Proyecto integrador. Las TIC en la sociedad S4.pptx
Bypro Engorde Vacuno Unlz
1. Efectos de la adición de Bypro® sobre una dieta base para bovinos de carne alimentados
en feed lot
Ing. Zoot., Ms Cs, Sergio Paz1 (UNLZ), Ing. Agr., Ms B.A. Fernando Rumiano1 (UNLZ), Med. Vet.Claudio
Gustavo Cabral2 (Silvateam), Lic. Qco. Pablo Lencioni2 (Silvateam)
1.Universidad Nacional de Lomas de Zamora, Buenos Aires, Argentina – 2. Silvateam Argentina
Mayo 2007
INTRODUCCIÓN
El aumento de las superficies destinadas a la agricultura en el territorio argentino ha producido un
notable cambio en las condiciones del mercado de carnes bovinas en nuestro medio. (Pengue, W. 1996).Así,
actividades tradicionalmente pastoriles como la cría, la recría y, fundamentalmente la invernada, han
disminuido la superficie de sus explotaciones incorporando técnicas nutricionales de suplementación,
complementación, aditivos, e incluso de alimentación balanceada a corral o feed lot. (S.A.G.P. y A, 2007).
Para este último caso, resulta conocido que, el uso de proteínas de alta calidad y baja degradabilidad ruminal
aumenta la eficiencia en el uso del nitrógeno incrementando su captura en el formato de amino ácidos (Sutton
1996, Beernann et al 1991, Knaus 1998, Zinn et al 1981).
Sin embargo este tipo de proteínas son de origen animal y se presentan en general como
subproductos de la industria cárnica, motivo por el cual y, a raíz del problema suscitado con la aparición del
“mal de la vaca loca”, han quedado vedados para el consumo animal. (Mascitelli 2000).
Si por el contrario la proteína bruta utilizada en las raciones posee alta degradabilidad, gran parte del
nitrógeno se pierde en las excretas lo que genera además de pérdidas en la eficiencia metabólica, efectos
ambientales contaminantes. (Pordomingo, A. et al 2004).
Los taninos como aditivos en dietas de rumiantes, poseen la propiedad biológica de unir proteínas
contenidas en el alimento y otras moléculas con reactividad dependiendo de la concentración, estructura y
peso molecular de las mismas. En los rumiantes actúa como by-pass de proteínas reduciendo fuertemente el
ataque de la microflora ruminal y evitando la degradación de la celulosa. (Pordomingo et al 2002) El
tratamiento con taninos para reducir la solubilidad y fermentación ruminal de las proteínas vegetales ha sido
sugerido en algunos estudios (Kugler, 1994; Lee et al., 1992; Waghorn et al., 1990). Pordomingo et al en el
2003 han verificado en igualdad de consumo, una mejora en la eficiencia de conversión en dietas con alto
contenido de maíz como fuente de energía utilizando taninos de quebracho.
Está establecido que los taninos en bajas concentraciones en la dieta, aumentan la eficiencia de la
digestión del nitrógeno (Cumming, 1985; Kaitho et al. 1997); así Mangan (1988) y Waghorn (1990) asumen
que niveles bajos de taninos (3 – 6 % MS) pudieran no causar problemas y quizás ser ventajoso; sin embargo,
no solo de la concentración de taninos se determina su actividad biológica, la que depende también su
estructura química.
La hipótesis que plantea este estudio es que un producto tánico natural (Bypro®) incide
favorablemente en el metabolismo proteico y en el desarrollo.
Adicionalmente, se pretende observar la influencia de distintas dosis del producto para las variables
observadas.
MATERIALES Y MÉTODOS
En el establecimiento “Don Corral”, (ruta 3 Km. 178 del partido de Las Flores, Buenos Aires), se
reclutaron 90 animales hembras de la raza Aberdeen Angus, con un peso inicial similar (en el orden de los
183 kg.). Se los dividió en tres grupos de 30 animales identificados con caravanas de numeración individual y
grupal, cada uno en corrales separados, y fueron alimentados con una dieta común a todos ellos durante 100
días corridos a partir del inicio del ensayo. De estos, un grupo se usó como testigo y el resto recibió un
tratamiento de acuerdo al tipo de producto adicionado a la ración y a la dosis aplicada del mismo (Bypro alto
-0.15kg/ta- y Bypro bajo -0.60kg/ta-)
Se efectuaron controles de peso corporal, carga parasitaria, proteínas y colesterol total en sangre,
proteínas y extracto etéreo en materia fecal y medición ecográfica de área de ojo de bife y espesor de grasa
dorsal al día 0, al día 50 y al día 100 de iniciado el ensayo.
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com
2. Los datos para cada variable fueron tratados por Análisis de medidas repetidas en serie de tiempo
(SAS, 2006).
Sin embargo, dado que la correlación en pesadas extremas resultó baja (0.002; 0.05 y -0.005 en cada
caso), a efectos de una mejor visualización se practicaron análisis de varianza para los distintos parámetros.
Se practicó luego contrastes a posteriori (Test de Tukey) y se practicó una regresión lineal sobre la
evolución del peso en el testigo y los animales tratados con Bypro ®
Resultados
El cuadro numero 1 muestra los cuadrados medios para las variables analizadas en la primer y última
pesada.
Tratamientos Materia Fecal Sangre Evolución de AOB EGD
Peso
Tratamiento 1 385.88 1485.08 481.38 29.82 0.49
(11/12/06)
Tratamiento 2 5602.62 14931.30 971.29 21,37 1,28
(31/1/07)
En los cuadros numero 2, 3, 4, 5 y 6 se observan los valores medios para cada tratamiento,
analizados mediante la prueba de Tukey. En todos los cuadros, letras diferentes implican diferencias
significativas.
Análisis de sangre
Origen de las Grados de Promedio de los
variaciones libertad cuadrados F Probabilidad
Entre grupos 6 14931,30 167,96 5,6618E-48
Dentro de los grupos 87 88,89
Total 93
11/12/06 31/01/07
Análisis de sangre Promedio Promedio
1116 (Bypro 0,15%) 45.05 42.6
1117 (Bypro 0,60%) 50.58 29.58
1118 (Testigo) 58.18 8.33
Cuadro 2. Valores medios para análisis de sangre
45
40
35
30
25
20
15
10
5
0
1 2 3
Grafico 1. Promedios de muestras de análisis de sangre. Foto 1. Toma de muestras para la realización de aná-
(P< 5.6618E-48) lisis de sangre
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com
3. No existen diferencias entre grupos al inicio del tratamiento. Si se verifican diferencias significativas para
las variables proteína en sangre, nitrógeno en heces, área del ojo de bife y espesor de grasa dorsal, con
incrementos en los tres primeros y disminución en la última, por efecto de los tratamientos. La proteína en
sangre es dependiente de la dosis.
Análisis de materia fecal
Origen de las Grados de Promedio de los
variaciones libertad cuadrados F Probabilidad
Entre grupos 6 5602,62 248,05 5,4943E-26
Dentro de los grupos 87 22,58
Total 93
11/12/06 31/01/07
Materia Fecal Promedio Promedio
1116 (Bypro 0,15%) 21.25 44a
1117 (Bypro 0,60%) 19.66 25b
1118 (Testigo) 23.25 7c
Cuadro 3. Valores medios para Materia fecal
50
45
40
35
30
25
20
15
10
5
0
1 2 3
Grafico 1. Promedios de muestras de materia fecal. (P < 5.4943E-23)
La presencia de nitrógeno en heces requiere dos lecturas: a mayor dosis, más perdidas, o bien un
mejor aprovechamiento, con lo que los valores proteicos del alimento podrían reducirse, aunque esto requiere
de estudios adicionales.
Análisis de Peso
Origen de las Grados de Promedio de
variaciones libertad los cuadrados F Probabilidad
Entre grupos 2 971,29 1,58 0,20
Dentro de los grupos 87 611,48
Total 89
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com
4. 11/12/06 31/01/07
Peso Promedio Promedio
1116 (Bypro 0,15%) 187.18a 274.93
1117 (Bypro 0,60%) 185.75a 263.03
1118 (Testigo) 179.57b 261.35
Cuadro 4. Valores medios para Peso
264
262
260
258
256
254
252
250
248
246
1 2 3
Grafico 1. Promedios de muestras de peso. (P < 0.20998441)
Para el peso no existen diferencias en la primera ni en la última pesada, pero si de la 2º a la 5º. Este puede
deberse a que al peso en la última medición, los animales ingresaron en la etapa de acumulación de grasa.
Análisis de Área de Ojo de Bife
Origen de las Grados de Promedio de
variaciones libertad los cuadrados F Probabilidad
Entre grupos 6 90,25 2,89 0,01
Dentro de los grupos 87 31,21
Total 93
12/11/06 19/03/07
Área del Ojo de Bife Promedio Promedio
1116 (Bypro 0,15%) 42.53a 69.46
1117 (Bypro 0,60%) 42.07a 67.73
1118 (Testigo) 40.36b 69.51
Cuadro 5. Valores medios para AOB
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com
5. 70
69,5
69
68,5
68
67,5
67
66,5
1 2 3
Foto 2 –Medición Ecográfica de Area de Ojo de Bife Grafico 1. Promedios de muestras de AOB.
y Espesor de Grasa dorsal (P<0.01251499)
Análisis de Espesor de Grasa Dorsal
Origen de las Grados de Promedio de los
variaciones libertad cuadrados F Probabilidad
Entre grupos 6 1,15 0,42 0,86
Dentro de los grupos 87 2,71
Total 93
12/11/06 19/03/07
Espesor de Grasa Dorsal Promedio Promedio
1116 (Bypro 0,15%) 2.67a 7.99
1117 (Bypro 0,60%) 2.53b 7.90
1118 (Testigo) 2.69b 7.73
Cuadro 6. Valores medios para EGD
8,05
8
7,95
7,9
7,85
7,8
7,75
7,7
7,65
7,6
1 2 3
Grafico 1. Promedios de muestras de EGD. (P <0.86094305)
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com
6. El área del ojo de bife demuestra claramente el efecto del tratamiento.
El espesor de grasa dorsal no muestra diferencias significativas, pero el test de Tukey indica
diferencias entre la dosis mas alta de Bypro® y el testigo, con un menor espesor en los animales tratados.
b: 4,38
Regresión lineal para peso entre tratados (puntos llenos) y testigos
La regresión lineal del peso, grafica aun mejor lo anteriormente descrito.
Los taninos presentes en los forrajes pueden ejercer efectos positivos sólo con el conocimiento de las
características de los taninos, unido a los diferentes contextos de alimentación animal, permitirá establecer el
manejo adecuado de los alimentos y de los animales que garantice un efecto positivo de estas sustancias
fenólicas en la nutrición de los rumiantes.
CONCLUSIONES
1- La aceptación por parte de los animales de las dietas adicionadas con Bypro® en las diferentes
dosis y orígenes utilizadas no demostró inconvenientes lo que evidencia que las características organolépticas
del producto son apropiadas para el uso propuesto.
2- Siendo que los únicos aditivos no nutricionales agregados a las diferentes raciones fueron el grupo
de taninos estudiados, no se registraron casos de acidosis durante el desarrollo del ensayo, ni se verificaron
otras alteraciones de la salud animal.
3- El tratamiento con Bypro® incrementa el aprovechamiento proteico, esto se certifica por
metabolismo (en sangre) como por efecto (área del ojo de bife), se verifica una respuesta positiva de Bypro®
para el crecimiento, (como se observa en las pesadas 2 a 5) en que los animales trascurrieron la fase log de la
curva (desarrollo) que es la etapa de acumulo muscular y no en la fase lat de la misma (6º pesada) en que no
se hallaron diferencias. Esta fase corresponde a la acumulación grasa.
4- Los estudios realizados en el muestreo de materia fecal indican que la presencia de nitrógeno en
heces requiere dos lecturas: a mayor dosis, más perdidas, o bien un mejor aprovechamiento, por lo que los
valores proteicos totales atribuibles al alimento podrían reducirse, aunque esto requiere de estudios
adicionales.
5- Puesto que Bypro® actúa particularmente en la fase log de la curva de crecimiento, resulta
posible la existencia de un efecto diferencial según el genotipo o raza a tratar, pero esto requiere estudios
adicionales.
6- Los animales fueron seguidos hasta el sacrificio, donde no se verificaron alteraciones en órganos
internos.
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com
7. BIBLIOGRAFIA
Pengue, W. The Agriculture´s Sustainability in Argentina”, en Designing Sustainability. The Fourth Biennal
Meeting of the ISEE. Boston University, Boston, 1996
S.A.G.P. y A. Informe mensual, Área de Mercados Ganaderos, marzo 2007.
Mascitelli L., La Encefalopatía Espongiforme Bovina o Mal de la Vaca Loca
Comisión asesora técnica BSE de la SAGYPA, InfoVet Nº 70
Pordomingo A. et al, Bol. 73 INTA Anguil, mayo 2002.
Pordomingo A. et al, Bol. 88 INTA Anguil, junio 2003.
BARAHONA, R; LASCANO, C. E; COCHRAN, R. MORRILL, & J., TITGEMEYER, E. C.:
Intake, digestion, and nitrogen utilization by sheep fed tropical legumes with contrasting
tannin concentration and astringency. Journal of Animal Science.,. 75 (6):1633-1640, 2001.
BARRY, T. N. & MCNABB, W. C.: The effect of condensed tannins in temperate forages on animal
nutrition and productivity. Tannin Livestock Human Nutrition., 92:30-35,1999.
BARRY, T. N.: Condensed tannins: their role in ruminant protein and carbohydrate digestion and possible
effects upon the rumen ecosystem. In: The role of protozoa and fungi in ruminant digestion (Ed. J. V. Nolan,
R. A. Leng and D. I. Demeyer). Penambul
Books, Armidale NSW. p:153-169, 1989.
BAXTER, N. J.: Multiple interactions between polyhenols and a salivary proline-rich protein repeat result in
complexation and precipitation. Biochemistry., 36(18):33-39, 1997.
BURRIT, E. A; MALECHECK, J. C. & PROVENZA, F. D.: Changes in concentrations of tannins, total
phenolics, crude protein, and in vitro digestibility of browse due to mastication and insalivation by cattle.
Journal of Range Management., 40: 409-411, 1987.
BUTLER, N. L; DAWSON, J. M; WAKELIN, D. & BUTTERY, P. J.: Effect of dietary
tannins and protein concentration nematode infection (T. columbriformis) in lambs. J. Agric. Sci., 134:89-99,
2000.
CIAT .: Tropical grasses and legumes: Optimizing genetic diversity for multipurpose. Anual Report Project
IP-5. 132p. Centro Internacional de Agricultura Tropical, Calí, Colombia. 1998.
CLAUSEN, T. P; PROVENZA, F. D; BURRIT, E. A; REICHARDT, P. B. & BRYANT, J. P.: Ecological
implications of condensed tannin structure: a case study. Journal of Chemical Ecology., 16: 2381-2392, 1990.
CLAUSS, P. E. Y VARRO, E. T.: Farmacognósia. Ed. Revolucionaria. Combinado Poligráfico "Evelio
Rodríguez Curbelo". La Habana. Cuba. pp. 135-140, 1989.
CUMMING, R. B.: Recent advances in animal nutrition in Australia. Proccedings of a Symposium at the
University of New England. Armidale, University of New England
Publishing Unit. 121 p. 1985
DISTEL, R. A. & PROVENZA, F. D.: Experience in early life affects voluntary intake of blackbrush by
goats. Journal of Chemical Ecology., 17: 431-450. 1991
GETACHEW, G; MAKKAR, H. P. S., & BECKER, K.: Tropical browses: contents of phenolic compounds,
in vitro gas production and stoichiometric relationship between short chain fatty acid and in vitro gas
production. Journal of Agricultural Science., 139:341–352, 2002. Disponible en.
www.iaea.org/programmes/nafa/ d3/public/journalagic-sci-cambridge.pdf (Revisado: 2 Julio del 2003).
GLICK, Z. & JOSLYN, M. A.: Food intake depression and other metabolic effects of tannic acid in the rat.
Journal of Nutrition., 100: 509-510, 1970
HORIGOME, T; KUMAR, R. & OKAMOTO, K.: Effects of condensed tannins prepared from leaves of
fodder plants on digestive enzymes in vitro and in intestine of rats. British Journal of Nutrition., 60: 275-285
1988.
JACKSON, F. S; BARRY, T. N; LASCANO, C. & PALMER, B.: The extractable and bound condensed
tannin content of leaves from tropical tree, shurb and forages legumes. Journal of the Science of Food and
Agricultur., ( 17. No 1, pp. 103-110,1996
JUNG, H. G. & FAHEY, G. C.: Interaction among phenolic monomers and in vitro fermentation. Journal of
Dairy Science., 66: 1255-1263,1983
JUNG, H. G. & FAHEY, G. C.: Influence of phenolic acid on forage structural carbohydrate digestion.
Canadian Journal of Animal Science., 64: 50-51,1984.
KAHN, L. P. & DÍAZ-HERNÁNDEZ, A.: Tannis with antihelmintic propierties. In: Broker, J. D. (Ed.),
Proceedings of the International Workshop on Tannin in Livestock and Human Nutrition. ACIAR
Proceedings. No. 92: 40-154, 2000.
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com
8. KAITHO, R. J; UMUNNA, N. N; NSAHLAI, I. V; TAMMINGA, S. & VAN BRUCHEM, J.: Utilization of
browse supplements with varying tannin levels by Ethiopian Menz sheep. I.
Intake, digestibility and live weight changes. Agroforestry Systems., Vol. 39, No. 2, pp.
145-159, 1997.
KHANAL, R. C. & SUBBA, D. B.: Nutritional evaluation of leaves from some major
fodder trees cultivated in the hills of Nepal. Animal Feed Science and Technology., 92
(1/2). 17-32, 2001.
KRIAA, S ; THEWIS, A. & KAMOUN, M. : Les tannins en nutrition animale: Effet des tannins sur
l'ingestion, la digestibilite et les performances des ruminants. Revue de
l'INAT., (14)2: 19-39, 1999.
KUMAR, R. & D’MELLO, J. P. F.: Antinutritional factors in forage legumes. In: Tropical Legumes in
Animal Nutrition. Edited by J. P. F. D’Mello y C. Devendra. CAB
International. p: 95-133, 1995.
MAKKAR, H. P. S.: Antinutritional factors in foods for livestock. Animal Production in Developing
Countries. BSAP Occasional Publication No. 16, British Society of Animal Production, Edinburgh. p: 69-81,
1993.
MAKKAR, H. P. S. AND GOODCHILD, V. A.: Quantification of tannins, a Laboratory Manual. Pasture,
Forage and Livestock Program. International Center for Agricultural Research in the Dry Areas. Second
Edition. Alepo, Syria. 1996.
MAKKAR, H. P. S. Y SINGH, B.: Determination of condensed tannins in complexes with fiber and proteins.
Journal of the Science of Food and Agriculture., 69(1):129-132,
1995.
MAKKAR, H. P. S; BLÜMMEL, M. & BECKER, K.: Formation of complexes between polyvinyl
pyrrolidones or polyethylene glycols and tannins, and their implication in gas production and true digestibility
in in vitro techniques. British Journal of Nutrition., 73: 897-913. 1995.
MANGAN, J. L.: Nutritional effects of tannins in animal feeds. Nutrition Research Reviews., 1: 209 – 231,
1988.
MARRERO, E; STUART, R; SÁNCHEZ, L. M; BULNES, C. & PALENZUELA, I.: Informe técnico de la
caracterización del cuadro de hematuria enzootica bovina que afecta zonas ganaderas del departamento de
Tarija. Proyecto AUTAPO-CENSA-ICA. Tarija, Bolivia. p:118, 1999.
MARTIN, S. A. / AKIN, D. E.: Effect of phenolic monomers on the growth and ßglucosidase activity of
Bacteroides ruminicola and on the carboxymethylcellulase, ßglucosidase, and xylanase activities of
Bacteroides succinogenes. Applied and
Enviromental Microbiology, 54: 3019-3022, 1988.
MARTÍNEZ, S.: Manual de laboratorio de Control Agroambiental, CEDEPA. En:
http://www.reduc.edu.cu/CEDEPA/ index.htm. Actualizado en enero de 2004.
MCSWEENEY, C. S; PALMER, B; MCNEILL, D. M.& KRAUSE, D. O.: Microbial interactions with
tannins: nutritional consequences for ruminants. Animal Feed Science and Technology., 91(1/2):83-93, 2001.
MEHANSHO, H; BUTLER, L. G. & CARLSON, D. M.: Dietary tannins and salivary proline-rich proteins:
interactions, induction, and defense mechanisms. Annual Review of Nutrition., 7: 423-440, 1987.
MOLAN, A. L; WAGHORN, G. C. & MCNABB, W. C.: Effect of condensed tannins on egg hatching and
larval development of Trichistrongylus culobriformis in vitro. Vet,
Recor., 150 (3), 65-60, 2002
MOLE, S; BUTLER, L. G. & IANSON, G.: Defense against dietary tannin in herbivores: A survery for
proline rich salivary proteins in mammals. Biochemical Systematics and Ecology., 18: 287-293, 1990.
MUELLER-HARVEY, I.: Identification and importance of polyphenolic compounds in
crop residues. In: Physicochemical characterization of plant residues for industrial and feed use (Eds. A.
Chesson and E. R. Ørskov), Elsevier Applied Science, London. P:88- 109, 1989.
MURDIATI, T. B. & MAHYUDIN, P.: The residual tannin and crude protein of Calliandra callothyrus and
Albizia falcataria, following incubation in heated and unheated rumen fluid. Proceedings of the third
Australian Association for Animal Production., Vol. 2A, p:814-816, 1985.
NASTIS, A. S. & MALECHEK, J. A.: Digestion and utilization of nutrient in oak browse by goats. Journal of
Animal Science., 53: 283-290, 1981.
NORTON, B. W.: The significance of tannins in tropic animal production. Tannin Livestock Human Nutr.,
92:14-23, 1999.
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com
9. OKUDA, T; YOSHIDA, T. & HATANO, T.: Antioxidant effects of tannins and related polyphenols. Chapter
7. Phenolic compounds in food and their effects on health II. (Mon-Tuan Huang, Chi-Tang Ho, and Chang Y.
Lee, Editors). American Chemical
Society, p:87-97, 1992
ORPIN, C. G.: Microbial attack on lignocellulose in the rumen. Applied Biochemestry and Biotechnology., 9:
327-328, 1984
PAMUKAU, A. M; WANG, C. Y; HATCHER, J. & BRYAN, G. T.: Carcinigenicity of tannin and tannin-
free extracts of bracken ferm (Peteridium aquilinum) in rats. Journal of National Cancer Institute., 65: 131-
136, 1980.
PERIS, J. B.: Fitoterapia aplicada. 1era Edición. Ed. Muy ilustre colegio oficial de farmacéuticos de Valencia.
Valencia, España. P:61-95. 1995.
RAMOS, G; FRUTOS, P; GIRÁLDEZ, F. J. & MANTECÓN, A. R.: Los compuestos secundarios de las
plantas en la nutrición de los herbívoros. Arch. Zootec., 47: 597 –
620, 1998.
REED, J. D.: Nutritional toxicology of tannins and related polyphenols in forages legumes. Journal of Animal
Science. Vol. 73. No. 5, pp. 56-60, 1995.
REED, J. D; SOLLER, H. & WOODWARD, A.: Fodder tree and straw diets for sheep: intake, growth,
digestibility and the effects of phenolics on nitrogen utilization. Animal Feed Science and Technology, 30:
39-50, 1990.
SHAHKHALILI, Y., FINOT, P. A., HURRELL, R. & FERN, E.: Effects of food rich in
polyphenols on nitrogen excretion in rats. Journal of Nutrition. Vol. 1. No. 20, pp. 346- 352, 1990.
SILANIKOVE, N; PEREVOLOTSKY, A., & PROVENZA, F. D.: Use of tannin-binding chemicals to assay
for tannins and their negative postingestive effects in ruminants. Animal Feed Science and Technology.,
(91)1-2:69-81, 2001.
SKENE, I. K. & BROOKER, J. D.: Characterization of tannins acylhydrolase activity in
the ruminal bacterium Selenomonas ruminantium. Anaerobe,. 1: 321-327, 1995.
TANNER, G. J; MOORE, A. E. Y LARKIN, P. J.: Proanthocyanidins inhibit hydrolysis of leaf proteins by
rumen microflora in vitro. British Journal of Nutrition., 71(6):947-958, 1994.
THI MUI NGUYEN; DINH VAN BINH & ØRSKOV E. R.: Effect of foliages containing condensed tannins
on gastrointestinal parasites. Animal Feed Science and Technology 121: 77-87, 2005.
VADIVEL, V & JANARDHANAN, K.: Nutritional and anti-nutritional attributes of the under-utilized
legume, Cassia floribunda Cav . Food Chemistry,. 73 (2): 209-215, 2001
VAN SOEST, P. J.: Nutritional Ecology of the Ruminant. O y B Books, Inc. Corvallis, Oregon. USA, p: 76-
78,105, 231, 236, 337-353, 1983.
VAREL, V. H. & JUNG, H. G.: Influence of forage phenolics on cellulolytic bacteria and in vitro cellulose
degradation. Canadian Journal of Animal Science., suppl., p:39-40, 1984
WAGHORN, G. C.: Effect of condensed tannin on protein digestion and nutritive value of fresh herbage.
Proceedings of the Australian Society of Animal Production., 18: 412 – 415, 1990
WIEGAND, R. O; REED, J. D; SAID, A. N. & UMMUNA, V. N.: Proanthocyanidins
(condensed tannins) and the use of leaves from Sesbania sesban and Sesbania goetzei as protein supplements.
Animal Feed Science and Technology., 54(1-4):175- 192, 1995.
WOODHEAD, S. & COOPERDRIVER, G.: Phenolic acids and resistence to insect attack in Sorghum
bicolor. Biochemical Systematics and Ecology., 7: 309-310, 1979.
WOODWARD, A. & COPPOCK, D. L.: Role of plant defense in the utilization of native browse in Southern
Ethiopia. Agroforestry Systems., 32(2):147-161, 1995.
SILVATEAM
Cerrito 1136 Piso 11,
(1010) Buenos Aires - Argentina
Tel.:54 11 4590-0400. Fax: 54 11 4590 0440
quebracho@indunor.com