2. LARINGOTRAQUEITIS
PRESENTADO POR:
MARÍA PAULA MORA JIMÉNEZ 710894
ALEJANDRA GARZON ROLDAN 710885
DOCENTE:
MAG. MYRIAM MEZA QUINTERO
UNIVERSIDAD FRANCISCO DE PAULA SANTANDER OCAÑA
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS Y DELAMBIENTE
ZOOTECNIA
PRODUCCIÓN AVÍCOLA
OCAÑA, COLOMBIA SEPTIEMBRE, 2022
3. Enfermedad respiratoria altamente
contagiosa que afecta a los pollos.
Causada por Gallid herpervirus
tipo 1 (GaHV-1), un virus envuelto
de ADN.
Esta enfermedad respiratoria puede
ser hiperaguda, subaguda y crónica
o leve.
Fuente: avicultura.mx
https://images.app.goo.gl/CGKzrBB7yE7C71qi7
DEFINICIÓN
5. IMPORTANCIA ECONÓMICA
Pérdidas por mortalidad,
producción de huevo y disminución
del crecimiento en aves.
Los signos clínicos varían desde
extremadamente severo, con
algunas aves que mueren por
asfixia, a muy suave indistinguible
de otras enfermedades respiratorias
leves (Vargas Estrella, 2018).
6. RESEÑA HISTÓRICA
1925
Fue descubierta en
Rhode Island,
estados unidos.
1935
Se notifico por
primera ves en
Inglaterra
(Valencia
Burbano,
2021).
1990
En Banyeres
(España) se
detecto un
brote en un
lote de
ponedoras, la
mortalidad no
sobrepasa el
1%.
7. 1966 – 1969:
Brote en el
Carmen
1971:
Diagnostico
confirmativo del
ICA. En armenia
se presento una
mortalidad de
25% y
morbilidad del
40%
1972:
En el Carmen
mortalidad de
69% y
morbilidad 90%
1974 – 1980:
Brotes en la
pradera, Palmira
RESEÑA HISTÓRICA EN COLOMBIA
9. INCIDENCIA Y DISTRIBUCIÓN
La vía de entrada es la
respiratoria y
conjuntival (Zambrana
Rojas, 2020).
Se elimina
principalmente por las
secreciones traqueales
(Pérez Gonzales,
2020).
Aparece
habitualmente en aves
de 3 a 9 meses de
edad.
Incidencia en España,
México, Perú, Argentina,
Bélgica, Brasil, Colombia,
Costa rica y Estados Unidos.
Las razas pesadas son más
sensibles que las ligeras.
Es más grave en machos que
en hembras.
10. ETIOLOGÍA
Causada por Gallid herpervirus tipo
1, un virus envuelto de ADN.
Diferentes cepas poseen distintos
grados de virulencia, por esto los
signos clínicos pueden variar de leves
a severos (Rodríguez, 2020).
11. PERIODO DE INCUBACIÓN
Su periodo de
incubación es de 6
a 12 días
generalmente
(Escalante
Alvarez, 2020).
El virus
permanece en
latencia hasta 16
meses en la
laringe y tráquea y
de por vida en el
ganglio del nervio
trigémino.
12. TRANSMISIÓN
Directa
• Aerosoles de secreciones
respiratorias, polvo y
portadores sanos.
Indirecta • Bebederos, comederos,
jaulas contaminadas.
Mecánicos
• Vehículos, personas,
equipos
Horizontal
• De ave a ave por vía
respiratoria
13. Supervivencia en partes de las aves y en
productos avícolas
Fuente: FENAVI. Enlace: https://fenavi.org/wp-content/uploads/2019/04/CONCEPTOS-IMPORTANTES-LARINGOTRAQUEITIS-AVIAR.pdf
14. Supervivencia en diversos materiales
relacionados con explotaciones avicolas
Fuente: FENAVI. Enlace: https://fenavi.org/wp-content/uploads/2019/04/CONCEPTOS-IMPORTANTES-LARINGOTRAQUEITIS-AVIAR.pdf
15. SÍNTOMAS
• Dificultad para
respirar
• Jadeo al inhalar
• Tos • Gorgoteo
• Traqueteo
• Reducción de
postura
• Secreciones
nasales,
oculares y
orales;
• Conjuntivitis
Fuente: FENAVI. Enlace: https://fenavi.org/wp-content/uploads/2019/04/CONCEPTOS-
IMPORTANTES-LARINGOTRAQUEITIS-AVIAR.pdf
16. LESIONES (MACRO Y MICROSCÓPICAS)
MACROSCÓPICAS
• Se observa principalmente en laringe y parte superior de la tráquea.
• Tráqueas con tapón de tejido epitelial descamado y presencia de exudado
sanguinolento.
Fuente: FENAVI. Enlace: https://fenavi.org/wp-content/uploads/2019/04/CONCEPTOS-IMPORTANTES-LARINGOTRAQUEITIS-
AVIAR.pdf
17. MICROSCÓPICAS
• Perdida de cilias
• Infiltración de linfocitos, histiocitos y células plasmáticas en mucosa y submucosa
• Desprendimiento de la mucosa y submucosa
• Hemorragias
Fuente: FENAVI. Enlace: https://fenavi.org/wp-content/uploads/2019/04/CONCEPTOS-IMPORTANTES-LARINGOTRAQUEITIS-
AVIAR.pdf
18. DIAGNOSTICO (DIFERENCIALY DE LABORATIORIO)
Necropsia
• Signos clínicos
y lesiones
Histopatología
• Observación de
los corpúsculos
de inclusión
intranucleares
en tejidos
traqueales y de
conjuntiva.
PCR
• Confirma la
identidad del
virus en forma
rápida,
inequívoca.
Diagnostico de laboratorio
19. Viruela aviar
Presencia de pústulas en cavidad oral y esófago.
Coriza infecciosa
Presencia de moca en fosas nasales, laringe
y parte superior de la tráquea.
Moco sanguinolento ausente
Influencia aviar/ Bronquitis infecciosa/ New castle
Presencia de tráqueas congestionadas sin
formación de pseudomembranas.
Rápido periodo de incubación, presencia de
signos digestivos y nerviosos.
Diagnostico de Diferencial
20. CONTROL
No incorporar aves
vacunadas, recuperadas
o expuestas a un brote
en manadas indemnes.
Cuarentenas estrictas
y limitar las visitas.
Desinfectar medios
de transporte y
jaulas.
Limpieza y
desinfección a fondo
de los locales.
Aislamiento estricto
de los focos.
Bioseguridad
Destrucción
adecuada de las aves
muertas.
Respetar un plazo de
21 días antes de la
repoblación.
21. TRATAMIENTO
Vacunas atenuadas originadas a partir de embrión de
pollo: elaboradas a partir de pases en serie de virus
de la LTI en huevos embrionados de pollo, se
conocen como vacunas con origen en embrión de
pollo. Su uso está prohibido en Colombia.
Vacunas en cultivo celular:
originadas a partir de virus
replicado en cultivo de células, son
las vacunas originadas en el
cultivo de tejidos.
Fuente: MSD salud animal. Enlace:
https://www.msd-salud-
animal.com.ar/productos/lt-ivax-vacuna-aviar/
Fuente: Lapisa. Enlace:
https://www.lapisa.com/assets/recursos/vademecum_aves_lapisa.pdf
22. Vacunas recombinantes: tienen la ventaja
de proporcionar inmunidad protectora sin el
riesgo del desarrollo de latencia viral en las
aves vacunadas. Son elaboradas utilizando
como vectores el virus de la viruela aviar o
el virus herpes de los pavos (HVT), que
expresan antígenos inmunogénicos del
virus de la LTI.
Fuente: Lapisa. Enlace:
https://www.lapisa.com/assets/recursos/vademecum_aves_lapisa.pdf
24. BIBLIOGRAFIA
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