la pérdida o insuficiencia ósea sigue siendo un desafío importante para los implantes osteointegrados. La regeneración ósea guiada (GBR) es la modalidad de tratamiento más común para reconstruir el hueso alveolar. Una membrana que se utilizará para la terapia GBR debe poseer características deseables, como biocompatibilidad, propiedades de oclusión celular, integración con los tejidos del huésped, manejabilidad clínica, capacidad de creación de espacio y propiedades mecánicas y físicas adecuadas las membranas de colágeno reabsorbibles de origen natural (RCM) han atraído una atención considerable, porque el colágeno es un componente principal del tejido conectivo y proporciona soporte estructural.

1. ARTICULO GRUPAL
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
SEGUNDA ESPECIALIDAD DE
PERIODONCIA E IMPLANTOLOGIA
CURSO: SEMINARIO DE PERIODONCIA II
DOCENTE:
DR. JAIME BARCENA TACO
• CD YURY TENORIO CAHUANA

3. INTRODUCCION :
la pérdida o insuficiencia ósea sigue siendo un desafío importante para los
implantes osteointegrados. La regeneración ósea guiada (GBR) es la modalidad de
tratamiento más común para reconstruir el hueso alveolar.
Una membrana que se utilizará para la terapia GBR debe poseer características
deseables, como biocompatibilidad, propiedades de oclusión celular, integración
con los tejidos del huésped, manejabilidad clínica, capacidad de creación de
espacio y propiedades mecánicas y físicas adecuadas
las membranas de colágeno reabsorbibles de origen natural (RCM) han atraído una
atención considerable, porque el colágeno es un componente principal del tejido
conectivo y proporciona soporte estructural.

4. INTRODUCCION :
Entre los factores de crecimiento para la regeneración tisular se encuentra el
FGF-2 (factor de crecimiento de fibroblastos-2), que induce la neovascularización
y la osteogénesis
Para mejorar aún más los resultados clínicos y buscar nuevos factores de
crecimiento candidatos para un método eficaz de regeneración ósea,
desarrollamos un nuevo dispositivo de regeneración que combina un RCM
(membrana de colágeno reabsorbible) y contiene FGF-2 y es la RCM/FGF-2 para
la regeneración ósea.
Sin embargo, no hay estudios informados sobre los cambios en tiempo real en los
volúmenes de NFB (volumen de hueso recién formado) y las densidades minerales
usando RCM/FGF-2 en tratamientos de defectos mandibulares estandarizados en
modelos animales vivos.

5. OBJETIVO :
investigar la capacidad de RCM/FGF-2 para promover la regeneración ósea en
defectos óseos mandibulares de rata utilizando microtomografía computarizada
(micro-CT) in vivo en tiempo real y evaluación histológica tradicional

6. MATERIALES Y METODOS:
Se crearon defectos óseos circulares de tamaño crítico (4,0 mm de diámetro) en
ambos lados del hueso mandibular de rata. Los defectos se dividieron
aleatoriamente en los siguientes grupos: control, RCM (membranas de colágeno
reabsorbibles) solo, RCM que contenía una concentración baja (0,5 μg) o alta (2,0
μg) de FGF-2 (factor de crecimiento de fibroblastos).
Se Realizan tomografías microcomputarizadas in vivo en tiempo real al inicio y a
las 2, 4 y 6 semanas, y medimos el volumen de hueso recién formado (NFB), la
densidad mineral ósea (DMO) de NFB y el porcentaje de cierre del área de la NFB.
A las 6 semanas, las muestras mandibulares se evaluaron histológica e
histomorfométricamente para evaluar el área de regeneración de hueso nuevo

7. MATERIALES Y METODOS:
Protocolo quirúrgico. (a) Después de hacer
una incisión en la rama mandibular, se
crea un colgajo de espesor completo y una
reflexión para exponer el sitio del ángulo
mandibular. (b) Se creó un defecto
experimental de 4 mm de diámetro
utilizando un taladro de trépano en el
lado derecho de la rama mandibular. (c)
Colocación de una membrana interna de
colágeno reabsorbible entre el hueso
mandibular y el
periostio subyacente. (d) Colocación de
una membrana de colágeno reabsorbible
completamente sobre el defecto óseo
circular en el ángulo
mandibular.

8. MATERIALES Y METODOS:
serie de micro-CT en tiempo real in vivo
reconstruidas imágenes representativas de
la formación de hueso nuevo en defectos
mandibulares de rata al inicio, 2, 4 y 6
semanas después de los procedimientos
quirúrgicos en cuatro grupos: control, RCM
solo, RCM que contiene una dosis
baja de 0,5metrog de FGF-2 (L-FGF-2), y
RCM que contiene una dosis alta de 2,0
metrog de FGF-2 (H-FGF-2). El color negro
muestra defectos no mineralizados.
Una

9. MATERIALES Y METODOS:
Imágenes microscópicas de luz muestran hueso
regenerado a las 6 semanas después de aplicar
RCM/FGF-2 en defectos óseos de la mandíbula de
ratas. Se observó NFB en la periferia de un defecto
mandibular en los grupos tratados con FGF-2.
Además, en el grupo H FGF-2, se observó hueso
lamelar maduro y el defecto tendía a fusionarse
con el NFB. Las muestras se tiñeron con
hematoxilina y eosina (HE). HB: hueso huésped,
NB: hueso recién formado, F: tejido fibroso, Ob:
osteoblasto, O: osteocito, BV: vaso sanguíneo.
Secciones histológicas representativas de grupos de
tratamiento con RCM/FGF-2 a gran aumento (40x)
que muestran NB, Ob, O y BV.

10. MATERIALES Y METODOS:
La tinción TRAP a las 6 semanas (a) y la densidad
de osteoclastos (b). La tinción roja indicó tinción
TRAP positiva de osdetectóteoclastos en el área
del defecto. El grupo RCM/FGF-2 exhibió la mayor
cantidad de hueso nuevo a las 6 semanas pero
exhibió la menor cantidad de osteoclastos. El
grupo de control tenía la menor cantidad de hueso
nuevo y el mayor número de osteoclastos. Cada
valor es la media SD (nZ5). Las barras de escala
indican 50metrom en las figuras.

11. MATERIALES Y METODOS:
Efecto de FGF-2 sobre la maduración y mineralización ósea. Los resultados de inmunohistoquímica para la osteocalcina
(OCN: proteína de la matriz de colágeno derivada del crecimiento celular y es un marcador específico de la formación y
resorción ósea.) a las 6 semanas. La inmunorreactividad de OCN fue obvia en los grupos tratados con FGF-2 (asterisco).
Las barras de escala indican 50metrom en cifras.

12. RESULTADOS:
La evaluación en tiempo real reveló un aumento significativo en el volumen, la
DMO (la densidad mineral ósea) y el porcentaje de cierre del área NFB en los
grupos tratados con RCM/FGF-2 en comparación con los grupos de control y
RCM. En el grupo H-FGF-2, el volumen y la DMO de NFB exhibieron un aumento
significativo a las 6 semanas con respecto al valor inicial. La evaluación histológica
reveló la presencia de osteoblastos, osteocitos y vasos sanguíneos dentro del NFB.

13. CONCLUSIONES :
El experimento in vivo en tiempo real demostró que RCM/FGF-2 promovió
eficazmente la regeneración ósea dentro de los defectos mandibulares de tamaño
crítico en ratas y verificó la formación de hueso nuevo a partir de la fase
posoperatoria temprana.

15. INTRODUCCIÓN:
El protocolo terapéutico de GBR implica la implantación quirúrgica de una
membrana oclusiva frente a la superficie ósea para sellar físicamente el defecto
óseo
la membrana crea y mantiene un espacio aislado que permite el reclutamiento y
la proliferación de estas células, la diferenciación a lo largo del linaje
osteoblástico y la expresión de la actividad osteogénica.
La clase principal de membranas no absorbibles está hecha de
Politetrafluoroetileno (e-PTFE), un material no degradable.
Otras membranas biodegradables disponibles comercialmente son el poliuretano,
la poliglactina, el ácido poliláctico, el ácido poliglicólico, el poliortoéster y
diferentes copolímeros de ácido poliláctico y poliglicólico

16. INTRODUCCIÓN:
En este estudio se utiliza una nueva membrana sintética y biodegradable hecha de
PLGA (poli-D, L-láctico/ácido glicólico) y poli(L-lactato-co-carbonato de
trimetileno) (PTCM).
PLGA es un polímero biodegradable bien conocido y se usa ampliamente en otras
aplicaciones médicas (suturas reabsorbibles y mallas quirúrgicas)
PTMC es un polímero biomédico que se considera de baja toxicidad,
biocompatible y biodegradable, tiene buena flexibilidad y buenas propiedades de
erosión superficial, y no produce compuestos ácidos fuertes después de la
degradación.

17. OBJETIVO:
Evaluar la biocompatibilidad y biosorción de cuatro tipos
diferentes de membranas PLGA + PTMC, implantadas en
tejido subcutáneo de ratón, en comparación con una
membrana disponible comercialmente y un grupo Sham (sin
implantación, solo incisión), de acuerdo con la norma ISO
10993-6 puntuaciones

18. METODOS :
Sesenta ratones Balb-C se dividieron aleatoriamente en seis grupos
experimentales y se subdividieron en 1, 3, 6 y 12 semanas (n = 5
grupos/período). Las membranas (1 cm 2 ) se implantaron en el tejido subcutáneo
de la espalda de los animales. Las muestras se obtuvieron para evaluación
histológica descriptiva y semicuantitativa (ISO 10993-6).
En este estudio, se compararon membranas PTMC + PLGA permeables e
impermeables.

19. METODOS :
Las membranas PTMC + PLGA permeables e impermeables se dividieron en los
siguientes grupos experimentales: Grupo 1: permeable de 100 µm de
espesor; Grupo 2: impermeable de 100 µm de espesor; Grupo 3: impermeable de
70 µm de espesor; Grupo 4: permeable de 250 µm de espesor; Grupo 5: Gore Bio-A
comercialmente disponible; y Grupo 6: Sham (sin implantación).

20. RESULTADOS :
G1 y G4 permitieron la adhesión tisular y la permeabilidad de las células
inflamatorias a lo largo del tiempo y mostraron mayor actividad fagocítica y
permeabilidad. G2 y G3 se desprendieron del tejido en una y tres semanas; sin
embargo, en los periodos más extensos presentaron un aspecto rectilíneo y
homogéneo y no fueron absorbidos. G2 tuvo una reacción inflamatoria
importante. G5 se absorbió casi por completo después de 12 semanas.
Aspecto macroscópico de la respuesta tisular a
diferentes membranas tras 12 semanas de
implantación. ( A ): Grupo 1; ( B ): Grupo
2; ( C ): Grupo 3; ( D ): Grupo 4; ( E ): Grupo
5; ( F ): Grupo simulado. El área punteada
corresponde a la región de la membrana. La
flecha negra indica la reacción de granulación
presente en el Grupo 5, donde no se visualizó la
membrana.

21. CONCLUSIONES :
Las membranas se consideran biocompatibles. G5 mostró un mayor grado de
biosorción, seguido de G1 y G4. G2 y G3 se consideran no absorbibles en los puntos
de tiempo evaluados.
PTMC es un polímero utilizado en aplicaciones biomédicas. Presenta buenas
propiedades de biocompatibilidad y flexibilidad. Además, posee buenas
propiedades de erosión superficial, no produce compuestos ácidos después de la
degradación y muestra características de degradación más lentas en comparación
con PLGA.
Otro factor interesante que apunta a PTMC como una buena alternativa para la
ingeniería de tejidos es su característica elástica a la temperatura corporal. Sin
embargo, las propiedades mecánicas inferiores de PTMC comúnmente han
dificultado su aplicación generalizada. En este contexto, las propiedades de PLGA
y PTMC pueden ser una buena opción para la asociación de polímeros