1. UNIVERSIDAD NACIONAL DEL SANTA
FACULTAD DE INGENIERIA
E.A.P AGROINDUSTRIAL
PERMEABILIDAD CELULAR.
CURSO:
* Biología general.
DOCENTE:
* Biólogo Mg. Juan Carhuapoma Garay.
CICLO:
*I
GRUPO:
* “A”
INTEGRANTES:
Vega Viera Jhonas Abner
Jair Aranda Tarazona
NUEVO CHIMBOTE – PERU
2012

2. INTRODUCCION:
La célula como organismo vivo requiere establecer continuo contacto con
el medio exterior que la rodea, o bien eliminando las sustancias de
desecho; o permitiendo el ingreso de otras a través de las membranas. El
movimiento de moléculas disueltas en los fluidos y de agua ocurre tanto
por transporte pasivo como por el que requiere energía.
La osmosis, como mecanismo de transporte por las membranas, permite
la difusión del agua a través de una membrana con permeabilidad
diferencial, esto es, una membrana que es más permeable al agua que a
los solutos disueltos (Audesirk and Audesirk, 1996).
La difusión es el movimiento neto de moléculas desde un gradiente de
alta concentración a otro de baja concentración (Audesirk and Audesirk,
(1996), Salomón, et al 2007).
Abstract.
Sometimos diversos cilindros de remolacha (Beta vulgaris L.) a distintas
condiciones con el fin de estudiar los efectos de varios tratamientos
químicos y físicos sobre la permeabilidad de las membranas celulares.
Por otra parte utilizamos cilindros de patata (Solanumtuberosum L.)
incubados previamente en una solución de sacarosa para mediante el
método del Q10 demostrar que el transporte del agua a través de las
membranas es de tipo pasivo debido al gradiente de potencial hídrico, es
decir, un mecanismo osmótico.
Los resultados obtenidos permiten estimar un aumento en la
permeabilidad de las membranas tras someterlas a varios tratamientos
físicos y químicos.
OBJETIVOS:
Conocer la naturaleza del intercambio de sustancias de la célula con su
medio externo.
Observar el efecto de la concentración del medio sobre las células
vegetales y animales.

3. Examinar algunos fenómenos de difusión de moléculas dentro de un
fluido.
Valorar la importancia de la concentración de sustancias en el medio
externo de las células animales como factor desestabilizante en su
correcto funcionamiento.
Aplicar el método científico en la realización de una experiencia de
laboratorio.
MARCO TEORICO:
Como bien lo señala Audesirk and Audesirk (1996), la osmosis no es mas
que la difusión de agua por la membrana; explica los mismos autores que,
el agua, al igual que cualquier otra molécula, se mueve mediante difusión
de regiones de alta concentración de agua a las de baja concentración
(González y Spinel, 2004).
Para Salomón, et al (2007) las células deben conservar un ambiente
interno adecuado a fin de llevar a cabo las muchas reacciones químicas
necesaria para sostener la vida. La membrana plasmática que rodea a
todas a las células las separa físicamente del ambiente externo y las
define como entidad separada, además de ayudar a mantener un
ambiente interno favorable para la vida al regular el paso de materiales
hacia adentro y afuera de la célula (Starr and Taggart, 2007).
MATERIALES:
Proporcionado por el laboratorio:
o 3 mecheros
o Laminas preparadas de cortes histológicos de organeros
citoplasmáticos: mitocondrias, complejo de Golgi, vellosidades
intestinales, etc.
o Laminas preparadas de cromosomas de raíz de cebolla.
o 12 láminas cubreobjetos.
o 12 láminas portaobjetos.
o Azul de metileno en frasco con gotero.
o 10ml de alcohol yodado.
o Agua destilada.
Proporcionado por el alumno:

4. o 1 caja de palitos de mondadientes.
o Franela, 1 bisturí y tres navajas nuevas.
o 3 lancetas hematológicas.
o Sangre de lagartija
o 1 cebolla pequeña.
o 1 cebolla con raíz en crecimiento (observar el procedimiento su
preparación previa).
o 1 hoja fresca de puerro o elodea.
o 1 un tomate pequeño
MÉTODOS:
Se utilizará la experimentación directa, acompañada de la observación y la
deducción.

5. PROCEDIMIENTO
PERMEABILIDAD EN CELULAS VEGETALES:
 Cortar por la mitad longitudinalmente una cebolla y aislar el tercer catafilo a
partir del exterior
 Extraer fragmentos de aproximadamente 1cx2cm y aislar la epidermis de
cada una de ellas
 Luego pasamos a colocar los fragmento en tres laminillas
 Luego agregar 2 gotas de agua destilada y 1-2 gotas de NaClcon sus
respectivas purezas indicadas
“OBSERVARLOS EN EL MICROSCOPIO”
MUESTRAS DE CELULAS VEGATAL OBSERVADAS EN EL
MICROSOCPIO EN SOLUCIONES DIFERENTES DE NaCl

6. ISOTONICO
HIPOTONCIO
HIPERTONICO
.PERMEABILIDAD EN CELULAS
EN CELULAS ANIMALES
 Desinfectar la yema anular con
algodón empapado en alcohol, presionar y descartar la primera gota de
sangre
 Luego dejar caer gotas de sangre en las laminilla

7. “OBSERVARLOS EN EL MICROSCOPIO”
MESTRAS SANGUINEAS OBSERVADAS EN EL MICROSOCPIO EN
SOLUCIONES DISTINAS DE NaCl

8. ISOTONICO
HIPOTONICO
HIPERTONICO
OBSERVACION DE ORGANULOS
 Utilizando un escalpelo cortar en dos mitades un tomate
 Obtener con ayuda de unas pinzas una pulpa de aproximadamente 2mm de
grosor
 Identificar los distintos orgánulos

9. vacuola
cromoplasto
nucleo
OBSERVACION DE MITOCONCRIAS EN CELULAS RENALES
 Colocar una lamina conteniendo el corte histologico de cellas renales e
identificar con el objetivo de 10x la célula
 Cambia el objetivo a mayor aumento y ubica en el citoplasma unas formas
granulares de color rosado o azul violeta pertenecientes a las mitocondrias
Observado al microscopio
OBSERVACION DE
FIBRILLAS EN LA
MEDULA ESPINAL
 Coloca una lámina preparada con un corte histológico de medula espinal y
con objetivo de 10x e identifcar las células nerviosas
 Cambiar el objetivo a mayor aumento y determinar unos filamentos que se
entrecruzan “ neurofibrillas “

10. DISCUSIÓN:
Ko et al. (2003) [121] observaron que las micropartículas con concentraciones altas de
quito sano dieron lugar a matrices más densas, con menor capacidad de hinchamiento,
menor velocidad de difusión y, por tanto, menor liberación de fármaco.

11. Desai y Park (2005) [117] describieron una liberación más lenta del fármaco al
aumentar la concentración del polímero. La viscosidad de la solución de quitosano
utilizada para la formación de las microesferas es un factor que afecta a la velocidad
de liberación. Al aumentar la concentración de quitosano y, con ello, la viscosidad de la
solución, el fármaco queda más atrapado en la matriz polimérica y la velocidad de
liberación es menor.
Conclusiones:
1. La capacidad que tiene la célula de ser semipermeable posibilita la buena
interacción extracelular y una adecuada respuesta a ciertos estímulos
externos de los cuales depende la célula para su subsistencia.
2. Es de vital importancia conocer el mecanismo de osmosis celular y la
concentración osmótica de ciertas sustancias químicas, pues con ello
podremos establecer rangos de isotonicidad permisibles en el organismo y
una buena distribución de solutos en el mismo.
3. Un parámetro para medir el grado de difusión de las moléculas sería el
tener en cuenta su peso molecular, siendo así, un compuesto de menor peso
molecular, penetrará más fácil las membranas.
4. El suero fisiológico (NaCl al 0.9%) no ocasiona la turgencia de las células ya
que en el interior de las células se mantiene prácticamente las mismas
concentraciones, es por eso que en la técnica del cultivo celular, este suero
es fundamental para su desarrollo, claro que además se emplean
adicionalmente ciertos nutrimentos
Bibliografía:
o Jeyendran, R. S., Van der Ven, H. H., Perez-Pelaez, M., Carbo,. B. G. and
Zaneveid, L. J. D., J. Reprod. Fértil, 1984.
o http://www.ucla.edu.ve/dmedicin/DEPARTAMENTOS/fisiologia/OSMO
SIS.pdf
o http://www.buenastareas.com/materias/permeabilidad-celular-
laboratorio/0