Estudio y Reconocimiento de Glóbulos Rojos en Ave, Anfibio y Mamífero.

1. “Estudio y reconocimiento
de glóbulos rojos en
diferentes especies de
animales: Aves (Columba
Livia), Anfibios (Bufo bufo) y
Mamíferos (Homo sapiens)”
Balcázar Llaqué, Angela Cristina.
Fenco Reyes, Cesar David.
Vara Custodio, Rut Elisabet.

2. La hematología forense es la rama de la Biología Forense que estudia la morfología, serología y
bioquímica de la sangre encontradas en el lugar de los hechos, es una herramienta indispensable en la
investigación de escenas del crimen. La sangre está compuesta por eritrocitos que es el componente
celular más abundante encontrado en la sangre. Los Mamíferos presentan eritrocitos discoidales y
anucleados, a excepción de los Camelidae, que son nucleados y ovalados sin palidez central. En aves
los eritrocitos maduros son ovalados, nucleados y de mayor tamaño que los de los mamíferos, y los de
los reptiles son más grandes que los de las aves.
Eritrocitos en Mamífero (Saguinus leucopus), Ave (Ara macao) y Reptil (Iguana iguana)
(1000X, coloración de Wright) (Copete-Sierra, 2013)
I. Introducción

3. Nieto, N. (2011). Diferencias Hematológicas
entre Caninos y Felinos.
Eritrocitos de caninos Eritrocitos de felinos
Realizó un estudio hematológico describiendo las
diferencias entre caninos y felinos, se observó que los
eritrocitos de los caninos son ligeramente más grandes que
los eritrocitos de los felinos, miden 5,8 µ de diámetro no
tienen una forma constante, la palidez central es observable
y tienden a variar ligeramente más su forma en cambio los
eritrocitos de los caninos tienen una medición de 7,0 µ de
diámetro, son bicóncavos, con un área pálida central que
ocupa alrededor de un tercio del diámetro celular.

4. Detallaron las diferencias entre los eritrocitos de
mamíferos, aves y reptiles. El número de eritrocitos en
sangre periférica en los reptiles es inferior al de mamíferos
y aves. Los eritrocitos de los reptiles tienen una forma
elíptica, con los extremos redondeados y el núcleo de
redondo a oval, colocado en posición central, el
citoplasma tiene una textura uniforme y es eosinófilo.
Martínez et al. (2011) “Hematología y citología
sanguínea en reptiles”
Eritrocitos de Python molurus. Se aprecia un eritrocito
binucleado. Tinción May Grünwald Giemsa. X 1000

5. Los eritrocitos normales de todos los
vertebrados, a excepción de los Camelidae, son
nucleados y ovales sin palidez central, en
cambio, los eritrocitos aviares son de
mayor tamaño que los de los mamíferos y
los de reptiles son más grandes que los de
las aves. Los glóbulos rojos más grandes son de
los anfibios. Eritrocitos en Mamífero (Saguinus leucopus), Ave (Ara macao)
y Reptil (Iguana iguana) (1000X, coloración de Wright)
Copete-Sierra (2013). “Aspectos generales de la evaluación
hematológica en fauna silvestre y no “convencional”

6. Ramírez, Martínez & Fuente (2012). “Hemograma y características
morfológicas de las células sanguíneas de tortuga golfina
(lepidochelys olivácea) de Oaxaca, México.
Los eritrocitos de lepidochelys olivácea son células ovales con
núcleo central deforma oval, su cromatina es densa de color
púrpura con bordes irregulares, el citoplasma presenta un color
ortocromático uniforme, con ligera tonalidad azul debido al
efecto de la heparina. Los eritrocitos inmaduros son células con
formas de redonda a oval, su núcleo es heterocromático grande y
redondo, el citoplasma es ortocromático, éstos pueden ser más
pequeños que los eritrocitos maduros.
Eritrocitos maduros de lepidochelys olivácea
en un frotis teñido con wright. (100x)
Eritrocitos inmaduros de lepidochelys olivácea
en un frotis teñido con wright. (100x)

7. 1. Objetivo general:
Reconocer e identificar los glóbulos rojos de Aves (Columba livia), Anfibios (Bufo bufo), mamíferos (Homo
sapiens).
1.1. Objetivo específico:
● Observar y describir el tamaño y forma de los glóbulos rojos de aves, reptiles y
mamíferos.
● Comparar los glóbulos rojos entre aves, anfibios y mamíferos.
II. Objetivos

8. III. PROCEDIMIENTOS
1. Muestra biológica
En este estudio se trabajó con tres especies:
a) Aves: (Columba livia)
b) Anfibios (Bufo bufo)
c) Mamíferos (Homo sapiens).
El ave y el anfibio utilizado para este estudio se obtuvieron por captura y fueron
trasladados al lugar de trabajo donde se realizaron los respectivos estudios.

9. Clase Puntos de punción venosa
Mamíferos Safena, poplítea, femoral, humeral, basílica, braquial,
cefálica, yugular.
Aves Basílica (radial o braquial), metatarsiana medial, yugular.
Anfibios Plexo venoso lingual.
Tabla 1: Sitios de punción para extracción de muestras
sanguíneas en mamíferos, aves y reptiles (Copete-Sierra, 2013)

10. Todas las muestras fueron colectadas en tubos con etilendiaminotetraacético (EDTA).
Ave (Columba livia) Anfibio (Bufo bufo) Mamíferos (Homo sapiens)
2.1. Toma de la Muestra

11. 2.2. Preparación de muestras
 En una lámina portaobjeto colocar una gota de sangre
anticoagulada con ácido etilendiaminotetraacético (EDTA).
 Realizar el frotis sanguíneo con ayuda de otra lamina
haciendo un extendido fino.
 Dejar secar el frotis al medio ambiente.
 Verter sobre el frotis 15 a 16 gotas de colorante wright y dejar
actuar por un minuto. Agregar luego la misma cantidad de
agua destilada o solución salina de pH 7. Homogenizar y dejar
actuar durante tres minutos.
 Lavar con agua corriente y dejar secar la lámina al medio
ambiente

12. Glóbulos rojos de Anfibio(Bufo bufo) Glóbulos rojos de Ave (Columba livia) Glóbulos rojos en Mamíferos (Homo
sapiens).
2.3. Observación de Eritrocitos
Los eritrocitos fueron observados en un microscopio compuesto utilizando los objetivos de 1000x.

13. IV. CONCLUSIONES
 En anfibios los glóbulos rojos son grandes, presentan núcleo y tienen forma ovaladas, en aves
son nucleados y tienen forma elíptica y en mamíferos son anucleados, tienen forma de un disco
bicóncavo.
 Al comparar las células sanguíneas de las especies estudiadas se observó que los glóbulos rojos
de los mamíferos son muy diferentes a la de aves y anfibios ya que estos últimas se parecen
mucho con la única diferencia del tamaño.

14. V. RECOMENDACIONES
 Una vez extraída la muestra lo recomendable es realizar el frotis los más rápido posible
para que el anticoagulante no altere la muestra produciendo hemolisis.
 Al momento de preparar la muestra es importante hacer un extendido de forma
correcta porque de esto depende una buena observación.
 Se recomienda hacer varias extendidos de cada especie, así se podrá elegir las
mejores muestras.

15. VI. ANEXOS
Balcázar Llaqué Fenco Reyes Vara Custodio