Propedeutica

Propedéutica
Curs 2005-06
Llicenciatura de Veterinària

Introducción a la Propedéutica Clínica Propedéutica Clínica
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Introducción a la Propedéutica Clínica
La propedéutica clínica (pro-, antes; paideutike, enseñanza) refiere a la parte de patolo-
gía que estudia las técnicas de para explorar los animales; su finalidad es sentar las bases
para poder diagnosticar. Se divide en dos partes:
• Semiotecnia. Consta de la recogida de los síntomas clínicos que muestra el animal.
• Semiología. Consta de la interpretación de los síntomas y síndromes, transformándolos
en signos.
La exploración clínica debe hacerse mediante una metodología (para no perder nada); a
partir de la exploración se elabora el cuadro clínico, que sirve a su vez para el diagnóstico.
El diagnóstico debe hacerse sin prisa, para no perder datos.
Los signos patognomónicos no existen; son típicos de una enfermedad, pero no son exclusi-
vos (pueden aparecer en otras patologías).
Los objetivos de la propedéutica clínica son los siguientes:
• Aprender utilizar terminología propia y adecuada
• Aprender a manejar las diferentes especies animales (métodos de sujeción)
• Aprender a elaborar y redactar una historia clínica
• Explorar órganos, aparatos o sistemas en las especies (semiotecnia) e interpretar los re-
sultados (semiología)
• Recoger muestras biológicas, analizarlas e interpretar los resultados obtenidos.
Historia Clínica
La historia clínica es un documento, esquemático o no, donde se reflejan antecedentes,
datos exploratorios actuales y juicios clínicos que se obtienen ante un animal o animales en-
fermos; puede ser individual (animales de compañía y recreo) o colectivo (animales de ren-
ta).
La historia clínica consta de varias partes:
• Encabezamiento.
• Reseña.
• Anamnesis.
• Exploración clínica – general y detallada
• Juicios clínicos – diagnóstico, pronóstico y tratamiento
• Evolución.
• Historia clínica concreta – exploraciones concretas

Propedéutica Clínica Introducción a la Propedéutica Clínica
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Durante la redacción de la historia clínica, hay que escuchar al propietario y presentar
una actitud de calma; es importante dejarle que explique el problema, y sólo después presen-
tarle preguntas:
• De generales a específicas
• No deben ser partidistas – no guiar el cliente
• Que requieran graduación
• Hacer sólo una pregunta a la vez
• Utilizar el mismo lenguaje
• Posición de líder frente locuaces (hablan de otros temas) y tímidos (no hablan).
A la hora de elaborar la historia clínica, es importante diferenciar observación de inter-
pretación (del cliente); además, es importante reconocer si la información que provee es fia-
ble. Por eso, hay que verificar la precisión de la información: repetir la exposición de hechos
y confirmarlos con el propietario (secuencia temporal, duración de cada etapa etc.).
Partes de la historia clínica
• Encabezamiento.
o Fecha
o Número de historia clínica
o Datos del propietario
Nombre
Domicilio
Teléfono
• Reseña. Datos que identifican al animal.
o Especie y raza
o Sexo
o Edad
o Peso. Importante para dosificación de medicamentos.
o Número de identificación (chip)
o Particularidades. Tipo de capa, calzado (caballo), marcas especiales.

• Anamnesis. Recuerdo de toda la historia que provee el propietario o el cuidador (en
animales de renta y caballos). Es importante dejar que la persona explique el proble-
ma, y luego hacer las preguntas necesarias.
o Datos del pasado del animal
o Preguntas
¿Qué le ocurre al animal?
¿Desde cuándo?
¿A qué lo atribuye? – muy importante, la mayoría no saben responder.
Descripción de la enfermedad actual
Otras: alojamiento y amiente, alimentación, enfermedades anteriores, vacunacio-
nes, datos hereditarios, viajes.
• Exploración clínica
o General. Actitud, comportamiento, estado de nutrición e hidratación, temperatura,
pulso, frecuencia respiratoria, mucosas, nódulos linfáticos.
o Detallada. Métodos directos y complementarios que se utilizan cuando sea necesa-
rio, según la exploración general. Piel y anexos, aparatos digestivo, respiratorio, cir-
culatorio, urinario, reproductor, sistema músculo-esquelético, nervioso y estructuras
oculares y óticas.
• Juicios clínicos
o Diagnóstico.
Genérico – sano, enfermo o anormal.
Nosológico o específico
Individual – cuando sea necesario
o Pronóstico. Reservado y explicito (leve, grave, muy grave etc.)
o Tratamiento. Dietético y manejo, etiológico, nosológico, sintomático, vital y palia-
tivo.
o Evolución.
Desmitis – inflamación de los ligamentos
Regiones Topográficas de Exploración
Las regiones topográficas de exploración son proyecciones de órganos sobre la superficie
corporal del animal; el conocimiento de esas regiones sirve para localizar una región anató-
mica o lesión, y para especificar la localización de lesiones en informes e historiales clínicos.
Manejo y Sujeción de Animales

Historia Clínica
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Reglas Generales del Manejo
El trato y comportamiento frente al animal son importantes por dos razones: es impor-
tante para el dueño o cuidador, y es importante para permitir la exploración, ya que el clí-
nico debe dominar la situación (la seguridad en sí mismo del clínico se refleja en su actitud,
y los animales lo notan – “huelen” el miedo). El comportamiento del animal puede variar –
hay animales tranquilos y hay nerviosos, por eso siempre hay que tomar las precauciones.
La exploración debe ser metódica y detallada, y eso se puede conseguir sólo si el animal
está tranquilo. Por eso, el clínico debe tener suficiente experiencia para no excitar el animal
(tono de voz, estímulos excitantes). Además, el veterinario debe protegerse frente el animal
siempre.
El acercamiento al animal debe hacerse con seguridad, hablándole y tocándolo suave-
mente; es importante dejarle oler la mano (introducción). Es muy importante evitar gritos,
golpes y movimientos bruscos que estresan al animal (frecuentes en animales de renta).
En animales salvajes o exóticos, que son menos acostumbrados a la exploración, hay que
tomar más precauciones:
• Evitar que se lesionen (del estrés)
• Evitar lesionarles
• Taparles los ojos – evita el estrés. Se ponen desconcertados y se calman.
• Medidas de seguridad – zoonosis y otras enfermedades
• Durante la exploración es importante disponer de vestuario adecuado:
o Animales de compañía – bata blanca o pijama de quirófano
o Animales de renta – mono y botas protectoras
Caballo
La inmovilización del animal es la restricción de actividad, sea por medios verbales, físi-
cos o farmacológicos (sedantes, mejor no usarlos si no hace falta).
El caballo puede intentar defenderse de varias formas:
• Cabeza – cabezazo (‫)נגיחה‬
• Boca – mordedura
• Extremidad anterior – manotazo o pisotón
• Extremidad posterior – cocear con una o dos extremidades hacia atrás
• Todo el cuerpo – aplastamiento
Cuando nos acercamos al caballo, mejor hacerlo por su lado izquierdo, donde está acos-
tumbrado a ser manipulado, a altura de la espalda (hombros), ya que así no puede cocear.
Podemos contener el animal por varias formas:
• Cabezada – acoplada a una cuerda larga, situada a la izquierda. Sirve para guiar el
animal (mejor dejar poca cuerda, para manejarlo mejor).

Historia Clínica
Propedéutica Clínica
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• Acial, torceador o puro. Se utiliza en el labio superior y la oreja (mejor en el labio).
Provoca dolor que distrae el animal de la exploración invasiva y dolorosa.
• Elevar extremidad anterior. Siempre del mismo lado de la manipulación que ejerce el
clínico. Se hace empujando con el hombro en la región de la espalda para desequilibrar
el animal permitiendo levantar la extremidad.
• Pliegue cutáneo. En la región escapular. Causa dolor y el animal se queda quieto.
Cernejas – los pelos de la parte distal de la extremidad; evita irritación por humedad de-
bida a la lluvia (en animales rústicos).
• Potro de contención. El caballo entra (las dos puertas abiertas) y se cierra dentro; pro-
porciona mucha seguridad al clínico. Es mejor si el potro esté hecho de madera y acol-
chado para evitar lesiones al animal.
• Trabones. “Pulseras” de cuero con la parte interna acolchada. Se unen por una cuerda.
Se utilizaban antes para castración sin anestesia para que el caballo caiga (peligro de

Historia Clínica
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lesión). Hoy en día los trabones se utilizan para vehicular el caballo al quirófano.
También se utilizan trabones en las extremidades posteriores durante la cubrición de
yeguas (sobretodo primiparas) para evitar patadas por parte de la hembra en el mo-
mento de la cubrición (orquitis, extremidades rotas) – medida preventiva.
• Collar de palos. Equivalente a la campana de los pequeños animales. Se utiliza para
evitar que el animal se retire el vendaje o los puntos después de una operación. Es im-
portante vigilar la administración de comida y bebida, ya que el animal no puede girar
o bajar la cabeza.
• Otros métodos
o Atado a dos vientos. Se utiliza cuando se limpia el box y se hace el cuidado del
animal; también se utiliza durante el transporte.
o Vendaje de los ojos. Tranquiliza el caballo – se desconcierta.
o Inmovilización de potros. El potro se contiene fácilmente, con una mano delante del
pecho (o por debajo del abdomen) y la otra en la cola (maslo de la cola), que se di-
rige en dirección cráneo-dorsal.
Maslo de la cola – la parte vertebrada de la cola en el caballo.
Vaca
La vaca se defiende por la cabeza, sobretodo si tiene cuernos, por las extremidades poste-
riores, y con todo el cuerpo. Conociendo estos mecanismos de defensa, disponemos de diferen-
tes métodos de contención:
• Cabezada
• Narigón. Se ajusta al tabique nasal (altamente irrigado e inervado); está acoplado a
una cuerda que permite alojarse de la cabeza. Se utilizan más en el macho que en la
hembra.

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• Girando la cabeza. Aplicar presión sobre el tabique nasal con los dedos, y con la otra
mano sujetar la cabeza girando hacia un lado.
• Cola. La cola molesta y puede causar daño si llega a tocar los ojos.
o Retorcer la cola sobre la región sacra
o Pinza en la parte más proximal de la cola – altura de la vulva
o Pasar la cola por la región inguinal y dirigirla en dirección craneal; también se
puede atar a una extremidad
• Elevar la extremidad anterior. Empujar con el hombro para desquilibrar el animal;
cuando el animal intenta volver a extenderla, es mejor atar la extremidad y aplicar
tracción por encima del dorso.

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• Pliegue de la babilla. Manualmente o con la pinza de ordeño.
• Torniquete tibial. Se ajusta sobre el dorso del tendón de Aquiles aplicando presión que
inmoviliza la articulación de la rodilla y del tarso. Se puede conseguir un efecto similar
aplicando presión sobre el tendón mediante un palo y una cuerda.
• Potro de contención. Las vacas son más tranquilas, y por tanto el potro puede ser más
rudimentario.
• Mangas de conducción. Metálicas o de madera. Se utilizan para hacer tratamiento a
toda la población.
Perro y Gato
El perro y gato se defienden básicamente mediante la boca (mordedura) y las extremida-
des (arañazo).
Contención del perro
• Bozal. Hay que inmovilizar la cabeza, y por eso se requieren dos personas: una inmovi-
liza y la otra coloca el bozal. El bozal puede ser de plástico, cuero o nylon (lo más hi-
giénico); es preferible que sea del perro.
• Lazo de gasa en el hocico. Se ata detrás del cuello.

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• Subir el animal en la mesa. Mano en el pecho o abdomen, la otra detrás de la cola.
• Sujeción en la mesa. Traccionar las extremidades más alejadas, asegurando que el pe-
rro no se golpee con la mesa. Animales más grandes se examinan en el suelo.
Contención del gato
Es mejor que el propietario saque el gato de su caja.
• Gatitos. Pliegue cutáneo a nivel cervical (mimetiza la sujeción materna).
• Pliegue de piel en la región cervical y lumbar “aplastando” el animal en la mesa.
• Decúbito lateral. Como en el perro.

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• Mediante un paño. No es muy práctico – sólo la cabeza queda afuera. Para animales
agresivos.
• Jaula de contención. Paso previo a la manipulación – sedar el animal porque es agresi-
vo.
Otras Especies
• Suidos. Se utiliza un lazo para atrapar los colmillos maxilares; cuando el animal se
aproxima (estímulo de comida).
• Caprino y ovino. No muerden ni cocean, pero topean (‫.)נוגחים‬ Se cogen por una extre-
midad estirando – par ponerlos decúbito entre las dos piernas. Cuando se manipulan
las ovejas, no se puede estirar de su lana.

Historia Clínica
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Lugar y Forma de la Exploración
• Grandes animales
o Establo. en la estación
Caballo. Acercarse por el lado izquierdo (espalda).
Vaca. Acercarse por ambos lados (espalda).
o Exterior – exploración en movimiento.
• Pequeños animales
o Sala de exploración
Perro – suelo o mesa de exploración
Gato – mesa de exploración
Métodos de Exploración Clínica
Los métodos de exploración clínica se dividen en directos (principales y secundarios) y
métodos complementarios:
• Métodos directos. Constan del inicio de la exploración; en función de los hallazgos de
ésta, el clínico puede decidir utilizar un método complementario. Son importantes para
la exploración, ya que sirven de base para el diagnóstico.
o Métodos principales: inspección, palpación, percusión y auscultación
o Métodos secundarios: olfato y medición
• Métodos complementarios: biopatología, biopsia, radiología, ECG, EEG, miografía,
endoscopia, ecografía, gammagrafía, termografía, tomografía computerizada, resonan-
cia magnética.
Métodos Directos
• Métodos principales: inspección, palpación, percusión y auscultación
• Métodos secundarios: olfato y medición
Métodos principales
Inspección
La inspección es la exploración mediante el sentido de la vista. Debe ser bilateral y simé-
trica, ya que una lesión puede ser unilateral y afecta a un solo lado. Es recomendable explo-
rar el animal con luz natural, y si no es posible utilizar luz artificial pero con efecto de luz
natural. Tipos de inspección:
• Externa – visual directa

Historia Clínica
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• Interna – cavidades

Métodos Directos
Durante la inspección se valora:
• Forma de la lesión. Da información sobre la causa.
• Tamaño. Valorar el tratamiento (evolución de la lesión).
• Color. Anomalías en mucosas, piel o pelo.
• Posturas anormales. Los animales manifiestan el dolor mediante su postura. Por ejem-
plo, la cifosis lumbar es una postura antiálgica para evitar el dolor originado en la ca-
vidad abdominal; otro ejemplo es cuando el animal gira la cabeza hacia un lado (oti-
tis) o bien cuando descansa una extremidad más de lo habitual (caballo).
• Movilidad activa.
Palpación
La palpación es la valoración mediante el sentido del tacto; también debe ser simétrica y
bilateral. La palpación se puede hacer mediante la yema de los dedos, la mano entera o me-
diante el puño (vacuno). Durante la palpación valoramos:
• Extensión de la lesión
• Consistencia de la lesión
o Blanda – hematoma
o Pastosa – absceso
o Dura – tumor
• Sensibilidad – respuesta al tacto
o Hiperestesia – poca presión provoca mucho dolor.
o Hipoestesia – mucha presión no provoca respuesta en el animal.
• Movilidad pasiva. Movimiento de órganos cuando se le aplica una presión; por ejem-
plo, los linfonodos superficiales tienen cierto grado de movimiento respecto las estructu-
ras adyacentes, pero cuando están inflamados se adhieren a ellas.
• Temperatura. El dorso de la mano es más sensible. Siempre se compara la temperatura
con una estructura adyacente o contralateral.
Percusión
La percusión consta de golpear una zona para generar una onda sonora apreciando las
variaciones del sonido. Se puede realizar de diferentes formas:
• Digital. Percutir con uno o dos dedos en forma de gancho.
• Digito-digital. Utilizar dos dedos de “plexímetro” acoplándolas a la superficie corporal
y percutir sobre ellos con uno o dos dedos.
• Martillo. En grandes animales (équidos y vacuno). Se percute con la punta roma del
martillo. Sirve para estructuras córneas: cuerno, casco y pezuñas.
• Martillo+plexímetro.

Propedéutica Clínica Métodos de Exploración Clínica
Métodos Directos
En general, la percusión en pequeños animales se hace manualmente, y el martillo y el
plexímetro se utilizan en los animales grandes, como la vaca y el caballo. Es importante
acoplar bien el plexímetro a la superficie corporal (sin espacio intermedio). Hay dos tipos de
percusión:
• Superficial. Permite delimitar topográficamente el órgano.
• Profunda. Permite apreciar las características del sonido generado en función del ór-
gano.
Sonidos percutorios
• Mate. El sonido que se obtiene mediante la percusión sobre una víscera maciza (múscu-
lo, hígado, bazo). No hay resonancia, y la duración es muy corta.
• Submate. El sonido intermedio entre mate y claro. Se da cuando se percute una percu-
sión sobre una superposición entre órgano macizo y cavitario. También en la percusión
sobre el corazón de vaca.
• Claro. Un sonido de más intensidad, resonancia y duración. Se da cuando percutimos
sobre un órgano cavitario que contiene aire no sometido a presión (pulmón sano).
• Hipersonoro. Se da cuando percutimos un órgano que contiene aire sometido a cierta
presión. Ejemplo: pulmón con enfisema.
• Timpánico. Se da cuando percutimos sobre órganos cavitarios con gas sometido a cierta
presión, como el rumen por ejemplo. El sonido tiene mayor resonancia y duración.
• Metálico. Se produce cuando percutimos sobre un órgano cavitario que contiene gas so-
metido a mucha presión, por ejemplo el abomaso en una vaca con desplazamiento de
abomaso tras el parto (se que atrapado y acumula gas).
Auscultación
La auscultación consta de la captación de ruidos normales o patológicos, apreciando la
actividad funcional de un órgano. Hay diferentes tipos de auscultación:
• Inmediata o directa. El clínico se acerca al animal y ausculta directamente de la super-
ficie corporal. No es higiénico y es peligroso – obsoleto.
• Mediata o indirecta. El clínico utiliza estetoscopio (artículo de museo – campana sin
gomas) o fonendoscopio para auscultar los sonidos internos.
Además de la auscultación normal, el clínico puede combinarla con palpación (sucusión)
para detectar la presencia de líquidos, o bien con la percusión digital, para detectar la pre-
sencia de gas (desplazamiento del abomaso).
Métodos secundarios
• Olfacción – exploración por medio del olfato. Se puede valorar el aire espirado, excre-
ciones o secreciones.
• Medición – exploración basada en la utilización de medidas. Importante para valorar
la evolución de la lesión.

Métodos Directos
Métodos Complementarios de Exploración Clínica
El objetivo de los métodos complementarios de exploración clínica es complementar la ex-
ploración animal; se utilizan después de evaluar el animal mediante los métodos directos.
Los criterios para determinar la necesidad de utilizar métodos complementarios son la in-
formación diagnóstica, la disponibilidad de cada método y su coste. La finalidad de los mé-
todos complementarias es diagnóstica ayuda a orientar, confirmar o descartar un proceso;
también tiene finalidad en el pronóstico, ya que ayuda a establecerlo y en el tratamiento, ya
que ayuda a elegir el tratamiento adecuado y determinar la respuesta a él.
• Biopatología Investiga la normalidad y anormalidad de los distintos líquidos y estruc-
turas del medio interno, excreciones y secreciones; es el método más utilizado en veteri-
naria, por que se hace rápido, da información y es barato.
• Biopsias. Extracción y examen microscópico de tejidos y materias de animales vivos. Es
un método muy utilizado en veterinaria. Hay diferentes tipos:
o Punción-aspiración (eco-guiada, ejemplo de pulmón)
o Sección
o Necropsia: si tengo una granja y se empiezan a morir animales puedo sacrificar al-
gunos para poder deducir que pasa.
• Radiología. Aplicación de rayos X en el diagnóstico. Las indicaciones para radiología
son numerosas, y es un método muy utilizado en veterinaria. Se utilizan aparatos fijos
y móviles. Hay diferentes formas de aplicación:
o Radioscopia. Fluoroscopia, actualmente esta prohibido, era cuando el paciente es-
taba entre la placa y se veía en directo.
o Radiografía. Hay diferentes tipos de radiografía
Normal. Sin contraste
Con contraste
• Negativo (aire). Ejemplo: vejiga.
• Positivo (sulfato de bario, compuestos iodados)
♦Angiografía, artrografía, cistografía, urografía, sialografía, colecistografía y
mielografía
El sulfato de bario se usa cada vez menos ya que se esta sustituyendo por la
ecografía.
Hay aparatos fijos y portátiles (estos últimos muy caros).
• Electrocardiografía. Registro gráfico de la actividad eléctrica del corazón. Es un método
muy utilizado en veterinaria.
o Indicaciones: arritmias (da la máxima información)
o Latido de escape: se produce después de un intervalo T sin contracciones, es la con-
tracción para que siga funcionando el corazón.

Métodos Directos
• Electroencefalograma. registro gráfico de fenómenos eléctricos en el encéfalo. En condi-
ciones normales se observan oscilaciones con un ritmo relativamente uniforme. No se
utiliza en veterinaria.
o Indicaciones: exploración del sistema nervioso
• Electromiografía. Registro gráfico de las contracciones musculares, estudiando la inten-
sidad, duración y forma de las éstas. Método poco utilizado en veterinaria.
o Indicaciones: valoración de neuropatías periféricas, miopatías y transmisión del
impulso eléctrico.
o En los caballos durante una operación por estar tanto tiempo de lado se puede com-
primir el nervio radial…
• Endoscopia. Utilización de una fibra óptica para transmitir la imagen y la luz, lo que
permite la inspección directa de cavidades y conductos. La técnica es muy antigua (co-
nocida desde 1858). Inicialmente se utilizaban tubos metálicos rectos, pero hoy en día
se utilizan fibras ópticas (fibroendoscopia). Hay diferentes tipos:
o Broncoscopia, colonoscopia, gastroscopia, artroscopia.
• Ecografía. La ecografía se basa en la emisión de ultrasonidos y su recepción, traducien-
do los sonidos recaptados en una imagen, que depende del tamaño y estructura del ór-
gano explorado. Este método complementario es cada vez más utilizado en veterinaria.
o Indicaciones: exploración de órganos internos (abdominales y corazón).
• Gammagrafía o escintigrafía. Utilización de sustancias radiactivas. Método cada vez
más utilizado en veterinaria.
o Indicaciones: exploración de la glándula tiroides.
o En caballos con problemas de locomoción, pero no en primera instancia.
• Termografía. Obtención de una imagen del reparto de la temperatura corporal median-
te la medición de la radiación térmica emitida (infrarroja); durante la inflamación, se
producen alteraciones metabólicas y aumento del calor en la zona inflamada. Este mé-
todo es poco utilizado en veterinaria.
o Indicaciones: diagnóstico precoz de neoplasias mamarias y diagnóstico de enferme-
dades reumáticas.
• Anestesia de conducción. Abolir el dolor mediante la anestesia de los nervios digitales.
Este método es muy utilizado en veterinaria, sobretodo en la clínica de caballos.
o Indicaciones: exploración de extremidades (caballos)
• Tomografía computerizada. Realización de radiografías seriadas tomadas desde distin-
tos ángulos (imagen plana). Método cada vez más utilizado en medicina veterinaria.
o Indicaciones: diagnóstico de proceso internos (SNC).
• Resonancia magnética. Detección por un receptor de la señal emitida por algunos nú-
cleos de ciertos elementos cuando son situados en un campo magnético y su excitan me-
diante una frecuencia pulsátil. Método cada vez más utilizado en medicina veterinaria.

Métodos Directos
o Indicaciones: diagnóstico de alteraciones internas.
Exploración General del Animal
La exploración general del animal valora el grado de afección del estado general; la
anamnesis y la exploración general son previas a la exploración detallada. La exploración
puede ser individual (historia clínica, animales de compañía) o en grupo – diferenciar los
sanos de los enfermos (animales de renta).
• Actitud
• Comportamiento
• Estado de nutrición
• Estado de hidratación
• Temperatura
• Pulso
• Frecuencia respiratoria
• Mucosas
• Nódulos linfáticos
Actitud
Inspección anatómica general del animal. Valoración:
• En estación, marcha y decúbito
• Observar: cabeza, orejas, cuello, cola, extremidades respecto al tronco, líneo del dorso y
tensión de los músculos abdominales.
Alteraciones en la actitud
• En la estación:
o Animales rígidos (tétanos, laminitas)
o Posiciones anormales
o Posturas antiálgicas
• En la marcha
o Marcha rígida (laminitas, rabdomiolisis)
o Ataxia
o Cojeras (claudicaciones)
• En decúbito
o No se puede o le cuesta levantarse
o Lo intenta y no puede (Ejemplo: fractura de fémur)

Métodos Directos
o No puede (fractura de medula)
• Posturas anormales:
o Caballo sentado igual que un perro: le duele el tercio posterior
o Postura ortopneica: extiende la cabeza, línea recta, abre extremidades anteriores.
Comportamiento
El comportamiento es la forma de realizar las manifestaciones vitales y la reacción y
adaptación a las condiciones ambientales. Hay dos tipos de comportamiento:
• Instintivo y aprendido
• Comportamiento normal
Trastornos del comportamiento
• Excitación
• Depresión
• Vicios – estereotipias
Estado de Nutrición
El estado de nutrición se valora mediante la inspección y la palpación.
• Valoración
o Región preesternal
o Apófisis espinosas de las vértebras torácicas
o Apófisis transversas de las vértebras lumbares
o Tuberosidad coxal e isquiática
o Base de la cola (caballo y vaca)
o Costillas
• Clasificación del estado de nutrición
o Normal
Bueno, regular y malo
o Patológico
Obesidad y caquexia

Métodos Directos
Estado de Hidratación
• Valoración – elasticidad de la piel.
o Región cervical – caballo y vaca.
o Espalda – caballo, vaca, perro y gato.
o Párpado – caballo.
• Alteraciones – deshidratación
o Por falta de ingestión de líquidos
o Por pérdida de líquidos
Temperatura
Temperatura externa
La temperatura externa se valora mediante la palpación (dorso de la palma), siempre
comparando estructuras bilaterales y con estructuras vecinas.
• Base de las orejas
• Base de los cuernos
• Hocico
• Parte distal de las extremidades
• Región axilar
• Región inguinal (perro y gato)

Temperatura interna
La temperatura interna es un reflejo de la situa-
ción general del animal. Para valorarla se utiliza
termómetro clínico. Normalmente se hace al inicio de
la exploración; en animales hospitalizados, se hace
por la mañana.
Variaciones en la temperatura
Existen variaciones fisiológicas en la temperatura corporal: edad, sexo (hem-
bras>machos), ritmo nictemeral, ingesta de alimento, ejercicio físico, celo y gestación. Las
variaciones patológicas incluyen la fiebre, hipertermia no febril por golpe de calor e insola-
ción e hipotermia por colapso circulatorio o metabólicoo.
Valores de normalidad (jóvenes – +0.5º)
Caballo 37-38º Perro 38-39º
Vaca 38-39º Gato 38-39º

Métodos complementarios de Exploración Clínica
Pulso
Pulso
El puso es un parámetro que indica el estado del
aparato circulatorio. Se valora mediante la palpación
de una arteria periférica durante 30-60”.
• Caballo: arteria facial y facial transversa
• Vaca: arteria facial y caudal media
• Perro y gato: arteria femoral
Variaciones en el pulso
Taquicardia
• Fisiológica
o Gestación avanzada
o Excitación
o Temperatura exterior elevada
o Ejercicio
o Actividad digestiva
•
• Patológica
• Patológica
o Fiebre
o Debilidad cardiaca
o Hipotensión
o Anemia
o Procesos inflamatorios
o Medicación
Bradicardia
• Fisiológica
o Torcedor en labio u oreja
o Compresión de los globos oculares
•
• Patológica
• Patológica
o Excitación de las serosas
o Convalecencia de procesos graves
o Inanición
Frecuencia Respiratoria
La mecánica respiratoria varia en según la especie animal:
en los caballos es costo-abdominal, en la vaca, abdominal y en
el perro y el gato es costal. La respiración se valora por inspec-
ción y por palpación.
Alteraciones en la frecuencia respiratoria
• Taquipnea (más forzada y con mayor frecuencia) o polipnea; no son del todo sinóni-
mos.
o Fiebre
Valores de normalidad
Caba-
llo
30-40 Potro 70-90
Vaca 70-90 Ternero 70-
110
Perro 70-80 Cachorro 80-
120
Gato 110-
130
Valores de normalidad
Caba-
llo
10-
16
Perro 10-40
Vaca 15-
35
Gato 20-40

Propedéutica Clínica Métodos complementarios de Exploración Clínica
Pulso
o Anemia
o Dolor en órganos que intervienen en la respiración
• Bradipnea u oligopnea
o Enfermedades agudas del encéfalo
Mucosas
Las mucosas se exploran por inspección; su aspecto normal es liso, rosado, húmedo y bri-
llante. Las mucosas explorables son la conjuntival, bucal, nasal, vaginal, rectal y prepucial.
Es importante valorar mucosas tanto a nivel craneal como a nivel caudal.
Alteraciones en las mucosas
• Variaciones patológicas
o Congestivas
o Pálidas
o Cianóticas
o Ictéricas
o Melánicas

Nódulos Linfáticos
La exploración se hace mediante la inspección y la palpación; ambas deben ser simétri-
cas.
• Inspección: valora aumento de tamaño visible (inflamación).
• Palpación:
o Consistencia. Normal – tensoelástica
o Sensibilidad
o Tamaño
o Forma
o Superficie. Ha de ser lisa.
o Temperatura
o Movilidad pasiva
Nódulos linfáticos explorables
• Caballo
o Mandibulares
o Cervicales superficiales
o Subilíacos (precrurales)
• Vaca
• Vaca
o Mandibulares
o Cervicales superficiales
o Subilíacos
o Mamarios (supra- o retromamarios)
Forma
cm
Forma

Perro y gato
o Mandibulares
o Cervicales superficiales (preescapulares)
o Poplíteos superficiales
Exploración de Piel y Anexos
• Piel
• Pelo
• Glándulas sebáceas
• Glándulas sudoríparas
• Uñas, pezuñas y cascos. Ver exploración del sistema músculo-esquelético.
• Cuernos
• Métodos complementarios de exploración
Introducción
La piel es una membrana gruesa, resistente y flexible dividida en tres capas – la epider-
mis, la dermis y la hipodermis; tiene multitud de funciones:
• Barrera física
• Termorreguladora
• Percibe sensaciones
• Control hemodinámico
• Secreción
• Síntesis
Las enfermedades de la piel es un motivo principal de consulta en pequeños animales; se
clasifican en enfermedades primarias y secundarias.
Antes de realizar la exploración de la piel y anexos, es importante conocer la historia
clínica del animal.
• Reseña:
o Raza
Cocker – seborrea
Teckel – acanthosis nigricans
o Sexo
macho – adenoma perianal
hembra – alopecia por hiperestrogenismos

o Edad (Lectioma contagioso, en corderos desde nacimiento, virus en mamas; Papilo-
mas- mas frecuente en jóvenes)
o Color de la capa (blanca- predisposición a dermatitis por fotosensibilización)
• Anamnesis: antecedentes familiares e influencia estacional (en verano mas frecuentes
piodermas, y en invierno dermatofitosis) y ambiental.
Piel
La piel se explora mediante la inspección y palpación
Inspección
Es importante utilizar la luz adecuada. Valorar:
• Color (origen)
o Melánico.
Melanosis.
• General – melanosis
• Local – peca o efélide
Despigmentación
• General – albinismo
• Local – vitíligo
o Hemático.
Por alteraciones circulatorias
• Hiperemia
• Isquemia
Por alteraciones hemorragias
• Petequias
• Equimosis
• Víbices – efusión sanguínea subcutánea lineal
• Sábanas
• Hematoma
o Hepático. Depósito de bilirrubina.
• Elasticidad. Pérdidas hídricas, procesos degenerativos.
• Prurito
o Local
o Generalizado

• Aumento de volumen – acumulación de líquido o gas
o Edema: caliente o frío
o Enfisema: endógeno o exógeno
Lesiones elementales de la piel
Lesiones primarias
• Consistencia sólida
o Mácula. Lesión plana, circunscrita de diámetro inferior a 1 cm.; es una lesión ca-
racterizada por cambios de color. Pueden observarse manchas de más de 1 cm.
o Pápula. Lesión elevada (<1 cm.) con edema o infiltración de células inflamatorias.
o Roncha o habón. Lesión elevada y plana (>1 cm.) resultante de edema cutáneo.
o Nódulo. Lesión sólida, >1 cm. infiltrada por células inflamatorias o neoplásicas.
o Tumor. Tamaño superior a un nódulo con tejido neoplásico, no necesariamente ma-
ligno.
Mácula Pápula
Habón Nódulo

Tumor Pústula
• Consistencia líquida
o Vesícula. Lesión prominente (<1 cm.) llena de suero.
o Bulla. Parecida a la vesícula pero de tamaño superior a 1 cm.
o Pústula. Elevación circunscrita de la piel que contiene material purulento.
o Quiste. Cavidad que contiene líquido o material sólido.
Lesiones secundarias
Las lesiones cutáneas secundarias son consecuencia de complicaciones de las lesiones pri-
marias o de su proceso evolutivo (rascado, autoagresiones, traumatismo etc.).
• Destinadas a eliminarse. Costras o escamas.
o Escamas. Cúmulos de células epidérmicas muertas que se desprenden.
o Costra. Mezcla de exudado inflamatorio o restos de sangre y células.
Escamas Costra
• Con solución o de continuidad.
o Erosión. Pérdida de la parte superior de la epidermis; cura sin cicatrización.
o Excoriación. Afecta a epidermis y dermis superficial.
o Ulcera. Forma más grave de erosión (dermis); cura con cicatriz.
o Fisura. Incisión lineal que penetra la piel.

Erosión Úlcera Fisura
• Procesos reparadores.
o Cicatriz. Sustitución del tejido lesionado por tejido
conjuntivo.
o Liquefacción. Engrosamiento y endurecimiento de la
piel.
• Otras lesiones secundarias
o Hiperpigmentación. Aumento de la pigmentación (me-
lanina)
o Hiperqueratosis. Engrosamiento del estrato córneo.
o Comedones. Folículos pilosos dilatados con células cornificadas, material sebáceo o
microorganismos.
Hiperpigmentación Hiperqueratosis Comedones
Conformación de las lesiones
• Anulares
• Simples
• policíclicas
• Agrupadas
• Serpiginosas
• Lineales
• Arciformes
• Diana
Pelo
Cicatriz

El estado del pelo se valora mediante la inspección; durante esta valoramos si el pelo es
normal (sentado, suave y brillante) y valoramos diferentes criterios:
• Muda. Evaluar retraso en la musa (exceso de pelo).
• Aspecto – “mal pelaje”. Áspero, mate y erizado. Indica procesos sistémicos.
o Brillo. Pelo seco y sin brillo.
o Color. Canicie
Canicie
Albinismo
Leucotriquia (localmente)
o Erizamiento.
Leucotriquia
• Cantidad
o Hipertricosis (sinónimo hirsutismo). Exce-
so de pelo. Puede indicar retraso en la
muda.
o Hipotricosis. Déficit de pelo. Puede ser lo-
calizado o general.
Alopecia. Zonas calvas.
• Alopecia areata: idiopática, asocia-
da a situaciones de estrés
Atriquia. Animal sin pelo (razas exóticas de perro y gato)
o Calidad
Tricoclasia – pelo frágil.
Triorrexis – rotura del pelo.
Tricoptilosis – deshilachamientos de las puntas
Glándulas Sebáceas

Las glándulas sebáceas son responsables de secretar una secreción protectora del pelo y
de la piel. Las principales alteraciones en las glándulas sebáceas son la seborrea y la astea-
tosis.
• Seborrea
• EAsteatosis
Glándulas Sudoríparas
Las glándulas sudoríparas se encuentran en el caballo, vaca perro y gato. Alteraciones
en el funcionamiento de las glándulas:
• Hiperhidrosis. Aumento de la secreción sudorípara.
o Generalizada
Ejercicio, dolor, temperatura ambiente, fármacos
o Localizada. Lesiones de la médula espinal
• Hipohidrosis o anhidrosis.
• Dishidrosis.
o Hematidrosis
o Urihidrosis
Cuernos
Los cuernos se valoran mediante la inspección, palpación y percusión.
• Inspección. Valorar la posición, desprendimiento del estuche córneo y fisuras.
• Palpación. Valorar edad, temperatura, movilidad pasiva y sensibilidad.
• Percusión (con la parte roma del martillo). Valorar sensibilidad y sonido a hueco.
Métodos Complementarios
• Lupa. Observar lesiones de tamaño pequeño.
• Lámpara de Wood. Identificar lesiones fúngicas que emiten fluorescencia
• Cepillado de la capa. Obtener pelo, pulgas y excrementos de pulgas.
• Examen en algodón mojado. Se observan estrías de sangre (excrementos de pulgas –
sangre poco digerida).
• Celo sobre el pelo y examen sobre porta. Se observa en microscopio.
• Examen muestra de pelo + KOH o parafina (microscopio).
• Raspado de la lesión + KOH. Observación con microscopio.
• Aspirado con aguja fina. Citología.
• Cultivo de hongos.

• Cultivo a partir de material de pústula o raspado.
• Biopsias de piel. Reconsiderar el diagnóstico – información adicional.
• Pruebas alergias (intradérmicas o serológicas).

Propedéutica Clínica Exploración del Aparato Digestivo
Introducción
Exploración del Aparato Digestivo
Introducción
Durante la exploración del aparato digestivo, exploraremos los siguientes órganos:
• Boca
• Glándulas salivales
• Faringe y tonsilas
• Esófago
• Exploración abdominal externa
• Estómago – caballo, perro y gato
• Estómago – rumiantes
• Intestino
• Hígado
• Bazo – no es órgano digestivo pero se explora con el resto de los órganos abdominales
digestivos
• Palpación rectal
Antes de iniciar la exploración del aparato digestivo, hay que tomar la anamnesis del
animal:
• Alimentación y bebida – cantidad y calidad. La calidad del agua es muy importante en
animales en extensivo.
• Vómitos y diarrea – cantidad y calidad. Importante en animales de compañía.
• Rumia. Desaparece en procesos sistémicos.
• Manejo. Cambios de alimentación en animales de renta, establo, ambiente…
Boca
Inspección y palpación externas
Durante la inspección y palpación externas, podemos valora:
• Boca abierta – dolor en el interior, luxación de la articulación temporomandibular.
• Boca cerrada – la boca no se puede abrir. Contractura permanente de los maseteros –
trismo; síntoma típico del tétanos.
• Sialorrea. La secreción salival es normal, pero la saliva no se traga.
• Labios. El caballo y el perro tienen más movilidad en los labios.
o Posición. Labio inferior caído (vejez), labio superior levantado – agrado en el se-
mental delante de una hembra.

Introducción
o Queilitis. Inflamación de los labios.
• Tumores.
Inspección y palpación interna (apertura)
En el caballo y la vaca, la boca se abre metiendo la mano en el diastema, tirando la len-
gua hacia fuera y aplicando presión sobre el paladar duro con el pulgar con el fin de abrir
la boca al máximo.
En el perro, se abre la boca a nivel de la comisura bocal provocándole dolor que le causa
abrir la boca. En el gato, la boca se abre aplicando presión con un dedo.
Épuli – tumor benigno de las encías. Frecuente en pequeños animales.
Lengua
Durante la inspección y palpación interna, valoramos el estado de la mucosa oral:
• Color
• Inflamación
o General – estomatitis
o Localizada – glositis, palatitis, gingivitis
• Tumores gingivales – épuli.
Lengua
• Macroglosia
• Heridas y traumatismos
• Parálisis del nervio hipogloso
• Quiste – ránula,
• Saburra lingual. Defecto en descamación de las células (fiebre etc.).
• Tumores
Dientes
• Coloración anómala
o Dientes sanos – coloración blanca amarillenta
o Manchas negras – tratamientos prolongados de tetraciclinas, que compiten con el
calcio y se depositan sobre el cemento dentario.
• Hipoplasia del esmalte. Alteración de la calcificación de calcio antes de la eclosión del
diente.
• Sarro. Provoca periostitis y gingivitis. Acumulo de detritos orgánicos, y minerales (car-
bonato, fosfato, calcio y magnesio) sobre la superficie dentaria. Aparece en todas las
especies, sobretodo animales pequeños alimentados por dieta blanda.

Introducción
• Maloclusión y desgaste anómalo. Los arcos mandibulares no coinciden, y por tanto los
dientes no se solapan correctamente, causando desgaste anómalo del diente. Como con-
secuencia, los extremos salidos del diente daña la mucosa. Eso ocurre sobretodo en los
molares.
• Desgaste excesivo de los dientes – estereotipias.
• Pérdida – traumatismos
• Defectuosos o desplazados.
• Caries debidos a la acción de los ácidos generados por el metabolismo bacteriano sobre
el esmalte dentario.
• Dientes de leche retenidos. No caen – a veces el animal tiene dientes supernumerarios
de leche.
• Dientes supernumerarios.
• Neoplasias dentales.
o Odontoma. Neoplasia del cemento dentario.
o Adamantinoma. Neoplasia del esmalte.
Paladar blando
• Palatosquisis. Paladar hundido – malformación congénita.
• Longitud excesiva del paladar. Provoca paradas respiratorias durante el sueño, y el
ronquido.
Olfacción
En condiciones normales, la boca debe no presentar olores desagradables. La halitosis
puede deberse a causas localizadas de la boca (caries, pulpitis, presencia de sarro), causas
localizadas en el tracto digestivo (estómago, hígado) o causas sistémicas (fiebre etc.).
Glándulas salivales
Las glándulas salivales son (en orden de importancia) la glándula parótida, la mandi-
bular, la sublingual y la zigomática.
• Parótida. Se sitúa en la parte caudal del ángulo mandibular.
• Mandibular.
• Sublingual. Se sitúa entre las dos ramas mandibulares.
• Zigomática. En los carnívoros – poco importante.
Para explorar las glándulas salivales, valoramos la secreción por inspección y las pal-
pamos para notar alteraciones de tamaño, textura y dolor.
• Secreción
o Disminución. Ocurre en casos de:
Pérdidas hídricas importantes

Introducción
Atropina. Administración preoperatoria.
Fiebre
o Aumento – tialismo. Difícil de valorar; observamos que el animal deglute mucho
“en vacío”.
Cuerpos extraños.
Estomatitis. Por ejemplo, en la fiebre aftosa (glosopeda).
o Sialorrea. Producción normal de saliva, pero no se traga.
Obstrucción a nivel de la faringe, boca o esófago.
Parálisis a nivel de la faringe, boca o esófago.
Fractura mandibular
• Inflamación
o Parotiditis
o Ránula – quistes de glándulas salivales.
o Sialolitos
Faringe y Tonsilas
La faringe y las tonsilas se exploran mediante inspección y palpación externa e interna.
• Inspección y palpación externa
o Inflamación
Tamaño
Sensibilidad
Temperatura
o Neoplasias
• Inspección y palpación interna
o Reflejo faríngeo – excepto en casos de parálisis del nervio glosofaríngeo y rama fa-
ríngea del vago. Se cierra la faringe, se inicia la deglución y se produce una arcada;
si el estímulo persiste, se induce el vómito (en especies que vomitan).
o Color
o Secreciones
o Cuerpos extraños
o Tumores
o Tonsilas. Se valoran para detectar inflamación; sólo se pueden valorar en las espe-
cies que presentan tonsilas desarrolladas – perro y cerdo. Se evalúa el color y tama-
ño.

Introducción
Esófago
El esófago se encuentra dorsalmente a la tráquea, pero a partir de la 3ª-4ª vértebra em-
pieza lateralizarse hacia la izquierda. Si sondamos el animal (caballo), es importante si-
tuarse teniendo en cuenta esta lateralización del esófago, situándose a la izquierda. Para
saber si el sondaje está bien hecho, debemos notar la resistencia del esófago (en la tráquea
no hay resistencia).
El esófago se explora mediante inspección y palpación externa e inspección interna.
• Inspección y palpación externa
o Aumento de tamaño
Cuerpos extraños.
• En los rumiantes, animales voraces a veces ingieren remolacha en trozos que
quedan retenidos en el esófago; en caballos que comen rápidamente, el pienso
hecho de cereales forma una bola que se queda retenida en el esófago. En estos
casos, la consistencia es menor que en tumores o cuerpos extraños.
Dilatación
Tumor
• Inspección interna
o Sondaje
o Fibroendoscopia
Exploración Abdominal Externa
Paradigma abdominal
El paradigma abdominal sirve para localizar las lesiones observadas y ubicar las vísce-
ras. El paradigma abdominal divide el abdomen en tres zonas, de craneal a caudal; cada
zona a su vez se divide en tres.
• Epigastrio. La zona más craneal
o Región xifoidea. Medial.
o Paracondrios. Laterales; la región abdominal protegida por las costillas.
• Mesogastrio. La zona intermedia.
o Región umbilical. Medial.
o Flancos. Laterales.
• Hipogastrio. La zona más caudal.
o Región prepubiana. Medial.
o Región inguinal. Lateral.

Introducción
Inspección externa
Durante la inspección externa del abdomen valoramos:
• Aumento del perímetro abdominal
o Generalizado
Gestación avanzada
Meteorismo. Acumulo de gas.
Ascitis. En pequeños animales – acumulo de líquidos.
Tumores (perro y gato)
Piómetras (perro y gato)
o Localizado
Tumores, hematomas, hernias, abscesos.
• Disminución del perímetro abdominal
o Malnutrición o malabsorción prolongadas
o Enfermedades consuntivas – enfermedades que “consumen” el individuo; enferme-
dades crónicas – tratamiento sintomático o paliativo.
o Dolor – posturas antiálgicas.
Palpación
En pequeños animales la palpación nos da más información que en animales grandes; se
hace con una o ambas manos (en función del tamaño), notando el movimiento de las vísce-
ras, si el animal sufre dolor y la presencia de cuerpos extraños o tumores.
En grandes animales la palpación se hace con el puño cerrado, y se valora la sensibili-
dad del animal (dolor); la pared abdominal es muy desarrollada y no permite percibir las
vísceras abdominales.
Percusión
La percusión se hace con el plexímetro y martillo en los animales grandes, y digito-
digital o digital en los pequeños (función del tamaño).
• Nivel dorsal. Suele contener gas – sonido timpánico.
• Nivel intermedio – sonido submate.
• Nivel ventral – sonido mate.
Auscultación
Durante la auscultación valoramos los borborigmos intestinales; son incontinuos, y de-
penden del tiempo transcurrido desde la última comida del animal.

Introducción
Estómago
Estómago monocavitario
En el perro y el caballo el estómago es poco accesible, porque se encuentra en posición in-
tercostal.
En el perro, el estómago no se puede explorar cuando vacío, ya que se encuentra protegi-
do por las costillas; cuando está lleno, se encuentra más caudal. Para explorarlo, se introdu-
cen los dedos por debajo del arco costal y en la región xifoidea con el fin de valorar la sensi-
bilidad de la víscera; también podemos colocar el animal sobre su tercio posterior para des-
plazar caudalmente su estómago, así podemos explorarlo mejor. Durante la palpación valo-
ramos la dilatación o torsión del estómago (en animales de formato grande); en estos casos,
el animal presentará disnea e isquemia.
En el caballo, el estómago es inaccesible del todo – no se puede explorar externamente. La
mejor forma de explorarlo es mediante la fibroendoscopia.
Estómago policavitario
El estómago policavitario está dividido en 4 compartimentos: el retículo y el rumen loca-
lizados en el lado izquierdo del animal, y el omaso y el abomaso localizados en su lado dere-
cho. En los rumiantes el bazo es imposible de valorar, ya que se encuentra entre el diafrag-
ma y el rumen.
Rumen
Inspección
Inspección del flanco izquierdo – la fosa del ijar. Si está muy deprimida, indica malab-
sorción; si está muy salida, indica acumulo del gas en el rumen. También podemos observar
los movimientos ruminales mediante la inspección, pero mejor valorarlos mediante palpa-
ción.

Introducción
Palpación
• Superficial. Apreciar los movimientos ruminales en la fosa del ijar.
• Profunda. Apreciar la consistencia del alimento y su estratificación dentro del rumen.
o Nivel dorsal. Consistencia tenso-elástica; contenido gaseoso.
o Nivel intermedio. Consistencia blanda-pastosa; contenido mezclado de alimento
medio digerido, burbujas de gas y líquido.
o Nivel ventral. Consistencia fluctuante; alimento digerido.
Si todo el rumen presenta consistencia tenso-elástica, el animal presenta timpanismo; si
todo el rumen presenta consistencia firme, el animal ha comido demasiado, y el rumen está
desecado.
Percusión
La percusión se hace con plexímetro y martillo; valoramos la estratificación del alimen-
to, al igual que en la palpación.
• Nivel dorsal – sonido timpánico.
• Nivel intermedio – sonido submate.
• Nivel ventral – sonido mate.
Auscultación
Durante la auscultación valoramos los movimientos ruminales: tipo, intensidad y fre-
cuencia. La máxima intensidad del sonido se siente cuando la superficie desciende (palpando
con la mano); el movimiento se siente como una ola que avanza desde el retículo en dirección
caudal.
• Hipermotilidad. Después de la rumia, inicio de meteorismo agudo, meteorismo espumo-
so.
• Hipomotilidad. Enfermedades sistémicas, consumo de dieta blanda (no estimula la ru-
mia) y enfermedades de otros compartimentos abdominales (dolor).
Retículo
El retículo se localiza entre el 6º y 8º espacio intercostal izquierdo. Se puede explorar
mediante la percusión (sonido mate o submate). La auscultación da poca información ya
que los sonidos del rumen son más fuertes.
Es interesante valorar el estado del retículo, ya que los rumiantes son poco selectivos e
suelen ingerir objetos extraños punzantes que provocan reticulitis o reticulopericarditis
traumáticas. Cuando un animal sufre esta patología, deja de producir leche, deja de rumiar
y presenta edema intermandibular. Para valorar el retículo, podemos hacer pruebas de dolor
provocado:
• Pellizamiento en la cruz. Levantar con ambas manos un pliegue cutáneo en la cruz y
apretar en sentido ventral. Con ello se produce un desplazamiento ventral de la colum-
na y de los órganos, y si está aumentada la sensibilidad dolorosa el animal manifesta-
rá dolor.

Introducción
• Prueba del bastón. Realizar la prueba dos personas, situadas una a cada lado del
animal, cogiendo los extremos de un trozo de madera o un tubo de metal resistente y co-
locarlo a nivel de la región xifoidea, levantando el abdomen del animal y dejándolo
caer repentinamente. Repetir esta operación tres veces más en sentido caudal, a 5 cm.
de separación aproximadamente. Si existe aumento de la sensibilidad dolorosa el ani-
mal manifestará dolor.
• Palpación dolorosa. Presionar con el puño sobre el área de proyección del retículo (zona
ventral del 6º-8º espacio intercostal en el lado izquierdo). Apoyar el codo sobre la rodi-
lla, para aumentar la presión. Si existe aumento de la sensibilidad dolorosa el animal
manifestará dolor.
• Percusión dolorosa. Percutir, con un martillo de exploración de goma, primero con golpes sua-
ves y luego más fuertes, sobre el área de proyección del retículo (zona ventral del 6º-8º espacio
intercostal en el lado izquierdo). No golpear sobre el cuerpo de la costilla. Si existe aumento de
la sensibilidad dolorosa el animal manifestará dolor.
• Plano inclinado. En desuso, a pesar de que da buena información. El animal se coloca
sobre un plano inclinado; si hay lesión reticular, no quiere moverse porque la inclina-
ción aplica presión sobre el retículo, lo que le causa dolor.
Omaso
El omaso se encuentra entre el 7º y el 9º espacio intercostal; su exploración (percusión –
sonido mate o submate) proporciona información mínima.
Abomaso
El abomaso se encuentra en la región xifoidea, entre el 8º y el 10º espacio intercostal.
Durante la inspección, si el abomaso está en su localización normal y no está alterado, no lo
podemos observar; si hay acumulo de gas o líquidos en la víscera, observaremos una promi-
nencia en la zona de proyección. Durante la percusión, podemos notar diferentes sonidos:
• Submate – situación normal.
• Mate – sobrecarga alimentaria
• Timpánico – desplazamiento y acumulo de gas
• Metálico – dilatación con desplazamiento.
Si el abomaso se desplaza, puede encontrarse en cualquier punto por debajo de la línea
imaginaria que conecta el codo con la tuberosidad coxal. Para detectar dilatación y torsión
del abomaso, haremos una auscultación acompañada por percusión para detectar el sonido
timpánico.
En los terneros lactantes, el abomaso es el único compartimiento funcional, y lo valora-
remos mediante la palpación, para valorar la sensibilidad de la víscera.

Intestino
Intestino
Inspección y palpación
En el caballo y la vaca, la inspección y la palpación dan poca información; sólo podemos
valorar el dolor, que indica inflamación visceral. En el caballo exploraremos el intestino me-
diante la palpación rectal, mientras que en la vaca recurriremos a la laparotomía explora-
toria (se hace con anestesia local y en estación).
• Caballo – se valora el dolor
• Vaca – s ⅔⅔⅔⅔e explora el posteriores del flanco derecho, valorando el dolor.
• Pequeños animales – se valora el dolor y la presencia de masas.
Percusión
En el caballo y la vaca se hace con el plexímetro y el martillo; en pequeños animales se
hace digito-digital o digital (en función del tamaño). El sonido normal es variable; valora-
mos alteración en la resonancia – aumentada (timpánico) o disminuida (mate).
Auscultación
Durante la auscultación valoramos los borborigmos intestinales (10-20”). Su frecuencia
es variable, y depende del tiempo transcurrido desde la última comida; si la frecuencia está
alterada, nos indica el estado del intestino.
• Frecuencia aumentada
o Vacuidad
o Cólicos espasmódicos. El caballo es muy sensible a cambios bruscos del tiempo, y
responde con cólicos espasmódicos que desaparecen sin tratamiento.
o Diarrea – en pequeños animales.
• Frecuencia disminuida
o Íleo paralítico. En el caballo aparece en el periodo postoperatorio (48h).
o Estreñimiento
Hígado
El hígado es inaccesible a la exploración por métodos directos en muchas de las especies
domésticas, como el caballo. En la vaca también está protegido por los arcos costales, pero se
puede explorar por percusión en el pericondrio derecho, dorsalmente, dando exploración más
completa.
En el perro y el gato, el hígado se puede en ambos pericondrios, pero más en el derecho;
se explora mediante palpación y percusión, valorando el tamaño del hígado y su dolor.

Bazo
Bazo
El bazo no pertenece al digestivo, pero es de localización abdominal y por eso se explora
con el aparato digestivo.
En el caballo, más de la mitad del bazo se encuentra protegida por los arcos costales. Se
puede percutir, distinguiendo el bazo de los pulmones por el sonido mate.
En el ganado vacuno, el bazo está comprimido entre el pulmón y el rumen, formando
una franja entre dos órganos cavitarios; por su localización no se puede percutir.
En pequeños animales, la localización del bazo depende del llenado del mismo y del es-
tómago, por lo tanto está más o menos protegido por los arcos costales; el bazo se puede per-
cutir a nivel de los últimos arcos costales.
Palpación Rectal
La palpación rectal es una herramienta exploratoria importante sobretodo en el caballo
– en la vaca sirve sobretodo para el control reproductivo. Este método permite valorar el
aparato digestivo y el aparato reproductor femenino, y de los anillos inguinales en el macho.
Caballo
Es mejor realizar la palpación rectal en un potro de contención, que proporciona más se-
guridad. Se utiliza un guante de exploración lubricado (parafina, vaselina etc.). Formando
un cono con los dedos, se vacía la ampolla rectal, introduciendo los dedos hasta el brazo; la
introducción del brazo induce una onda peristáltica.
En la región anal, podemos observar:
• Melanomas en la región ventral de la cola.
• Traumatismos. Fístulas recto-vaginales, comunicación debida a la perforación del techo
vaginal durante el parto.
• Depósitos blanco-grisáceos. Huevos de Oxyuris equi)
La palpación rectal debe ser siempre metódica, palpando los diferentes cuadrantes en el
mismo orden.
• Cuadrante dorsal izquierdo. Se puede palpar el riñón izquierdo (medial) y el ligamento
nefroesplénico (lateral). Si las asas se desplazan y quedan atrapadas sobre el ligamien-
to, provocan dolor cólico.
o Girando la palma para palpar el techo, se palpan varias arterias:
Aorta abdominal. Estructura tubular de gran diámetro y pulsátil.
Aorta mesentérica anterior. Se bifurca de la aorta abdominal a nivel craneal.
Ramificación de la aorta abdominal en las arterias ilíacas.

Palpación Rectal
• Cuadrante dorsal derecho. En esta zona se palpa la cabeza del ciego.
o Si deslizamos la mano hacia el borde de la pelvis, palpamos el borde óseo de la ca-
vidad pelviana. A este nivel palpamos la flexura pelviana del colon mayor.
Colon ventral – tiene saculaciones.
Colon dorsal – es liso.
o Deslizando la mano lateralmente, podemos palpar los anillos inguinales (en el ma-
cho). Estos anillos deben tener diámetro inferior a dos dedos; si son de diámetro su-
perior, aumenta la probabilidad de hernias que pueden estrangularse.
• En la hembra, podemos palpar el útero, sus cuernos y los ovarios “colgados” del techo
del abdomen. La localización de los cuernos y los ovarios es distinta en la yegua que en
la vaca.
Pequeños animales
En pequeños animales la palpación rectal es digital; sirve para palpar el recto, las glán-
dulas perianales y la próstata. La palpación rectal es indicada cuando el animal sufre difi-
culta a orinar, defecar o sufre infecciones urinarias; éstos pueden indicar hiperplasia, quistes
o tumores de la próstata.
Exploración del Sistema Respiratorio
• Nariz y área nasal
• Senos paranasales
• Bolsas guturales
• Laringe y tiroides
• Tráquea
• Pulmones
Introducción
Antes de realizar la exploración del sistema respiratorio, es importante tomar la anam-
nesis; de la anamnesis, son importantes los datos siguientes:
• Edad. Existen patologías típicas de ciertas edades, como la palatosquisis, típica de neo-
natos.
• Raza. Razas braquicéfalas (buldog, pequinés) suelen tener más problemas respiratorios
que las razas dolicocéfalas.
• Tos. Si es continua o se da en determinados momentos, con o sin secreciones.
• Secreción nasal. No siempre evidente a la vista; preguntar sobre su consistencia y color.
• Ruidos al respirar.
• Dificulta al respirar.

Palpación Rectal
• Ambiente y manejo. Exposición al clima, polvo, estrés etc.
Nariz y Área Nasal
Inspección externa
El aspecto normal de la nariz es diferente entre las diferentes especies, por ejemplo la va-
ca tiene la nariz húmeda, y el caballo la tiene seca y con pelos táctiles. Durante la inspec-
ción externa valoramos:
• Deformación. Existencia de nódulos, tumores, cuerpos extrañas etc.
• Lesiones elementales de la piel.
• Secreción nasal.
o Unilateral o bilateral
Unilateral: infestación por Oestrus ovis, cuerpos extraños, lesión en un seno o en
una bolsa gutural.
Bilateral: catarros nasales y procesos asentados caudalmente a la separación na-
sal.
o Intermitente o continua.
Intermitente: indica una inflamación a nivel de un seno paranasal o una bolsa
gutural, que se drena cuando el animal mueve la cabeza.
o Abundante o escaso.
Escaso: procesos leves de vías altas
Abundante: procesos en vías bajas.
o Naturaleza.
Serosa. Incolora y transparente, fluida. Aparece al inicio de procesos catarrales.
Mucosa. También es incolora, pero es más viscosa, filante. Elevado contenido de
mucina.
Purulento. Contiene bacterias. Puede ser amarillento o verdoso.
Hemorrágica. Aparece rinorragia.
Espumosa. Típica de edema pulmonar.
Pútrida. Aparece en procesos necróticos o gangrenosos.
Inspección interna
Sólo en los équidos las fosas nasales son suficientemente grandes para exploración inter-
na no asistida; en las demás especies, hay que utilizar un rinoscopio o fibroendoscopio, lo
que requiere anestesia general.

Exploración del Aparato Respiratorio
Nariz y Área Nasal
Durante la inspección interna valoramos:
• Mucosa. Color y estado (lisa, brillante, húmeda y rosada).
• Orificio nasolacrimal. En neonatos puede ocurrir la falta de perforación; en estos casos
hay que crear un orificio; frecuente en niños.
• Procesos infecciosos o fúngicos en la parte caudal de la nariz. Problemas complicados de
tratar.
• Cuerpos extraños
• Tumores o pólipos.
Palpación
La palpación permite valorar la intensidad del aire aspirado entre las dos fosas.
Auscultación
Durante la auscultación podemos percibir la respiración normal (sin sonidos anormales)
o percibir silbidos o estridores; son sonidos respiratorios agudos provocados por estenosis o
obstrucción de las vías aéreas altas (fosas nasales, faringe, laringe o tráquea). Las causas de
silbidos son variados:
• Edema inflamatorio
• Parálisis laríngea
• Estenosis traqueal
• Hipertrofia de linfonodos retrofaríngeos
• Excesiva cantidad de moco
Olfacción
Durante la olfacción del aire aspirado podemos detectar olor desagradable, característico
de procesos necróticos.
Senos Paranasales
Los senos paranasales son divertículos comunicados de forma directa o indirecta, recu-
biertos de mucosa parecida a la mucosa nasal. Sirven para aliviar el peso del cráneo, y su
estructura confiere mayor grado de resistencia. Los senos se encuentran en los diferentes hue-
sos del cráneo: frontales, nasales, esfenopalatinos, etmoidales y maxilares; los senos frontales
y maxilares son los más importantes.
Inspección
La inspección de los senos paranasales permite valorar si existe alguna deformación en
su estructura; normalmente están aumentados de tamaño, aunque pueden ocurrir defectos
(infrecuentes).

Propedéutica Clínica Exploración del Aparato Respiratorio
Nariz y Área Nasal
Palpación
La palpación sirve para valorar la sensibilidad de la zona, y si el animal sufre dolor;
también permite valorar la temperatura, y la existencia se zonas de consistencia anormal
(acumulación de exudados emblandece el hueso).
Percusión
En grandes animales, la percusión se hace con los nudillos de la mano, la parte metálica
del martillo; en pequeños, la percusión se realiza con los dedos.
• Sonido normal – timpánico.
• Sonido anormal – mate o submate. Indica inflamación.
Bolsas Guturales
Las bolsas guturales son divertículos de la trompa de Eustaquio, estructurados en forma
de dos compartimientos separados por el hueso estilohioideo; son bilaterales y se encuentran
entre la base del cráneo y el atlas, dorsales a la faringe. Son estructuras llenas de aire de
gran volumen (300 ml), que entra y sale; no se sabe cuál es su función (sistema de enfria-
miento de la temperatura corporal?). No dan muchos problemas.
Las bolsas guturales se pueden explorar por medios directos; el método complementario
que se puede aplicar es la fibroendoscopia.
Inspección
La inspección externa valora la existencia de abultamientos, que pueden indicar timpa-
nismo de las bolsas. En potros a veces ocurre que en una de las bolsas la válvula de la bolsa
es unidireccional – permite la entrada del aire pero no la salida; para corregir este proble-
ma, quirúrgicamente se realiza una comunicación entre las dos bolsas.
Palpación
Sólo se puede palpar la parte más dorsal (3 cm.) de la bolsa gutural, ya que la mayor
parte de la bolsa está tapada por la glándula parótida. La palpación permite valora consis-
tencia blanda, que indicaría timpanismo de las bolsas.
Percusión
La percusión que se realiza es digito-digital. El sonido normal es timpánico; un sonido
mate o submate indica la presencia de secreciones, y por tanto la inflamación.
Laringe
La laringe es un “cilindro” semi-rígido cuya función es regular la entrada y salida desde
y hacia el pulmón. La laringe está constituida por 5 cartílagos (de craneal a caudal):
• Epiglotis
• Aritenoides (2). “cabalgan” sobre el cartílago tiroides.

Nariz y Área Nasal
• Tiroides
• Cricoides
Inspección externa
La inspección externa valora aumento de volumen.
Palpación
La palpación valora:
• Sensibilidad dolorosa
• Facilidad para provocar la tos, aplicando presión en la unión laringe-tráquea.
• Cambios de forma y grado de rigidez
• Frémito laríngeo – vibración palpable
• Hemiplejia laríngea en caballos. Parálisis del nervio laríngeo recurrente izquierdo. Pa-
ra que el aire pueda penetrar, el aritenoides debe ser abducido; cuando hay parálisis
del nervio laríngeo recurrente izquierdo, el aritenoides derecho se abduce, pero el iz-
quierdo se queda flácido y obstruye el paso de aire, provocando silbido o estridor larín-
geo. Esta patología se resuelve mediante una operación quirúrgica, suturando el arite-
noides así consiguiendo abducción permanente.
Auscultación
La auscultación de la laringe permite valorar si el sonido es normal (sonido laríngeo-
traqueobronquial), y la presencia de sonidos patológicos, como estertor (paso de aire a través
de secreciones – burbujas que se rompen) y estridores.
Exploración de la tos
Para explorar la tos, hay que provocarla. Hay diferentes formas de provocar la tos:
• Presión ligera y repetida sobre la unión laringe-tráquea.
• Presión en la tráquea, craneal a la entrada del tórax.
• Oclusión de los ollares.
• Compresión del tórax entre las manos.
Semiología de la tos
La tos se clasifica según su origen:
• Tos respiratoria. Originada en la faringe, laringe, tráquea, bronquios, pulmones o
pleura.
o Tos húmeda, productiva o blanda. Moviliza secreciones, que normalmente se deglu-
ten.
o Seca o no productiva, irritativa.

Nariz y Área Nasal
• Tos extrarrespiratoria. Debida a procesos cardiacos (insuficiencia cardiaca izquierda
que provoca edema pulmonar), procesos mediastínicos o digestivos.
Glándula Tiroides
Está formada por dos lóbulos separados por un istmo. Se ve aumentada de tamaño en
procesos que provocan bocio, como carencia de yodo y adenoma de tiroides.
La exploración de la glándula tiroides proporciona información muy limitada; es difícil
de palpar la glándula, por lo que recurrimos a métodos complementarios, que proporcionan
más información, como la ecografía, determinación de las hormonas tiroideas en sangre,
biopsia de la glándula o gammagrafía.
Tráquea
La tráquea es una estructura tubular flexible unida al cartílago cricoides de la laringe;
está formada por anillos cartilaginosos de diámetro variable en función de la especie. La
tráquea se puede explorar por palpación, percusión y auscultación; métodos complementa-
rios: fibroendoscopia.
Palpación
Podemos palpar la tráquea desde su inserción en la laringe hasta la entrada del tórax.
La palpación permite valorar dolor, tumefacción local y deformaciones debidas a trauma-
tismos (los últimos suelen ser hallazgos de matadero o de necropsia).
Percusión
La percusión de la tráquea se realiza simultáneamente a la auscultación pulmonar. En
condiciones normales, el sonido de la percusión está atenuado; si hay muchas secreciones, el
sonido se escucha mejor porque el líquido conduce sonido mejor que el aire.
Auscultación
La auscultación sirve para valorar el sonido traqueobronquial normal, idéntico al soni-
do laríngeo.
Pulmones
Paradigma de exploración pulmonar
El paradigma de exploración pulmonar permite delimitar los pulmones, y valorar si los
pulmones del animal están aumentados o disminuidos de tamaño.
Caballo Vaca

Nariz y Área Nasal
• Líneas horizontales:
o Línea ilíaca
o Línea isquiática
o Línea del encuentro
• Líneas verticales
o 5ª costilla
o 10ª costilla
• Líneas horizontales
o Línea ilioisquiática (pelvis horizontal)
o Línea del encuentro
• Líneas verticales
o 5ª costilla
o 10ª costilla
Inspección
La inspección de los paracondrios permite valorar:
• Rosario raquítico. Abultamiento de la unión costocondral en animales con carencia de
vitamina D.
• Aumento de tamaño localizado. Puede indicar patologías como hernias, abscesos, tumo-
res, hematomas etc.
• Tipo de respiración.
o Normal. Depende de la especie.
Costal. Pequeños animales.
Abdominal. Rumiantes.
Costo-abdominal. Caballo.
o Patológica. Respiración costal pura o abdominal pura. Indica dolor en cavidad ab-
dominal o costal.
• Frecuencia respiratoria.
• Ritmo respiratorio. Inspiración, espiración y pausa.
o Inspiración alargada. Obstrucción parcial de vías altas.
o Espiración alargada. Incapacidad de colapsar los alvéolos. Enfisema, edema, y
neumonía intersticial.
• Profundidad.
o Respiración superficial. Dolor toráxico o abdominal.
o Respiración profunda. Elevada demanda de oxígeno. Ejercicio, obstrucción de vías
altas. Normalmente coincide con la inspiración alargada.

Pulmones
Palpación
La palpación proporciona más información en pequeños animales, que tienen las paredes
costales muy finas; en grandes animales, la palpación se realiza con el puño, que puede apli-
car más fuerza. La palpación permite valorar la sensibilidad dolorosa, detectando focos
puntuales de dolor.
Percusión
La percusión puede ser superficial o profunda. La percusión superficial sirve para valo-
rar los limites pulmonares; pueden estar aumentados (enfisema) o disminuidos (atelectasia o
fibrosis). La percusión profunda permite valorar la calidad del sonido:
• Hipersonoro. Puede indicar enfisema o zonas de respiración vicariante (suplen la fun-
ción de zonas atelectásicas adyacentes).
• Timpánico.
o Bronquiectasia – dilatación de los bronquios
o Cavernas pulmonares superficiales – tuberculosis avanzada
o Neumotórax – acumulo de aire en el tórax
• Submate. Edema, bronconeumonía
• Mate.
o Derrame pleural. Hemotórax (sangre) piotórax (pus) o hidrotórax (plasma).
o Hernias diafragmáticas.
o Tumores intratoráxicos.
Auscultación
La auscultación es el método que aporta más información. La exploración debe ser simé-
trica y bilateral, de craneal a caudal y de dorsal a ventral, para cubrir todo el campo pul-
monar. La auscultación se realiza en reposo y con respiración forzada – ejercicio o cubrir el
hocico del animal con una bolsa, forzándole a respirar su propio aire, pasados unas 30-60”,
el nivel de dióxido de carbono sube, y una vez retirada la bolsa, el animal realiza 2-3 respi-
raciones profundas.
• Sonidos normales – sonido laríngeo-traqueobronquial.
• Sonido respiratorio normal. Es el sonido laríngeo-traqueobronquial atenuado por el ai-
re.
La transmisión del sonido depende de diferentes factores:
• Distancia entre la pared costal y el pulmón
• Cantidad de aire en el pulmón. A más cantidad, menos sonido.

Pulmones
• Impedancia acústica (Z=V·d, V-velocidad, d-densidad) y la diferencia de impedancia
entre los diferentes tejidos.
o Pulmón-pleura
o Pleura-pared costal
Consolidación del pulmón (atelectasia) aumenta la intensidad del sonido, mientras que
neumotórax y derrames pleurales reducen su intensidad.
Interpretación de los sonidos pulmonares
• Sonidos anormalmente altos
o Ventilación aumentada. Después de ejercicio, fiebre, excitación.
o Obstrucción de vías aéreas.
o Consolidación pulmonar.
• Sonidos anormalmente bajos. Aumento en la cantidad de aire o líquidos.
o Enfisema pulmonar.
o Efusión pleural o neumotórax
o Hernia diafragmática
• Sonidos respiratorios añadidos o adventicios
o Crepitaciones. Sonido discontinuo debido a zonas atelectásicas que se llenan de aire
de forma repentina. Enfermedades restrictivas.
o Sibilancias. Sonidos continuos, inspiratorios debidos a estenosis.
o Roces pleurales. Se producen cuando entre las capas de la pleura se depositan exu-
dados – pleuritis.
Métodos complementarios
• Fibroendoscopia
• Biopatología de las secreciones
• Cultivo de secreciones
• Lavado traqueal
• Aspiración o biopsia pulmonar
• Líquido pleural
• Radiografías simples. Muy útiles en pequeños animales.
• Biopatología sanguínea

Propedéutica Clínica Exploración del Aparato Circulatorio
Introducción
Exploración del Aparato Circulatorio
Introducción
La exploración del aparato circulatorio empieza por la periferia y termina explorando el
corazón; se inicia valorando la circulación periférica, venas y arterias sistémicas y acaba en
el corazón. Antes de empezar la exploración, es importante tomar la anamnesis del paciente;
datos importantes son la edad, raza y sexo, aunque este último es mucho menos importante.
• Edad.
o Anomalías congénitas. Aparecen durante el primer año de vida.
o Anomalías adquiridas. Aparecen a edad media o geriátrica.
• Raza. Es importante sobretodo en pequeños animales. La mayoría de las anomalías del
aparato circulatorio se diagnostica en razas puras.
• Sexo. Anomalías ligadas al sexo son infrecuentes.
Durante la anamnesis, la información que proporciona el propietario puede indicar la
necesidad de valorar el aparato respiratorio:
• Dificultad respiratoria (disnea) o taquipnea. Difícil de valorar, porque muchas veces el
animal no llega a hacer ejercicio que le cansa, y la disnea no llega a manifestarse hasta
estado más avanzado de la patología, cuando el animal tiene disnea en reposo; por eso,
es más fácil valorar en caballos.
• Cansancio precoz, fatiga o intolerancia al ejercicio.
• Tos. Sobretodo en perros, pero también en gatos. Se da más por la noche, cuando el
animal está en decúbito y se acumula sangre en el tórax; como consecuencia, aumenta
la presión venosa provocando congestión y edema pulmonar, lo que estimula la tos.
• Ascitis o edema subcutáneo.
• Debilidad o síncopes. El animal se desmaya de repente; muchas veces es la consecuencia
de bloqueos de 2o
y 3er
grado.
• El animal se vuelve azul (cianosis). E observa sobretodo en la lengua.
o Disminución del gasto cardiaco. Se produce estasis capilar, y aumenta la absorción
de oxígeno.
o Disminución de la saturación de oxígeno en sangre arteria como consecuencia de
una alteración pulmonar.
• No come bien o no come en absoluto.
• Está perdiendo peso.

Circulación Periférica
El estado de la circulación periférica se valora mediante la inspección de las mucosas y
del tiempo de llenado capilar (TRC).
Mucosas
Las mucosas se exploran mediante inspección, valorando su coloración:
• Pálidas. Puede indicar anemia o disminución de la perfusión sanguínea.
• Hiperémicas o congestivas. Puede indicar policitemia. Poco frecuente.
• Cianóticas o azuladas. Más evidente en la lengua que en las encías.
Tiempo de llenado capilar
El tiempo de llenado capilar se valora presionando la mucosa gingival o labial, obser-
vando la reinstauración de la perfusión capilar. Si ésta tarda más de 2 segundos en mani-
festarse, puede indicar una alteración cardiaca y gasto inadecuado.
Venas
Las venas que se exploran son las más accesibles – las yugulares o las mamarias. Las
yugulares se encuentran por encima del nivel del corazón, por lo tanto en condiciones norma-
les no se ven ya que drenan la sangre hacia el corazón muy rápidamente; tampoco presentan
un pulso.
Si las yugulares están distendidas o pulsátiles, el drenaje está alterado y pueden indicar
una patología del corazón derecho, compresión de la cava craneal o oclusión de la(s) yugu-
lar(es) por trombosis.
Puede existir una distensión rítmica – el “pulso” venoso; son ondas que se observan debi-
dos al reflujo de sangre de la aurícula derecha hacia la vena cava craneal y de allí a las yu-
gulares; el pulso venoso se observa, pero no se palpa. El pulso puede ser positivo o negativo:
• Negativo. No coincide con la sístole ventricular y con el pulso arterial, sino que coincide
con la sístole auricular. Es fisiológico en bovinos.
• Positivo. Coincide con el pulso arterial, y siempre es patológico, normalmente relacio-
nado con insuficiencia de la válvula tricúspide. Cuando el corazón se contrae, lanza
sangre hacia la arteria pulmonar, pero parte refluye hacia la aurícula, porque la vál-
vula es insuficiente; la sangre se empuja en sentido retrogrado porque la aurícula en-
tonces se encuentra en diástole, y permite el reflujo (no hay válvulas entre las cavas y
la aurícula).
Arterias
Las arterias se valoran mediante inspección y palpación; ambas valoran el pulso.
Inspección

Durante la inspección de las arterias, se valoran las pulsaciones: si las pulsaciones son
más visibles de lo que deberían ser, si existe pulso en una arteria alejada del corazón, que no
debería presentarlo y si hay aumento del calibre arterial.
Palpación
El pulso se toma poniendo el dedo índice y el dedo medio transversalmente a la arteria,
aplicando presión para sentir con la yema del dedo la onda pulsátil. El pulso se palpa si-
multáneamente con la auscultación cardiaca (si es posible – en pequeños animales es fácil);
es importante realizar una palpación simétrica, valorando el pulso de las dos extremidades,
que debe ser idéntico. Durante la palpación del pulso, valoramos su frecuencia, ritmo y
fuerza:
• Frecuencia.
o Aumentada. Estrés, excitación etc.
o Disminuida. En animales viejos etc.
• Ritmo. Pulsaciones duran lo mismo y en intervalos de tiempo regulares. Si no hay regu-
laridad, distinguir arritmia regular y arritmia irregular.
• Fuerza. Depende del volumen sistólico.
o Hipercinético. Fiebre, hipertiroidismo.
o Hipocinético. Hipovolemia, insuficiencia del ventrículo izquierdo.
• Amplitud del pulso. La altura de la onda pulsátil – la diferencia entre sístole y diásto-
le.
o Amplio. Ejercicio, fiebre, excitación; también hipertrofia cardiaca.
o Pequeño. Hiposistolia, hipotensión.
• Tensión. Indica la presión arterial sistólica.
o Tenso. Tétanos – aumenta la resistencia periférica.
o Blando. Hipotensión, hiposistolia. El pulso se siente filiforme – desaparece al tocar-
lo.
Corazón
El corazón se topografía en el área precordial; se encuentra ventralmente, ligeramente
inclinado: la base es craneodorsal y el vértice caudoventral.
Inspección
La inspección valora el choque de punta que es el movimiento del corazón trasmitido a
través de la pared costal. Es fisiológico en animales que tienen la pared costal muy delgada,
o bien que tienen el corazón atrofiado, como los perros atletas (galgos etc.); también se puede
observar después de ejercicio intenso.
Palpación

La palpación del corazón se hace a nivel del 4º-6º espacio intercostal; la palpación tam-
bién explora el choque de punta, valorando:
• Aumento de la amplitud y la fuerza. Puede indicar hipertrofia cardiaca.
• Disminución de la amplitud y la fuerza. Puede indicar insuficiencia o atonía del mio-
cardio, o bien dificultad de transmisión de movimientos.
o Efusión pleural o pericárdica.
o Neumotórax
o Obesidad
• Vibraciones palpables – thrill precordial. Soplos cardiacos graves – V y VI.
Percusión
El corazón se puede percutir, pero la información que proporciona es mínima; en la clíni-
ca no se hace. El sonido normal es mate (gato, perro, caballo) o submate (vaca). Se valora:
• Aumento de matidez o submatidez
o Hipertrofia o dilatación cardiaca
o Distensión del saco pericárdico hidro- o hemopericardio.
• Disminución de la matidez o submatidez
o Enfisema
• Dolor
Auscultación
La auscultación es el método de exploración que proporciona más información sobre el
corazón; se debe hacer en un ambiente tranquilo con el animal en estación, evitando ruidos
externos y por parte del animal (ronroneo, jadeo). El objetivo de la auscultación es identifi-
car sonidos normales y anormales, y valorar el ritmo y la frecuencia cardiaca. En la auscul-
tación del corazón, utilizamos el diafragma del fonendoscopio para auscultar los sonidos de
alta frecuencia (S1 y S2), y la campana para auscultar los sonidos de baja frecuencia (S3 y
S4), fisiológicos en caballo y vaca.
Focos de proyección
Es importante conocer los focos de proyección de las válvulas cardiacas, donde se escucha
con mayor nitidez el sonido de cada válvula. Es importante auscultar las válvulas de forma
metódica.
En el hemitórax izquierdo auscultamos la válvula pulmonar, la válvula arterial y la
válvula mitral, mientras que la válvula tricúspide se ausculta en el hemitórax derecho.

Corazón
• Hemitórax izquierdo
o Válvula pulmonar. Se ausculta en el 3º espacio intercostal, a la altura del codo.
o Válvula mitral. Se ausculta en el 5º espacio intercostal, a la altura del codo.
o Válvula aórtica. Se ausculta en el 4º espacio intercostal, a la altura de la articula-
ción del hombro.
• Hemitórax derecho
o Válvula tricúspide. Se ausculta en el 5º espacio intercostal, a la altura intermedia
entre el codo y el hombro.
Tonos cardiacos normales
• Sonidos cardiacos audibles.
o S1. Corresponde a sístole ventricular y
complejo QRS (lub). Se abren las vál-
vulas aórticas y pulmonares y se cie-
rran la válvula mitral y tricúspide.
o S2. Corresponde a diástole ventricular
(dup) y la onda T. Se cierran las vál-
vulas aórtica y pulmonar y se abren la
mitral y la tricúspide.
• Sonidos cardiacos no audibles. No se aus-
cultan en condiciones normales en peque-
ños animales, pero en équidos y rumiantes
son fisiológicos.
o S3. Se produce inmediatamente después
del S2, por la vibración de las paredes
ventriculares debidas al llenado de és-
te.
o S4. Se produce antes del S1 al vibrar
las paredes auriculares durante la
diástole auricular.
Semiología de la auscultación cardiaca
• Modificación de la intensidad de los tonos
o Adelgazamiento de la pared costal
o Fuerza de contracción ventricular au-
mentada
Hipertrofia cardiaca
Fiebre, esfuerzo, excitación, anemia.

Corazón
o Debilitamiento de los dos tonos
Dificultad para la transmisión de sonidos
• Hidro- o hemopericardio
• Obesidad
• Edema
Función sistólica disminuida
• Hipotiroidismo
• Cardiomiopatía dilatada
• Ruidos de galope
o S3 o galope protodiastólico. Miocardiopatía dilatada.
o S4 o galope presistólico o atrial. Miocardiopatía hipertrófica.
S3 S3 y S4
• Ruidos cardiacos adventicios
o Endocárdicos (soplos)
o Pericárdicos
Roces. Adhesión de exudados y depósitos de fibrina sobre las serosas del pericar-
dio.
Chapoteo. Los sonidos producidos por el derrame líquido en el pericardio.
• Arritmias
Soplos
Los soplos se producen por turbulencias de sangre; éstas pueden deberse a varias causas,
como comunicaciones entre cámaras cardiacas, válvulas estenosadas o insuficientes, altera-
ciones en la viscosidad de la sangre o en el diámetro de los vaso. Los soplos se dividen en or-
gánicos y funcionales.
• Soplos orgánicos. Lesión valvular irreversible.
• Soplos funcionales. No hay lesión valvular.
o Insuficiencia relativa valvular sin lesión. Dilatación cardiaca o aórtica.
o Anemia
o Fiebre y excitación.

Corazón
Los soplos se pueden clasificar en función del momento del ciclo en que se dan, y por su
grado de intensidad y por su calidad.
Soplo sistólico temprano Soplo sistólico tardío
Soplo diastólico Solo continuo
Momento del ciclo.
• Sistólicos.
o Fisiológicos o banales. Anemia, falta de
madurez de las válvulas.
o Estenosis aórtica o pulmonar.
o Insuficiencia mitral o tricúspide.
• Diastólicos. Siempre son patológicos.
o Insuficiencia aórtica o pulmonar
o Estenosis mitral o tricúspide (muy infrecuente).
• Continuos. Se deben a persistencia del ductus arteriosus.
Grado de intensidad
Los soplos se clasifican por su gravedad de I a IV;
• I. Difícil de percibir.
• II. Se escucha bastante fácilmente auscultando unos minutos.
• III. Parecido al soplo II, pero con más intensidad.
• IV. Más intenso que el III.
• V. Se escucha casi sin tocar el fonendoscopio; se percibe el thrill.
• VI. Más intenso que el soplo grado V.
¿En qué momento aparece el soplo?
Proto- – al inicio
Meso- – al medio
Tele- – al final
Pan- o holo- – durante todo el periodo
Pre- – antes

Corazón
Calidad
Los soplos pueden ser de reflujo, indicando una insuficiencia valvular, o bien de eyección,
indicando estenosis valvular. Los soplos de reflujo presentan sonido constante, mientras que
el soplo de eyección no es constante: sube la intensidad, y luego baja (rombo).
Arritmias
Las arritmias son la falta de ritmo cardiaco,
que se debe a una alteración en la formación en
la formación y/o transmisión de los estímulos.
Todas las células del miocardio tienen la capaci-
dad de generar estímulos; los marcapasos fisioló-
gicos tienen mayor frecuencia de generación de
impulsos, y por tanto mandan sobre las demás y
así coordinan el latido cardiaco. El estímulo eléc-
trico se genera a nivel del nodo senoatrial (que
tiene la mayor frecuencia) y de allí se conduce
hacia el nodo atrioventricular; de este punto sa-
len los fascículos de His y la red de Purkinje que
conducen el estimulo hacia los dos ventrículos.
• Taquicardia sinusal. Hay ritmo sinusal regular, pero
el intervalo entre latidos está disminuido; frecuencia
cardiaca aumentada.
o Excitación o ejercicio
o Dolor
o Fármacos adrenérgicos
• Bradicardia sinusal. Ritmo sinusal regular, pero el intervalo entre latidos está aumen-
tado; frecuencia cardiaca disminuida.
o Tono vagal. Compresión del globo ocular, acial (caballo).
o Hipotermia
o Lesiones cerebrales
o Hipotiroidismo
• Arritmia sinusal respiratoria. Fisiológica en el perro. Se produce variación en la inten-
sidad de la estimulación vagal sobre el nodo senoatrial; se observa aumento y disminu-
ción rítmicos en la frecuencia cardiaca.
o Inspiración. Aumenta la frecuencia cardiaca.
o Espiración. Disminuye la frecuencia cardiaca.

Corazón
• Bloqueo o paro sinusal. Se produce por fallo de descarga del nodo sinusal. Puede ser
normal (fisiológico) en el caballo, cuyo tono vagal es diferente que en las demás espe-
cies. Se observan complejos normales seguidos por inactividad (no hay ningún otro foco
que manda).
• Bloqueo atrioventricular. El estímulo que se produce a nivel del nodo senoatrial tiene
dificultad de transmitirse hacia el ventrículo. Hay tres grados de gravedad: I, II y III.
o Bloqueo AV de primer grado. Es frecuente en équidos. En el ECG observamos inter-
valo PR prolongado.
o Bloqueo AV de segundo grado. Algunos de los estímulos llegan al ventrículo y otros
no.
Mobitz I. “avisa” que llega; observamos intervalos PR cada vez más largos hasta
que no se produce complejos QRS.
Mobitz II. No “avisa” – se produce bloqueo de repente.
o Bloqueo AV de tercer grado. Ninguno de los estímulos llega, sólo observamos ondas
P. Se producen latidos de escape por focos ectópicos.
• Extrasístoles. Contracciones fuera del ritmo. Se clasifican en función del foco ectópico
que las genera: auricular, atrioventricular o ventricular.
o Extrasístole auricular. Se observa una onda P con morfología idónea a las ondas P
normales en las extrasístoles.
o Ventriculares o atrioventriculares. El complejo QRS se observa más ancho porque el
estímulo se conduce a través de tejidos con conductancia inferior.
• Taquicardia auricular. Cuando se registran más de 3 extrasístoles auriculares debidos
a un foco ectópico. A veces degeneran el control, y pasa a fibrilación auricular.

Corazón
• Fibrilación auricular. Debida a aparición de varios
focos ectópicos, que no están coordinados. Se produce
una contracción no coordinada e ineficiente.
• Taquicardia ventricular. Cuando se registran 3 o más
extrasístoles ventriculares debido a un foco ectópico. De
las arritmias más graves, pero no necesariamente signi-
fican un mal pronóstico.
• Fibrilación ventricular. Varios focos ectópicos generan
estímulos; el ventrículo se contrae sin regulación y no
lanza sangre – situación incompatible con la vida.
Exploración del Aparato Urinario
• Riñones
• Uréteres
• Vejiga
• Uretra
• Métodos complementarios
Introducción
El aparato urinario se encarga de la eliminación de productos del metabolismo (orina) y
la regulación de elementos esenciales (reabsorción). El aparato urinario se explora de craneal
a caudal: riñones, uréteres, vejiga y uretra.
Anamnesis
• Sed
• Características de la orina. Cantidad y calidad.
o Aumento de la frecuencia y del volumen – poliuria.
Diabetes mellitus
Diabetes insípida
Administración de diuréticos
o Aumento de la frecuencia sin aumento del volumen – polaquiuria
Cistitis
Uretritis
Cálculos
o Disminución de la frecuencia con reducción del volumen excretado – oliguria
Pérdida de agua por otras vías

Corazón
o Disminución de la frecuencia por retención de orina – anuria
Obstrucción de la uretra
Espasmos del esfínter externo de la vejiga
• Posturas anomias durante la micción. Hay que conocer las posturas habituales de mic-
ción en las diferentes especies. Las posturas anómalas pueden deberse a diferentes cau-
sas:
o Anomalías del aparato urinario
o Anomalías a nivel del aparato músculo-esquelético
o Alteraciones nerviosas
Riñones
Situación anatómica
• Perro. 2.5-3.5 veces la longitud de la vértebra lumbar 2 y 2 veces su anchura.
o Riñón derecho. Entre T13 y L2.
o Riñón izquierdo. Entre L2 y L4.
• Gato. Los riñones son más móviles, y se pueden localizar en el plano medio horizontal.
o Riñón derecho. L1-L3
o Riñón izquierdo. L2-L5.
• Équidos.
o Riñón derecho – 3 ultimas costillas y L1.
o Riñón izquierdo – hasta L3.
• Bóvidos.
o Riñón derecho. Entre la última costilla y L1-L3.
o Riñón izquierdo. Ventral a L3-L5.
Métodos directos de exploración
Los riñones se pueden explorar por inspección y por palpación.
• Équidos y bóvidos – palpación interna (rectal).
• Perro y gato – palpación externa.
Durante la palpación rectal, el riñón izquierdo se puede palpar en el cuadrante superior
izquierdo. El riñón se encuentra medial al bazo; los dos están unidos mediante el ligamento
nefroesplénico.
En la palpación externa, el riñón se puede notar dirigiendo las yemas de los dedos en
sentido dorsal; se valora la manifestación de dolor.

Corazón
Durante la exploración valoramos:
• Tamaño aumentado.
o Nefritis aguda
o Pielonefritis
o Hidronefrosis
o Neoplasias
• Forma y superficie
o Nefritis
o Tuberculosis
o Hidronefrosis
o Neoplasia
• Dolor
o Nefritis agudas
o Abscesos perirrenales
o Urolitiasis
•
• Consistencia
• Consistencia
o Aumentada
Nefrolitiasis
Tuberculosis
Neoplasias
o Disminuida
Pielonefritis
Abscesos
Hidronefrosis
Uréteres
Los uréteres son conductos fibromusculares que conducen la orina del riñón hacia la veji-
ga. No se pueden explorar en condiciones normales; sólo son explorables cuando están dis-
tendidos (inflamación, obstrucción etc.).
Vejiga
La vejiga se palpa mejor en pequeños animales que en grandes; su tamaño y forma son
variables en función del grado del llenado. Cuando la vejiga está vacía, tiene forma de pera
y se localiza en el suelo de la pelvis; cuando está llena, tiene forma más esférica y se despla-
za cranealmente.
La vejiga se puede palpar externamente (pequeños animales) e internamente (grandes
animales – palpación rectal; más fácil en el macho). En la palpación externa hay que desli-
zar los dedos para notar la estructura piriforme.
Durante la palpación de la vejiga valoramos:
• Grado de distensión
• Dolor
• Engrosamiento de la pared
• Cálculos
• Neoplasias

Uretra
Uretra
La uretra es diferente en el macho y la hembra. La uretra masculina presenta tres par-
tes: pelviana, perineal y peniana. La uretra perineal se puede palpar a través de la piel del
periné. Dependiendo de la morfología de la especie, es más o menos difícil el sondaje.
• Ninguna dificultad en el perro y el caballo.
• Cierta dificultad en el gato por el tamaño.
• Toro – no se puede sondear por la flexura sigmoidea.
En la hembra el sondaje es más fácil. En la yegua, la perra y la gata hay que utilizar
un espéculo vaginal para visualizar el orificio de entrada; sin embargo, en pequeños anima-
les se puede intentar el sondaje a ciegas – se introduce un dedo en la vagina, y por debajo de
éste se introduce el catéter.
Métodos Complementarios
• Biopatología sanguínea
• Biopatología urinaria
• Biopsias
• Radiografías simples y de contraste (negativo o positivo)
• Fibroendoscopia
• Ecografía
Exploración del Aparato Reproductor
• Hembra
o Órganos genitales externos
o Órganos genitales internos
o Glándula mamaria
• Macho
o Órganos genitales externos
o Órganos genitales internos
Exploración de la Hembra
Indicaciones de la exploración del aparato reproductor en la hembra:
• Infecciones
• Trastornos de fertilidad.
o No cicla cuando le toca.
o No deja montar.

Uretra
o No se queda preñada.
o No llega a término.
• Diagnóstico de gestación
Anamnesis
• Ultimo parto.
o Natural o distócico.
o Expulsión de las envolturas fetales a tiempo. Retraso aumenta el riesgo de infección.
• Celo posparto. En la yegua hay un celo posparto; si se retrasa, puede indicar una infec-
ción.
• Monta cubrición por monta natural o inseminación artificial. La monta natural puede
provocar transmisión de enfermedades.
• Aborto. Difícil de observar en animales en extensivo.
• Problema concreto del animal, o de la exploración.
Genitales externos
Los genitales externos se exploran por inspección y por palpación.
Inspección
La vulva y la vagina de la hembra se pueden explorar por inspección externa e interna
(mediante espéculo vaginal). Durante la inspección valoramos:
• Conformación de la vulva. En la vaca y la yegua el periné es muy corto; cuanto más jo-
ven es el animal, mejor conformación vulvar tiene (vertical y cerrada).
• Laceraciones o desgarros recto-vaginales, debidos a lesiones durante el parto por parte
de las extremidades del feto. Si la lesión es muy grave, puede llegar a perforar la pared
vaginal dando una fístula recto-vaginal.
• Mucosa. Comparar con la mucosa bucal o conjuntival.
• Himen persistente. Durante la cópula no se rompe el himen y la hembra no puede pa-
rir. Frecuente en ganado vacuno.
• Hipoplasia vulvar y vaginal. En primerizas freemartins. La comunicación coriónica en-
tre el feto macho y hembra (gemelos) permite el paso de hormonas masculinas, que im-
piden el desarrollo sexual de la hembra.
• Prolapso vaginal. La vagina se encuentra fuera de los labios vulvares. Frecuente en ga-
nado vacuno. Hay que resolverlo lo más rápido posible, ya que la mucosa se reseca y se
inflama, lo que dificulta devolver la vagina a su lugar.
• Hiperplasia vaginal. El suelo de la vagina se hiperplasia en las perras en estro; la hi-
perplasia es tan marcada que la masa se exterioriza a través de los labios vulvares.
• Secreción vaginal. Proviene de piómetra.

Uretra
• Tumor venéreo transmisible. Masa en forma de coliflor, de consistencia friable, que
sangra. Sólo en perros.
Genitales internos
La palpación directa de los genitales internos sólo es posible en la vaca y la yegua (pal-
pación rectal); en pequeños animales se realiza la palpación abdominal.
Palpación rectal
Durante la palpación rectal se valora:
• Útero. Consistencia.
• Cuernos uterinos. Asimetría.
• Ovarios. El ovario sin actividad es liso, duro y sin fluctuaciones; el ovario activo pre-
senta fluctuaciones.
o Quistes
o Folículos maduros. Paredes más tenues (más o menos maduros).
o Cuerpo lúteo. Duro a la palpación.
o Determinación del momento de ovulación
• Diagnóstico de gestación
Palpación abdominal
La palpación abdominal se utiliza para diagnosticar gestación y piómetras.
Glándula mamaria
Hay que explorar cada glándula mamaria por separado.
• Yegua. Dos ubres separadas, de forma cónica, localizadas en la región inguinal. Los
pezones son cortos, y cada uno tiene dos conductos lácteos lactíferos.
• Vaca. Cuatro glándulas mamarias independientes (cuarterones) localizadas en la re-
gión inguinal. Los pezones son largos (hasta 8-10 cm.) con 1 solo conducto lactífero.
• Perra y gata. Seis a ocho glándulas mamarias ordenadas en dos cadenas laterales a la
línea alba; cada glándula tiene elevado número de conductos lactíferos (6-8 o más).
Las glándulas mamarias se exploran por inspección y palpación.
Inspección
• Tamaño y simetría. Hay que observar el animal por detrás y por sus laterales.
o Aumento de tamaño
Mamitis
Edema. Fisiológico posparto.
o Disminución

Uretra
Secado
Final de la lactación
Atrofia
• Lesiones elementales
• Traumatismos en el pezón. Frecuente en buenas productoras – ubre grande y pezones
largos.
• Rotura del ligamento suspensor de la ubre
Palpación
Hay que realizar una palpación de toda la glándula mamaria de dorsal a ventral; tam-
bién hay que palpar la cisterna y valorar la flexibilidad del pezón.
• Sensibilidad
• Consistencia
• Temperatura
Exploración del Macho
Indicaciones para la exploración del macho:
• Determinación de la utilidad reproductiva
• Estado sanitario
Anamnesis
• ¿Dónde compró el animal?
• Libido
• Resultados de la cubrición
• Cambios de manejo o alimentación
Exploración de los genitales externos
Escroto
El escroto se puede explorar por inspección y palpación; durante la exploración valora-
mos:
• Inflamación. Dolor, temperatura, no hay deslizamiento de las capas del escroto.
• Asimetría. Puede deberse a:
o Orquitis
o Neoplasia
o Atrofia testicular
• Criptorquidia

Uretra
• Consistencia y tamaño
• Piel y pelo que lo cubre. Problemas dérmicos.
Testículos y epidídimo
Los testículos y epidídimo se exploran por inspección y palpación, valorando:
• Tamaño. Se mide el diámetro testicular en la parte más ancha.
o Aumento. Unilateral o bilateral.
Hernia intestinal
Orquitis
o Disminución
Hipoplasia congénita
Atrofia adquirida
• Criptórquidos o monórquidos.
o Criptorquidia – uno o dos testículos que no han bajado.
o Monorquidia – animal con sólo un testículo.
• Consistencia
o Blanda. Pérdida de tejido germinal – infértil.
o Dura. Fibrosis o neoplasia.
o Flácida. Abscesos.
• Sensibilidad. Dolor.
• Posición. En casi todas las especies es vertical. Es muy importante – una torsión testicu-
lar también implica torsión de la arteria testicular, lo que provoca isquemia.
Prepucio
El prepucio se explora por inspección y palpación; se valora:
• Lesiones dérmicas.
• Inflamación – postitis.
• Adherencias.
• Abscesos, tumores y hematomas.
• Fimosis y parafimosis. La fimosis es menos frecuente en veterinaria que la parafimosis.
o Fimosis. El orificio prepucial es pequeño, y el individuo tiene dificultades para exte-
riorizar el pene, y por tanto de orinar.
o Parafimosis. El individuo puede exteriorizar el peno, pero no lo puede retraer. El
pene se inflama y edematiza. Problema frecuente en potros.
Pene

Uretra
El pene debe exteriorizarse para su exploración; en el perro y el gato exteriorizamos el
pene manualmente, mientras que en el caballo y el toro debemos sedar el nervio pudendo pa-
ra conseguir exteriorización. Una vez exteriorizado, exploramos el pene por inspección y pal-
pación, y valoramos:
• Priapismo. Erección continuada del pene debida a problemas nervioso.
• Pústulas. Indican procesos infecciosos.
• Acúmulo de pelo en el glande. Sólo en el gato. Pelos de la región perineal de la hembra
se enganchan en las espinas del pene, provocando inflamación.
Neoplasias
• Tumor venéreo transmisible
• Tumor de células de Sertoli
• Seminoma
• Leiomioma
Exploración de los genitales internos
Los genitales internos del macho son las glándulas accesorias (de craneal a caudal) – ve-
sículas seminales, próstata y glándulas bulbouretrales. La próstata se puede palpar por
palpación rectal en el caballo y el toro; en el perro se palpa por palpación rectal digital.
Las glándulas seminales son muy importantes en el ganado vacuno; se encuentran cra-
nealmente a la próstata. La próstata está “abrazando” a la unión de la uretra a la vejiga.
Es muy importante en el perro. Las glándulas bulbouretrales se encuentran caudalmente.

Uretra
Aparato urogenital del perro Aparo urogenital del gato
Durante la exploración valoramos:
• Aumento de tamaño y sensibilidad.
o Prostatitis. Dolor, tenesmo urinario (oclusión extraluminal). El animal resiste la
exploración.
o Hiperplasia prostática. Normal a partir de los 6-7 años. Benigna y no dolorosa.
o Neoplasias.
Para recoger más información, se puede realizar una ecografía prostática, que puede re-
velar la naturaleza del aumento de tamaño (absceso, infección, hiperplasia etc.).
Exploración del Sistema Músculo-Esquelético
• Músculos
• Huesos
• Uñas, pezuñas y cascos
• Exploración de cojeras en el caballo
• Exploración de cojeras en el ganado vacuno
• Exploración de cojeras en pequeños animales
Introducción
El sistema músculo-esquelético permite al animal moverse y asumir diferentes posturas;
este sistema está conformado por los músculos y sus tendones, ligamentos, huesos, articula-
ciones y bolsas sinoviales. Las alteraciones del sistema músculo-esquelético pueden manifes-
tarse como alteraciones posturales y/o locomotoras.

Uretra
Anamnesis
• Edad. Ciertas patologías del sistema músculo-esquelético están asociadas a edad avan-
zada (artrosis, osteocondrosis).
• Razas. Ciertas razas están más dispuestas a ciertas patologías; por ejemplo, razas pe-
queñas y largas (Teckel) están más dispuestas a hernias discales.
• Peso. El sobrepeso aumenta la probabilidad de sufrir patologías del sistema músculo-
esquelético.
• Cojeras en alguno momento.
• Manejo y alimentación. Muy importante en el ganado vacuno.
o Suelo – abrasivo, resbalante, irregular, enrejillado muy separado.
o Alimentación. Pienso comprado o mezclado en la granja.
Suplementos vitamínicos y minerales.
• Antecedentes familiares. Ciertas patologías son hereditarias (displasia de cadera).
Exploración del sistema músculo-esquelético
• Exploración general del animal – actitud.
• Exploración detallada – estación y marcha.
• Exploración por delante, por detrás y por los laterales.
Músculos
Los músculos se exploran por inspección y palpación.
• Tamaño.
o Aumento.
Miositis. Inflamación del tejido muscular.
Abscesos. Frecuentes en caballos; debidos a inyecciones mal hechas que se enquis-
tan (inoculan microorganismos).
Enfisema. Acumulación de gas que crepita al tacto (carbunco).
o Disminución. Atrofia. Puede deberse a parálisis o inmovilidad (el animal se abs-
tiene del movimiento por dolor.
• Espasmos.
o Tónicos. Mantenido en el tiempo.
o Clónico. Seguido por relajación (libros: estricnina.)
• Tetania. Nombre del espasmo tónico. Tetania hipomagnésica.
• Temblor. Contracciones espasmódicas involuntarias y repetidas. Se deben a desequili-
brios de electrolitos (deshidratación).

Uretra
• Biopatología sanguínea. Analiza enzimas musculares en sangre.
o Creatinkinasa (CK).
o Lactato deshidrogenasa (LDH)
o Aspartato aminotransferasa (AST)
• Biopatología urinaria. Detectar mioglobinuria – indica roturas de fibras musculares.
• Biopsia muscular. En caballos de carrera, sirve para determinar el contenido en fibras
de contracción rápida (selección de animales).
• Ecografía de tendones
• Electromiografía
Huesos
Los huesos se exploran por inspección y palpación.
• Deformaciones. Congénitas o adquiridas.
• Fracturas.
• Callos óseos. Indican fracturas previas.
• Exostosis. Crecimiento nuevo originado por periostio, en localizaciones expuestos repeti-
tivamente a traumatismos. Frecuentes en caballos de salto.
• Osteopatías sistémicas. En vacunos. Relacionadas con raciones desequilibradas en
cuando al contenido de calcio, fósforo y fluoro.
Casco, Pezuña y Uñas
Casco y pezuñas
El casco y pezuñas se exploran por inspección, palpación y percusión.
Inspección
• Forma, tamaño.
• Crecimiento excesivo.
• Rodete coronario. Debe ser seco y limpio.
• Solución de continuidad. Rotura del estuche córneo.
• Pérdida de sustancias.
• Exudados o costras. Indican inflamación.
• Razas o anillos. Son estrías concéntricas que indican laminitis o cambios bruscos en la
alimentación.

Palpación
• Rodete coronario. Es la unión entre el estuche córneo y la piel – tiene sensibilidad. Debe
ser limpio y seco.
o Valorar sensibilidad, temperatura y localizar la apófisis tensora.
• Corona, talones y suela.
o Valorar la presencia de abscesos o lesiones punzantes.
Los abscesos aumentan la presión interna, lo que provoca normalmente una aber-
tura del estuche córneo a nivel del rodete coronario. Estas aberturas se infectan si
las condiciones higiénicas no son adecuadas (frecuente infección por tétanos).
• Pulso en las arterias digitales. En condiciones normales no es palpable; indica la exis-
tencia de algún proceso patológico a nivel distal.
• Pinza podal. Se utiliza para aplicar presión en todo el recorrido de la linea alba, valo-
rando la sensibilidad del animal. También hay que aplicar presión entre dos talones
(sensibilidad del navicular – sesamoideo distal) y entre talón y laguna contralateral.
Percusión
La percusión sirve para detectar dolor y espacios huecos en el casco o pezuña. En condi-
ciones normales, el sonido es mate. En condiciones higiénicas no son adecuadas, microorga-
nismos anaerobios penetran el casco y crean zonas huecas entre la pared del casco y tejidos
adyacentes, dando sonido hueco.
Uñas
Las uñas se exploran por inspección y palpación.
• Uñas excesivamente largas. Pueden llegar a encarnarse.
• Uñas encarnadas.
• Uñas excesivamente cortas. Pueden indicar déficit de propiocepción – el animal arras-
tra el pie desgastando las uñas.
• Fractura.
• Inflamación.
• Deformación.
Cojeras en el caballo
Cojera o claudicación se define como una alteración de un animal en la estación o en la
marcha, debida a un dolor o a una disfunción mecánica.
Causas de cojeras
• Traumatismos.

• Anomalías congénitas. Deformaciones en tendones flexores o extensores. Suelen aparecer
en potros grandes que no tienen suficiente espacio dentro del útero para desarrollar su
sistema músculo-esquelético. Muchas veces se corrigen sin tratamiento a los 15-20 días
de edad; sino se corrigen, hay que corregirlas quirúrgicamente.
• Infecciones. Artritis sépticas, normalmente debidas a pinchazos por alambres.
• Alteraciones metabólicas. Laminitis, inflamación del tejido lamelar, puede deberse a
exceso de carbohidratos en la dieta, retención de placenta, enteritis. Normalmente afec-
ta a las extremidades anteriores. Se observa la suela plana o convexa.
• Alteraciones nerviosas. Parálisis.
• Malos herrajes. Muy importante, sobretodo en caballos de deporte.
• Combinación de todos los anteriores.
Clasificación de las cojeras
• Cojeras de soporte. Se manifiestan cuando el animal aguanta peso.
• Cojeras de movimiento. Se manifiestan cuando el animal camina.
• Mixtas.
Paso. Distancia entre las huellas de los miembros anteriores o posteriores.
Tranco. Distancia entre las huellas consecutivas del mismo pie. Doble de la distancia de
un paso, y dividida en dos fases:
Fase anterior
Fase posterior
Arco del vuelo del pie. El ángulo que describe un miembro desde que está apoyada, eleva
la extremidad y vuelve a apoyarla.
En las cojeras no se altera la distancia del paso, pero se modifica la relación entre las
dos fases del tranco. En las cojeras de apoyo, se alarga la fase anterior, acortando la poste-
rior; en las cojeras de elevación, se acorta la fase anterior y se prolonga la posterior.
Es importante observar la forma de apoyar el casco (talón, lumbres), ya que puede indi-
car la localización del problema. En los caballos las extremidades anteriores soportan el 60-
65% del peso, mientras que las posteriores son propulsoras. Puede haber una cojera simul-
tánea en más de una extremidad, o más de una patología en una extremidad coja.
Anamnesis
• Tiempo de cojeras. Importante para el pronóstico.
o Agudo
o Crónico – mal pronóstico.
• ¿Siguió trabajando?

• Evolución – mejora, empeora etc.
• Causa. Patada, sobreconsumo de pienso.
• Tratamiento y respuesta.
• Fecha del último herraje. ¿Coincide con la cojera?
• Uso de antiinflamatorios. Enmascaran la cojera.
Exploración
En estación
En la estación valoramos la conformación o los aplomos del animal (a – aplomo nor-
mal).
Extremidades anteriores
visión frontal
Extremidad anterior
visión lateral
Extremidad posterior
visión lateral
• Anomalías posturales. El animal se apoya más sobre una extremidad.
• Cascos.
o Desgaste anómalo. Indica mal apoyo de la extremidad.
o Grietas.
o Conformación de los talones.
Ejercicio
El ejercicio se valora en diferentes condiciones. Primero, sobre suelo duro, en linea recta
al paso y al trote. Se valora el movimiento por visión y oído; se evidencian las cojeras de
apoyo. Luego, el animal se mueve en círculos a mano derecha e izquierda sobre suelo blando;
de esta forma se evidencias cojeras de movimiento.

Propedéutica Clínica Exploración del Sistema Músculo-Esquelético
Cojeras en el Caballo
Clasificación de las cojeras
• Grado I. la cojera no se observa al paso, pero sí al trote.
• Grado II. La alteración se nota al paso, y se obvia al trote.
• Grado III. Cojera obvia tanto al paso como al trote.
• Grado IV. El animal no soporta su propio peso.
Exploración
• Pruebas de palpación – presión digital.
o De distal a proximal.
o Comparar estructuras bilaterales
• Manipulación del miembro
• Pruebas de flexión
o Carpo.
o Metacarpo-falángica.
o Interfalángica distal.
• Aislamiento de la cojera por anestesia local.
La exploración de las cojeras se suele suplementar con exploración del dorso (problemas
del asiento etc.). Para explorar el dorso, estimulamos la piel a los dos latos de la columna; el
animal debe manifestar escoliosis – si la reacción es reducida – problema dorsal.
Cojeras en Ganado Vacuno
Las cojeras en vacuno se deben normalmente a mal manejo de la estabulación y/o ali-
mentación.
• Estabulación.
o Plazas estrechas. Obligan al animal adoptar posturas incorrectas.
o Enrejado demasiado amplio. Las pezuñas del animal se clavan y se dañan a nivel
del espacio interdigital.
o Suelos deslizantes, sucios o con travesañas desparejas o cortantes.
o Superficies irregulares o duras (cemento).
• Alimentación.
o Laminitis. Exceso de carbohidratos.
o Miodistrofias. Debidas a deficiencias de selenio y/o vitamina E.

Anamnesis
• Numero de casos.
• Grupo productivo más afectado.
• ¿Es un problema de todo el establo?
• Tipo y cantidad de cama, y la frecuencia de su limpieza.
• Situaciones estresantes. Cambio de alimento, instalaciones, saneado etc.
Exploración individual
• Inspección del animal tumbado. Extremidades anteriores recogidas bajo el esternón, ex-
tremidades posteriores dirigidas en la misma dirección.
• Inspección al levantarse.
o Normal – levanta el tercio posterior apoyándose sobre los carpos.
o Postura de perro sentado.
• Inspección de pie
o Miembros en X.
o Miembros en O – patas de Teckel.
o Sobreflexión o sobreextensión.
o Alteración del tamaño – aumentado o disminuido.
o Inspección de cabeza y cola. Posición y tono.
• Inspección durante la marcha.
o Paso parecido a equino.
o Forma de apoyar la pezuña.
• Inspección al tumbarse.
o Primero se tumba el tercio anterior, y luego el posterior.
• Examen detallado del miembro. La mayoría de los problemas se localiza en las pezu-
ñas; para su exploración se debe realizar limpieza previa.
o Forma – estuche córneo y piel.
o Soluciones de continuidad.
o Exudados o costras.
o Razas o anillos.
o Pulso en arterias digitales.
o Exploración con pinza podal.
o No se hacen pruebas de flexión.

Propedéutica Clínica Exploración del Sistema Músculo-Esquelético
Cojeras en el Caballo
Cojeras en Pequeños Animales
Anamnesis
• Raza. Disposición a diferentes patologías.
• Edad. Procesos degenerativos son típicos de edad avanzada.
• Peso. Obesidad.
• Alimentación.
o Insuficiencia de calcio.
o Exceso de vitamina A y/o D.
• Datos del motivo de la consulta:
o Presentación aguda o crónica
o En frío (al levantarse) o tras esfuerzo (10-15 minutos de ejercicio).
Exploración del animal
Inspección del animal en movimiento
• Conformación
• Postura en la estación
• ¿Desviación de dedos hacia dentro/fuera?
• ¿Atrofia muscular?
• ¿Simetría en miembros y articulaciones?
• ¿Arrastra alguna extremidad?
• ¿Movimiento raro de la cabeza sincronizado con el movimiento? –indica dolor al mover
la extremidad.
Palpación sistémica
La palpación debe ser siempre sistémica y ordenada, de distal a proximal o viceversa.
• Dedos. Piel del espacio interdigital. Valorar presencia de objetos extraños (espigas etc.).
• Huesos y articulaciones del pie.
• Flexión y extensión del carpo y tarso.
• Palpación de huesos de la pierna y antebrazo.
• Flexión y extensión del codo y rodilla.
• Comprobar el estado de los ligamentos cruzados.
• Palpar la rótula, humero y fémur.
• Mover en todas las direcciones las articulaciones del hombro y de la cadera.

o Signo de Ortolani – notar luxación de la cabeza del fémur al realizar abducción del
muslo.
• Escápula e ilion.
• Flexión dorsal, ventral y lateral del cuello.
• Apófisis espinosas de vértebras torácicas y lumbares.
• ¿Simetría de los músculos de la espalda y pelvis?
• Biopatología de enzimas musculares. CK, LDH, AST.
• Electromiografía.
• Ecografía.
• Radiografía.
• Resonancia magnética.
• Artroscopia.
• Análisis del líquido sinovial.
Exploración del Sistema Nervioso
La exploración del sistema nervioso se realiza mediante el examen neurológico. Sus obje-
tivos son variados:
• Confirmar o identificar la existencia de un problema neurológico
• Localizar la lesión a nivel del sistema nervioso central
• Realizar un diagnóstico diferencial
• Valorar la severidad y extensión de la lesión
• Pronóstico
Historia Clínica
• Reseña. Especie, edad, raza, sexo.
• Motivo de la consulta
• Inicio del cuadro clínico
o Agudo
o Subagudo
o Crónico
o Episódico

Propedéutica Clínica Exploración del Sistema Nervioso
Historia Clínica
• Progresión del cuadro clínico
o Progresivo
o No progresivo
o Mejoría
• Información general. Historia familiar, vacunaciones.
Terminología
• Reflejo.
• Reacción.
• Función motora.
o Neurona motora inferior (NMI).
o Neurona motora superior (NMS).
o Paresis y parálisis
Reflejo
El reflejo es una respuesta simple, invariable, heredada y útil para el organismo. Tiene
diferentes componentes:
• Nervio sensitivo (SNP)
• Sinapsis (SNC)
• Nervio motor (SNP)
• Órgano efector (músculo)
La valoración de reflejos espinales permite diferenciar entre lesión de neurona motora in-
ferior (NMI) y neurona motora superior (NMS).
Reacción
Una reacción es una respuesta compleja, integrada en el cerebro. Engloba más compo-
nentes que el reflejo:
• Nervio sensitivo (SNP)
• Sinapsis (SNC)
• Vía o tracto sensitivo ascendente (SNC)
• Centro cerebral integrador (SNC)
• Vía o tracto motor desencadenante (SNC)
• Nervio motor (SNP)
• Órgano efector (músculo)

Exploración del Sistema Nervioso
Terminología
Función motora.
Neurona motora inferior (NMI)
La neurona motora inferior es una neurona cuyo soma está localizado en el SNC, y cuyo
axón inerva directamente un músculo.
• Responsable de la actividad motora refleja
• Influenciada por NMS.
Neurona motora superior (NMS)
La neurona motora superior es una neurona con soma en el cerebro y cuyo axón descien-
de por tractos a lo largo del SNC y hace sinapsis con otra neurona motora.
• Responsable de la actividad motora voluntaria.
• Influye sobre la NMI
Paresis y parálisis
Paresis es la pérdida parcial de la función motora voluntaria, mientras que la parálisis
es la pérdida total de ésta.
• Monoparesia y monoplejia. Afecta a una extremidad.
• Paraparesia y paraplejia. Afecta a dos extremidades bilateralmente.
• Hemiparesia y hemiplejia. Afecta a dos extremidades ipsilaterales.
• Tetraparesia y tetraplejia. Afecta a las cuatro extremidades.
Examen Neurológico
Es importante realizar antes del examen neurológico una reexaminación física y ortopé-
dica general para destacar cualquier alteración orgánica que puede afectar al animal.
• Observación
o Estado mental. Respuesta a estímulos normales. Alerta, deprimido, estupor, coma,
delirio etc.
o Postura: ladeo de la cabeza, cifosis, rigidez por descerebración etc.
o Marcha. Como camina el animal. Ataxia, paresia, marcha en círculos.
o Movimientos involuntarios anormales: temblores, crisis convulsiva, mioclonus etc.
• Reacciones posturales
o Propiocepción. Reconocimiento de la posición de las extremidades sin información
visual.
o Salto (hopping)
o Hemiestancia y hemimarcha
o Carretilla. Visual versus con cuello extendido.

Propedéutica Clínica Exploración del Sistema Nervioso
Historia Clínica
o Impulso postural extensor.
o Situación (placing). Visual versus táctil.
• Reflejos espinales
o Extremidades posteriores
Reflejo patelar
Reflejo del gatrocnemio
Reflejo flexor
o Extremidades anteriores
Reflejo tricipital
Reflejo bicipital
Reflejo flexor
o Reflejo perineal
o Reflejo extensor cruzado
• Pares craneales
o Olfato (I)
o Visión (II) y respuesta de amenaza (II y III)
o Reflejos pupilares (II y III): directo e indirecto
o Relejo palpebral (V y VII) y reflejo corneal (V y VI)
o Sensibilidad facial y actividad muscular masticatoria (V)
o Expresión facial (VII)
o Posición del globo ocular – movimientos oculocefálicos (III, IV, VI y VII).
o Atrofia de la musculatura cervical (XI)
o Reflejo de deglución (IX y X)
o Movimiento y atrofia muscular lingual (XII)
• Sensibilidad – palpación
o Sensibilidad superficial. Aplicar presión entre los dedos.
o Sensibilidad profunda. Apretar estructuras más profundas (falange).
o Reflejo cutáneo del tronco.
o Palpación
o Áreas de hiperestesia – dolor.

Exploración de Estructuras Oculares y Óticas
Estructuras Oculares
Las estructuras oculares incluyen la cuenca orbitaria, párpados y membrana nictitante,
conjuntiva, aparato lacrimal, el globo ocular y sus estructuras. Los procesos oculares pueden
ser primarios, o secundarios – manifestaciones de enfermedades sistémicas.
Anamnesis
• “Pienso que no ve bien”
• Choque contra objetos
• Cambios de comportamiento
• Inicio de la alteración – duración de los síntomas
• Enfermedades sistémicas
• Antecedencias familiares de enfermedades oculares
Metodología
La exploración de las estructuras oculares se realiza en una habitación tranquila con luz
regulable (preferiblemente con paredes de color oscura). Se realiza una observación en a dis-
tancia además de pruebas preliminares (toma de muestras y reflejos) ya que durante las
pruebas oftalmológicas se suelen introducir sustancias en el ojo que modifican la composición
de las muestras.
Cuenca orbitaria
La cuenca orbitaria es la cavidad que alberga el globo ocular y los tejidos blandos cir-
cundantes. Se explora por inspección y palpación valorando:
• Simetría y posición de los parpados y globos oculares.
o Retropulsión del globo ocular – limitada si hay acumulo de líquidos o una masa
por detrás del globo ocular.
• Traumatismos: contusiones y heridas.
• Exudados: indica conjuntivitis.
• Alopecias: simétricas o asimétricas. Alopecias simétricas pueden indicar leishmaniosis
• Lagrimeo – epífora y dacriorrea.
o Epífora. Flujo anormal de lágrimas sobre la cara, normalmente como consecuencia
de constricción del conducto nasolacrimal. Las enzimas presentes en las lágrimas
hidrolizan el pelo.
o Dacriorrea. Flujo profuso de lágrimas, no necesariamente provoca epífora.

Propedéutica Clínica Exploración de Estructuras Oculares y Óticas
Epífora en perro (izquierda) y gato (derecha)
Parpados y membrana nictitante
Los párpados protegen los globos oculares de traumatismos, objetos extraños y luz; tam-
bién participan en la producción de lágrimas y su dispersión y su evacuación. Los párpados
y la membrana nictitante se exploran por inspección y palpación;
Párpados
• Pestañas supranumerarias o ectópicas. Pueden dirigirse hacia el interior y provocar ul-
ceras.
o Distriquia – pestañas supranumerarias o ectópicas que se dirigen hacia el globo
ocular.
• Blefaroespasmo. Espasmo del párpado debido a dolor en la conjuntiva o la córnea.
• Ptosis. Caída del párpado, normalmente por paresis o parálisis palpebral.
• Entropión. Inversión del párpado hacia el interior. El pelo del párpado daña la córnea.
• Entropión. Eversión del párpado inferior – se exterioriza la conjuntiva, que se seca y se
inflama.
• Orzuelo. Inflamación de la glándula de Meibomio – forúnculo en el ángulo del ojo.
Entropión
Ectropión

Triquiasis en gato
Distriquia en perro
Membrana nictitante
La membrana nictitante está formada por un esqueleto cartilaginoso en forma de T re-
vestido de mucosa conjuntival. En la parte más medial contiene una glándula lacrimal – la
glándula nictitante, que colabora en gran medida a la producción de lágrimas.
• Dermoides. Quiste o tumor congénito que tiene todas las características de la piel, in-
cluso el pelo.
• Prolapso o protrusión. Se empuja por inflamación de la glándula.
• Eversión – luxación del cartílago. La membrana se enrolla. Muy típico de la raza San
Bernardo.
• Inflamación de la mucosa.
• Neoplasias.
Protrusión de la membrana nictitante Dermoides en perro

Conjuntiva – palpebral y ocular
• Color. Brillante, sonrosada, lisa y húmeda.
o Enrojecida – conjuntivitis.
• Exudados. Variable en función del microorganismos implicado.
• Cuerpos extraños. Espigas.
• Quemosis. Edema conjuntival típico de alergias.
• Tumor en el saco conjuntival.
Quemosis Conjuntivitis
Aparato lacrimal
El aparato lacrimal se valora por inspección y palpación.
• Valorar la perforación del conducto nasolagrimal por inspección y palpación, realizan-
do un lavado para valorar el drenaje.
o Si el conducto no está perforado, se realiza una perforación con una cánula con ex-
tremo roma. Puede ser ascendente o descendente.
• Lagrimeo. Unilateral o bilateral, continuo o intermitente.
• Modificaciones en las lágrimas.
o Exudados
o Sangre
Globo ocular
El globo ocular se explora por inspección directa e indirecta (oftalmoscopio) y palpación
con tonómetro (oftalmólogos con mucha experiencia pueden percibir cambios en la presión
por el tacto). La mucosa que reviste el globo ocular, la esclerótica, se continúa con la córnea;
entre ambas mucosas se encuentra el limbo, el punto de unión. La capa coroides corresponde
mayoritariamente al cuerpo ciliar y el iris. La retina es la extensión del nervio óptico, en el
fondo del ojo.

• Enoftalmos. Globo ocular hundido en la cuenca orbitaria.
o Deshidratación
o Dolor en la conjuntiva o la córnea.
• Exoftalmos. Globo ocular sobresaliendo de la cuenca orbitaria.
o Traumatismo
o Razas braquicéfalas
o Masa retroglobular
• Aumento de presión intraocular – glaucoma.
• Luxación. El ojo está colocado fuera de lo normal.
Oftalmoscopio
El oftalmoscopio se utiliza para inspeccionar las estructuras del globo ocular. El ojo iz-
quierdo se explora con el ojo izquierdo, y el ojo derecho se explora con el ojo derecho. Existen
dos tipos de oftalmoscopios: de inspección directa e indirecta.
• Directa. Oftalmoscopio portátil y barato. Se observa un campo visual aumentado has-
ta 15 veces, pero la amplitud del campo está limitada. El examen oftalmológico es lar-
go.
• Indirecta. Se monta sobre la cabeza del oftalmólogo. Es un aparato caro, que requiere
cierto grado de especialización, ya que la imagen se ve revertida. El campo de visión no
está aumentado, por tanto el campo es más amplio y el examen más rápido.
La observación se realiza a distancia y observando directamente al ojo.
Córnea
La cornea normal es transparente, lisa, brillante y reflectante.
• Inflamación. Queratitis.
• Opacidad. Leucomas.
• Neovascularización. Pannus.
• Pérdida de estructuras. Úlcera.
• Objetos extraños. Provocan úlceras.
• Edema corneal. Engrosamiento por alergias.
• Dermoides. Puede aparecer tanto en conjuntiva como córnea.

Úlcera corneal Queratitis
Pannus Edema corneal
Cámara anterior del ojo
• Hipema. Hemorragia en la cavidad anterior del ojo. se reabsorbe con el tiempo.
• Hipóplon. Pus en la cavidad anterior del ojo.
• Luxación del cristalino. Rotura del anclaje del cristalino; se encuentra en la cavidad
anterior del ojo.
• Membrana papilar persistente. Restos de la membrana, consecuencia de rotura incom-
pleta.
• Parásitos – microfilarias.
Uveítis anterior Membrana papilar persistente

Hipema Luxación del cristalino
Úvea
• Inflamación – uveítis – inflamación del iris.
Pupila
• Reactivos – responden a estímulo luminoso – reflejo fotomotor directo e indirecto.
o Directo – nervio óptico y nervio oculomotor ipsilateral.
o Indirecto – nervio óptico y nervio oculomotor contralateral.
• Miosis
• Midriasis
• Anisocoria. Pupilas de diámetro diferente.
Cristalino
• Pérdida de transparencia – cataratas, traumatismo, diabetes.
• Luxación.
Catara-
ta

Fondo del ojo – retina
Para observar el fondo de ojo hay que dilatar la pupila; se utiliza tropicamida.
• Papila óptica. Observar edemas
• Fondo no tapetal. Ventral. Pigmentado e idéntico en todas las especies.
• Fondo tapetal. Color diferente en función de la especie.
• Vascularización. Se une a nivel de la papila óptica.
• Desprendimiento de la retina. Aspecto elevado.
Reflejos
• Palpebral. Dedo en el canto medial o lateral. V/VII.
• Corneal. Tocar la córnea con un hisopo. Parpadea y retrae el ojo. V/VII y VI.
• Amenaza. II y VII.
• Biopatología sanguínea.
• Test de Shirmer. Valorar la capa de lágrimas. Consta de introducir un papel especial
plegado en el ojo durante 1 minuto.
• Tinción de la fluoresceína. Es un colorante hidrófilo; después de administrarlo se lava
con solución salina.
o Condición normal – se arrastra el colorante y se drena por la nariz.
o Úlceras corneales – el colorante se fija en el estroma expuesto cambiando el color a
verde (medio alcalino). Se evidencia más en luz azul cobalto.

• Tonometría. Evalúa la presión intraocular.
o De Sitos. En desuso. Basado en el aplanamiento de la córnea - requiere elevar la
cabeza del animal para que el ojo este horizontal. Se colocan pesos hasta que la su-
perficie se aplana.
o Tonómetro portátil. Tiene forma de bolígrafo; se realizan tres medidas tocando la
córnea (anestesiada) y el aparato da una lectura media de los tres puntos en
mmHg.
• Sondaje y lavado nasolacrimal. Valorar la perforación del conducto lacrimal y la pre-
sencia de objetos extraños. Puede ser ascendente o desencante.
Estructuras del Oído
• Oído externo. Pabellón y conducto auditivo externo.
• Oído medio. Membrana y cavidad timpánica.
• Oído interno. Caracol y canales semicirculares (equilibrio y audición).
Inspección
Inspección externa
• Estática. Posición típica de la raza y especie.
o Alteraciones del pabellón – ulceras, descamaciones etc.
o Otorrea. Flujo mucoso o purulento procedente del oído medio o externo.
o Otorragia. Hemorragia del oído.
o Otohematomas. Hematoma en el oído externo provocando por traumatismo o sacu-
dido reiterado de la cabeza. Frecuente en perros con orejas caídas (Cocker).
• Dinámica. Valora el sentido de audición del perro - ¿oye o no? Se realiza provocando
un sonido fuerte (palmadas) sin que el animal lo vea; puede responder de varias for-
mas:
o Se asusta
o Mueva la cabeza y las orejas hacia el sonido
o Mueve las orejas
o No reacciona – sordera
Inspección interna
La inspección interna se realiza utilizando un otoscopio. El cabezal del otoscopio se ha
de ajustar al tamaño del animal; se ha de desinfectar entre oreja y oreja del mismo animal,
y obviamente entre animales también. Si le duele al animal, hay que sedarlo para evitar
movimientos bruscos que pueden provocarle daño.

Estructuras del Oído
El otoscopio permite observar el conducto auditivo externo hasta la membrana timpáni-
ca; se valora:
• Color de la mucosa. Enrojecida – otitis o presencia de objetos extraños.
• Heridas
• Exudados
• Cuerpos extraños
• Parásitos – ácaros. Para visualizarlos hay que introducir el otoscopio sin luz y encen-
derla cuando el otoscopio ya está colocado. Los ácaros son fotofóbicos y se esconden al
notar la luz.
Palpación
• Temperatura
• Sensibilidad
• Aspecto del tegumento
• Flujo
• Prueba del chasquido
Olfacción
El oído no debe oler mal; mal olor en los oídos indica una infección bacteriana. Se recoge
una muestra con un hisopo para realizar un cultivo bacteriano; hasta saber qué bacteria
provoca la infección, administrar un antibiótico de amplio espectro.
Función Hepática
El hígado es poco accesible a la exploración, por lo que debemos recurrir a las analíticas
de laboratorio para conseguir más información. El hígado ejerce un elevado número de fun-
ciones en el organismo – participa en el metabolismo de carbohidratos y lípidos, sintetiza
proteínas plasmáticas y factores de coagulación, almacena vitaminas, grasa y glicógeno y
elimina metabolitos y sustancias extrañas.
El diagnóstico de enfermedades hepáticas es difícil, ya que los síntomas son poco específi-
cos (fiebre, adelgazamiento etc.), al igual que las pruebas de laboratorio utilizadas. Hay
que combinar diferentes pruebas para poder apoyar el diagnóstico.
El hígado es un órgano con una gran reserva función y mucho poder de regeneración;
también es muy sensible a complicaciones secundarias. Sin embargo, sólo en alteraciones he-
páticas crónicas o agudas graves se altera la funcionalidad hepática.
Por su elevado poder regenerativo, la compensación de la función hepática, puede conse-
guirse con el descanso; al no realizar ejercicio, se maximiza la oxigenación del hígado, que
puede recuperarse más rápidamente.

Función Hepática
Enzimas Hepáticas
Enzimas Hepáticas
Las enzimas hepáticas pueden indicar un daño hepático específico; se analiza la activi-
dad sérica de las enzimas hepáticas, que depende de la actividad hepática total, su localiza-
ción en la célula, nivel de inducción farmacológica y de la vida media en el suero. El análisis
de las enzimas hepáticas no puede predecir de la capacidad funcional del hígado.
Las enzimas hepáticas se dividen en enzimas hepatocelulares y enzimas hepáticas-
biliares:
• Enzimas hepatocelulares
o Alanina aminotransferasa (ALT o GPT)
o Aspartato aminotransferasa (AST o GOT)
o Sorbitol deshidrogenasa (SDH)
o Glutamato deshidrogenasa (GLDH)
o Lactato deshidrogenasa (LDH)
• Enzimas biliares
o Gamma glutamiltransferasa (γ-GT o GGT)
o Fosfatasa alcalina (FA)
Enzimas hepatocelulares
ALT
La alanina aminotransferasa, antiguamente llamada transaminasa glutámico-pirúvico,
tiene actividad hepática específica en el perro y el gato, pero no existe prácticamente en el
hepatocito de équidos o bovinos. La vida media en suero de la enzima es muy larga (48 ho-
ras).
Su incremento en suero es proporcional al número de hepatocitos dañados, pero también
su síntesis está inducida por la administración de corticosteroides y anticonvulsivantes –
importante hacer una buena anamnesis.
AST
La aspartato aminotransferasa (transaminasa glutámico-oxalacético) tiene actividad
hepática en grandes animales. Su actividad hepática no es exclusiva, sino que la enzima
también es presente en músculo cardiaco y esquelético, cerebro y riñón. Su localización es ci-
toplasmática y mitocondrial, por lo que indica un daño celular más grave. Permanece menos
de 12 horas en sangre.
SDH
La SDH tiene actividad hepática específica tanto en pequeños como grandes animales. A
pesar de tener una vida media mediana-larga de 24-48 horas, es muy lábil y no apta para
el envío postal, por lo que tiene poca utilidad práctica en la clínica.

Propedéutica Clínica Función Hepática
Enzimas Hepáticas
GLDH
La GLDH tiene actividad hepática específica en grandes animales. Es menos lábil que
la SDH y por tanto puede aguantar el envío postal.
LDH
La LDH tiene actividad hepática no específica. Su vida media es larga. La isoenzima
LDH-5 es la específica del hígado, y otras isoenzimas se encuentran en músculo esquelético y
cardiaco y otros tejidos; por eso, la LDH total tiene poco valor diagnóstico.
Enzimas hepáticas biliares
FA
La fosfatasa alcalina tiene gran actividad hepática en el perro, moderada en la vaca y
poca en el gato y el caballo. Se localiza en las células de los canalículos biliares.
Además de tener actividad hepática, tiene actividad en el hueso, mucosa intestinal, ri-
ñón y placenta. Su síntesis está inducida por corticosteroides y fenobarbital (se puede anali-
zar la función inducida).
GGT
La GGT es una enzima microsomal de las membranas del árbol biliar. En el caballo y
el gato es una analítica mejor que la fosfatasa alcalina; en el perro es igual.
Perfil hepático en las diferentes especies
Enzimas Perro Gato Caballo Vaca
Hepatocelulares ALT ALT AST y
GLDH
AST y
GLDH
Biliares FA GG
T
GGT FA
Pruebas de Función Hepática
Marcadores generales inespecíficos
• Proteínas séricas y albúmina
• Factores de coagulación y fibrinólisis
• Bilirrubina.
o En caballo puede haber bilirrubinemia en ayunas (normal).
o Babesiosis – anemia hemolítica. No indica alteración hepática.
Pruebas de función dinámicas

Función Hepática
Enzimas Hepáticas
Las pruebas dinámicas de función hepática analizan la capacidad del hígado de elimi-
nar una sustancia, sea exógena o endógena, realizando dos analíticas pareadas. Al principio
se utilizaban las pruebas de excreción exógena; hoy en día no se utilizan.
• Pruebas de excreción exógena
o Bromosulftaleína (BSP). Administración endovenosa de BSP. Se metaboliza por
misma ruta metabólica que la bilirrubina. A 30’ se extrae sangre otra vez. Un ni-
vel alto de BSP a los 30’ puede deberse a:
Alteración en la perfusión hepática
Alteración en la función hepática – captación y conjugación
Alteración en la eliminación – obstrucción biliar
La BSP es muy irritante, y puede provocar flebitis importante; también es carcinó-
gena.
o Verde de indocianina. Mejor que la BSP, pero se utilizó poco al ser reemplazado
por otros métodos con menos efectos secundarios.
• Pruebas de excreción endógena. Sustancias procedentes del organismo de forma natural.
o Concentración de NH3 en sangre. Fue reemplazado por la prueba de tolerancia a
NH3.
o Prueba de tolerancia a NH3. Fue reemplazada por la determinación de ácidos bi-
liares.
o Determinación de ácidos biliares
Concentración de NH3 en plasma
Esta prueba no tiene buena sensibilidad (detección de enfermos). La sangre debe ser he-
parinizada en tubos fríos y mantenerse en refrigeración; toda la
manipulación debe realizarse dentro de una hora, siempre en
refrigeración.
La prueba es poco útil por complicaciones por hemólisis (eri-
trocitos contienen mucho NH3) y retraso en la separación.
Tolerancia a NH3
Se administra cloruro de amoniaco vía oral o rectal.
• Oral. Ayuno de 12 horas. La sustancia es irritante, por lo que se debe administrar
dentro de una cápsula de gelatina o sondaje para evitar el vómito.
o Muestra basal y extracción a 30’.
• Rectal. Hay que realizar un enema previo (12 horas antes) e introducir la preparación
muy profundamente para permitir la absorción a través de la vena porta.
o Muestra basal y dos extracción a 20’ y 40’.
Este método es poco práctico por la preparación de las muestras – los mismos problemas
que en la prueba de concentración plasmática de NH3.
Sensibilidad – enfermos
Especificidad – sanos

Propedéutica Clínica Función Hepática
Ácidos biliares
Los ácidos biliares forman parte de la bilis. Se sintetizan a partir del colesterol, y parti-
cipan en la digestión y absorción de grasas. Existe una circulación enterohepática que perite
la reabsorción de más de 95% de los ácidos biliares.
La prueba se realiza administrando comida después de ayuno de 12 horas. Se extrae
sangre a la hora de administrar la comida y dos horas después.
La determinación de ácidos biliares es una analítica muy popular; no requiere la prepa-
ración del paciente y la preparación de la muestra y su procesamiento es muy fácil. Hay que
evitar lipemia y hemólisis, pero no hace falta refrigerar la muestra (estables a temperatura
ambiente).
No discriminan procesos hepatobiliares; si los valores son muy bajos, pueden indicar una
obstrucción.
Función Renal
El riñón se encarga de la excreción o eliminación de agua y solutos mediante diferentes
mecanismos activos y pasivos:
• Filtración glomerular. Mecanismo pasivo.
• Reabsorción tubular. Mecanismo activo o pasivo.
• Secreción tubular. Mecanismo activo.
Pruebas de la Función Glomerular
La filtración glomerular (FG) es directamente proporcional a la masa funcional.
• Urea y creatinina
• Aclaramiento de la creatinina (endógena o exógena)
• Ratio proteína-creatinina en orina
Urea y creatinina
La urea y creatinina son elevadas sólo cuando al menos 75% de las nefronas no funcio-
nan, y no predicen la causa ni la reversibilidad. Tampoco predicen el tipo de azotemia ni si
el proceso es agudo o crónico ni si es reversible o no.
Uremia. Manifestación clínica de azotemia – cuadro urémico (ulceras bucales, halitosis)
Azotemia. Incremento de sustancias nitrogenadas en sangre (urea y creatinina)
Urea
La urea es una sustancia nitrogenada no proteica. Se excreta por filtración, pero se ab-
sorbe a nivel del túbulo renal (40%). Sus niveles plasmáticos se ven afectados por factores
extrarrenales, por lo que es un indicador poco sensible de la función renal – indicador tardío
de daño renal.

Función Hepática
La urea en plasma se modifica por una multitud de factores:
• Dieta hiperproteica
• Situaciones catabólicas. Fiebre, inanición, cáncer, hipertiroidismo.
• Hemorragia intestinal
• Administración de glucocorticoides
• Deshidratación – azotemia prerrenal
• Lamido de heridas sangrantes o epistaxis
Creatinina
La creatinina es una sustancia nitrogenada no proteica que procede de la degradación de
la fosfocreatina muscular; su concentración en plasma depende principalmente de la masa
muscular del animal.
El nivel de excreción de creatinina es relativamente constante, y no se ve afectado por
cambios en la actividad muscular o daño muscular. Es un buen indicador de la función glo-
merular.
La creatinina se excreta por filtración glomerular, y no se reabsorbe. Es un mejor indica-
dor renal que la urea, pero también es un indicador tardío de daño renal.
Aclaramiento de la creatinina
La tasa de aclaramiento (clearance) o eliminación de una sustancia se define como el vo-
lumen de plasma que tendría que ser “aclarado” de una sustancia por el glomérulo en un
tiempo dado, para hacer que esas misma sustancia apareciera en la orina en el mismo pe-
riodo de tiempo.
[ ]
[ ]
volumen de orina/mincantidad eliminada en orina
concentración en plasma .
orina
plasma
Acl
Kg
⋅
= =
⋅
Aclaramiento de creatinina endógena
La prueba de aclaramiento renal está indicada en pacientes con sospecha de enfermedad
renal, pero con creatinina y urea normales.
La principal inconveniente es la recogida do orina durante 24 horas – el paciente debe
estar sondado durante todo el tiempo. Además, el kit comercial detecta en plasma tamben
cromógenos (no creatinina) que no se eliminan vía renal – el aclaramiento está subestimado.
• Pesar el animal
• Cateterizar la vejiga y vaciarla
• Recoger orina de 24 horas

Propedéutica Clínica Función Renal
Pruebas de Función Glomerular
• Al cabo de 24 horas:
o Recogida de sangre.
o Extracción de toda la orina. Se mezcla y se recoge una muestra representativa.
Aclaramiento de creatinina exógena
La determinación del aclaramiento de la creatinina exógena es una prueba más corta, y
elimina la inexactitud causada por los cromógenos que no son creatinina.
• Inyectar creatinina vía subcutánea o endovenosa – 100 mg/Kg.
• A los 40’ cateterizar el animal y vaciar su vejiga.
• Recoger orina durante 20’.
• Al principio y al final de la recogida se toman muestras de sangre.
• Seguimos recogiendo orina de 60’ a 80’.
• Finalizar la prueba con una nueva extracción de sangre.
Al final de la prueba tenemos tres muestras de sangre (40’, 60’ y 80’) y dos muestras de
orina (60’ y 80’).
Ratio proteína-creatinina en orina
Esta prueba está indicada en animales con proteinuria persistente. El ratio debe ser in-
ferior a 1.
Pruebas de Función Tubular
El riñón es el órgano encargado de conservar agua; su capacidad de concentrar la orina
depende de diferentes factores:
• Hipotálamo. Responde a hiperosmolaridad secretando ADH.
• ADH. Induce efecto antidiurético a nivel del túbulo distal de las nefronas.
• Hiperosmolaridad del intersticio medular.
Hay diferentes pruebas para analizar la función tubular:
• Densidad de la orina
• Privación del agua
o Respuesta a ADH exógena
• Excreción fraccional de electrolitos
Prueba de privación de agua
La prueba de privación de agua está indicada en animales con poliuria y polidipsia con
causa por aclarar, en animales con hipostenuria o cuando se sospecha que el animal tiene
diabetes insípida (central o nefrogénica) o polidipsia psicógena.

Función Renal
Pruebas de Función Glomerular
Esta prueba es potencialmente peligrosa – el animal puede sufrir deshidratación grave y
daño renal isquémico; está contraindicada en animales deshidratados con poliuria y en
animales azotémicos.
Protocolo
• Vaciar la vejiga.
• Obtener sangre y orina del animal.
o Hematocrito, proteínas totales y densidad de la orina.
• Determinar el estado de hidratación por la turgencia de la piel.
• Pesar el animal.
• Privación de toda fuente de agua
• Control cada 4 horas de los parámetros citados anteriormente.
• Detener la prueba cuando:
o Pérdida del 5% del peso corporal.
o El animal empieza estar azotémico.
o El animal empieza a producir orina de alta densidad.
o Menos de 10% de cambio de densidad en tres determinaciones consecutivas.
• Normal: 48 horas.
• Anómalo: <12 horas.
Interpretación de la prueba de privación de agua
Si el animal no puede concentrar la orina, hay tres posibles explicaciones:
• Diabetes insípida, central o nefrogénica.
• Hipotonicidad del intersticio medular.
• Interrupción de la prueba antes de que se produzca la concentración renal.
Prueba de respuesta a ADH exógena
La prueba de respuesta a ADH exógena se realiza al finalizar la prueba de privación de
agua; se vacía la vejiga y se administra acetato de desmopresina vía nasal o en el saco con-
juntival.
Sirve para diferenciar diabetes insípida central de nefrogénica – si el animal tiene diabe-
tes insípida central, concentrará la orina; si es nefrogénica, no habrá ningún cambio.

Propedéutica Clínica Función Renal
Pruebas de Función Tubular
Excreción fraccional de electrolitos
La excreción fraccional de electrolitos consta de calcular el ratio entre el aclaramiento de
ciertos electrolitos respecto a la creatinina. No es necesario recoger orina de un tiempo. En
animales normales debe ser mucho inferior a uno. Esta prueba puede servir en:
• Diagnóstico de hiperparatiroidismo primario, caracterizado por excreción fraccional de
fosfato aumentada.
• Diferencia azotemia prerrenal (excreción de sodio disminuida) de azotemia renal (ex-
creción renal de sodio aumentada).
• Control de fármacos nefrotóxicos.
La prueba se realiza en ayunas de 12 horas; normalmente se determina la excreción
fraccional de cloro, sodio, calcio, potasio y fosfato.
Función Pancreática y Digestiva
Función Pancreática Endocrina
Las células de los islotes de Langerhans producen insulina, glucagón, somatostatina y
polipéptidos pancreáticos. Las patologías más frecuentes del páncreas endocrino son la dia-
betes mellitus, el insulinoma y el gastrinoma.
Diabetes mellitus
La diabetes mellitus se caracteriza por la deficiencia absoluta o relativa de insulina, que
conlleva una disminución de la utilización de glucosa. El animal sufre hiperglicemia crónica,
diuresis osmótica, polidipsia y cetoacidosis diabética. Los síntomas que observamos son po-
liuria, polidipsia y polifagia, además de hiperglicemia en ayunas y glucosuria.
Clasificación
• Humana
o Tipo I. Ausencia de secreción de insulina.
o Tipo II. Resistencia a la insulina o células β disfuncionales
• Veterinaria
o DMID – diabetes mellitus insulina dependiente. Casi el 100% de los casos en pe-
rros.
o DMNID – diabetes mellitus no insulina dependiente; puede controlarse por la dieta
e hipoglucemiantes orales. Más del 30% de los casos en gatos.
Insulina sérica
La determinación de insulina sérica sirve para el diagnóstico de insulinoma. Se coge sue-
ro en ayunas y se determina el contenido en insulina, y la glicemia.

• Normal – 5-20 mUI/l.
• Insulinoma - >20 mUI/l y glucosa <60 mg/dl.
• Insulina normal pero en valores altos y glicemia baja - ¿insulinoma?
Curvas de glucosa
La curva de glucosa es una representación gráfica de la glucosa en sangre en relación al
tiempo. Forma parte del diagnóstico inicial de la diabetes mellitus y en su control en los
cambios del tratamiento (tipo, dosis y frecuencia).
Cuando se realiza esta prueba, es importante mantener la rutina del animal minimi-
zando el estrés; por eso, el dueño del animal administra la insulina y también la comida.
Después de la administración se extrae sangre del animal cada 1-2 horas durante 12-24
horas en función del protocolo de tratamiento (24 horas si se le administra insulina una vez
al día, 12 horas si recibe insulina 2 veces al día).
Según los parámetros que obtenemos de la representación gráfica de la glicemia, podemos
determinar las pautas del tratamiento:
• El tiempo hasta que se produce el efecto. Tipo de insulina a utilizar.
• Tiempo hasta alcanzar la concentración mínima de glucosa. Dosis.
• Duración del efecto. Frecuencia de administración necesaria.
Ventajas e inconvenientes
• Ventajas
o Valora la glucosa en respuesta a la administración de insulina y tomar decisiones
sobre dosis, frecuencia y tipo de insulina.
• Inconvenientes.
o Diferente según la capacidad del animal de adaptarse al estrés ante repetidas to-
mas de sangre.
o Variaciones en la curva según el día o el mes.
Proteína glicosiladas
Las proteínas glicosiladas permiten valorar el nivel medio de glucosa en el animal du-
rante la vida media de las proteínas; son indicadores del control glicémico.
• Fructosamina sérica. Vida media de 3 semanas.
• Hemoglobina glicosilada. Vida media de 3-4 meses.
Fructosamina sérica
La fructosamina sérica es el resultado de la reacción irreversible no enzimática entre la
glucosa y la albúmina. Es útil para el control de la glicemia en perros y gatos diabéticos, va-
lorando la glicemia 10-15 días previos al control.

Propedéutica Clínica Función Pancreática y Digestiva
Hemoglobina glicosilada
La hemoglobina glicosilada es el resultado de la unión enzimática irreversible entre la
glucosa y la hemoglobina. Refleja la concentración media de glucosa durante la vida media
de los eritrocitos – 3-4 meses. Pocos laboratorios dan ensayos validados, y tiene poco uso clí-
nico por la vida media larga (poco preciso). Puede resultar útil en el control de animales que
llegan cada 3-6 meses a la consulta.
Función Pancreática Exocrina
El páncreas exocrino participa en procesos digestivos, que son muy frecuentes en pequeños
animales. El tracto digestivo es inaccesible para el examen detallado, por lo que es frecuente
el empleo de técnicas complementarias – radiografías, ecografías, fibroendoscopia etc.
Análisis de heces
• Aspecto físico
• Sangre
o Cantidad
o Calidad
o Sangre oculta
• Cultivo bacteriano
o Salmonella, Campylobacter, Yersinia, Clostridium, E. coli enteropatógeno
• Análisis virológico – parvovirus
• Parásitos
Residuos de comida no digeridos – malabsorción
• Grasa – heces + sudán III
o Aumentado en insuficiencia pancreática exocrina y deficiencia de ácidos biliares.
• Almidón – heces + Lugo o tintura yodo 2%
• Fibras musculares – diff-quick.
Examen del vómito
• Frecuencia
• Momento
• Características: bilis, blanco-viscoso, sangre, no productivo

Enzimas pancreáticas
Amilasa
La amilasa se produce en las células de los acinos pancreáticos; no es especifica – tiene
actividad en el hígado, intestino y glándula salival. Es poco específica. Se elimina vía renal
Elevaciones en amilasa
• Pancreatitis aguda
• Afecciones intestinales
• Disminución del filtrado glomerular
• Síntesis inducida por estrógenos, corticoides, furosemida.
Lipasa
La lipasa se produce por las células de los acinos pancreáticas. Al igual que la amilasa,
es una enzima no específica – actividad lipasa en el intestino y mucosa gástrica. Se elimina
vía renal. Es poco específica. Se elimina vía renal.
Elevaciones en lipasa
• Pancreatitis
• Gastritis crónica
• Neoplasia gástrica
• Disminución del filtrado glomerular
Inmunoreactividad ligada a tripsina (ILT)
Esta prueba detecta tripsinógneo y tripsina sintetizados exclusivamente por el páncreas -
no se afecta por la administración de extractos pancreáticos orales. Es una prueba especie-
específica muy sensible y especifica en la detección de insuficiencia pancreática exocrina (va-
lores muy inferiores a los normales).
La prueba se realiza después de 12 horas de ayunas. Se toma una muestra única de sue-
ro, que es estable para el envío postal.
Actividad proteolítica fecal
DRE en placas con un gel de agar que contiene caseína; se produce digestión de los sus-
tratos proteicos. En los animales con insuficiencia pancreática exocrina tiene actividad baja.
Hay que recoger muestras de tres días diferentes.
Pruebas de Función Gastrointestinal
• Ácido fólico. Vitamina hidrosoluble que se absorbe en la parte proximal del intestino
delgado.
• Cianocobalamina. Vitamina hidrosoluble que se absorbe en la parte distal del intes-
tino delgado.

• Determinación del hidrógeno exhalado. Se basa en cuantificar el hidrógeno producido
por la fermentación bacteriana de los residuos no absorbidos por el animal.
o Ayunas de una noche (12h)
o Recoger muestra de aire en reposo
o Administrar un sustrato vía oral
o Recogida de muestras cada 15-30 minutos durante 4 horas en jeringa de de 50 ml.
Exploración de Animales Exóticos
La definición animales exóticos engloba los pequeños mamíferos (conejos, pequeños roe-
dores y hurones), las aves, los reptiles y otros (peces e invertebrados). En los animales exóti-
cos el 85% de las patologías es debido a condiciones ambientales y/o alimentarias inadecua-
das.
Al igual que en los animales domésticos, la historia clínica es muy importante.
• Especie. En muchos casos, es muy difícil definir la especie del animal exótico, ya que
hay especies que se parecen mucho entre sí.
• Sexo. Muy difícil de determinar en aves.
• Edad. Difícil de determinar en aves y reptiles.
• Peso. Indicador muy importante de la prognosis.
• Particularidades del individuo.
Manejo y Sujeción
Mamíferos
• Conejo. Su esqueleto es poco desarrollado (8% del peso). Es importante no provocarle
daños óseos. Le sujetamos por la piel de la región cervical dorsal y por las extremidades
posteriores; si es posible, le tapamos los ojos ya que ayuda a calmar el animal.
• Cobayas y hámsteres. Sujetar el cuello con una mano y las extremidades posteriores con
otra, o entre las dos manos formando una copa.
• Ratas. Sujetar la cola por la base con na mano y con la otra sujetar el cuello.
• Jerbos y ratones. Coger por la base de la cola y sujetar la piel del cuello y la cola.
• Hurón. Es difícil sujetar este animal porque es muy ágil; le inmovilizamos la cabeza
sujetando la piel por la región cervical o torácica.
Aves
Psitácidas y paseriformes. Se defienden mediante el pico y las patas. Los paseriformes
son animales muy pequeños, por lo que debemos tener la precaución de no lesionarles ni pre-
sionarles la región pectoral provocando asfixia.

• Pequeños. Sujetar la cabeza con los dedos índice y pulgar y el cuerpo con el resto de to-
dos los dedos y mano.
• Medianas grandes. Sujetar la cabeza con una toalla; envolver el animal en la toalla,
retirar el animal de la jaula e inmovilizar las patas y alas.
Reptiles
• Tortugas. Algunas especies acuáticas pueden ser agresivas. Nunca pondremos el animal
en decúbito esternal ni le giramos bruscamente (tiene el pulmón en posición dorsal y si
le ponemos en decúbito esternal se empeora la disnea).
• Serpientes. La mayoría de las especies criadas no son venenosas, pero pueden morder
causando daño. Para evitar una mordedura, coger la cabeza por la base y el resto del
cuerpo; a veces es útil utilizar un tubo de plástico o metacrilato.
Anamnesis
• Origen del animal. ¿De dónde y cuándo? Si ha llegado hace poco de una tienda de
animales, es probable que animal esté sufriendo un proceso infeccioso o parasitario; si
el animal ya está mucho tiempo en su casa, es probable que tenga algún proceso rela-
cionado con el manejo de alimentación.
• Alojamiento. Jaula o terrario. Muy importante ver si el alojamiento y las condiciones
ambientales son adecuados para el tamaño y la especie del animal.
o Comederos y bebederos.
o Sustrato y su limpieza
o Iluminación, ventilación, temperatura y humedad.
o Aves. ¿vuelan libres por casa?
o Reptiles. Hibernación.
o Disponibilidad de agua para bañarse. Los reptiles necesitan agua para bañarse fa-
cilitando la muda.
Reptiles acuáticos. Calidad del agua.
• Alimentación y bebida.
o Composición del alimento. ¿es adecuada para la especie?
o Cantidad suministrada y consumida
o Agua. Siempre disponible.
• Heces y deyecciones. Las deyecciones contienen las heces, uratos y orina. Para observar-
los le pedimos al propietario que traiga el animal en su jaula y que ponga un material
no absorbente en la jaula, de esta forma facilitando la observación de las deyecciones
no alteradas.
o Consistencia.

o Color. Las heces son negras, y los uratos son blancos. La orina es transparente.
o Frecuencia. Si es aumentada puede ser diarrea.
• Muda en aves y reptiles
• Alteraciones del comportamiento
• Otros animales de la misma o de otra especie
• Enfermedades
Exploración General
Mamíferos
• Actitud, comportamiento, estado de nutrición e hidratación, temperatura y mucosas
igual que en perro y gato.
• Pulso. Imposible tomar porque la frecuencia cardiaca normal es muy elevada.
Aves
• Consideraciones previas:
o Traer al ave en la jaula
o Vaciar el bebedero
o Poner un plástico en el suelo de la jaula
o Tapar la jaula para calmar el animal
• Inspección del ave a distancia.
o Actitud y comportamiento
o Respiración
o Ave enferma – adormecida y “embolada”.
• Inspección del a jaula.
o Comprobar datos de la anamnesis
o Observar el alimento
o Observar las deyecciones
• Estado de nutrición. Palpación de la musculatura pectoral.
• Estado de hidratación
o Elasticidad de la piel
o Estado de las mucosas.
o Hundimiento del globo ocular

• Constante clínicas.
o Frecuencia respiratoria – inspección en la jaula
o Pulso
o Temperatura rectal
• Mucosas. Bucal, conjuntival y de la cloaca. Se utiliza un clip, una pinza o dos trozos
de gasa para abrir la boca (en función del tamaño del animal).
Reptiles
• Inspección del animal
• Estado de nutrición
o Inspección y palpación
o Peso
o Medición
• Estado de hidratación.
o Elasticidad de la piel. La piel es menos elástica; evaluamos la piel más elástica, por
ejemplo de la zona cervical (tortugas).
o Mucosas
o Globo ocular
• Constantes clínicas. Utilidad limitada ya que los reptiles pueden tener constantes muy
reducidas.
• Mucosas. Bucal, conjuntival y de la cloaca.

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