bacterias rizosfericas

1. Las bacterias rizosféricas
que colonizan la raíz se
han denominado
RIZOBACTERIAS
BACTERIAS RIZOSFÉRICAS

2. Interacción planta-microorganismos
rizosféricos

3. Los microorganismos que
habitan en la rizosfera liberan
diferentes metabolitos entre
los que están los reguladores
del crecimiento vegetal tales
como:
etileno, ácido giberélico (AG),
ácido indol ácético (AIA),
ácido ábcisico y citoquininas.
Otras sustancias liberadas por
la actividad microbiana en la
rizosfera incluyen las
fitotoxinas tales como
el ácido para-amimo-
benzoico, ácido cumárico,
ácido acético, ácido
cianhídrico, ácido sulfhídrico
y ácido benzoico.
Además numerosas
moléculas con actividad
biostática y (antibióticos) son
liberadas por bacterias,
actinomicetos y hongos.

4. Pseudomonas
LAS RIZOBACTERIAS QUE EJERCEN EFECTOS BENÉFICOS SOBRE EL
DESARROLLO DE LAS PLANTAS SON LLAMADAS RIZOBACTERIAS
PROMOTORAS DEL CRECIMIENTO VEGETAL (PGPR)
Bacillus Arthrobacter
Serratia Azospirillum
Rhizobium Agrobacterium

5. Rizobacterias promotoras del
crecimiento vegetal

6. Fijación asimbiótica de nitrógeno
Efecto:
Incrementar la fertilidad
del suelo
Realizado por bacterias
de vida libre:
Azoarcus, Azotobacter,
Acetobacter, Alcaligenes,
Azomonas, Bacillus,
Beijerinckia, Clostridium,
Derxia, Enterobacter.

7. Solubilización de
fósforo.
Pseudomonas Bacillus,
Azospirillum,
Azotobacter, rizobios.
Producción de
sideróforos.
Efecto directo:
aumenta
disponibilidad del
fierro.
Efecto indirecto:
Inhibe el crecimiento
de potógenos.
Pseudomonas,
Bacillus, Enterobacter,
Klebsiella,
Burkholderia,
Rizobios.

8. SIN INOCULAR INOCULADA
Bacillus, Azospirillum, rizobios, Pseudomonas, Erwinia,
Enterobacter, Klebsiella.
PRODUCCIÓN DE SUBSTANCIAS FITOESTIMULANTES
POR Azospirillum EN PLANTAS DE MAÍZ

9. Tanto las plantas como los
microorganismos rizosféricos
liberan sustancias que
contribuyen a formar agregados
entre partículas minerales y el
humus.
A estas sustancias tanto de origen
vegetal (lectinas) como de origen
microbiano (gomas,
exopolisacáridos, capas mucosas
y polímeros) se les conoce como
aglutininas o agentes de
agregación del suelo.
En la rizosfera se han detectado
más de 50 actividades
enzimáticas que regulan los
procesos biológicos en este
hábitat, destacando hidrolasas,
oxidoreductasas, pectinasas y
DNAsas entre otras.
Los factores que influyen en el
efecto rizosférico incluyen las
especies vegetales, el estado
fenológico de la vegetación, la
microbiota rizosférica, el tipo de
suelo y el ambiente.

10. Métodos para evaluar
la diversidad de PGPR
Técnicas
clásicas
Técnicas
moleculares
Aislamiento de
rizobacterias
Selección de las
posibles PGPR
Demostración de la
promoción del
crecimiento vegetal
Diferentes enfoques utilizados para evaluar la
diversidad microbiana. Se utilizan técnicas
dependientes de cultivo, técnicas moleculares o
ambas.
. Esquema para evaluar la diversidad de PGPR. Se
basa en el aislamiento y caracterización de las
rizobacterias con base en su actividad in vitro e in
vivo.

11. SIMBIOSIS MUTUALISTAS

12. Nódulos en chícharo
Rhizobium sp
SIMBIOSIS Rhizobium-LEGUMINOSA

13. Casuarina como
cortina rompe vientos
SIMBIÓSIS Frankia-PLANTAS NO LEGUMNINOSAS

14. Morfología microscópica de Frankia.
NÓDULOS
SIMBIÓSIS Frankia-PLANTAS NO LEGUMNINOSAS

15. (mycos) (rhiza)
hongo + raíz = micorriza
MICORRIZA

16. La micorriza tienen gran
importancia debido a su papel
en la captación y transferencia
de nutrimentos minerales de la
solución del suelo, como el
fósforo, nitrógeno, cobre y
zinc; a las plantas.
Además, incrementan la
captación de agua y protegen
a las raíces del ataque de
patógenos
SIMBIOSIS MICORRÍCICA

17. ECTOMICORRIZA
ENDOMICORRIZA
Micorriza arbuscular

18. Azospirillum

19. En el año de 1922, Beijerink
describió una nueva especie
bacteriana, a la cual nombró
Azotobacter spirillum y
posteriormente se denominó
Spirillum lipoferum.
Hasta 1975, Von Bulow y
Döbereiner reportaron el
aislamiento de cepas de
Spirillum fijadoras de nitrógeno
a partir de raíces de maíz, y en
1978 Tarrand y col. definieron al
género Azospirillum.

20. Azospirillum es una bacteria
aerobia no fermentativa
quimioorganotrófica, Gram
negativa.
Son pleomorficos, con una
longitud de 0.7 a 1.5 µm y
presentan movilidad
gracias a la presencia de un
flagelo polar y varios
laterales.
Presenta un contenido de
G+C de 69 a 71%
Se han descrito cinco
especies:
A. brasilense, A. lipoferum,
A. amazonense A.
halopraeferans y A.
irakense

21. Contienen gránulos de
poli-β-hidroxibutirato,
como material de
reserva.
Su temperatura
óptima de crecimiento
es entre 33 y 41ºC.
A. lipoferum y A.
halopraeferans
requieren biotina para
crecer.
Crecen mejor en
ácidos orgánicos como
fuentes de carbono:
malato, lactato,
piruvato y succinato.

22. AISLAMIENTO
*(solución alcohólica al 0.05%)
K2HP4 0.1g
KH2PO4 0.4g
MgSO4 0.2g
NaCl 0.1g
CaCl2 0.02g
FeCl3 0.01g
Na2MoO4 0.002g
Malato de sodio 5g
Azul de bromotimol* 5 mL
Agar 1.75g
Agua destilada 1 L
pH 6.8

24. CARACTERÍSTICA A. Brasilense A. lipoferum A. amazonense A. halopreferans
Tamaño celular (µm) 1-1.2 1-1.5 0.8-1 0.7-1
Pleomorfismo en medio
alcalino - + - +
Color de la colonia en PDA Rosa Rosa Blanca No crece
Reducción de nitratos a
nitritos + + +/- +
Reducción de nitritos a gas +/- +/- - +
Requerimiento de biotina - + - +
Utilización de glucosa - + + -
Utilización de sacarosa y
lactosa - - + -
Utilización de α ceto-glutarato - + - +
pH óptimo de crecimiento 6-7.8 5.7-6.8 5.7-6.5 6.8-8.0
Porcentaje de G-C 69-70 69-70 66-67 68.1

25. TRIGO
CEBADA
SORGO
Azospirillum brasilense
Azospirillum - GRAMÍNEAS

26. Especie de planta Éxito de la
inoculación (%)
Incremento en el rendimiento
de la producción de grano (%)
Maíz (A) 95 11-98
Maíz (B) 62 6-43
Cebada (A) 86 17-65
Trigo (A) 83 10-58
Sorgo (A) 62 6-43
A) Cultivo sin fertilización nitrogenada;
B) Cultivo fertilizado con diferentes niveles de nitrógeno
Inoculante elaborado por La Fundación Mexicana para la
Investigación Agropecuaria y Forestal A.C
Inoculación con una mezcla de Azospirillum brasilense,
utilizando como soporte turba esterilizada.

27. El nitrógeno fijado por A.
brasilense asociado a las
raíces de las plantas se
calcula entre 2 y 3 Kg de
N/ha/año.
Un cultivo en la
agricultura intensiva
requiere una fertilización
que puede ser superior a
250 Kg N/ha/año.
Por lo que el aporte de
esta bacteria a los
cultivos es muy bajo.

28. Se ha demostrado
mediante diversas técnicas
la producción de
fitohormonas por cepas de
Azospirillum en medios de
cultivo:
Acido indol acético: por
cromatografía en placa
Citocininas:
Radioinmunoensayo
Giberelinas: Cromatografía
de gases y espectrometría
de masas

29. PRODUCCIÓN DE SUBSTANCIAS FITOESTIMULANTES
POR Azospirillum EN PLANTAS DE MAÍZ