1. Facultad ciencias de la salud
Carrera de Laboratorio Clínico
Bioseguridad: Excreciones y Sangre
Integrantes:
• Danny Muguicha
• Tercer único
• 2012-2013
3. ORINA
• Antes de comenzar, es conveniente limpiarse el glande o la vulva
con una torunda y antiséptico o con una esponja, agua y jabón.
Toma de • Se recoge la primera orina de la mañana, el chorro medio
muestra
• . Mantener abstinencia sexual el día previo a la recolección de la
muestra.
• Informar el consumo de antibióticos
Indicaciones • Para la recolección de la muestra utilice un recipiente esteril.
• La orina debe analizarse en los treinta minutos siguientes a su
recogida, para evitar que se altere su composición porque se
Conservación degraden sus moléculas o porque las modifiquen los gérmenes
4. ORINA VESICAL
Se requiere adoptar las
siguientes precauciones:
Es la orina obtenida por rigurosa asepsia,
OBTENCION DE LA punción suprapúbica o por descartando problemas de
MUESTRA citoscopia. hemostasia, con la vejiga
palpable, previa
desinfección y anestesia
local.
Se punciona ésta a 1,5 cm. Se enviará al laboratorio lo
de la sínfisis pubiana, en la TRANSPORTE antes posible en la misma
línea media, estando el DE LA jeringa de la extracción,
paciente en decúbito, con tras expulsar el aire de su
una jeringa de 10 ml. MUESTRA interior.
5. PACIENTES CON CATETER
PERMANENTE
Limpiar el catéter con
una gasa humedecida
en alcohol. Dejamos
secar unos minutos.
Pinchar directamente con la
aguja el catéter, por la zona
desinfectada, aspirando entre 3-
5 ml.
Puede enviarse en la
jeringa o pasar la orina
a un recipiente estéril.
6. HECES
OBTENCION DE MUESTRA
. Coloque las hojas del envoltorio plástico sobre
la taza, dejando una ligera depresión en el centro.
. Expulse las heces sobre el envoltorio plástico.
TRANSPORTE
Enviar la muestra en un periodo no mayor de 1
hora. Excepto para cuando sea para cultivo, que
necesita ser entregado en 30 minutos.
Los retardos pueden afectar a los resultados.
VOLUMEN DE LA MUESTRA
Heces formadas o pastosas: al menos 1 ó 2 gr. para
virología, añadir de 2 a 4 gr. más. Muestras del
tamaño de una nuez son muy adecuadas pues
permiten realizar la mayoría de las investigaciones
posibles.
7. HISOPOS RECTALES
Material Toma de Medio de
necesario muestra transporte
Se introduce el hisopo
- Hisopos rectales sobrepasando un poco el Se introducen inmediatamente
esfínter anal y se rota para en medio de transporte
con medio de adecuado (Stuart, Cary-Blair),
transporte. hacer la toma de las pues así se protege a las
criptas anales, dejar 10 a bacterias de la desecación y se
30 segundos para que se envía rápidamente al
absorban los laboratorio.
microorganismos y retirar.
- Guantes.
Se debe desaconsejarse
su uso, aunque hay que
recurrir a él si no se puede
disponer de heces
8.
9. ESPUTO
COMO TOMAR LA
MUESTRA: que la
Es una secreción que muestra sea tomada
se produce en los en la mañana al
pulmones y en los levantarse. - ESPUTO POR
bronquios que puede EXPECTORACIÓN
ser expulsada cuando Enjuague la boca con
se da una tos agua antes de - ESPUTO INDUCIDO
profunda. expectorar
Colectar la muestra
por succión.
10. ESPUTO
METODOS MAS FORMA NATURAL TRANSPORTE DE
SEGUROS: DE ELIMINACIÓN LA MUESTRA:
DEL ESPUTO
# Aspirado • Hasta procesarla debe
traqueal • un recipiente esteril estar en refirgeracion
• expectorar (4° C)
# Aspirado directamente dentro
transtraqueal del recipiente
12. TRANSPORTE:
Tan pronto como sea posible
y en el mismo tubo de
extracción. Si no es posible
el transporte inmediato,
necesita mantenerse en
TOMA DE MUESTRA refrigeración (4ºC)
Enfermedades
Se puede usar la sangre total Detectables:
o tomar solo el suero, el cual
se obtiene luego de Sarampión, rubeola,
centrifugar la sangre carbunco, SIDA,
previamente coagulada, para hepatitis viral
eliminar las células
sanguíneas de la reacción..
SEROLOGÍA:
Es el estudio que
permite comprobar
la presencia
de anticuerpos en
sangre.
13. TOMA DE
MUESTRA • Auxiliar
• Examen en el cual se
cuantifican y evalúan las en el diagnóstico
concentraciones y formas • Sangre y seguimiento
de glóbulos rojos, blancos y venosa recolectada de anemias,
plaquetas, así como la
concentración de con tubo de EDTA leucemias, síndrome
hemoglobina. febril e infecciones.
BIOMETRIA
HEMÁTICA UTILIDAD
CLINICA
14. QUÍMICA SANGUÍNEA
TOMA DE MUESTRA: ,
Se recomienda un periodo
de 12 horas después de la
última comida, es decir, 12
horas de ayuno a antes de la
extracción
PRUEBAS QUE
REALIZA: colesterol
total, proteína total y
diversos electrolitos en el
cuerpo
QUE ES:
grupo de exámenes de sangre
que suministran información
acerca del metabolismo del
cuerpo.
15. INMUNOLOGIA
Es el estudio de
las enfermedades
causadas por los
trastornos del
sistema
inmunitario
TOMA DE Mide la
MUESTRA cantidad de
Es necesario anticuerpos
estar en anti-
ayunas microsomal
16. HEMOCULTIVO
Introducir la sangre
Detecta infeccion en el frasco que TRANSPORTE Envio
es que se contiene el medio de de laboratorio lo antes
trasmiten a través cultivo. Mover los posible, a 35-37ºC o a
de torrente frascos para que la temperatura ambiente.
sanguíneo. sangre y el medio de No refrigerar
cultivo se mezclen.
Es un cultivo microbiológico de la sangre.
17. SANGRE ARTERIAL
La sangre se extrae Se limpia el área con
de la muñeca, la un antiséptico y se
ingle u otra arteria. inserta una aguja.
Luego se retira la Se presiona el sitio de
punción durante un
aguja período de cinco a diez
18. SANGRE VENOSA
• las venas de la • Se desinfecta la zona de
punción.
flexura del codo,
• Colocamos el torniquete
el dorso de la 5 cuatro dedos mas arriba
muñeca y del del codo
tobillo. • con el bisel de la aguja
hacia arriba
Lugares de Modo de
punción extracción
19. SANGRE CAPILAR
La utilizamos
para
hemoglobina,
Hematocrito LUGARES DE
PUNCIÓN son
el lóbulo de la
oreja o la parte
lateral de la
falange distal del
La primera gota tercer o cuarto
se elimina se dedo
coge un trozo de
algodón seco y
se utiliza la
siguiente gota.
20. BIBLIOGRAFIA
TERAN, Ivette. Guia de Bioseguridad para
Laboratorios Clinicos. 1ª. Ed. Ecuador:
Macrosfera, 2003. 93 p.
VIVES, Jhoan. Manual de tecnicas de
laboratorio en hematologia. 3ª. Ed. Barcelona:
Masson, 2006. 741 p.