2. 1946 Primera transferencia de un embrión bovino
Historia
1951 Primera cría de la transferencia de embriones
3. Recolección de
embriones de forma
quirúrgica
• Requería anestesia general (barbitúricos, inhalación).
• Incisión de 15 cm de longitud en la línea media, por delante
de la glándula mamaria.
• Se extraían los cuernos uterinos con los ovarios.
4. Primera transferencia
no quirúrgica
1964
• Por medio de sonda a través del cérvix.
• Se crearon diferentes modelos de catéteres: rígidos,
semirígidos y flexibles, podían tener 2 vías, una para
insuflar el balón de goma e inmovilizar el catéter y la
segunda para inyectar y recolectar el medio.
5. Donante
• Vacas de tercer parto, Novillas.
• Superioridad genética.
• Alta fertilidad, con actividad cíclica.
• Probabilidad de producir grandes cantidades de embriones.
• Condición corporal ideal de 3.5 en vacas lecheras y 7 en vacas de carne.
• No presentar enfermedades hereditarias.
• No presentar enfermedades reproductivas.
• Tener el registro de vacunas obligatorias y necesarias según la incidencia de
enfermedades en la zona
6. Receptoras
• Ideal vacas jóvenes secas.
• Buena condición corporal, novillas mayores de 24 meses, que hayan alcanzado el
75% del peso vivo adulto.
• Libre de enfermedades y trastornos reproductivos.
• Ciclo estral regular.
• No tener dificultad de parto.
• Probada fertilidad y buena habilidad materna.
7. Ventajas:
• Evaluación eficiente de la capacidad fertilizante de espermatozoides y ovocitos.
• Difusión del uso de semen valioso y escaso.
• Prolongación de la vida reproductiva de animales genéticamente valiosos, inmaduros o
muy viejos.
• Control de enfermedades de la esfera reproductiva.
• Obtener descendientes de hembras de elevada calidad genética
8. Desventajas:
• Porcentaje embriones transferibles, 30 - 40%.
• Reducción del potencial de desarrollo pre y post implantacional.
• Bajos porcentajes de gestación (30 a 40%).
• Baja resistencia a la Criopreservación,.
• Incremento de la mortalidad embrionaria.
• Incremento del porcentaje de distocias por exceso de volumen fetal
9. Superovulación
• Estimulación hormonal de la donante para la formación y desarrollo de varios
folículos y su ovulación en ambos ovarios en un momento previamente fijado.
• En promedio una vaca donante superovulada puede tener 8 a 10 huevos
colectados, de 6 a 7 embriones transferidos y 3 a 4 gestaciones
10. Protocolo de Superovulación
•Día 0, colocamos implante CIDR (dispositivo a base de progesterona)
intravaginal por nueve días.
•Día 7, colocamos FSH (Folltropin) durante cuatro días, dos dosis por día una
la mañana y una en la tarde.
•Día 9, retiramos implante y colocamos una dosis de prostaglandina
•Día 10, colocamos últimas dos dosis de FSH
•Día 11, detectamos celo, si se detecta en la mañana se insemina en la tarde y
el celo se detecta en la tarde se insemina al otro día.
•Después de la inseminación se espera 7 días para hacer el lavado y colecta
embriones
11. Protocolo hormonal para Receptoras
BE (benzoato de estradiol), P4 (progesterona), PGF2α (prostaglandina F2α; cloprostenol sódico), eCG (gonadotropina
coriónica equina), GnRH (hormona liberadora de gonadotropinas; acetato de buserelina) y TETF (transferencia de
embriones a tiempo fijo).
12. Recolección o lavado de embriones:
• Se realiza al día 7 después de la primera I.A. de la vaca donadora, mediante un lavado
uterino transcervical.
• Se puede encontrar embriones en estadios de mórula y blastocisto, estadios más
estables, hace posible que sean transferidos directamente (transferencia en fresco) o que
resistan a actividades como la congelación y micromanipulación.
13. Materiales:
Circuito de lavado
Sonda Foley (Con estilete o
mandril)
Medio de lavado (PBS)Dilatador de cérvix
Guantes de
palpación
ginecológica
Filtro de recolección
Jeringas
Lidocaína al 2%
15. Se limpia y desinfecta la región
perineal y vulvar
16. dilatación del cérvix para facilitar el paso de la
sonda, esto se realiza con el dilatador de cérvix.
Se introduce un brazo por vía rectal y con el
otro se introduce la sonda Foley (con el estilete
o mandril) vía vaginal, se pasa el cérvix
17. Se infla el balón o globo con 10 -15
ml de aire o de solución salina o PBS
Se procede a introducir el medio de
lavado
18. El líquido debe ser colectado y pasa a
través de un filtro en donde van a ser
colectados los embriones.
Finalizada la recolección de embriones,
desinflar el globo y extraer la sonda.
19. Circuito abierto con flujo discontinuo
Inyección y recolección con una jeringa
Tipos de lavado uterino:
El medio se inyecta y recolecta por la misma vía y con
la misma jeringa, se utilizan 2 jeringas de 15ml, 2
jeringas de 20ml, 2 jeringas de 25ml y 2 jeringas de
30ml, estas jeringas son especiales para lavar
embriones, en esta técnica se descarga un volumen de
medio (PBS) fijado por el operador.
20. Circuito cerrado con flujo continuo
Con este método se emplean catéteres de 3 vías,
rígidos o flexibles.
1era vía, es destinada a la inyección del medio para el
lavado.
2da vía, se inyecta aire o medio para llenar el balón.
3era vía, se recolecta la solución de lavado con los
embriones
21. Laboratorio:
Los filtros que fueron utilizados para el
lavado son llevados al laboratorio para
luego trasladar los embriones atrapados a
las placas de petri
La persona encargada de realizar la
selección o búsqueda de los embriones
utiliza un microscopio y una placa de petri
grande cuadriculada
23. Llenado de
pajillas:
• Usar jeringas de 1 mL desechables para llenar
pajillas.
• Primero llenar la pajilla con etilenglicol, luego dejar
un espacio de aire, seguido de etilenglicol o
glicerol con el embrión (el embrión queda en la
parte media de la pajilla), llenar de nuevo un
espacio de aire y por último llenar con etilenglicol
o glicerol.
• El espacio de aire sirve de ayuda al momento
cuando se transfiere el embrión a que no quede
adherido en la pajilla o en la punta de la pajilla y
salga todo el contenido