Toma y envío de muestras en Veterinaria (sangre, orina, heces, líquido sinovial)

1. UNIVERSIDA TÉCNICA DE AMBATO
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
MEDICINA VETERINARIA
PATOLOGÍA CLÍNICA
ALUMNO: BRYAN CULCAY
CURSO: SEXTO
PARALELO: “A”
PROFESOR: DR. MARCO ROSERO
CEVALLOS-ECUADOR
2020
1

2. INTRODUCCIÓN
Los requisitos necesarios que se deben cumplir
para la toma, manejo y envió de muestras, sirve
como una herramienta necesaria para el análisis
de una gran variedad de muestras clínicas,
citológicas, alimentos, aguas etc., Ya que cada
una de estas requiere de condiciones precisas y
tener un cuidado y manejo cauteloso para
realizar dichos exámenes que hoy por hoy en la
veterinaria han sido de mucha importancia para
el clínico y/o profesional a cargo para determinar
varias enfermedades que han afectado a los
pacientes.

3. DESARROLLO
BIOSEGURIDAD
EQUIPO DE PROTECCIÓN
PERSONAL (EPP)
Usar vestimenta de protección
apropiada:
Gafas, máscara, guantes con
malla de acero, guantes de latex,
botas, overol, delantal, delantal
impermeable.
EQUIPOS PARA LA
CONTENCIÓN DE LOS
ANIMALES
Verificar si las instalaciones
y equipos están disponibles:
Abrebocas, acial,
inmovilizador nasal.
IDENTIFICACIÓN DEL
ANIMAL Y DE LA
MUESTRA
Los más comunes son:
tatuaje, arete y marcación a
fuego
DESCARTE DEL
MATERIAL
CORTOPUNZANTE: en
cajas recolectoras aptas para
este material
OTROS MATERIALES:
infecciosos deben
descartarse en bolsas de
color blanco identificadas.
ACONDICIONAMIENTO
PARA EL ENVÍO
Sistema de embalaje, debe
ser triple: recipiente
primario, embalaje
secundario, embalaje externo

4. RUMIANTES,
EQUINOS,
PORCINOS
MATERIAL:
SANGRE
DONDE RECOLECTAR:
A) Vena Yugular
B) Vena coccígea
C) Vena mamaria
D) Vena cava craneal
(porcinos)
COMO RECOLECTAR
Utilizar sistema de vacío o
jeringa y aguja
RECIPIENTE Y CANTIDAD
A) Tubo de ensayo sin
anticoagulante 10 ml
B) Tubo de ensayo con EDTA K2:
5 ml
EXÁMENES
A) Identificación de ac
B) Identificación directa del
agente
T° DE LA MUESTRA PARA
TRANSPORTE
Refrigerada +2°C a +8 °C
TIEMPO CRÍTICO PARA
LLEGAR AL
LABORATORIO
Hasta 48 horas

7. MATERIAL PARA LA TOMA DE MUESTRA EN
EL SISTEMA URINARIO
HISOPO
ESTÉRIL
COLECTOR
UNIVERSAL ESTÉRIL
MEDIOS PARA EL
TRANSPORTE DE
SECRECIONES
TUBOS DE VACÍO PARA
RECOLECCIÓN
PAPEL
ABSORBENTE
BOLSA PLÁSTICA

8. MATERIAL:
ORINA
DONDE RECOLECTAR:
Se puede obtener una muestra
de orina de la micción
espontánea, de la micción
inducida, por punción vesical o
mediante cateterismo uretral en
hembras.
COMO RECOLECTAR
Existen varios procedimientos para inducir la micción:
- Obstruir los ojos y la boca de pequeños rumiantes, durante unos segundos,estimula la
eliminación de orina.
- El uso de furosemida (diurético) por vía intravenosa favorece la micción dentro de los
10 a 15 minutos
- Se induce la micción en toros mediante un masaje suave y rítmico del orificio
prepucial y, en las vacas, mediante un masaje de la vulva.
RECIPIENTE Y CANTIDAD
A) Tubo de ensayo que contenga el
medio adecuado
B) Colector universal estéril
EXÁMENES
A) Identificación de Leptospira
spp.
B) Identificación de Brucella spp.
C) Técnicas de biología molecular
T° DE LA MUESTRA PARA
TRANSPORTE
Refrigerada +2°C a +8 °C
TIEMPO CRÍTICO PARA
LLEGAR AL
LABORATORIO
Hasta 48 horas

9. MATERIAL PARA LA TOMA DE MUESTRA EN
EL SISTEMA GASTROINTESTINAL
MICROTUBOS
TIPO EPPENDORF
GUANTES PARA
PALPACIÓN
GUANTES DE
LATEX
BOLSA PLÁSTICA
ESTÉRIL
COLECTOR
UNIVERSAL ESTÉRIL

10. MATERIAL:
HECES
COMO RECOLECTAR
Directamente del recto (utilizando
guantes) o de la porción central del
bolo fecal (utilizando espátula),
inmediatamente después de la
defecación
RECIPIENTE Y CANTIDAD
20 g de heces por animal. En el
caso de rebaños, recolectar 10
a 15 muestras de cada franja
etaria. Utilizar un frasco por
animal.
EXÁMENES
Identificación directa del
agente
RECIPIENTE
Colector universal
T° DE LA MUESTRA PARA
TRANSPORTE
Refrigerada +2°C a +8 °C
TIEMPO CRÍTICO PARA
LLEGAR AL
LABORATORIO
Hasta 48 horas

11. MATERIAL PARA LA TOMA DE MUESTRA EN
EL SISTEMA OSTEOARTICULAR
ALGODÓNJERINGA Y AGUJAS
TUBO TIPO
KMA
HISOPO ESTÉRIL
MATERIAL PARA
TRICOTOMÍA
MATERIAL PARA
ANTISEPSIA

12. MATERIAL:
LÍQUIDO SINOVIAL
DONDE RECOLECTAR:
escapulohumeral,
coxofemoral y
articulaciones del carpo
y del tarso
COMO RECOLECTAR
-Sedar al animal
-Realizar tricotomía y desinfección en la región de la punción
-Contener al animal para evitar movimientos bruscos; Punzar la
articulación afectada, utilizando jeringas con agujas de 0,8 mm de
diámetro y 40 mm de largo.
-Posteriormente, dividir la muestra entre un tubo con anticoagulante,
para el estudio citológico, y otro tubo sin anticoagulante, para la
identificación directa del agente
- Retirar la aguja y aplicar un vendaje en el lugar de la punción.
RECIPIENTE Y CANTIDAD
A) Tubo estéril mínimo 1,5 ml
EXÁMENES
A) Identificación directa del
agente y citológico
T° DE LA MUESTRA PARA
TRANSPORTE
Refrigerada +2°C a +8 °C
TIEMPO CRÍTICO PARA
LLEGAR AL
LABORATORIO
Hasta 48 horas

13. BIOSEGURIDAD
EQUIPO DE PROTECCIÓN
PERSONAL (EPP)
Usar vestimenta de protección
apropiada:
Gafas, máscara, guantes con
malla de acero, guantes de latex,
filipino o bata
EQUIPOS PARA LA
CONTENCIÓN DE LOS
ANIMALES
Verificar si las instalaciones
y equipos están disponibles:
Abrebocas, acial,
inmovilizador nasal.
IDENTIFICACIÓN DEL
ANIMAL Y DE LA
MUESTRA
Identificadas: nombre del
paciente, especie, raza,
edad, hora y fecha del
muestreo
DESCARTE DEL
MATERIAL
CORTOPUNZANTE: en
cajas recolectoras aptas para
este material
OTROS MATERIALES:
infecciosos deben
descartarse en bolsas de
color blanco identificadas.
ACONDICIONAMIENTO
PARA EL ENVÍO
Sistema de embalaje, debe
ser triple: recipiente
primario, embalaje
secundario, embalaje externo

15. PERROS Y
GATOS
MATERIAL:
SANGRE
DONDE RECOLECTAR:
A) Vena Yugular
B) Vena cefálica
COMO RECOLECTAR
Vena Yugular: se presiona la región lateral a la línea media del cuello,
para que resalte la vena y se procede a tomar el recolectado
Vena cefálica: presionar el miembro torácico y ejercer presión para que la
vena se pueda observar y seguido tomar la muestra en un ángulo de 45°.
RECIPIENTE
A) Tubos EDTA
B) Tubo de ensayo sin
anticoagulante puede ser de 3,
5 y 10 ml
EXÁMENES
A) Identificación de ac
B) Identificación directa del
agente
T° DE LA MUESTRA PARA
TRANSPORTE
Refrigerada +2°C a +8 °C
TIEMPO CRÍTICO PARA
LLEGAR AL
LABORATORIO
Hasta 48 horas

16. MATERIAL:
ORINA
DONDE RECOLECTAR:
Se puede obtener una muestra
de orina de la micción
espontánea, de la micción
inducida, por punción vesical o
mediante cateterismo uretral
COMO RECOLECTAR
Se recoge durante la micción o mientras se exprime manualamente la
vejiga, la primera fracción es para identificar lesiones en la parte mas
distal del tracto urinario, la fracción intermedia es la mejor para la
mayoría de pruebas, y la final para enfermedades prostáticas.
RECIPIENTE Y CANTIDAD
A) Recipiente inerte y estéril
plástico, acero o cerámica, la
mayor cantidad posible
EXÁMENES
A) Examen físico
B) Examen químico
C) Medir el pH y evaluar el
aspecto microscópico
T° DE LA MUESTRA PARA
TRANSPORTE
Refrigerada +2°C a +8 °C
TIEMPO CRÍTICO PARA
LLEGAR AL
LABORATORIO
6-12 horas

17. MATERIAL:
HECES
COMO RECOLECTAR
A) Con asas rectales, en el interior
del recto del paciente
B) Del suelo tan pronto como
defeque el animal
RECIPIENTE Y CANTIDAD
1 a 2 gr mediante el asa y
directamente al portaobjetos
EXÁMENES
Identificación directa del
agente
T° DE LA MUESTRA PARA
TRANSPORTE
Refrigerada +2°C a +8 °C
TIEMPO CRÍTICO PARA
LLEGAR AL
LABORATORIO
Hasta 48 horas

18. MATERIAL:
LÍQUIDO SINOVIAL
DONDE RECOLECTAR:
muestras de carpo y
tarso preferiblemente
COMO RECOLECTAR
La obtención del líquido debe realizarse con una jeringa sin
anticoagulante. Una vez recogida la muestra, se deben realizar
extensiones en varios portas para su estudio citológico, ya que el
número de células y el estudio microscópico son los pilares de la
evaluación del líquido sinovial. Seguidamente, y en función del
volumen obtenido, debe distribuirse en los diferentes contenedores
necesarios para realizar su estudio
RECIPIENTE Y CANTIDAD
A) Tubo estéril mínimo 1-1,5 ml
EXÁMENES
A) enfermedades locales o
generalizadas que afectan a las
articulaciones
T° DE LA MUESTRA PARA
TRANSPORTE
Refrigerada +2°C a +8 °C
TIEMPO CRÍTICO PARA
LLEGAR AL
LABORATORIO
Hasta 48 horas

19. DISCUSIÓN
(Sota, 2005) Menciona que para la adecuada recolección, conservación y envió de las
muestras, es indispensable tener presentes distintas normas tales como: todas las muestras
deben ser remitidas con su historia clínica completa y perfectamente identificada, deben ser
obtenidas de animales vivos en distintos estadios de la enfermedad, y si es necesaria la
necropsia, esta debe ser guardada en un orden y metodologías adecuadas y corroborado por
(Cesar, 2017) el cual menciona que efectivamente todos los procedimientos anteriores
deben seguirse con un estricto y riguroso procedimiento que va desde la bioseguridad y
todas las tomas necesarios para el envió de dichas muestras para su análisis en el laboratorio
y finalmente se recalca en esta presentación las diferentes formas de toma y envío de
muestras en las distintas especies de animales lo cual es una ayuda esencial para futuros
estudiantes veterinarios.

20. CONCLUSIONES
• Se determinó los distintos métodos de toma y envió de muestras en las distintas especies
animales, así como también las medidas de seguridad esenciales para realizar dicho
procedimiento.
• Se analizó con cautela las técnicas a emplear en la recolección de muestras en las cuales
destacaron: sangre, orina, heces y líquido sinovial respectivamente.
• Se interpreto de manera teórica la forma correcta de obtener estas muestras con lo cual
posteriormente futuros estudiantes pueden beneficiarse de este documento y aplicarlo ya en su
vida profesional.

21. BIBLIOGRAFÍA
Carmen, A. d. (2016). Selección, conservación y envío de muestras.
Universidad Autónoma del estado de México, 51.
Cesar, J. (2017). MAnual veterinario de toma y envio de muestras.
Panaftosa, 112.
Gordillo, E. (2010). Manual práctico de toma y manejo de muestras en
perros y gatos. 110.
Salvador, M. d. (2013). Manual de toma, manejo y envío de muestras
de laboratorio. El Salvador, 166.
Sota, M. d. (2005). Recolección y envio de muestras. Dirección Nacional
de Sanidad Animal, 31.