La eutrofización es una contaminación química de aguas causada por un exceso de nutrientes como fósforo, potasio y nitrógeno. Esto daña severamente los ecosistemas acuáticos al aumentar la fotosíntesis, biomasa y sedimentos, disminuyendo la diversidad. La eutrofización puede ser natural o cultural, esta última debida a actividades humanas como agricultura, ganadería y vertidos industriales y urbanos. El documento analiza la eutrofización de la Laguna de Limon

1. Paola Cruz,
Montserrat Narváez,
Marco Martínez,
Mariela Juárez,
Jessica Morales
Montserrat Mendoza

2. • La eutrofización es un tipo de contaminación
química de las aguas,

3. Fósfor
o
Potasi
o
Nitróg
eno
Se da cuando hay un aporte excesivo de nutrientes a
un ecosistema acuático que queda severamente
dañado. (R. Aparicio Torino)

4. • Natural causada por la constante entrada
y salida de nutrientes en un largo tiempo.

5. http://es.slideshare.net/02agroquimico/presentacion-finaleutrofizacion

6. • Cultural debido a la intensidad de
actividades humanas.

7. http://triplenlace.com/2012/09/27/eutrofizacion-causas-y-efectos/

8. • Agricultura debido al uso de fertilizantes
• Ganadería por los excrementos de animales
• Residuos urbanos por los detergentes
fosfatados
• Actividad industrial vertidos fosfatados,
nitrogenados y tóxicos
• Contaminación atmosférica por la producción
excesiva de NOx y SOx
Agricultura
Ganadería
UrbanidadIndustria
Contaminación
atmosférica

9. • En estos lagos la luz penetra con dificultad
en las aguas.
• Hay mayor demanda química y biológica
de oxígeno.

10. • Aumenta la fotosíntesis
• Aumenta la biomasa y disminuye la diversidad
• El agua tiene un olor nauseabundo
• Aumenta el sedimento
http://es.slideshare.net/02agroquimico/presentacion-finaleutrofizacion

11. http://imasd.fcien.edu.uy/difusion/educamb/eco_acuatica/eutrof_clasica.htm

12. EL ESTADO TRÓFICO DE LA LAGUNA DE
LIMONCOCHA EN EL PERÍODO
(FEBRERO 2010 –ENERO 2011)
Autor: Fernando Andrés Granizo Murgueytio.

13. El primer estudio relacionado fue en el
periodo 2000 a 2001.
*Espinoza, 2001.

14. Se encuentra dentro de la reserva biológica de Limoncocha (RBL) Ecuador, en
el Cantón Shushufindi de la Provincia de Sucumbíos en la Amazonia del
Ecuador.

15. (ECOLAP y MAE, 2007; Bastidas y Lasso, 2009; Espinoza, 2001; Gómez, 2003).

16. ES EMPLEADA COMO UN INDICADOR DE ESTADO TRÓFICO DE UN
ECOSISTEMA ACUÁTICO, INDICA LA CUANTIFICACIÓN Y
SEGUIMIENTO DE LAS VARIACIONES DE BIOMASA .
(CONTRERAS ET AL., 1994; ROCHA, 2006; SÁNCHEZ ET AL., 2007).

17. EL FÓSFORO SE PRESENTA EN EL AGUA EN FORMA DE FOSFATOS:
-ORTOFOSFATOS,
-FOSFATOS CONDENSADOS
-Y FOSFATOS ORGÁNICOS.
LA FORMA MÁS SENCILLA SON LOS ORTOFOSFATOS (PO43-) SE
ENCUENTRAN EN ROCAS Y SON IMPORTANTES EN LA LIMNOLOGÍA.
(ROLDÁN, 2008; JIMÉNEZ, 2001)

18. Posee un gran efecto sobre la eutrofización, cantidades mínimas pueden
favorecer al crecimiento de fitoplancton.
(Roldán, 2008).
Debido a la actividad humana, existe un aumento en la cantidad de fósforo
en diversos cuerpos de agua. (Roldán, 2008; Jiménez, 2001).

19. Determinación de puntos y frecuencia de muestreo
• Caño (canal de conexión con la Laguna Negra
• Frente a río Pishira
• Lateral al río Pishira
• Río Playayacu
• Frente a la antena (centro de la laguna)
• Frente a la antena (zona de lechuguines)
• Frente al muelle de la estación científica UISEK
• Esquina del destacamento militar.

20. SE UTILIZARON OCHO ENVASES PLÁSTICOS DE DOS LITROS, ROTULADOS,
IDENTIFICADOS Y ADAPTADOS PARA LA PRESERVACIÓN DE LA MUESTRA, EN FUNCIÓN
DE LOS PARÁMETROS A SER ANALIZADOS.
EN CADA PUNTO SE RECOLECTÓ UNA MUESTRA COMPUESTA, CONFORMADA POR UN
LITRO DE MUESTRA SUPERFICIAL Y UN LITRO DE MUESTRA A PROFUNDIDAD (50 CM).
MUESTRA SUPERFICIAL: EN LA PROA DEL BOTE, ALEJADO DEL MOTOR
MUESTRA A PROFUNDIDAD: MUESTREADOR DE AGUA TIPO “VAN DORN” DE DOS
LITROS DE CERRADO AUTOMÁTICO.

21. SE REALIZÓ DE DOS MANERAS:
SUMERGIENDO EL DISCO POCO A POCO Y REGISTRANDO EL VALOR DE
PROFUNDIDAD EL INSTANTE QUE SE DEJA DE VER EL DISCO EN EL AGUA.
SUMERGIENDO TOTALMENTE EL DISCO HASTA QUE NO SE VEA, SE REGRESÓ
EL DISCO A LA SUPERFICIE Y SE REGISTRÓ LA PROFUNDIDAD MEDIDA.
EL VALOR DEFINITIVO SE DETERMINÓ CALCULANDO EL PROMEDIO DE LOS
DOS VALORES ANTERIORES.

22. SE ANALIZARON EN EL SITIO DE MUESTREO LOS SIGUIENTES PARÁMETROS:
- TEMPERATURA (°C)
- PH
- CONDUCTIVIDAD (ΜS/CM)
- SÓLIDOS DISUELTOS TOTALES,
-TDS (MG/L)
-MULTI-PARÁMETRO DIGITAL MARCA THERMO
-SCIENTIFIC, MODELO ORION-5-STAR.

23. Se realizaron los análisis para los siguientes parámetros:
• Clorofila A
• Fósforo Total
Los métodos y equipo utilizados para el análisis de las muestras son:

24. Filtración de muestras
• Se filtraron 500 ml de cada muestra utilizando una bomba de vacío y filtros
de fibra de vidrio. Se añadió acetona al 90% + carbonato de magnesio.
• El extracto obtenido se colocó en tubos de ensayo y se colocaron en una
centrífuga. El sobrenadante se colocó en nuevos tubos de ensayo y se les
llevó a refrigeración a 4°C por 4 horas.

25. • El sobrenadante se analizó en el espectrofotómetro (664, 665 y 750 nm).
Se realizó una lectura del extracto sin ácido clorhídrico y otra después de
añadir 0,3 ml del mismo ácido.

26. De las dos lecturas se realizaron correcciones para la longitud de onda a 664
nm y 665 nm, a partir de los datos corregidos se calculó la clorofila a
empleando la siguiente ecuación Hach Company (2003).
Clorofila a (mg/L) = {26,7 (664b – 665a) * V1} / V2 (7)

27. Mediante el proceso de adición de ácido fuerte y el calentamiento de la
muestra, a una temperatura de 150 °C durante 30 minutos.
Procedimiento:
• 5ml de cada una de las muestras.
• A cada una se añadió 1ml de “disolución de ácido fuerte”.
• Se añadió persulfato de potasio y se mezcló vigorosamente.
• Finalmente se dejó enfriar las muestras a temperatura ambiente.

28. Se realizó el análisis en el espectrofotómetro con el programa 490 React.
Procedimiento:
• 2ml de hidróxido de sodio 1,5N a cada muestra.
• Se colocaron las muestras en celdas de 25ml y se agregó agua destilada
hasta el aforo de 25 ml.
• Se añadió el reactivo PhosVer 3.
• Luego de 2 minutos se realizó la lectura en el espectrofotómetro, en mg/L P.

29. El indice del Estado Trofico (IETm) es el mas utilizado para medir la
eutrofizacion en cuerpos de agua calidos,
Relaciona:
• Profundidad Secchi
• Clorofila A
• Concentracion P total.
IETM = [IETM (Sec) + IETM (Cl a) + IETM (PT)]/3

33. • Muestra 1

34. Muestra 8

36. Muestra 1

37. Muestra 8

40. • temperatura

45. Concluímos que el eutrofización es un tema
preocupante porque afecta tanto a organísmos
endémicos como a los demás seres vivos que
dependen de este recurso vital.
Nos parece importante dar a conocer de este tema
porque se pueden contrarrestar sus causas,
haciendo hincapie en la eutrofización cultural que
es originada por el humano.