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Revista CENIC Ciencias Biológicas, Vol. 43, No. 3, septiembre-diciembre, 2012.
1
Conservación de cepas microbianas por el método
de liofilización para el control microbiológico en
Laboratorios Liorad
Recibido: 22 de marzo de 2012.				 Aceptado: 1 de septiembre de 2012.
Palabras clave: liofilización, colecciones de cultivos, sustancias lioprotectoras, control microbiológico.
Key words: freeze drying, collections of cultivation, lyoprotector substances, microbiological control.
RESUMEN. La liofilización es uno de los métodos más empleados para la conservación de microorganismos debido a sus
numerosas ventajas, entre la que resalta tiempo de supervivencia prolongado. La selección de los aditivos que permitan
lograr tanto una buena apariencia como una estabilidad prolongada del material liofilizado es uno de los aspectos más
importantes a tener en cuenta al emplear este método. El objetivo del presente trabajo fue evaluar los resultados de la
conservación de las cepas microbianas Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa
por el método de liofilización durante un periodo de cinco años. Para el crecimiento de las cepas se utilizó el medio de
cultivo Caldo Triptona Soya y la leche descremada y glicerol al 20 % como sustancias lioprotectoras, se evaluó viabilidad,
pureza e identidad de cada una de estas cepas. Las características propias de las especies estudiadas se mantuvieron
inalterables con un elevado grado de pureza. Las cepas en leche descremada al 20 %., durante el tiempo evaluado con-
servaron la viabilidad en niveles adecuados. El glicerol al 20 % resultó una buena sustancia lioprotectora para las cepas
Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Bacillus subtilis al mantener la estabilidad de la viabilidad. No así para la cepa
Pseudomonas aeruginosa que evidenció una disminución de supervivencia a los tres años. La conservación por liofilización
es un método de gran utilidad en el trabajo de las colecciones de cultivos que se emplean para el control microbiológico.
ABSTRACT. Freeze drying is one of the most popular methods used for the preservation of microorganisms. One of the
many advantages of this method is the prolonged survival time. The selection of additives to achieve a good appearance
as a long-term stability of the freeze dried material is one of the most important aspects to take into the consideration
when you are using this method. The objective of this job was to evaluate the results of the conservation of the microbial
strains Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa by drying method for a
period of five years. For the growth of the strains it was used the tryptone soya broth, skim milk and 20 % glycerol as
lyoprotector substances. Viability, purity and identity were evaluated of each of these strains. The characteristics of these
species remained unchanged with a high degree of purity. The strains in skim milk to 20 %, during this time of observa-
tion, retained viability at adequate levels. The glycerol at 20 % was a good lyoprotector substance for the Staphylococcus
aureus, Escherichia coli and Bacillus subtilis strains to maintain the stability of the viability; however a decrease to the
three years was showed for the survival of the Pseudomonas aeruginosa. The conservation by freeze-drying is a method
of great utility in the work of the collections of cultivation employed to microbiological control.
INTRODUCCION
Los microorganismos representan un papel esencial para el mantenimiento y funcionamiento de los
ecosistemas globales y como fuente de nuevos recursos para el desarrollo de la medicina, la industria, la
agricultura y la biotecnología.1
Por eso es necesario conservar toda esta fuente microbiana y esto se ga-
rantiza mediante las colecciones de cultivos.2-6
En la última década, se ha visto un marcado aumento en la
concientización del valor de las colecciones de cultivos. Actualmente, existen en el mundo alrededor de 488
colecciones de 65 países registradas en el Centro de Datos Mundial de Microorganismos de Japón. Además,
se han establecido organizaciones mundiales, regionales y nacionales.7,8
El acelerado desarrollo en Cuba de la industria farmacéutica y biotecnológica, así como el potencial uso
de los microorganismos, obligan cada vez más a promover actividades de aseguramiento de la calidad para
su conservación, de manera que puedan ser utilizados en diversos ensayos analíticos en los laboratorios de
control microbiológico.9-11
La necesidad de mantener y disponer de cultivos de calidad impuso la introducción de métodos de
conservación de microorganismos que reducen al mínimo la posibilidad de contaminación y garantizan al
menos la supervivencia del 70 % de las células por un periodo determinado de tiempo.12-14
La liofilización
Nancy Burguet-Lago, Nelson Sierra-Prado, *Lázaro C. Brito-Godoy
Laboratorios Liorad, Avenida 27 A no. 26402 entre calles 264 y 268, Reparto San Agustín, La Lisa, La Habana. Cuba. nburguet@
liorad.quimefa.cu, *Hospital Luisa C. de Gandulfo, Buenos Aires, Argentina.
Revista CENIC Ciencias Biológicas, Vol. 43, No. 3, septiembre-diciembre, 2012.
2
es el método de elección debido a sus numerosas ventajas, entre las que se puede resaltar la posibilidad
de minimizar al máximo el riesgo de cambio genético en las células y las mantienen viables por 10 años
o más.15-19
Además es recomendable por su comodidad en almacenamiento y transporte de las cepas, pues
una vez conseguidos los liófilos pueden almacenarse a una temperatura ambiente de 18 a 20 ºC o bien de
4 a 6 ºC.20-24
El laboratorio de control microbiológico de Laboratorios Liorad disponía de una colección de cepas pro-
cedentes de subcultivos de cepas de referencia de la American Type Culture Collection (ATCC).25
El método
de conservación empleado era la congelación a – 70 0
C, metodología que no resulta la más conveniente para
la conservación por largos periodos de tiempo, por tal motivo surgió la necesidad de evaluar otra estrategia
de conservación para estos microorganismos. La metodología propuesta fue emplear el Caldo Triptona Soy
(CTS) como medio de crecimiento, la leche descremada y el glicerol al 20% (sustancias lioprotectoras), la
liofilización como método de conservación y ensayos de calidad: viabilidad, pureza e identidad.26
El objetivo del presente trabajo consistió en evaluar los resultados de la conservación de las cepas
microbianas Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa por el
método de liofilización empleando dos lioprotectores durante un periodo de cinco años.
MATERIALES Y MÉTODOS
Acervo Microbiano
Formaron parte de este estudio cuatro cepas bacterianas del lote Maestro, el cual fue elaborado a partir
de un subcultivo primario de cepas ATCC. Las que se encuentran depositadas en la colección de cultivos
microbianos de Liorad: Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa,
todas conservadas por el método de liofilización durante un período de cinco años.
Recuperación de los microorganismos
Para la obtención del lote Maestro, se restituyó con 1 mL de CTS, cada una de las ámpulas liofilizadas
originales (procedentes de la ATCC). Para comprobar la pureza, se tomó 0,1 mL de las suspensiones bacte-
rianas y se inoculó en una placa de Agar Triptona Soya (TSA), la cual fue incubada a 35 o
C ± 2 o
C por 24 h.
Se observaron las colonias características para cada uno de los microorganismos y se comprobó su carácter
tintorial mediante tinción de Gram.17,24
Conservación de los microorganismos
La conservación de las cepas de microorganismos que forman el lote Maestro se realizó por el método de
liofilización. Se empleó como sustancias lioprotectoras: leche descremada y glicerol al 20 %.18,19
Preparación de la suspensión
Se depositó 20 µL de la suspensión de microorganismo a liofilizar, en una placa de TSA, se diseminó en
forma de césped e incubó de 18 a 24 h a (35 ± 2) °C, se colectó un cuarto del crecimiento del cultivo con un
hisopo estéril, e inocularon erlenmeyers que contenían 100 mL de medio CTS, se colocaron en zaranda a 37
°C y 170 r/min durante 2 h. Las células fueron colectadas por centrifugación a 4 °C durante 30 min a 10 000 r/
min. La biomasa se resuspendió en 50 mL de las diferentes disoluciones lioprotectoras (leche descremada y
glicerol 20 %), y se homogeneizó completamente. Se tomaron 100 μL de cada suspensión para determinar el
recuento de Unidades Formadoras de Colonias por mililitro (UFC/mL) antes de la liofilización. Se distribuyó 1
mL en bulbos estériles y se colocó el tapón sobre la boca del bulbo y este sobre la bandeja de la liofilizadora.17,24
Condiciones de liofilización
La liofilización se realizó en un equipo liofilizador de laboratorio marca Edwars modelo Modulyo. El
proceso se inició a una temperatura de de congelación – 70 o
C, de condensación – 50 o
C y de secado 35 - 37
o
C. La presión de trabajo en la cámara fue de 10 Pa. Una vez concluido el proceso, los bulbos se sellaron al
vacío y fueron identificados con una etiqueta con los datos siguientes: género y especie, código de la cepa,
número de lote y fecha de liofilización. Posteriormente se almacenaron entre 2 y 8˚C para garantizar su
estabilidad a largo plazo.
Eficacia del método de conservación
Se restituyeron dos bulbos de las cepas en ensayo a su volumen de liofilización con 2 mL de CTS, se mez-
claron de forma homogénea para obtener una muestra representativa y se determinó la pureza, viabilidad
y se comprobaron las características bioquímicas.17,24,26
Pureza
Con el fin de observar la pureza bacteriana, se transfirió el contenido de los bulbos de cada cepa a un tubo
con 20 mL de CTS. Los tubos fueron colocados en zaranda con agitación durante 2 h a una temperatura de
35 o
C ± 2 o
C. Transcurrido este tiempo, se procedió de igual forma que lo descrito para la verificación de la
pureza de las cepas provenientes de la ATCC.
Revista CENIC Ciencias Biológicas, Vol. 43, No. 3, septiembre-diciembre, 2012.
3
Viabilidad
Después de la liofilización, se realizó el recuento de UFC/mL por diluciones seriadas hasta 10-8
y siembra
en superficie en TSA. Cada dilución se sembró por triplicado. Se consideró satisfactoria una concentración
celular igual o superior a 105
UFC/mL, valor establecido en las especificaciones de calidad del lote Maestro.
Comprobación de las características bioquímicas
Se llevó a cabo a través del empleo de de una prueba de diagnóstico e identificación Liofilchem de Italia
(sistema colorimétrico). Se procedió a inocular 0,2 mL de la suspensión bacteriana en los pocillos que contenían
los substratos bioquímicos desecados. La interpretación de los resultados se realizó mediante el viraje de co-
lor de los distintos pocillos del sistema, a los cuales se les dió puntuación de acuerdo con un código numérico
establecido por el fabricante en forma tabulada para cada una de las pruebas, lo que permitió la identificación.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
La recuperación de los microorganismos evidenció que para las cepas estudiadas se seleccionó un buen método
de conservación (la liofilización).19,22
Las sustancias lioprotectoras (leche descremada y glicerol al 20 %) en ambos
casos permitieron lograr una buena apariencia de la pastilla liofilizada y rehidratación instantánea. A pesar que de
manera general está más extendido el empleo de mezclas de lioprotectores porque en la mayoría de los casos, se
obtienen mejores resultados que cuando se emplean las sustancias puras. No obstante, en este trabajo se obtuvie-
ron buenas características durante el proceso de lioflización. Las disoluciones lioprotectoras son sustancias que se
añaden con el objetivo de mejorar las características del producto durante el proceso de lioflización o de almacena-
miento de ambos, aunque en la mayoría de los casos, los mecanismos del efecto protector son poco conocidos.21,23
La observación microscópica de los cultivos demostró la presencia, de cultivos puros, en cada una de las especies
estudiadas. Las colonias observadas coincidieron con la morfología típica de las cepas de referencia Staphylococcus
aureus ATCC 25923, Bacillus subtilis ATCC 6633, Escherichia coli ATCC 25922 y Pseudomonas aeruginosa ATCC
9027 morfología reportada en los certificados de calidad de estas cepas. La valoración de que los microorganismos
estén biológicamente puros es un aspecto crítico en la caracterización microbiológica, por lo que deben realizarse
ensayos apropiados para la detección de contaminantes.9
El estudio de viabilidad de las cepas bacterianas de referencia liofilizadas con leche descremada y glicerol al
20 % por un periodo de cinco años.se muestran en las tablas 1 y 2.Para un buen recobrado de la viabilidad después
de la liofilización, el agente lioprotector debe adoptar el papel del agua y restablecer los puentes de hidrógeno con
las membranas.15
De este modo, para un microorganismo dado existen solo uno o dos lioprotectores adecuados.22
Tabla 1. Recuentos de UFC/mL de recobrado de las cepas bacterianas de referencia conservadas en leche descremada al
20 %, antes y después de la liofilización en los diferentes tiempos evaluados.
Cepas bacterianas
Antes de
Liofilizar 24 h 1.er
año 2.o
año 3.er
año 4.o
año 5.o
año
Staphylococcus aureus 2,6 . 109
3,5 . 108
1,2 . 108
1,4 . 108
1,1 . 107
1,0 . 107
3,5 . 106
Escherichia coli 3,8 . 108
6,4 . 10
8
1,0 . 10
8
1,0 . 10
8
1,0 . 10
7
1,2 . 106
1,7 . 105
Bacillus subtilis 2,5 . 108
1,4 . 108
1,2 . 108
1,9 . 108
1,1 . 107
1,0 . 107
1,6 . 106
Pseudomonas aeruginosa 2,3 . 109
1,1 . 108
1,0 . 108
1,6 . 108
1,1 . 107
1,9 . 106
1,0 . 106
La viabilidad se expresa en UFC/mL.
El efecto protector de la leche descremada fue observado en las cepas Staphylococcus aureus, Bacillus
subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa al obtener resultados de viabilidad después de la liofi-
lización durante los cinco años de estudio por encima de 106
UFC/mL, valores que sobrepasaron el criterio
de evaluación establecido en las especificaciones de calidad del laboratorio (niveles de viabilidad igual o
mayor al orden de 105
UFC/mL) por lo que se consideró que el procedimiento evaluado, mantuvo la viabili-
dad de los cultivos liofilizados (Tabla 1). Se recomienda como sustancia lioprotectora de excelencia la leche
descremada (sustancia proteica) por sus buenos resultados en la preservación de la viabilidad en el proceso
de liofilización.21,23
Tabla 2. Recuentos de UFC/mL de recobrado de las cepas bacterianas de referencia conservadas en glicerol al 20
%, antes y después de la liofilización en los diferentes tiempos evaluados.
Cepas bacterianas.
Antes de
Liofilizar 24 h 1.er
año 2.o
año 3.er
año 4.o
año 5.o
año
Staphylococcus aureus 2,6 . 10 9
6,6 . 108
3,0 . 107
3,0 . 107
1,0 . 107
3,5 . 106
2,3 . 106
Escherichia coli 2,0 . 10
9
6,5 . 10
8
3,8 . 10
8
2,9 . 10
7
1,9 . 10
7
1,1 . 10
7
1,9 . 10
6
Bacillus subtilis 2,5 . 108
1,6 . 108
1,6 . 108
1,0 . 107
1,3 . 107
1,2 . 107
1,0 . 106
Pseudomonas aeruginosa 2,3 . 109
1,1 . 108
2,0 . 107
2,3 . 106
3,8 . 105
--- ---
La viabilidad se expresa en UFC/mL.
Revista CENIC Ciencias Biológicas, Vol. 43, No. 3, septiembre-diciembre, 2012.
4
Los factores que influyen en la supervivencia de los microorganismos a la liofilización son muy com-
plejos y poco entendidos. La adición de polioles (glicerol) previene el daño del material liofilizado.20,23
Los resultados de este trabajo confirman que en la variante glicerol 20 % la viabilidad en las cepas Sta-
phylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli no se afectó significativamente durante el tiempo
objeto de estudio. Sin embargo, no se obtuvieron los mejores resultados con el empleo de esta sustancia
lioprotectora con la cepa de Pseudomonas aeruginosa que evidenció una disminución de viabilidad a los
tres años de depositadas en la colección, por lo que este lioprotector resulta inadecuado para este micro-
organismo (Tabla 2).
Los ensayos de identidad de todas las cepas mostraron que el comportamiento de las características
culturales, morfológico-tintoriales y fisiológico-bioquímicas ensayadas se mantuvieron de acuerdo con la des-
cripción de las especies.26
CONCLUSIONES
Al emplear la liofilización como método de conservación se comprobó que se mantienen inalteradas las
características propias de las especies microbianas estudiadas, con un alto grado de pureza. De las sustancias
lioprotectoras ensayadas durante un periodo de cinco años, la leche descremada al 20 % contribuye a
conservar las cepas Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa al
obtener resultados de viabilidad con valores que sobrepasaron el criterio de evaluación establecido en las
especificaciones de calidad del laboratorio. El glicerol al 20 % resultó una buena sustancia lioprotectora para las
cepas Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Bacillus subtilis, no así para la cepa Pseudomonas aeruginosa
cuya viabilidad disminuye en su presencia a partir de los tres años de depositadas en la colección.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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  • 1. Revista CENIC Ciencias Biológicas, Vol. 43, No. 3, septiembre-diciembre, 2012. 1 Conservación de cepas microbianas por el método de liofilización para el control microbiológico en Laboratorios Liorad Recibido: 22 de marzo de 2012. Aceptado: 1 de septiembre de 2012. Palabras clave: liofilización, colecciones de cultivos, sustancias lioprotectoras, control microbiológico. Key words: freeze drying, collections of cultivation, lyoprotector substances, microbiological control. RESUMEN. La liofilización es uno de los métodos más empleados para la conservación de microorganismos debido a sus numerosas ventajas, entre la que resalta tiempo de supervivencia prolongado. La selección de los aditivos que permitan lograr tanto una buena apariencia como una estabilidad prolongada del material liofilizado es uno de los aspectos más importantes a tener en cuenta al emplear este método. El objetivo del presente trabajo fue evaluar los resultados de la conservación de las cepas microbianas Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa por el método de liofilización durante un periodo de cinco años. Para el crecimiento de las cepas se utilizó el medio de cultivo Caldo Triptona Soya y la leche descremada y glicerol al 20 % como sustancias lioprotectoras, se evaluó viabilidad, pureza e identidad de cada una de estas cepas. Las características propias de las especies estudiadas se mantuvieron inalterables con un elevado grado de pureza. Las cepas en leche descremada al 20 %., durante el tiempo evaluado con- servaron la viabilidad en niveles adecuados. El glicerol al 20 % resultó una buena sustancia lioprotectora para las cepas Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Bacillus subtilis al mantener la estabilidad de la viabilidad. No así para la cepa Pseudomonas aeruginosa que evidenció una disminución de supervivencia a los tres años. La conservación por liofilización es un método de gran utilidad en el trabajo de las colecciones de cultivos que se emplean para el control microbiológico. ABSTRACT. Freeze drying is one of the most popular methods used for the preservation of microorganisms. One of the many advantages of this method is the prolonged survival time. The selection of additives to achieve a good appearance as a long-term stability of the freeze dried material is one of the most important aspects to take into the consideration when you are using this method. The objective of this job was to evaluate the results of the conservation of the microbial strains Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa by drying method for a period of five years. For the growth of the strains it was used the tryptone soya broth, skim milk and 20 % glycerol as lyoprotector substances. Viability, purity and identity were evaluated of each of these strains. The characteristics of these species remained unchanged with a high degree of purity. The strains in skim milk to 20 %, during this time of observa- tion, retained viability at adequate levels. The glycerol at 20 % was a good lyoprotector substance for the Staphylococcus aureus, Escherichia coli and Bacillus subtilis strains to maintain the stability of the viability; however a decrease to the three years was showed for the survival of the Pseudomonas aeruginosa. The conservation by freeze-drying is a method of great utility in the work of the collections of cultivation employed to microbiological control. INTRODUCCION Los microorganismos representan un papel esencial para el mantenimiento y funcionamiento de los ecosistemas globales y como fuente de nuevos recursos para el desarrollo de la medicina, la industria, la agricultura y la biotecnología.1 Por eso es necesario conservar toda esta fuente microbiana y esto se ga- rantiza mediante las colecciones de cultivos.2-6 En la última década, se ha visto un marcado aumento en la concientización del valor de las colecciones de cultivos. Actualmente, existen en el mundo alrededor de 488 colecciones de 65 países registradas en el Centro de Datos Mundial de Microorganismos de Japón. Además, se han establecido organizaciones mundiales, regionales y nacionales.7,8 El acelerado desarrollo en Cuba de la industria farmacéutica y biotecnológica, así como el potencial uso de los microorganismos, obligan cada vez más a promover actividades de aseguramiento de la calidad para su conservación, de manera que puedan ser utilizados en diversos ensayos analíticos en los laboratorios de control microbiológico.9-11 La necesidad de mantener y disponer de cultivos de calidad impuso la introducción de métodos de conservación de microorganismos que reducen al mínimo la posibilidad de contaminación y garantizan al menos la supervivencia del 70 % de las células por un periodo determinado de tiempo.12-14 La liofilización Nancy Burguet-Lago, Nelson Sierra-Prado, *Lázaro C. Brito-Godoy Laboratorios Liorad, Avenida 27 A no. 26402 entre calles 264 y 268, Reparto San Agustín, La Lisa, La Habana. Cuba. nburguet@ liorad.quimefa.cu, *Hospital Luisa C. de Gandulfo, Buenos Aires, Argentina.
  • 2. Revista CENIC Ciencias Biológicas, Vol. 43, No. 3, septiembre-diciembre, 2012. 2 es el método de elección debido a sus numerosas ventajas, entre las que se puede resaltar la posibilidad de minimizar al máximo el riesgo de cambio genético en las células y las mantienen viables por 10 años o más.15-19 Además es recomendable por su comodidad en almacenamiento y transporte de las cepas, pues una vez conseguidos los liófilos pueden almacenarse a una temperatura ambiente de 18 a 20 ºC o bien de 4 a 6 ºC.20-24 El laboratorio de control microbiológico de Laboratorios Liorad disponía de una colección de cepas pro- cedentes de subcultivos de cepas de referencia de la American Type Culture Collection (ATCC).25 El método de conservación empleado era la congelación a – 70 0 C, metodología que no resulta la más conveniente para la conservación por largos periodos de tiempo, por tal motivo surgió la necesidad de evaluar otra estrategia de conservación para estos microorganismos. La metodología propuesta fue emplear el Caldo Triptona Soy (CTS) como medio de crecimiento, la leche descremada y el glicerol al 20% (sustancias lioprotectoras), la liofilización como método de conservación y ensayos de calidad: viabilidad, pureza e identidad.26 El objetivo del presente trabajo consistió en evaluar los resultados de la conservación de las cepas microbianas Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa por el método de liofilización empleando dos lioprotectores durante un periodo de cinco años. MATERIALES Y MÉTODOS Acervo Microbiano Formaron parte de este estudio cuatro cepas bacterianas del lote Maestro, el cual fue elaborado a partir de un subcultivo primario de cepas ATCC. Las que se encuentran depositadas en la colección de cultivos microbianos de Liorad: Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa, todas conservadas por el método de liofilización durante un período de cinco años. Recuperación de los microorganismos Para la obtención del lote Maestro, se restituyó con 1 mL de CTS, cada una de las ámpulas liofilizadas originales (procedentes de la ATCC). Para comprobar la pureza, se tomó 0,1 mL de las suspensiones bacte- rianas y se inoculó en una placa de Agar Triptona Soya (TSA), la cual fue incubada a 35 o C ± 2 o C por 24 h. Se observaron las colonias características para cada uno de los microorganismos y se comprobó su carácter tintorial mediante tinción de Gram.17,24 Conservación de los microorganismos La conservación de las cepas de microorganismos que forman el lote Maestro se realizó por el método de liofilización. Se empleó como sustancias lioprotectoras: leche descremada y glicerol al 20 %.18,19 Preparación de la suspensión Se depositó 20 µL de la suspensión de microorganismo a liofilizar, en una placa de TSA, se diseminó en forma de césped e incubó de 18 a 24 h a (35 ± 2) °C, se colectó un cuarto del crecimiento del cultivo con un hisopo estéril, e inocularon erlenmeyers que contenían 100 mL de medio CTS, se colocaron en zaranda a 37 °C y 170 r/min durante 2 h. Las células fueron colectadas por centrifugación a 4 °C durante 30 min a 10 000 r/ min. La biomasa se resuspendió en 50 mL de las diferentes disoluciones lioprotectoras (leche descremada y glicerol 20 %), y se homogeneizó completamente. Se tomaron 100 μL de cada suspensión para determinar el recuento de Unidades Formadoras de Colonias por mililitro (UFC/mL) antes de la liofilización. Se distribuyó 1 mL en bulbos estériles y se colocó el tapón sobre la boca del bulbo y este sobre la bandeja de la liofilizadora.17,24 Condiciones de liofilización La liofilización se realizó en un equipo liofilizador de laboratorio marca Edwars modelo Modulyo. El proceso se inició a una temperatura de de congelación – 70 o C, de condensación – 50 o C y de secado 35 - 37 o C. La presión de trabajo en la cámara fue de 10 Pa. Una vez concluido el proceso, los bulbos se sellaron al vacío y fueron identificados con una etiqueta con los datos siguientes: género y especie, código de la cepa, número de lote y fecha de liofilización. Posteriormente se almacenaron entre 2 y 8˚C para garantizar su estabilidad a largo plazo. Eficacia del método de conservación Se restituyeron dos bulbos de las cepas en ensayo a su volumen de liofilización con 2 mL de CTS, se mez- claron de forma homogénea para obtener una muestra representativa y se determinó la pureza, viabilidad y se comprobaron las características bioquímicas.17,24,26 Pureza Con el fin de observar la pureza bacteriana, se transfirió el contenido de los bulbos de cada cepa a un tubo con 20 mL de CTS. Los tubos fueron colocados en zaranda con agitación durante 2 h a una temperatura de 35 o C ± 2 o C. Transcurrido este tiempo, se procedió de igual forma que lo descrito para la verificación de la pureza de las cepas provenientes de la ATCC.
  • 3. Revista CENIC Ciencias Biológicas, Vol. 43, No. 3, septiembre-diciembre, 2012. 3 Viabilidad Después de la liofilización, se realizó el recuento de UFC/mL por diluciones seriadas hasta 10-8 y siembra en superficie en TSA. Cada dilución se sembró por triplicado. Se consideró satisfactoria una concentración celular igual o superior a 105 UFC/mL, valor establecido en las especificaciones de calidad del lote Maestro. Comprobación de las características bioquímicas Se llevó a cabo a través del empleo de de una prueba de diagnóstico e identificación Liofilchem de Italia (sistema colorimétrico). Se procedió a inocular 0,2 mL de la suspensión bacteriana en los pocillos que contenían los substratos bioquímicos desecados. La interpretación de los resultados se realizó mediante el viraje de co- lor de los distintos pocillos del sistema, a los cuales se les dió puntuación de acuerdo con un código numérico establecido por el fabricante en forma tabulada para cada una de las pruebas, lo que permitió la identificación. RESULTADOS Y DISCUSIÓN La recuperación de los microorganismos evidenció que para las cepas estudiadas se seleccionó un buen método de conservación (la liofilización).19,22 Las sustancias lioprotectoras (leche descremada y glicerol al 20 %) en ambos casos permitieron lograr una buena apariencia de la pastilla liofilizada y rehidratación instantánea. A pesar que de manera general está más extendido el empleo de mezclas de lioprotectores porque en la mayoría de los casos, se obtienen mejores resultados que cuando se emplean las sustancias puras. No obstante, en este trabajo se obtuvie- ron buenas características durante el proceso de lioflización. Las disoluciones lioprotectoras son sustancias que se añaden con el objetivo de mejorar las características del producto durante el proceso de lioflización o de almacena- miento de ambos, aunque en la mayoría de los casos, los mecanismos del efecto protector son poco conocidos.21,23 La observación microscópica de los cultivos demostró la presencia, de cultivos puros, en cada una de las especies estudiadas. Las colonias observadas coincidieron con la morfología típica de las cepas de referencia Staphylococcus aureus ATCC 25923, Bacillus subtilis ATCC 6633, Escherichia coli ATCC 25922 y Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027 morfología reportada en los certificados de calidad de estas cepas. La valoración de que los microorganismos estén biológicamente puros es un aspecto crítico en la caracterización microbiológica, por lo que deben realizarse ensayos apropiados para la detección de contaminantes.9 El estudio de viabilidad de las cepas bacterianas de referencia liofilizadas con leche descremada y glicerol al 20 % por un periodo de cinco años.se muestran en las tablas 1 y 2.Para un buen recobrado de la viabilidad después de la liofilización, el agente lioprotector debe adoptar el papel del agua y restablecer los puentes de hidrógeno con las membranas.15 De este modo, para un microorganismo dado existen solo uno o dos lioprotectores adecuados.22 Tabla 1. Recuentos de UFC/mL de recobrado de las cepas bacterianas de referencia conservadas en leche descremada al 20 %, antes y después de la liofilización en los diferentes tiempos evaluados. Cepas bacterianas Antes de Liofilizar 24 h 1.er año 2.o año 3.er año 4.o año 5.o año Staphylococcus aureus 2,6 . 109 3,5 . 108 1,2 . 108 1,4 . 108 1,1 . 107 1,0 . 107 3,5 . 106 Escherichia coli 3,8 . 108 6,4 . 10 8 1,0 . 10 8 1,0 . 10 8 1,0 . 10 7 1,2 . 106 1,7 . 105 Bacillus subtilis 2,5 . 108 1,4 . 108 1,2 . 108 1,9 . 108 1,1 . 107 1,0 . 107 1,6 . 106 Pseudomonas aeruginosa 2,3 . 109 1,1 . 108 1,0 . 108 1,6 . 108 1,1 . 107 1,9 . 106 1,0 . 106 La viabilidad se expresa en UFC/mL. El efecto protector de la leche descremada fue observado en las cepas Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa al obtener resultados de viabilidad después de la liofi- lización durante los cinco años de estudio por encima de 106 UFC/mL, valores que sobrepasaron el criterio de evaluación establecido en las especificaciones de calidad del laboratorio (niveles de viabilidad igual o mayor al orden de 105 UFC/mL) por lo que se consideró que el procedimiento evaluado, mantuvo la viabili- dad de los cultivos liofilizados (Tabla 1). Se recomienda como sustancia lioprotectora de excelencia la leche descremada (sustancia proteica) por sus buenos resultados en la preservación de la viabilidad en el proceso de liofilización.21,23 Tabla 2. Recuentos de UFC/mL de recobrado de las cepas bacterianas de referencia conservadas en glicerol al 20 %, antes y después de la liofilización en los diferentes tiempos evaluados. Cepas bacterianas. Antes de Liofilizar 24 h 1.er año 2.o año 3.er año 4.o año 5.o año Staphylococcus aureus 2,6 . 10 9 6,6 . 108 3,0 . 107 3,0 . 107 1,0 . 107 3,5 . 106 2,3 . 106 Escherichia coli 2,0 . 10 9 6,5 . 10 8 3,8 . 10 8 2,9 . 10 7 1,9 . 10 7 1,1 . 10 7 1,9 . 10 6 Bacillus subtilis 2,5 . 108 1,6 . 108 1,6 . 108 1,0 . 107 1,3 . 107 1,2 . 107 1,0 . 106 Pseudomonas aeruginosa 2,3 . 109 1,1 . 108 2,0 . 107 2,3 . 106 3,8 . 105 --- --- La viabilidad se expresa en UFC/mL.
  • 4. Revista CENIC Ciencias Biológicas, Vol. 43, No. 3, septiembre-diciembre, 2012. 4 Los factores que influyen en la supervivencia de los microorganismos a la liofilización son muy com- plejos y poco entendidos. La adición de polioles (glicerol) previene el daño del material liofilizado.20,23 Los resultados de este trabajo confirman que en la variante glicerol 20 % la viabilidad en las cepas Sta- phylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli no se afectó significativamente durante el tiempo objeto de estudio. Sin embargo, no se obtuvieron los mejores resultados con el empleo de esta sustancia lioprotectora con la cepa de Pseudomonas aeruginosa que evidenció una disminución de viabilidad a los tres años de depositadas en la colección, por lo que este lioprotector resulta inadecuado para este micro- organismo (Tabla 2). Los ensayos de identidad de todas las cepas mostraron que el comportamiento de las características culturales, morfológico-tintoriales y fisiológico-bioquímicas ensayadas se mantuvieron de acuerdo con la des- cripción de las especies.26 CONCLUSIONES Al emplear la liofilización como método de conservación se comprobó que se mantienen inalteradas las características propias de las especies microbianas estudiadas, con un alto grado de pureza. De las sustancias lioprotectoras ensayadas durante un periodo de cinco años, la leche descremada al 20 % contribuye a conservar las cepas Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa al obtener resultados de viabilidad con valores que sobrepasaron el criterio de evaluación establecido en las especificaciones de calidad del laboratorio. El glicerol al 20 % resultó una buena sustancia lioprotectora para las cepas Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Bacillus subtilis, no así para la cepa Pseudomonas aeruginosa cuya viabilidad disminuye en su presencia a partir de los tres años de depositadas en la colección. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 1. Morales YE, Duque E, Rodríguez O. Bacterias preservadas, una fuente importante de recursos biotecnológicos. Rev. Bioten- logía Aplicada. 2010; 14 (2):11. 2. Del Puerto CA, Iglesias E, Morales T, Baños N, Nocedo MD, Carnota GY et al. Organización y manejo de la colección de cepas de referencia del Instituto Finlay. Rev. Vaccimonitor. 2009; 18 (1): 20-24  3. Smith D. Culture collections over the world. Int Microbiol. 2003; 6(2): 95-100 4. Pérez G, Iglesias E, Travieso F . Reporte del Grupo Nacional de Colecciones de Cultivos Microbianos.1997. Revista CENIC Ciencias Biológicas 1998; 29(3):212-4. 5. Smith D, Ryan MJ. Culture collections in the twenty first century. 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