable (RSI), % de magnesio, % (Na + +
Mg + )

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2.7. Características de las plantas en suelos salinos
Con respecto al contenido de sales los suelos pueden clasificarse como
salinos, sódicos o sódicos-salinos. Los principales cationes presentes en
suelo son: Ca2+, Mg2+, Na+ y K+. Los principales aniones presentes en el
suelo son: HCO32-, Cl-, SO42- , CO32-, y NO3-. Para conocer la composición
de las sales, debemos hacer un análisis químico de la solución. Cualquier
elemento puede convertirse en tóxico para la planta si su concentración en la
solución del suelo es alta, o si se encuentra en desequilibrio con otros
elementos. Los elementos que más frecuentemente pueden encontrarse en
la solución del suelo en niveles perjudiciales para las plantas son el cloro, el
boro y el sodio, sobre todo en zonas áridas y semiáridas, aunque en
determinadas condiciones pueden abundar también en regiones más
húmedas.(GARCÍA, 2001)
2.8. Efecto de sales en suelo.
Los suelos salinos presentan conductividad eléctrica de 4 ó más dS m-1, un
pH de 7.3 a 8.5 y menos de 15% de sodio intercambiable, que hacen que
el crecimiento y desarrollo de plantas no sean remunerativos o que
determinan las posibilidades de remoción de sus sales o sodio
intercambiable, mediante prácticas correctivas.
La acumulación de sales implica diversas cuestiones que dan origen a ello,
incitando así al establecimiento de solutos en determinado suelo. En general,
las características del clima y del suelo y la calidadquímica del agua de riego,
son las que determinan el proceso de salinizaciónde los suelos en una
región (Santamaría-César et al., 2004).
Aunque la fuente original de sales proviene de los minerales primarios que
forman las rocas, las sales solubles en el suelo provienen, en su mayoría, de
las sales disueltas en el agua de riego. Si la precipitaciónes muy baja (menor
que 380 mm anuales), las sales solubles se quedan en el suelo y, al
evaporarse el agua, las sales del agua del suelo ascienden por capilaridad
a la superficie del suelo y, después de muchos años, se forman los suelos
salinos. Este proceso se presenta con frecuencia en zonas agrícolas de riego
en condiciones de clima árido y semiárido (Santamaría-César et al., 2004).

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2.9. Problemas para las plantas
Uno de los primeros efectos fisiológicos que provoca el estrés salino en las
plantas es la reducción del crecimiento debido a una disminución en la
capacidad de absorción de agua de estas; por lo que este se convierte en un
buen indicador para evaluar la capacidad de algunos productos de proteger
a las plantas contra este tipo de estrés (Núñez et al., 2007).
Este efecto osmótico consiste en que altas concentraciones de sales
incrementan las fuerzas potenciales que retienen al agua en la solución del
suelo y hace más difícil la extracción del agua por las raíces de la planta,
incrementando la energía necesaria para su absorción (Santamaría-César
et al., 2004).
La salinidad afecta cada aspecto de la fisiología de la planta y su
metabolismo. La alta concentración de sales le ocasiona un desequilibrio
iónico y estrés osmótico. Un fuerte estrés salino rompe la homeostasis del
potencial hídrico y la distribución de iones.
La respuesta adaptativa para lograr tolerar la salinidad afecta a tres aspectos
en la actividad de la planta:
 Prevenir o reparar el daño o detoxificación.
 Control de la homeostasis iónica y osmótica.
 Control del crecimiento, que debe reanudarse, pero con una tasa
reducida.
En lo que respecta a la detoxificación, las formas reactivas de oxígeno son la
causa del daño generado por estrés salino. Estas disparan la señal de
detoxificación, complejas respuestas moleculares como la expresión de
proteínas y producción de osmolitos, eliminando las formas reactivas de
oxígeno o previniendo el daño de las estructuras celulares. Osmolitos como
manitol, glicinbetaína, fructanos y prolina trabajan a través de la detoxificación
oxidativa. El estrés salino rompe la homeostasis iónica de las plantas al
provocar un exceso tóxico de sodio (Na+ ) en el citoplasma y una deficiencia
de iones como el potasio (K+ ). El sodio inhibe muchas enzimas y por eso es
importante prevenir la entrada del mismo al citoplasma. Las plantas emplean

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varias estrategias para combatir el estrés iónico que les impone la salinidad.
La compartimentación del sodio es una respuesta económica para la
prevención de la toxicidad por este ion en el citosol, porque el ion sodio puede
ser usado como osmolito en la vacuola para ayudar a conseguir la
homeostasis iónica. Muchas plantas tolerantes a la salinidad (halófitas)
cuentan con esta estrategia. La entrada de Na+ debe ser prevenida o
reducida. Canales no selectivos de cationes son mediadores de la entrada de
Na+ a las células de la planta, ya que su identidad molecular no es
reconocida. El estrés salino, como otros tipos de estrés, inhibe el crecimiento
de la planta, de hecho, el bajo crecimiento de vegetales en zonas salinas es
una característica adaptativa de las plantas para sobrevivir a este tipo de
estrés. En la naturaleza la capacidad de tolerar la salinidad o la sequía parece
estar inversamente relacionada a la tasa de crecimiento. Una causa de la
reducción del crecimiento es la inadecuada fotosíntesis debida al cierre
estomático y en consecuencia la limitación de la entrada de CO2. Más
importante es, sin embargo, que el estrés inhibe la división celular y la
expansión directamente.
2.10. Problemas de Salinidad en la Agricultura
Los problemas de salinidad son comunes en las regiones áridas y semiáridas
del mundo.
A nivel mundial, una significante proporción de la tierra cultivada está
afectada por salinidad. De 230 millones de Ha de zonas agrícolas bajo riego,
45 millones de Ha están afectadas por salinidad (19,5%) (athar and ashraf,
2009)
2.10.1. Adaptaciones de las Plantas
● Fisiológicas
✔ Retraso germinación y/o maduración ante condiciones
desfavorables.
✔ Acortamiento estación crecimiento (anuales).
✔ Engrosamiento cutículas para hacer descender transpiración.

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✔ Selectividad a iones específicos para compensar desequilibrios.
● Morfológicas
✔ Disminución tamaña foliar para hacer descender la transpiración.
✔ Suculencia en tallos y/u hojas (acumula y aisla sales para evitar
toxicidad, compensar diferencias presión osmótica con suelo), con
presencia de un parénquima acuífero.
✔ Reducción número nervios y estomas.
✔ Tricomas y glándulas excretoras de sal
● Fenológicas
✔ Retraso de la floración.
2.11. Clasificaciones de las Plantas de Ambientes Salinos
Los principales tipos se recogen en el cuadro 1
Cuadro 1: Clasificación de las plantas de ambientes salinos
Denominación Características Ejemplos
Eualofitas Acumulansalesentejido Arthrocnemun, Salicornia,sarcocornia
crinohalilofitos glándulasopeloexcretores Atriplex spongiosa,Limoniumtamarix
blicohalofitos absorciónselectivade sales Hiordeum, Rhizophora
locahalofitos confirmansal enestructurasespeciales Atriplex halimus,salsolaoppositifolia
(Pasternak, 1987) Las plantas se clasifican, según su comportamiento ante la sal
en halófitas y glicófitas. La variación de comportamiento es muy amplia: desde
las glicófitas más sensibles, que no crecen normalmente ni en contenidos muy
bajos de cloruro sódico, hasta las halófitas más resistentes como Rhizophora
mangle, que sólo sobrevive en salinidades próximas a la del agua del mar. Los
mecanismos disponibles por las plantas mediante los cuales llegan a presentar
diferentes grados de tolerancia persiguen dos objetivos fundamentales: la
protección contra la pérdida de agua y la protección contra el efecto tóxico de los
iones.
2.12. Tolerancia de los cultivos a la salinidad
(Núñez et al., 2007). La tolerancia a la salinidad en agricultura es la capacidad
del cultivo a soportar un exceso de sales en la zona de raíces, es decir, en el
agua del suelo próxima a la zona radicular.

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Cada cultivo presenta una tolerancia distinta, pero además se ve afectada por
diversos factores como el tipo de sal, el clima, manejo y método de riego, etc.
La tolerancia indica el valor de conductividad en el agua del suelo que cada
cultivo puede soportar sin producirse disminuciones en su rendimiento. De esta
forma se puede establecer una comparación entre los cultivos que toleran mejor
la salinidad (los de valor más alto) y los que son muy poco tolerantes (valores
más bajos).
Tolerancia a la salinidad en dS/m, para diferentes tipos de cultivos se indican
en la siguiente tabla:
Tabla N°01
Cultivos extensivos
Cultivos Extensivo Tolerancia a la
salinidad(ds/m)
Cebada 8.0
Algodón 7.7
Remolacha 7.0
Trigo 6.0
Soja 5.0
Arroz 3.0
maiz 1.7
Fuente: Elaboración propia
Tabla N°02
Cultivos Frutales
Cultivos Frutales Tolerancia a la
salinidad(ds/m)
Vid 1.5
olivo 2.7
Limonero 1.7
Manzano 1.7
Naranjo 1.7
Melocotonero 1.7
Ciruelo 1.5

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Tabla N°03
Cultivos Huerta
2.13. El Muestreo
El muestreo es una parte muy importante del análisis. Se debe tener en
cuenta la especie de la planta, su edad, la parte de la planta muestreada y el
tiempo de muestreo porque todos pueden afectar la Interpretación de los
resultados.
Normalmente no se muestrea toda la planta sino una parte. Diferentes partes
de la planta contienen diferentes concentraciones de algunos elementos. La
hoja es el sitio de las transformaciones bioquímicas las cuales son esenciales
para la vida de la planta. Cuando no haya Instrucciones específicas para el
muestreo, se muestrea las hojas maduras evitando las; hojas que estén
infectadas, muertas etc. El análisis de la hoja generalmente Incluye el peciolo.
Para identificar un síntoma de deficiencia o toxicidad, normalmente se
muestrean unas hojas enfermas y unas sanas.
La precisión que se necesita determina el número de hojas y el número de
plantas para seleccionar. Como en el muestreo de suelo, se toma una
muestra compuesta para reflejar mejor la variabilidad entre plantas. Cuando
las plantas estén bajo estrés hay más variabilidad que cuando las plantas
estén viejas la concentración de algunos elementos en las hojas cambia
(MCkean, 1993)

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III. METODOLOGIA
3.1. El Muestreo
La muestra se tomó de la localidad de distrito de salinas, de la isla del mismo
nombre.
PRIMERO: se localizó el lugar donde se tomaría la muestra, es por ello que
se ubicó en la parte norte de la isla la cual es de las siguientes coordenadas
14.987N Y 70.105E, en este lugar se manifiesta una cantidad considerable
de ojos de agua.
SEGUNDO: Una vez ubicado el punto de interes y el tipo de planta a estudiar,
se procedio a tomar la muestra, cabe mencionar que el nombre cientifico de
la planta es alofita, se decidiotomar muestra de esta planta por que es la mas
predominante y a simple vista se observa que es tolerante a altos grados de
salinidad.

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TERCERO: se empezó a tomar la muestra que tiene las dimensiones de 20
cm x 20 cm de lado y una profundidad de 12 cm, a la cual se procedió a
guardar de una manera cuidadosa en una bolsa hermética, la cual se trasladó
hasta el laboratorio de la facultad de ingeniería agronómica.
3.2. La Preparación de la muestra.
Se lleva la muestra al laboratorio en el menor tiempo ´posible para evitar
cambios químicos en la muestra. La preparación incluye la descontaminación
o limpieza de la muestra para eliminar contaminaciones del suelo, polvos,
químicos. Si es necesario se lavan las muestras frescas en agua delonizada
o en una solución (0.1%) de detergente con bajo contenido de fosforo y se
enjuaga con agua. Después de la limpieza se seca en un horno (70°C)
normalmente en bolsas de papel. Se muele con un molino de laboratorio
tratando de evitar contaminación, si la muestra contiene alto contenido de
azúcar o almidón es mejor secarla por congelación. Después de secar y moler
la muestra se pone en un recipiente y se envía al laboratorio para el análisis.
3.3. Análisis
Para analizar los elementos presentes en el tejido hay que destruir la materia
orgánica por medio de una digestión acida o una calcinación. Esto convierte
los elementos a una forma más fácil de analizar.

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3.4. La Interpretación de los Resultados
La interpretación de un análisis de tejido es menos complicada que la de
suelo porque se analiza el contenido total del elemento y no solamente una
fracción.
Pero, cada especie es fisiológicamente diferente y la acumulación y la
distribución de los elementos dentro de la planta varían (Howeler, 1983). La
interpretación debe incluir tanta información como sea posible: síntomas
visibles de deficiencia o toxicidad, información del análisis de suelo etc. Los
resultados son comparados con tablas de estándares para averiguar el rango
crítico, el rango suficiente o con otro índice. Investigaciones han establecido
niveles críticos, suficientes u óptimos para muchos cultivos y también niveles
de toxicidad y deficiencia. Hay que tener en cuenta que estos niveles o rangos
pueden variar entre suelos y climas y son calculados muchas veces cuando
se piensa que hay solo un elemento que está limitando el crecimiento de la
planta.
3.2. Determinación de cloruros por el método de MOHR.
Reactivos a usar:
Disolución de AgNO3 0.01M
Indicador: K2CrO4 al 5%
1. Conocer el pH de la muestra
 PH > 10, se corre el peligro de que precipite el óxido de plata, y no el cromato
de plata en el punto de equivalencia
 pH < 7, el ion cromato interviene en los equilibrios mostrados, dando lugar a la
formación de dicromato, con lo cual la cantidad de cromato disminuye, y la
aparición de precipitado de cromato de plata se da lejos del punto de
equivalencia, por lo que se produce un error importante a la hora de calcular la
cantidad de coluros.
2. PROCEDIMIENTO
 Se añade 10 ml.
 Se completa con agua destilada hasta 50ml.
 Añadir 5 gotas de indicador cromato potásico al 5%
 Comenzamos con la valoración dejando caer gota por gota la disolución de
nitrato de plata, y se va formando el precipitado de color blanco.

pág. 18
 La valoración termina cuando la disolución cambia a color pardo rojizo (si no
cambia, entonces añadimos una gota más de reactivo valorante.
 Se lee en la bureta el volumen gastado del reactivo valorante
 Se hacen los cálculos correspondientes, dando los mg/l de agua
IV. RESULTADOS
La muestra que se tomo fue una muestra puntual
4.1. Procedimiento en laboratorio
Para la obtención de los resultados se llevó la muestra al laboratorio la fecha
02de junio del 2019 para lo cual se realizó los siguientes pasos:
Paso 1:
Secado de la muestra en la estufa

pág. 19
Paso 2:
Trituración de muestra en el mortero
Paso 3:
Se realizó el tamizado de muestra en la malla numero 200
Paso 4:
De la muestra tamizada se procedió a pesar 25 gramos para el análisis
Paso 5:
Separa 100 mililitros de agua destilada en la probeta graduada

pág. 20
Paso 6:
En un vaso precipitado se realizó la combinación de la muestra pesada de
25 gramos y el agua destilada
Paso 7:
Ya echa la combinación se procederá hacer hervir en nuestra cocinilla por
5 minutos

pág. 21
Paso 8:
Una vez ebullido la muestra se procedió a filtrarlo con ayuda del filtro más
y el carbón activado para obtener nuestra muestra sin turbiedad.
Paso 9:
De la muestra ya filtrada Se tomó 5 mililitros de muestra
Paso 10:
En la muestra de 1 mililitros se aplicó 1 mililitro de cromato de potasio en
la cual se obtuvo un color amarillo patito.
Paso 11.
Luego se aplicó el nitrato de plata 36 mililitro en la muestra para que
cambie el color a rosa palo
4.2. Resultados de laboratorio

pág. 22
Concentración total de sales solubles presentes en el agua o en el suelo
El resultado de laboratorio obtenido se realizó la conversión con el cuadro
ya mostrado
En la cuales
 Como resultado obtenemos que en un litro de agua existirá 18437.20 mg
de sal
 Se llega a un resultado que la planta lema minor es tolerante a la sal ya
que en sus raíces y hojas contiene cantidades altas de sal como a la vez
el suelo en su alrededor.

pág. 23
V. CONCLUSIONES
Con el desarrollo de la presente investigación logramos concluir lo siguiente:
 Logramos concluir el trabajo de investigación encargado en clases a cerca
de la Influencia de la salinidad en la vegetación en la isla de san juan de
salinas logrando obtener resultados favorables.
 De la misma manera se logró determinar el grado de salinidad de la
muestra tomada en el campo y el análisis de la planta llevado a cabo en
el laboratorio de suelo en la facultad de ing. Agronómica
 Se llegó obtener el resultado con la ayuda de los análisis de laboratorio
que la sal que contiene la muestra y la planta fue de 180439.2 mg/l
VI. BIBLIOGRAFIA
Araujo, j. A. (2011). Bio recuperacion de suelo salino con el uso de msteriales
organicos. Madrit: univercidad politecnica de madrid .
Howeler, R. (s.f.). Analisisdel Tegido vegetal en diagnostico de problemas
nautricionales. algunis cultivos tropicales. colombia: CIAT, call.
Kesehatan, M. (2008). Efectos por salinidad en el desarrollo vegetativo.
M., G. (2001). Salinidad y vegetación Las plantas en los saladares Problemas para las
plantas. ERNSTIA.
McKean, S. J. (1993). manual de analisis de suelos y tejido vegetal. Centro
Internacional de Agricultura Tropical· CIAT.
(Resh, H. 1987. Cultivos hidropónicos. Editorial Mundi prensa. Madrid. 2da
edición. Pág, 93-94. )
http://youtube.be/laT7Q4N3uQY/determinacion de contenido metodo mohr.

pág. 24
VII. ANEXOS
+-
Ilustración 2: Molido de la Muestra –pesado de la muestra (25 gramos)
Ilustración 3: Ebullición de la Muestra con agua destilada
Ilustración 1: Muestra seca en 24 horas

pág. 25
Ilustración 4: Destilación de la Mezcla
Ilustración 5: Filtración y Resultado de la Muestra

pág. 26
Ilustración 6: Reactivos Empleados para Determinar la salinidad de la Muestra

INFLUENCIA DE LA SALINIDAD EN LA VEGETACION EN LA ISLA DE SAN JUAN DE SALINAS

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