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1. UNIVERCIDAD NACIONAL HERMILIO VALDIZÁN
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
ESCUELA PROFECIONAL DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
CURSO:
PRINCIPIO DE MANEJO INTEGRADO DE ENFERMEDADES DE PLANTAS
DOCENTE: : Mg. Sc. LUIS VILLODAS ROSALES
INTEGRANTES:
 CASACHAGUA LIBERATO JHIM
 CERVANTES SOTO GREIS
 CONDOR ANAYA EZEQUIAS
 DELGADO JARA EMILIANO ANTONIO
HUÁNUCO – PERÚ
2021
TEMA:
CONTROL BIOLÓGICO DE RHIZOCTONIA EN VARIEDAD DE
CULTIVOS

17. Figura 2. Plantas recién emergidas, una mostrando
tallos sanos y otra, mostrando: a) Un tallo muerto y
b) Otro tallo con lesiones necróticas
Figura 1. Planta recién emergida mostrando algunos
brotes muertos y otros con lesiones necróticas al
nivel del cuello

26. CUTIVO: FRIJOL
• MICROORGANISMOS BIOCONTROLADORES:
Control de Rhizoctonia solani en frijol común con rizobacterias y productos naturales
• Con el objetivo de evaluar el efecto de rizobacterias y productos naturales sobre el control de la
enfermedad causada por Rhizoctonia solani en frijol común, se desarrollaron experimentos in vitro y
en condiciones semicontroladas. Las bacterias Pseudomonas fluorescens y P. aeruginosa inhibieron
totalmente el crecimiento in vitro de R. solani, en la evaluación del método de cultivo dual o doble
capa. Bacillus subtilis y B. cepacia mostraron un efecto inhibitorio menor, aunque superior al 65 %;
mientras que ninguno de los tratamientos evaluados por el método de los pocillos inhibió
totalmente el crecimiento del organismo patógeno. Las evaluaciones en condiciones
semicontroladas mostraron que todos los tratamientos difieren estadísticamente respecto al control
en cuanto a la proporción de plantas enfermas, aunque los mejores resultados se obtuvieron con la
utilización de las rizobacterias, sin diferencias estadísticas respecto al control químico.

27. CULTIVO: SOJA
• CONTROL DE RIZHOCTONIA SOLANI EN SOJA CON FORMULACIONES DE TRICHODERMA
HARSIANUM CON DISTINTOS PERIDOS DE ALMACENAMIENTO

29. CULTIVO: ARROZ
• CARACTERIZACIÓN PRELIMINAR DE LA RESISTENCIA DE GERMOPLASMA DE ARROZ AL AÑUBLO
DE LA VAINA (RHIZOCTONIA SOLANI KUHN)
MATERIALES Y MÉTODOS
Germoplasma evaluado Se evaluaron ocho líneas avanzadas de FEDEARROZ, ocho variedades
comerciales de Colombia, doce líneas provenientes de Estados Unidos con resistencia al patógeno en
ese país, otras líneas que la literatura reporta como resistentes a esta enfermedad, principalmente en
el Asia, y tres accesiones de tres especies silvestres (Oryza rufipogon, O. barthii y O. glaberrima).
Siembra del material a evaluar La siembra del material se hizo en potes de 20 cm de diámetro, los
cuales contenían aproximadamente 3 kg de suelo estéril por pote. Los materiales se fertilizaron con el
equivalente a nitrógeno (N) (180kg/ha), fósforo (P) (60kg/ha), y potasio (K) (60kg/ha). La inoculación
con el hongo se hizo a los 65 días de edad de las plantas, época en la cual empiezan a aparecer los
síntomas de esta enfermedad en condiciones naturales o de campo.
Aislamientos
Se utilizaron catorce aislamientos provenientes de diferentes zonas arroceras del país y de diferentes
variedades comerciales, colectados desde el año de 1988

30. • Inoculación
• Para hacer la inoculación se tomaron las cajas de petri donde se había sembrado
el hongo y, con la ayuda de un sacabocado de 5 mm de diámetro, se hicieron
cortes en el medio de cultivo formando bloques cilíndricos, tratando que en cada
bloque quedara, por lo menos, un esclerocio. Luego, estos bloques se colocaban
cerca al suelo en la base del tallo de las plantas, dejando sólo un bloque por planta
y asegurándose que el micelio y el esclerocio quedaran en contacto directo con el
tallo. Las plantas ya inoculadas se colocaron dentro de una cámara plástica, en la
cual se mantuvo una temperatura promedio de 28o C y una humedad relativa que
oscila entre el 80% y el 100%. Para lograr que la humedad relativa se mantuviera
en este rango se prendían dos humidificadores dentro de la cámara, dos horas al
día (10:00 am11:00 am y 3:00 pm - 4:00 pm) La cámara permanecía cerrada
durante la noche y en el día se destapaba para evitar que la temperatura fuera
superior a 32o C. Las plantas se evaluaron quince días después de la inoculación.

31. • Diseño experimental
• Se utilizó un diseño de bloques al azar con cuatro repeticiones por línea de arroz. Cada repetición
contó con cinco plantas, para un total de veinte plantas por línea. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Aunque
no se detectó un adecuado nivel de resistencia al añublo de la vaina en los materiales evaluados
bajo este método de inoculación, los resultados se presentarán por grupos de materiales evaluados.
• Grupo 1. Variedades comerciales de Colombia. Las frecuencias de reacción resistente - intermedia
de estas ocho variedades comerciales, a los catorce aislamientos de Rhizoctonia solani utilizados,
oscilaron entre 21% y 54%, lo cual nos muestra que en este grupo de materiales no hay un buen
nivel de resistencia al patógeno (Tabla 3).
• Grupo 2. Especies silvestres y materiales reportados como resistentes a R. solani. Entre las especies
silvestres evaluadas, Oryza rufipogon mostró una frecuencia de reacción de resistencia - intermedia
al 80% de los aislamientos probados. O. barthii y O. glaberrima fueron susceptibles al 100% y 89%
de los aislamientos, respectivamente. Entre el germoplasma reportado con resistencia en Asia, la
variedad Remadja fue resistente o intermedia al 80% de los aislamientos probados. Otras fuentes
reportadas como resistentes, fueron susceptibles a más del 50% de los aislamientos utilizados en la
evaluación (Tabla 4). Grupo 3. Líneas avanzadas. En este grupo se observó un nivel de resistencia
muy bajo, siendo estas susceptibles a un 45-90% de los aislamientos probados (Tabla 5).
• Grupo 4. Líneas y/o variedades de arroz de Estados Unidos. Este grupo se inoculó con un solo
aislamiento altamente virulento, observándose una alta susceptibilidad de estos materiales a R.
solani. Aunque estas líneas se han reportado como resistentes al añublo de la vaina en Estados
Unidos, fueron altamente susceptibles en nuestra evaluación (Tabla 6), sugiriendo la existencia de
diferencias en virulencia entre las poblaciones del patógeno, apoyando las sugerencias de Rosewich
et al,1999

32. • CONCLUSIONES
• El método de inoculación de R. solani y de incubación de las plantas utilizadas en este estudio,
ejerce una presión adecuada de la enfermedad, permitiendo hacer una confiable evaluación de
germoplasma, sin correr el riesgo de escapes a la infección en la caracterización de la resistencia al
añublo de la vaina. Los resultados muestran que la mayoría de las líneas avanzadas de arroz y
variedades comerciales de Colombia, presentan una alta susceptibilidad al añublo de la vaina. Se
hace necesario la identificación de posibles fuentes de resistencia a R. solani, incluyendo tanto
evaluaciones de invernadero como de campo en diferentes sitios, para involucrarlos en los
Investigación Investigación 10 programas de mejoramiento de arroz que pretendan liberar
variedades resistentes al patógeno. El nivel de resistencia de la variedad Remadja y la especie
silvestre Oryza rufipogon, observadas en este estudio, debe ser evaluado bajo condiciones
naturales o de campo, para determinar Tabla 1. Aislamientos de Rhizoctonia solani utilizados en
inoculaciones en invernadero para la evaluación de germoplasma de arroz por su resistencia al
añublo de la vaina. Tabla 2. Escala de evaluación para Rhizoctonia solani. AR= Altamente
Resistente R= Resistente I= Intermedia S= Susceptible AS= Altamente Susceptible Fuente: IRRI
1996 si estos materiales se pueden utilizar como posibles donantes de resistencia a R. solani en
poblaciones de líneas mejoradas que se generen en un futuro. Se recomienda evaluar más
accesiones de O. rufipogon u otras especies silvestres para identificar posibles fuentes de
resistencia.

33. AGROQUIMICOS

34. INGREDIENTE ACTIVO:
Thifluzamide……………………………………………………..………………………..240 g/l
(2′,6′-dibromo-2-methyl-4′-trifluoromethoxy-4-trifluoromethyl-1,3-thiazole-
5-carboxanilide)
Grupo Químico: Thiazolecarboxanilidas
USOS ACTUALES: Arroz (Oriza sativa L.), Papa (Solanum tuberosum)
Mecanismo de Acción: el ingrediente activo de PULSOR 2 SC, conocido
como THIFLUZAMIDE, posee fuerte atracción electrolítica y efectos
lipofílicos, por cuenta de su estructura química. Estas propiedades hacen que
PULSOR 2 SC sea un potente inhibidor de la enzima succinato –
deshidrogenasa, paralizando el Ciclo de Krebs y evitando la oxidación
aeróbica del piruvato en las células del hongo.
Modo de Acción: PULSOR 2 SC es un fungicida sistémico de traslocación
lenta, con propiedades tanto preventivas como curativas. Ofrece efecto
prolongado de prevención y erradicación del hongo Rhizoctonia solani.
PULSOR 2 SC también posee movimiento traslaminar y lateral en las hojas,
gracias a su buena absorción foliar, por lo cual brinda control adicional sobre
el desarrollo horizontal del hongo.
Adicionalmente, PULSOR 2 SC se mueve lentamente por vía xilema, por lo
que protege totalmente la planta, durante alrededor de 20 días de
posterioridad al tratamiento.
Apariencia: Líquido viscoso blanco a marrón.

35. capacidad antagónica de Trichoderma spp., frente al hongo
Rhizoctonia solani en cebolla (Allium cepa L)
Trichoderma spp. Es una buenas posibilidades como antagonista de hongos patógenos de las
plantas, actuando como hiperparásito competitivo, de la misma manera debido a su ubicuidad,
facilidad de aislamiento, resistencia y persistencia en cultivos y cosechas, promueve una continua
y progresiva investigación y análisis en estudios de control biológico de enfermedades en plantas
(Tovar, 2008)
Bajo este contexto se propone el uso de Trichoderma spp., que es un hongo que inhibe el
desarrollo y propagación de Rhizoctonia solani en algunos vegetales. Sin embargo, no se conoce
si el tratamiento con Trichoderma spp en Allium cepa L (cebolla roja o cebolla de bulbo) induce
respuestas que las protejan contra Rhizoctonia solani. Por lo cual, es importante evaluar los
cambios inducidos en la cebolla tras la inoculación con Trichoderma spp y su relación con el
control de R. solani. Los resultados emitidos de la presente investigación nos permitirán apoyar a
los programas ya existentes de manejo integrado de plagas, empleando recursos bilógicos, lo que
constituye en una tecnología limpia y amigable con el ambiente. Siendo los beneficiaros directos
el gremio de productores de cebolla de cantón Riobamba.

36. capacidad antagónica de Trichoderma spp., frente al hongo Rhizoctonia
solani en cebolla (Allium cepa L)
La cebolla es una hortaliza de consumo masivo y de igual manera que en otras hortalizas y
vegetales, las enfermedades causadas por los hongos oprimen la producción y la calidad final del
producto, por ende se ha utilizado productos químicos durante décadas para el control de las
enfermedades en los diferentes cultivos agrícolas, lo que ha dado lugar a que se busque
alternativas amigables con la posibilidad de sustituir o disminuir el uso de estos productos en el
control de enfermedades.
Rhizoctonia solani, es un patógeno del suelo, que gracias a sus esclerocios, tolera cambios
ambientales, coloniza gran variedad de materia orgánica, vive en el suelo hasta diez años en
ausencia de hospedero e incluso en ambientes carentes de nutrientes. Además puede escapar
con facilidad de la acción de fungicidas de origen sintético (Estefanía chauca, 2018)

37. Micoparasitismo: Es un proceso complejo en la interacción antagonista-
patógeno, que ocurre en cuatro etapas: crecimiento quimiotrófico,
reconocimiento, adhesión y enrollamiento, y la actividad lítica. La última
etapa consiste en la producción de enzimas líticas extracelulares,
fundamentalmente quitinasas, glucanasas y proteasas, que degradan las
paredes celulares del patógeno y posibilitan la penetración de las hifas.
Se ha encontrado en especies de Trichoderma harzianum el potencial de
aumentar el crecimiento y desarrollo de las plantas. Lo anterior puede
explicarse por la inhibición de patógenos menores y a la producción de
factores que estimulan el crecimiento de la planta y favorecen la toma de
nutrientes (Hernán C., Graciela G. y Karla G. 2015).

38. HONGOS CONTROLADOS
POR Trichoderma spp.
ENFERMEDAD CULTIVO
Rhizoctonia solani
Pudrición
algodonosa,
volcamiento.
Zanahoria, tomate,
lechiga, repollo, café,
papa, arveja, cebolla,
ajo, pimentón, etc.
Sclerotinia sclerotiorum Pudrición
algodonosa,
volcamiento
Habichuela, tomato,
lechuga, repollo, café,
papa, arveja, cebolla,
ajo, pimentón, etc.
Fuente: Adaptado de: Herrera – Estrella y Carsolio, 1998 y Chaet
and Inbar, 1994.
NOMBRE COMERCIAL: IPTA

39. PROTOCOLO DE APLICACIÓN DE LA SUSPENSIÓN DE ESPORAS
- Se debe agitar la suspensión de Trichoderma spp. antes de su utilización.
- Se recomienda utilizar la dosis de un (1) litro por cada 19 litros de agua.
- El equipo de aplicación debe estar limpio de residuos de fungicidas.
- El agua utilizada debe ser limpia y libre de desinfectantes.
Se recomienda que se aplique inmediatamente en horas de la tarde, al ocultarse el
sol.
- Es adecuado para la germinación de las esporas, que se efectúe un riego antes o
después de la aplicación de Trichoderma spp.
- Con cuatro (4) litros de la suspensión, se puede llegar a cubrir específicamente,
una hectárea de frutilla

40. NOMBRE COMERCIAL: TRIBIOL WG
DOSIS RECOMENDADA
• Emplee de 1 a 1.5 kilogramos por hectárea en el cultivo
o el número de plantas de almacigo y/o vivero que
serán sembradas en dicha área.
APLICACIÓN
• Todas las aplicaciones de este producto biológico debe
ir acompañado de un tensoactivo cuya finalidad es la de
ayudar a que el producto penetre fácil y rápidamente al
suelo. Si su aplicación es foliar debe ir acompañado de
un emulsificante con factor UV que proteja a las
esporas de los rayos ultravioleta.
PRECAUCIONES EN EL USO:
• Consérvelo en lugares frescos o refrigerados
• No exponer a altas temperaturas
• Emplee tapabocas para evitar inhalarlo
• Evite el contacto con los ojos

41. Control biológico de (Rhizoctonia solani)
con Trichoderma harzianum
Rizoctonia solani Kühn es un patógeno habitante del suelo que ataca tomate provocando caída
de plántulas. Lo cual hace necesario buscar un método de control que sea más compatible al de
los fungicidas y a la fumigación con bromuro de metilo, tratamiento que se encuentra altamente
cuestionado, puesto que afecta a la capa de ozono y provoca alteraciones en el medio ambiente
(Ristaino y Thomas, 1997; Díaz, 1996). Por lo tanto, alternativas como la solarización y el uso de
biocontroladores se presentan como prácticas viables y compatibles con el medio ambiente.

42. MECANISMOS DE ACCIÓN
El mecanismos de acción de Trichoderma es mediante:
competencia directa (por espacio y nutrientes), producción de metabolitos antibióticos, la
inactivación de enzimas del agente patógeno, modificación de las condiciones ambientales,
producción de sustancias promotoras del crecimiento vegetal y por micoparasitismo.
Competencia: La competencia por espacio y/o nutrientes ha sido considerada uno de los
mecanismos de biocontrol. Tiene una rápida tasa de desarrollo, lo que hace que sea un fuerte
competidor por espacio a la hora de colonizar la rizósfera. Por otra parte, tiene una capacidad
superior de movilizarse y tomar los nutrientes del suelo, siendo muy versátil para utilizar
sustratos como fuente de carbono y nitrógeno, lo que permite colonizar un medio rápidamente,
evitando la proliferación de otros microorganismos en el mismo hábitat. (Intagri S. C., 2017)
Producción de metabolitos (Antibiosis): El género Trichoderma tiene la capacidad de producir
compuestos orgánicos volátiles y no volátiles, que juegan un papel importante inhibiendo el
crecimiento y desarrollo de microorganismos patógenos. En estas interacciones están
involucradas enzimas líticas extracelulares, antibióticos y compuestos de bajo peso molecular.
ón de esporas, que ayuda a la colonización de diversos sustratos y del suelo. (Intagri S. C., 2017)

43. MECANISMOS DE ACCIÓN DE (Trichoderma harzianum)
En la acción biocontroladora se han descrito diferentes mecanismos de acción que regulan el
desarrollo de los hongos fitopatógenos dianas. Entre estos, los principales son la competencia por
espacio y nutrientes, el micoparasitismo y la antibiosis, los que tienen una acción directa frente al hongo
fitopatógeno. Estos mecanismos se ven favorecidos por la habilidad de los aislamientos de
Trichoderma para colonizar la rizosfera de las plantas.
Danay I. y Martínez R. (2009). sugerido distintos mecanismos responsables de su actividad
biocontroladora, que incluyen, además de los mencionados, la secreción de enzimas y la
producción de compuestos inhibidores.
Liu y Baker (1980) plantearon que el micoparasitismo de Trichoderma sobre R. solani es el
responsable de la disminución de la densidad de inóculo de este patógeno y que se corresponde
con un incremento en la densidad de población de Trichoderma sp.
Crecimiento quimiotrófico: El quimiotropismo positivo es el crecimiento directo hacia un estímulo
químico. En la etapa de localización del hospedante, se ha demostrado que T. harzianum puede detectarlo a
distancia y sus hifas crecen en dirección al patógeno como respuesta a un estímulo químico (Danay I. y
Martínez R.,2009).

44. NOMBRE COMERCIAL: AWESOME-AG® DUO
PRODUCTO AWESOME-AG
•TIPO: Fungicida
•COMPOSICIÓN: Trichoderma harzianum 1.5%
Cultivo
Enfermedad Dosis
Nombre común
Nombre
científico
Kg/200L Kg/Ha
 Tomat
e
 Vid
 Pudrición de
raíces o del
tallo
 -Oidiosis
 Rhizoctoni
a solani
 Erysiphe
necator
0.4 – 0.5 1.2 – 3

45. • NOMBRE COMERCIAL: Trichotrópico WP
TIPO DE PRODUCTO: Biológicos
INGREDIENTES ACTIVOS: Trichoderma harzianum y
Trichoderma koningii 25%
Ofrece una base nutritiva que promueve la rápida reproducción
de los hongos al momento de la hidratación 75% Incluye el
aceite emulsivo agrícola, indispensable para:
• Obtener una mezcla homogénea del producto en agua. Por
ser las esporas del hongo hidrofóbicas, es indispensable el
aceite para una buena humectación del polvo mojable con el
agua.
• Proteger la espora del hongo del efecto letal de la radiación
solar. • Una mayor adherencia al follaje, frutos, tallos, raíces y
suelo.

46. • NOMBRE COMERCIAL: PRQTECTOR W.P.
COMPOSICIÓN GARANTIZADA:
El producto posee el siguiente ingrediente activo en
concentración de 200 millones de Conidias Viables de
Trichoderma harzianum por cada gramo de producto e inertes
u.s.p.
USOS Y DOSIS:
Para verificar usos y dosis en cultivos de acuerdo a las
diferentes plagas presentes, revise la ficha técnica de
PRQTECTOR TRICHODERMA HARZIANUM además
consulte con un ingeniero agrónomo.
COMPATIBILIDADES:
Puede usarse en mezcla con Insecticidas y Herbicidas.
No debe usarse en mezcla con Fungicidas.
Puede usarse con Coadyuvantes que no tengan alcohol.

47. Cia, (1977) menciona que el cultivo del algodón (Gossypium hirsutum) es afectado por
diversos hongos geofilicos. sobresaliendo Rhizoctonia solani Kühn, como uno de los
patógenos radiculares más comunes e importantes. al ocasionar pérdidas debido a las
pudriciones de semillas o de cancros en el hipocótilo, culminando con ella caída de
plántulas (Watkins,1981).
Andrade D., & Mariano R., (1996) afirman que el control de R. solani es
extremadamente difícil, porque el uso variedades resistentes la rotación de cultivos y el
tratamiento de semillas o suelos con fumigadas muchas veces no son eficaces. debido
principalmente a la variabilidad genética que presenta el patógeno, así como a la
capacidad de sobre vivencia que posee en el suelo y semillas, pudiendo infectar
diferentes cultivos,
Entre las bacterias utilizadas para el biocontrol de Fitopatógenos que habitan el suelo.
Se destacan las bacterias fluorescentes del género Pseudomonas, que son
metabólicamente mas activas, con alta tasa de crecimiento y predominan en la
rizósfera (Lemanceau. 1992)
Control biológico de Rhizoctonia Solani en algodón (Gossypium hirsutum)
con psedomonas sp.

48. Andrade D., & Mariano R. (1996) Fueron utilizadas semillas de algodón con tres cepas
de psedomonas floresencentes en R. solani pertenecientes al grupo de anastomosis 4
(AG-4), provenientes de plantas de algodón (RS-4), Vigna sp. (RS5) y frijol (RS-6) con
síntomas de cancro en el hipocótilo y caída de plántulas. Los cepas de psedomonas P-
B, CR-27, CB-3B, CB-33 y P-5, fueron más eficaces en el control de los cepas de R.
solani ( RS-4, RS-5 y RD-6), con densidades de inóculos de 50, 100 y 150 mg/kg de
suelo. Las cepas bacterianas presentaron mayores niveles de control que el fungicidas
Quintozene en todas las condiciones.
Control biológico de Rhizoctonia Solani en algodón (Gossypium hirsutum)

49. Los principales mecanismos de biocontrol que presenta este grupo de bacterias
incluyen competición de micronutrientes debido a la exudación de las semillas o raíces.
bloqueo de sitios de penetración, producción de sideróforos, producción de antibióticos
e inducción de resistencia (Défago & Haas, 1991)
Investigadores hacen hincapié en la importancia de la acción de los insectos
parasitoides y predadores sobre las plagas del algodonero, que en muchas veces se
desestima por falta de conocimiento. El estudios sobre la capacidad de parasitismo
han demostrado la eficiencia de Lysiphlebus testaceipes sobre Aphis gossypii;
Trichogramma sp. sobre los huevos de Alabama y Heliothis. Mientras que, Campoletis
sp. parasita las larvas pequeñas de Heliothis.
Control biológico de Rhizoctonia Solani en algodón (Gossypium hirsutum)

50. MECANISMOS DE ACCIÓN DE (psedomonas sp.)
Los efectos directos se evidencian en ausencia de otros microorganismos, e
incluyen la Fijación Biológica del Nitrógeno (Sandra P. 2015) y la síntesis de
fitohormonas. Los mecanismos indirectos se ponen de manifiesto cuando
ocurre la interacción del microorganismo de interés con un fitopatógeno,
provocando la disminución de los efectos dañinos de este último sobre la
planta. Los mecanismos de control biológico más ampliamente reconocidos
son: la competencia por un nicho ecológico o sustrato, la producción de
inhibidores aleloquímicos y la inducción de resistencia sistémica en las plantas
hospedantes ante un amplio espectro de patógenos y/o estrés abióticos

52. CONTROLADORES BIOLOGICOS
DE LA RHIZOCTONIA SOLANI
EN GERMINADORES DE CAFE

53. LA RHIZOCTONIA SOLANI EN GERMINADORES DE
CAFE
• El volcamiento, mal del
talluelo presenta hifas
jóvenes ramificadas o
damping-off de las
chapolas en ángulos
rectos cercanos al septo
de café, es una
enfermedad distal, que
tienen una relación
causada por
Rhizoctonia solani

54. MECANISMOS Y
BIOCONTROLADORES
Trichoderma harzianun : es un hongo antagonista que
presenta cualidades preventivas y de control
biológico para el control de enfermedades
fungosas que afectan cultivos de importancia
económica como el cafe, presenta características
como la estimulación del crecimiento y
desarrollo vegetativo de plantas jóvenes. Tiene
la habilidad de colonizar las raíces de las plantas,
sin permitir que otro hongos fitopatógenos
infecten la raíz.

55. MODO DE ACCION
Al aplicar el hongo a las semillas, recién trasplantadas o plantas establecidas,
coloniza las raíces formando una capa protectora sobre ellas con la ventaja que el
hongo crece con las raíces formando una especie de “guante”, protegiéndolas
siempre. Esta protección la hace de tres maneras:
El primer tipo protección, lo logra al consumir el exudado que liberan las raíces.
este exudado es el alimento inicial que usan los hongos patógenos para infectar la
planta y muchos de estos hongos patógenos usan este exudado para encontrar las
raíces que ellos infectan.
El segundo tipo de protección. se debe a que es un hongo antagonista, por lo que
cualquier hongo patógeno que atraviesa el “guante” protector es destruido,
consumiéndolo y usándolo como alimento.
El tercer tipo de protección es por exclusión. Esto es porque Trichoderma ocupa
todos los espacios cercanos a las raíces formando una barrera física y excluyendo
de esa área a cualquier hongo patógeno que se encuentre en esos espacios.

56. TRICHODERMA
HARZIANUM TRICHODERMA HARZIANUM GREEN
CARACTERÍSTICAS MICROBIOLÓGICAS
• Concentración: contiene no menos de 1×10 9 Esporas/dosis.
• Germinación: 98% entre 24 y 48 horas.
• Pureza: 100%
CARACTERÍSTICAS FISICOQUÍMICAS
• Ingrediente activo: Trichoderma harzianum
• Ingrediente aditivo: 99% de activador energético (polisacáridos y aminoácidos).
• P.H. 5
• Empaque: Envase de 1 litro o bidón de 20 litros.
• Es un hongo que ataca, parasita y desplaza otros hongos que ocasionan
enfermedades a los cultivos en sus raíces, tales como: Phythipthora, Fusarium,
Rosellinia, Rhizoctonia, Selerotium, Pythium, Armillaria, entre otras.
VENTAJAS: no ocasiona resistencia – limitan el desarrollo de otros hongos y nematodos
perjudiciales – compite rápidamente por espacio – estimula el desarrollo de raíces
sanas y estimula el desarrollo de micorrizas.

57. CONTROLADORES BIOLOGICOS DE LA
RIZOTOMIA EN EL CULTIVO DE CAPULI

58. CONTROLADORES BIOLOGICOS DE LA RHIZOCTONIA EN EL
CULTIVO DE CAPULI (Prunus salicifolia
Rhizoctonia solani es un hongo
transmitido por el suelo que se
encuentra de forma natural en el suelo
de los campos agrícolas, jardines, etc.
Produce esclerocio, una estructura de
consistencia dura y de color marrón
oscuro que le permite sobrevivir en el
suelo o infectar tejido vegetal por
años.
Con una amplia variedad de
huéspedes, Rhizoctonia solani puede
provocar una variedad de
enfermedades, como la pudrición del
tallo, la pudrición de la raíz.

59. MECANISMOS Y
BIOCONTROLADORES
-BACTERIAS Y HONGOS
BACTERIAS
la alternativa de regulación biológica con rizobacterias ha incrementado
significativamente, las cuales han sido denominadas Rizobacterias Promotoras de
Crecimiento de Plantas (PGPRs) . Las PGPRs son microorganismos del suelo,
generalmente bacterias, que se relacionan fisiológica y bioquímicamente de manera
natural con las raíces de las plantas; facilitan de manera directa o indirecta la
disponibilidad de determinados nutrientes para las plantas.
HONGOS
Entre los organismos mas importantes usados como agentes de control se encuentra
los hongos micorricicos arbusculares (HMA) y algunas especies de genero Trchoderma
los pincipales mecanismo responsable de control biológico es la competencia de
nutrientes y espacio en la rizosfera de la planta, la inducción de resistencia inducida, y
la producción de metabolitos antifungicos.

60. MODO DE ACCION
Los metabolitos secundarios producidos por algunas cepas de las
PGPRs pueden funcionar como antagónicos (involucran aspectos de
control biológico, suprimen o inhiben el crecimiento de
microorganismos fitopatógenos) mediante la producción de
sideróforos, antibióticos, acción de enzimas líticas (glucanasas,
quitinasas) o inducción de mecanismos de resistencia . Varios estudios
reportaron que las PGPRs incrementan la resistencia en plantas frente
a las enfermedades provocadas por la Rhizoctonia solani y Fusariun
oxysporum
Las bacterias asociadas con la rizósfera de las plantas son capaces de
generar varios mecanismos por los cuales afectan positivamente su
crecimiento y desarrollo se conocen mecanismos directos e indirectos
para la promoción del crecimiento vegetal. Los mecanismos directos se
relacionan con la producción de fitohormonas de tipo auxinas y
giberelinas o la regulación de la producción de hormonas por parte de
la planta.

61. MODALIDADES DE USO
-Coníferas, plantas tropicales, frutales, hortalizas, flores, plantas de maceta, árboles y arbustos.
- 0.5 kg en 100 lts de agua de PHC® Healthy Start® 12- 16-12 y drene la zona de la raíz de la
planta. Para mejores resultados aplique 2 veces al mes.

62. INGREDIENTE
ACTIVO
CULTIVO DOSIS RECOMENDACION
ES
Número promedio
de propágulos:
400 -Rhizophagus
irregularis -
Rhizophagus clarus
- Rhizophagus
aggregatus -
Rhizophagus
proliferum -
Claroideoglomus
etunicatum
Semilleros de
frutales: aguacate
granadilla
tomate
uva
capuli
lulo y otros
Control y
prevención
Rhizoctonia solani
Fusariun
oxysporum
Diluir 1 mL de
solución en un litro
de agua y asperjar
los semilleros
inmediatamente
después de la
siembra
ENDORHIZA® debe
ser colocada en la
zona de desarrollo
de las raíces.
Cuando se
inoculan semillas
es importante
colocar el
producto durante
la preparación del
suelo. En cultivos
establecidos el
producto se aplica
localizándolo cerca
del área de las
raíces o por los
sistemas de riego
goteo y aspersión

63. BIBLIOGRAFIA
 Santander C., Montealegre J. y Herrera R. ( 2003) control biológico de rhizoctonia solani en tomate
en suelos previamente sometidos a solarización y bromuro de metilo. Departamento de sanidad
vegetal facultad de ciencias agronómicas universidad de chile casilla 1004, Santiago, chile. Cien.
Inv. Agr. 30 (2). 107-112.
 Danay I. y Martínez R. (2009). Mechanisms de action de trichoderma frente a hongos fitopatógenos.
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