transferencia de embriones en bovinos

1. UNIVERSIDAD NACIONAL DE LOJA
FACULTAD AGROPECUARIA Y DE RECURSOS NATURALES
RENOVABLES
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y
ZOOTÉCNIA
ALUMNA: Hidalgo Illescas Leidy Alexandra
CICLO: 9no “A”
DOCENTE: Dr. Manuel Quezada.
BIOTECNOLOGIAS REPRODUCTIVAS
TRANSFERENCIA DE
EMBRIONES

2. TRANSFERENCIA
DE
EMBRIONES
Técnica mediante la cual, los embriones (óvulos fertilizados) son colectados
del cuerno uterino de la hembra antes de la nidación(donadora ), y
transferidos al cuerno uterino de otras hembras para completar su gestación
( receptoras).

3. • Elección hembras de mayor valor genético de la
población (élite)
• Buena salud (respuesta tratamiento)
• Buen estado de carnes (no obesas o delgadas)
• Buen historial reproductivo (ciclo estral previo)
• Manejo adecuado
VACAS DONADORAS VACAS RECEPTORAS
• Elección de hembras fértiles, buenas madres,
partos fáciles
• No elevado valor genético
• Buena salud (libre enfermedades de declaración
obligatoria)
• Buena condición corporal
• Raza
• Edad (menor 10 años)
• Animal manejable

4. Producción de un número de óvulos superior a lo
habitual durante un ciclo sexual mediante la aplicación
de gonadotropinas folículo folículos.
MÉTODOS DE SUPEROVULACIÓN (VACAS)
1. ELIMINAR CL+ PMSG Ó FSH
2. ADMINISTRACIÓN DE PROGESTÁGENOS+
PMSG Ó FSH
Hormonas usadas para la superovulación
• Gonadotropinas extraídas de la hipófisis
del suino (p - FSH).
• Gonadotropina coriónica equina (eCG) +
anti eCG.
• Gonadotropina de la menopausia
humana (hMG).

5. 1. Detección de C.L (palpación rectal o ecografía transrectal)
+ prostaglandina (PG). celo 48h después
2. PG a todos animales: Celo:48h después y no celo: dosis pg
11 días y celo 48h después
3. implantes progesterona sintética 9 días. Celo:40-48h
después
Detectar celos frecuentemente
Fichas y calendarios (fecha y hora de celo)
Ciclo de donante 1 a ½ día antes que la receptora
 Inseminar frecuentemente (12, 24 y 36 h desde la
salida en celo en vacuno)
 Dosis mayores (muchos óvulos)
 Semen de calidad con muchos spz motiles
 Semen congelado, fresco o refrigerado (depositar en
cuerpo de útero a la entrada cuernos)
 Aparato reproductor más sensible (muchos
estrógenos)

7. Colocación donante potro sujección
Anestesia epidural+ lavado + atado cola
Desinfección vulva
Palpación transrectal ovarios (cl)
Introducción catéter tipo foley catéter de goma con dos vías
que se inserta en el cérvix
Lavado con tampón fosfato con SFB estériló BSA a 37ºc (1-
2l.) por un tubo, se introduce la solución de lavado en el
útero y por otro se recupera el líquido de lavado con los
embriones

8. 1. Vaciado del contenido del filtro en placas de Petri de 90
mm cuadriculadas.
4. Implante directo en la receptora o criopreservación. Las receptoras deben estar sincronizadas respecto al celo de la
donante en +/- 12 hs. Área Biotecnología de la Reproducción – Departamento de Reproducción Animal.
3. Aspiración de cada embrión transferible a una pajuela de 0,5 o 0,25 ml.
2. Búsqueda y lavado de los embriones a través de 2 pasajes en
placas de Petri de 45 mm y clasificación.

9. 1. Quirúrgica:
anestesia general (no muy utilizada) y anestesia local
(incisión flanco y acceso cuerno, pero difícil llegar a
cuerno y estresante para animal)
2. No quirúrgica: anestesia local epidural (la más
utilizada)
Lavado y sujeción cola
Palpación transrectal de C.L.
Introducción de pistola de inseminación con
pajuela embriones a través de cérvix
Deposición de los embriones en cuerno uterino
ipsilateral a ovario con C.L.